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不同培养方式和pH对草地早熟禾原生质体分裂和生长的影响



全 文 :不同培养方式和pH对草地早熟禾原生质体分裂和
生长的影响
白生军,马晖玲,马 祥,安惠惠
(甘肃农业大学 草业学院/草业生态系统教育部重点实验室/甘肃省草业工程实验室/
中-美草地畜牧业可持续发展研究中心,甘肃 兰州 730070)
  摘要:以3个草地早熟禾品种午夜Ⅱ号、新格莱德和橄榄球Ⅱ号继代培养20次的愈伤组织为材料,
设置不同的pH水平,通过2种培养方式进行了原生质体培养,观测其原生质体的分裂和生长状况。结
果表明:3个草地早熟禾品种原生质体最适宜的培养方式为固液双层培养,固液双层培养中液相pH为
5.8(新格莱德pH6.0)时原生质体分裂率达最高值,午夜2号42.8%、新格莱德50.1%和橄榄球2号
29.4%。基因型的差异对于原生质体培养成功与否有着密切的关系。
  关键词:液体浅层培养;固液双层培养;原生质体分裂率;pH
  中图分类号:S 543  文献标识码:A  文章编号:1009-5500(2012)01-0050-04
  草地早熟禾(Poa pratensis)是禾本科早熟禾属一
种优质冷季型草坪草。草地早熟禾抗寒性较差[1],植
物生殖方式复杂多样,常以兼性无融合生殖方式进行
繁殖[2-6],有些品种无融合生殖率高达98%以上[3,6],
有性杂交率低,很难获得杂种优势品种。以原生质体
培养为基础和前提条件的体细胞杂交技术不失为选育
草地早熟禾杂种细胞可行而有效的育种途径之一。
Vander等[7]开创了草地早熟禾原生质体培养的先河,
Kisten等[8]的研究进一步奠定草地早熟禾原生质体培
养的基础,但目前来看,早熟禾体细胞杂交技术还不成
熟,研究相对不够深入,仅获得一些阶段性成果[9,10]。
  实验以草地早熟禾午夜2号(MidnightⅡ)、新格
莱德(Nuglade)和橄榄球2号(RugbyⅡ)3个品种的
优质愈伤组织为材料,研究不同培养方式和pH 对原
生质体分裂和生长的影响,探索不同品种原生质体的
最佳培养方式,以期为进一步完善草地早熟禾的原生
质体培养奠定基础。
  收稿日期:2011-05-03;修回日期:2011-06-10
  基金项目:甘肃省教育厅项目(0702-03)资助
  作者简介:白生军(1985-),男,甘肃榆中人,在读硕士。
E-mail:107330802203@st.gsau.edu.cn
马晖玲为通讯作者。
1 材料和方法
1.1 实验材料
  将3个草地早熟禾午夜2号、新格莱德和橄榄球2
号品种的成熟种子接种于添加各品种诱导愈伤组织适
宜浓度激素的 MS培养基上(午夜2号:1mg/L 2,4-D
+0.3mg/L 6-BA;新格莱德:3mg/L 2,4-D+0.5
mg/L 6-BA;橄榄球2号:3mg/L 2,4-D+0.1mg/L
6-BA;),诱导并优化培养得到生长状态质地良好的愈
伤组织。
1.2 实验方法
挑选各品种继代20次生长状态良好的愈伤组织
1g,置10mL酶液(13%甘露醇CPW+1%的纤维素
酶+1%的离析酶+0.3%的崩溃酶+0.3%的果胶酶
和5mol/L的 MES,pH 5.8),25±1℃,50r/min摇
床暗中酶解16h。用200目和300目尼龙网过滤混合
液,离心5min,依次用CPW-13溶液和原生质体培养
液清洗2~3次后用培养液调整原生质体密度为2×
105个/mL后进行培养[11]。
用液体浅层培养和固液双层培养进行草地早熟禾
原生质体培养。其中,液体浅层培养以 KM8P为基本
培养基,添加不同品种各自愈伤组织诱导时适宜浓度
的激素(0.45μm微孔滤膜抽滤灭菌),将纯化得到的
05       GRASSLAND AND TURF(2012)            Vol.32No.1
DOI:10.13817/j.cnki.cyycp.2012.01.013
原生质体悬浮于其中,滴加2mL悬浮液到直径6cm
的培养皿底部,形成一薄层,用保鲜膜封口,于26±
1℃下,恒温培养箱中静置培养;固液双层培养法:在
培养皿底部先铺8~10mL MS培养基(不添加激素,
pH 5.8),再在上面滴加2mL含有原生质体的KM8P
培养液进行浅层培养,用保鲜膜封口,于26±1℃下恒
温培养箱中静置培养,每天轻轻晃动培养皿数次,使原
生质体与氧气充分接触。KM8P培养液的pH值设置
5.6、5.8、6.0共3个水平。
原生质体培养15d后在倒置显微镜下统计分裂
频率。比较不同品种的草地早熟禾原生质体的分裂生
长及再生能力差异。
  原生质体分裂频率(%)=(分裂的原生质体数/接
种原生质体数)×100
2 结果与分析
2.1 不同培养方式及培养基pH对3个品种原生质
体分裂的影响
  培养方式和培养基的pH对午夜2号原生质体的
分裂生长均有影响。固液双层培养比液体浅层培养更
能得到较高的原生质体分裂率(图1)。
图1 不同培养方式和培养基pH对午夜2号原生质
体分裂生长的影响
Fig.1 Effect of different cultivation methods and pH
of medium on growth of MidnightⅡprotoplast
  pH对原生质体的分裂率具有明显影响。固液双
层培养中,pH5.8时原生质体分裂率最大(42.8%),显
著高于pH 为5.6和6.0时的分裂率。研究表明,午
夜2号原生质体培养过程中,最适宜的培养条件是固
液双层培养方式,pH为5.8。
  新格莱德的培养基pH 为5.6时,原生质体分裂
率在2种培养方式中均最低,而pH为5.8和6.0时,
2种培养方式中原生质体分裂率相近,均在45%,固液
双层培养,pH6.0时原生质体分裂率达到最大值,为
50.1%(图2)。
图2 不同培养方式和培养基pH对新格莱德原生质体
分裂生长的影响
Fig.2 Effect of different cultivation methods and pH of
medium on growth of Nuglade protoplast
培养方式和pH对橄榄球2号原生质体分裂的影
响不甚明显,原生质体分裂率均保持在22.5%~
29.4%。同一pH值下,相对液体浅层培养,橄榄球2
号原生质体培养采用固液双层培养可得到较高的原生
质体分裂率;下层固体培养基和上层液体培养基pH
均为5.8时,原生质体分裂率达到最大值,为29.4%
(图3)。
图3 不同培养方式和培养基pH对橄榄球2号原生质体
分裂生长的影响
Fig.3 Effect of different cultivation methods and pH of
medium on growth of RugbyⅡprotoplast
2.2 3个草地早熟禾品种原生质体形态及其变化
原生质体培养初期,3个草地早熟禾品种的原生
质体状态基本相似,在倒置显微镜下观察均表现为形
状规则、边缘清晰、大小均一和内含物较多的特性(图
4A)。培养2~3d后,可观察到原生质体再生细胞的
第1次、第2次分裂(图4B,C)。随后再生细胞持续分
裂,在低倍镜下即可观察到再生细胞形成的小细胞团
(图4D)。比较3个品种原生质体分裂率发现,新格莱
德原生质体的分裂率最高(图2),午夜2号略低于新
格莱德(图1),而橄榄球2号原生质体的分裂率远低
于前两者(图3)。
15第32卷 第1期           草 原 与 草 坪2012年
图4 A优质的原生质体;B原生质体再生细胞第一次分裂;C原生质体再生细胞第二次分裂;D原生质体分裂产生的小细胞团
Fig.4 A Superior protoplasts;B The first division of protoplast-derived cel;C The second division of protoplast-derived cel;
D The Cel clusters formed from protoplasts
3 讨论
3.1 不同培养方式对原生质体分裂和生长的影响
不同的培养方式为原生质体提供不同的生长环
境,液体浅层培养适用于较易分裂的原生质体,操作比
较简单,对原生质体损伤较小,能有效防止有害物质过
多积累,且易于添加新鲜培养基。但该方法也存在诸
如原生质体分布不均匀、原生质体粘连、难以定点观察
原生质体等缺点。固液双层培养是对液体浅层培养的
改善。培养过程中,固体培养基中的营养成分可以被
上层液体中的原生质体吸收利用,同时,原生质体产生
的有害代谢物可被固体培养基吸收,尤其在固体培养
基中添加吸附剂时这种吸附作用更明显。黄文川等[12]
研究了液体浅层培养和固液双层培养对烟草原生质体
分裂率的影响,发现固液双层培养的原生质体分裂率
显著高于液体浅层培养时的分裂率,当加厚双层培养
基中的固相至液相厚度的4~5倍时,更有利于烟草愈
伤组织的快速形成和植株再生。实验以2种培养方式
对3个草地早熟禾品种的原生质体进行培养,结果表
明,固液双层培养比液体浅层培养效果好,在固液双层
培养中原生质体具有较高的分裂频率。
3.2 培养基pH对原生质体分裂和生长的影响
  原生质体在液体培养过程中,被完全浸没在培养
液中,液体培养基的pH 值通过影响渗透压稳定剂活
性而影响原生质体的分裂、生长,酶液的pH值条件主
要影响溶壁酶系统和渗透压稳定剂活性[14]。当培养基
pH低于6.0时,新格莱德原生质体分裂率下降,午夜
2号和橄榄球2号原生质体在培养基pH为5.8时也
达到最大分裂频率。这与马向东等[13]的研究结果一
致,但金凌云研究[15]认为,原生质体再生率与pH关系
不大,今后有待进一步研究。
3.3 基因型的差异与原生质体生长和分裂的影响
实验研究中,选取20次继代后第8d生长状态相
近的愈伤组织进行原生质体游离和培养,培养条件和
培养密度相同,但3个品种原生质体分裂率呈现出较
大差异。培养初期未见品种间差异,持续培养发现橄
榄球Ⅱ号再生细胞在培养过程中停止分裂生长,而新
格莱德和午夜Ⅱ号再生细胞能持续分裂,长势良好。
可见不同品种之间原生质体培养效果差异很大,赵小
强[11]对于草地早熟禾原生质体培养的研究结果也证实
了这一结论,可能是由于原生质体供体材料的生理状
态的差异造成的[16]。故合适的基因型是进行草地早熟
禾原生质体培养成功的重要条件[5]。
参考文献:
[1] 李显利,米福贵,闫立军,等.草地早熟禾不同品种抗旱性
的评价分析[J].草原与草坪,2010,30(3):43-46.
[2] Akerberg E.Apomictic and sexual seed formation in poa
pratensis L[J].Hereditas,1979,25:359-371.
[3] Bashaw E C.Apomixis and its application in crop improve-
ment[M]//W R Fehr,H H Hadley,Hybridization of crop
plants.New York:Amer.Madison Press,1980:455-633.
[4] Grazi F M.Observation on the mode of reproduction and
embryology of poa pratensis L[J].Hereditas,1961,47:
489-541.
[5] Hanna W W,E C Bashaw.Apomixis:its identification and
use in planting breeding[J].Crop Science,1987,27(6):
1136-1139.
[6] 殷朝珍,王兆龙,葛才林.草地早熟禾无融合生殖及其育
种利用研究进展[J].草原与草坪,2006(1):18-23.
[7] Vander V,Zaal P,Creemers-Molenaar J.Regeneration of
albino plantlets from suspension culture derived proto-
25       GRASSLAND AND TURF(2012)            Vol.32No.1
plasts of Kentucky bluegrass(Poa protensis L)[J].Eu-
phytica,1988(5):169-176.
[8] Kirsten Annette Nielsen,Else Larsen,Elisabeth Knudsen.
Regeneration of protoplast-derived green plants of Ken-
tucky Bluegrass(Poa pratensis L)[J].Plant Cel Report,
1993(12):537-540.
[9] 马晖玲,赵小强,白小明.草地早熟禾午夜Ⅱ号原生质体
培养及植株再生[J].草地学报,2010,18(1):103-107.
[10] 赵小强,马晖玲,林栋,等.草地早熟禾新格莱德胚性愈
伤组织原生质体培养及植株再生的研究[J].草业学报,
2010,19(2):55-66.
[11] 赵小强.草地早熟禾原生质体培养及体细胞的杂交[D].
甘肃:甘肃农业大学,2009.
[12] 黄文川,杨其光.一种简化有效的普通烟草原生质体培
养方法[J].西北农业大学学报,2000,28(6):101-103.
[13] 朱至清.植物细胞工程[M].北京:化学工业出版社,
2003:25.
[14] 马向东.猴头菌原生质体制备条件的研究[J].河南科
学,1995,13(1):65-69.
[15] 金凌云.蛹虫草原生质体诱变及主要活性物质提取工艺
研究[D].陕西:西北农林科技大学,2010.
[16] 马晖玲,张崇浩,肖尊安,等.影响植物原生质体分裂的
生理生化因素[J].甘肃农业大学学报,1998,33(1):42
-46.
Effect of different cultivation methods and pH on
division and growth of Poa pratensis protoplast
BAI Sheng-jun,MA Hui-ling,MA Xiang,AN Hui-hui
(College of Pratacultural Science,Gansu Agricultural University/Key Laboratory of Grassland Ecosystem,
Ministry of Education/Pratacultural Engineering Laboratory of Gansu Province/Sino-U.S.
Centers for Grazingland Ecosystem Sustainability Lanzhou 730070,China)
  Abstract:The calus sub-cultured for 20times from 3varieties of Poa pratensis(MidnightⅡ,Nuglade and
RugbyⅡ)used for protoplast culture through different cultivation methods and pH values.The result indicated
that solid-liquid double layer was better for protoplast culture.The peaks of protoplast division rates were
42.8%for MidnightⅡ(pH 5.8),50.1%for Nuglade(pH 6.0)and 29.4%for RugbyⅡis 29.4%(pH 5.8)re-
spectively.The genotype difference showed an important effect on protoplast culture.
  Key words:liquid shalowculture;solid-liquid double layer culture;protoplast division rate;pH
35第32卷 第1期           草 原 与 草 坪2012年