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过氧化氢参与了脱落酸调控的拟南芥根形态发育



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第 52卷 第 5期 2007年 3月 快 讯
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过氧化氢参与了脱落酸调控的拟南芥根形态发育
白 玲①② 周 云② 张晓然② 宋纯鹏②* 曹鸣庆①③
(① 首都师范大学生命科学学院, 北京 100037; ② 河南省植物逆境生物学重点实验室, 河南大学生命科学学院, 开封 475001;
③ 北京农业生物技术研究中心, 北京 100097. * 联系人, E-mail: songcp@henu.edu.cn)
摘要 脱落酸(abscisic acid, ABA)可以抑制拟南芥根的伸长生长和促进根毛的发育, 但其中的信号转导
机制仍不清楚. 本研究利用拟南芥野生型和突变体为实验材料, 研究发现过氧化氢(hydrogen peroxide,
H2O2)对野生型根生长的影响与 ABA类似; 而抗坏血酸(ascorbic acid, ASA)可逆转 ABA对野生型根生
长的抑制效应; 在拟南芥NADPH氧化酶缺失突变体 atrbohF和 atrbohC中ABA的这种作用丧失. 激光
共聚焦和实时定量RT-PCR分析表明, ABA可以诱导拟南芥根细胞H2O2的产生, 并可增强H2O2相关基
因OXI1的表达. 本研究结果初步表明, H2O2作为一种重要的信号分子参与了ABA调节根生长发育的信
号转导过程.
关键词 拟南芥 根生长 ABA H2O2

2006-12-18收稿, 2007-01-30接受
国家自然科学基金(批准号: 30370765, 30530430, 30625005)资助项目
植物根系不仅是植物吸收水分和矿质营养的重
要器官 , 而且可以感知外界各种胁迫刺激从而调控
植物的生长发育. 尽管 ABA 作为一种重要的根源逆
境信号对根生长发育的调控已有报道[1,2], 但是 ABA
调节根生长发育信号转导的确切机制仍不甚了解.
已知 H2O2参与了 ABA 调节植物生长发育的许
多方面, 如 ABA 可以诱导植物保卫细胞 H2O2 的产
生[3], 并且调节质膜 Ca2+通道的活性[4]. 同时拟南芥
气孔开放基因 ost1编码的激酶介导了 ABA信号转导
中 H2O2的产生[5]. 在植物根发育的研究中发现, H2O2
通过影响 K+吸收相关基因的表达从而调控植物根的
生长[6]. 同时, NADPH氧化酶缺失的拟南芥双突变体
atrbohD/F幼苗根的生长不受 ABA的抑制[7], 从而推
测H2O2可能是ABA调控拟南芥根发育过程中的一个
重要成分[8]. 但是目前还未见 H2O2参与 ABA调控根
发育的具体报道.
为了研究 H2O2在 ABA 调控根生长发育中的功
能, 我们首先利用野生型拟南芥 Arabidopsis Colum-
bia 为材料检测了 ABA 和 H2O2对根生长的影响. 野
生型拟南芥种子经表面消毒(0.1% HgCl2)后点种在无
菌 MS (Murashige和 Skoog 1962)培养基上, 4℃冷处
理 3 d打破休眠后转入光照培养间(22℃, 16 h/8 h光
周期)垂直生长约 8 d. 然后将幼苗转入含不同浓度的
ABA和 H2O2的MS培养基上生长 3 d, 对根弯曲生长
的长度进行测量统计. 研究表明, 1~50 µmol/L ABA
与 0.2~1.5 mmol/L H2O2的作用相似, 即都抑制拟南
芥根的伸长生长, 且都具有浓度依赖性(图 1).

图 1 ABA和 H2O2对拟南芥根生长的影响
处理 3 d后根弯曲长度. n = 60, 标准误差由 3次实验得到

抗坏血酸(ascorbic acid, ASA)作为植物体内重要
的 H2O2 清除剂确保了植物细胞内氧化还原态的平
衡[9]. 借助于抗坏血酸, 我们研究了 H2O2在 ABA 调
控拟南芥根生长中的作用. 研究分析表明, 抗坏血酸
可以逆转 ABA 对野生型拟南芥根伸长生长的抑制效
应, 在 50 µmol/L ABA MS 培养基上同时施加 200







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mg/L抗坏血酸后, 野生型根生长长度由 0.3 mm增至
4.5 mm, 受ABA抑制的程度明显减弱(图 2); 同样 1.0
mmol/L H2O2处理时拟南芥的根伸长平均为 1.8 mm,
而和 200 mg/L 抗坏血酸共同处理时增至 3.4 mm(图
2), H2O2 抑制根 生长的现象也得到明显缓解, 进一

图 2 抗坏血酸逆转 ABA对拟南芥根生长的抑制效应
(a) 分别在 MS(CK), 50 µmol/L ABA, 1.0 mmol/L H2O2, 50 µmol/L
ABA + 200 mg/L抗坏血酸, 1.0 mmol/L H2O2+200 mg/L抗坏血酸培养
基上培养 3 d的幼苗; (b) 处理 3 d后根弯曲长度. n = 60, 标准误差由
3次实验得到
步暗示了 H2O2参与了 ABA调控的幼苗根生长.
ABA处理保卫细胞后可以诱导产生H2O2从而使
气孔关闭[3,4]. 与此相似, 为了获得 H2O2参与 ABA调
控抑南芥根生长发育的直接证据 , 我们以 2,7-di-
chlorofluorescin diacetate (H2DCF-DA)作为胞内 H2O2
的荧光探针 [10,11], 采用激光扫描共聚焦显微成像
(laser scan confocal microscope, LSCM)技术检测根细
胞内 H2O2 含量的变化 . 游离出的拟南芥根原生质
体 [12]在加入 50 µmol/L H2DCF-DA (MERCK, San
Diego, CA) 孵育 20~30 min 后, 在 LSCM (Bio-Rad
MicroRadiance)下观察, LSCM 的工作条件为: Ex =
488 nm, Em = 522 nm, 激光功率 3%, 连续扫描记录
时间 360 s. 与对照(不加 ABA处理)相比, 50 µmol/L
ABA处理后拟南芥根细胞原生质体的 DCF荧光明显
增强(图 3(a)), 细胞中的平均荧光强度统计结果(图
3(b))也明显表明 ABA可以诱导野生型拟南芥根细胞
内 H2O2的产生.
我们又利用 NADPH 氧化酶缺失突变体 atrbohF
和 atrbohC 来对拟南芥根的生长发育进行研究. atr-
bohF和 atrbohC对 ABA不敏感, 在 50 µmol/L ABA
的培养基上生长 3 d后根弯曲生长分别是相应野生型


图 3 ABA促进拟南芥根细胞原生质体 H2O2的产生
(a) 50 µmol/L ABA处理 H2DCF-DA孵育的根原生质体细胞 LSCM扫描荧光图, 标尺示 10 µm; (b) 荧光强度平均数据统计图, n = 6







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的 7和 9倍多(图 4). 这一结果进一步说明, H2O2的产
生对于ABA调节的拟南芥根早期生长发育是必须的.


图 4 H2O2 参与 ABA调控的拟南芥根的生长
(a) 50 µmol/L ABA MS培养基上生长 3 d的 WT, atrbohC和 atrbohF;
(b) CK及 50 µmol/L ABA MS培养基上培养 3 d的 atrbohC和 atrbohF
相对于 WT的相对根长. n = 60, 标准误差由 3次实验得到

为了进一步研究 H2O2在 ABA 调节的根发育中
的功能, 我们对不同处理的根尖形态也做了分析. 结
果表明, 50 µmol/L ABA和 1 mmol/L H2O2都可以诱
导野生型拟南芥根毛的形成 (图 5(a)). 生长在 50
µmol/L ABA 条件下的 atrbohC 和 atrbohF 与野生型
截然不同, 野生型主根根尖丛生大量根毛而突变体根
尖几乎没有根毛(图 5(a)). 但是当施加外源 1 mmol/L
H2O2后突变体的根毛明显增多(图 5(a)), 这表明H2O2
参与了 ABA促进根尖根毛形成的过程, 参与了 ABA
调节的根形态的发育 . 我们的结果还发现当 50
µmol/L ABA和 200 mg/L抗坏血酸共同处理时, 野生
型根尖根毛显著少于 ABA处理, 与突变体用 ABA处
理得到的结果类似(图 5(b)); 而同时抗坏血酸和 H2O2
处理的根毛数相对于 H2O2 处理也明显减少. 根尖形
态研究结果进一步证实了H2O2在ABA调节的拟南芥
根发育的信号转导途径中的作用.
拟南芥氧化胁迫诱导基因 1(AtOXI1)编码的蛋白
激酶OXI1属于AGC家族蛋白, 在调控根毛发育中起
到重要的作用 . 该基因缺失的纯合突变体与野生型
相比, 根毛数量和长度都明显减少; 并且 OXI1 在氧
化猝发信号转导途径中具有重要的作用 , 其基因的
表达在体内直接受 H2O2 的诱导[13,14]. 采用实时定量
RT-PCR 技术我们对幼苗根部 AtOXI1 的转录进行了
分析, 100 µmol/L ABA或 ddH2O(CK)处理生长 8 d的
野生型拟南芥幼苗 5 h后, 提取根部总 RNA, 反转录
后在 Rotor-Gene 3000(Corbett Research, Australia)上
作实时定量 PCR分析(以 Actin2作内参, 对样品中目
标基因进行相对定量分析. 扩增 AtOXI1 的专一性引
物为 : 5′-GATTTGAAGCCAGACAATGTGAT-3′和
5′-ACCAGTTAGATTCGGCGGTTTAGA-3′; Actin2
专一引物为 : 5′-TTCCTCATGCCATCCTCCGTCTT-
3′和 5′-CAGCGATACCTGAGAACATAGTGG-3′, 实
验重复 3次), 结果表明, ABA处理后 AtOXI1的相对
转录量升高(图 6), 暗示 H2O2相关的信号转导途径参
与了ABA对根生长的调节. 同时OXI1作为调节根毛
发育的基因, 其相对高的表达与 ABA 诱导大量根毛
的形成也是一致的.


图 5 H2O2参与 ABA调节的拟南芥根毛生长
(a) CK, 50 µmol/L ABA和 1.0 mmol/L H2O2培养基生长 3 d的WT, atrbohC和 atrbohF幼苗根尖形态, 标尺示 50 µm; (b) WT在 200 mg/L抗坏血
酸, 50 µmol/L ABA+200 mg/L抗坏血酸及 1.0 mmol/L H2O2+200 mg/L抗坏血酸培养基上生长 3 d的根尖形态, 标尺示 50 µm







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图 6 ABA上调 AtOXI1的转录
n = 3

综上所述, 我们认为 H2O2 作为一种重要的信号
分子参与了 ABA 对拟南芥根生长发育的调控, ABA
通过诱导根细胞内产生更多的 H2O2抑制根的伸长生
长, 并调控 OXI1 的表达促进根毛的形成和发育. 我
们的实验结果对于揭示和理解 ABA 调控根发育的机
制具有重要的理论价值 , 但是中间的详细细节还有
待于进一步的研究.
致谢 感谢张骁教授在成文过程中提出了宝贵的修改意见
和建议.
参 考 文 献
1 Smet I D, Zhang H M, Inze D, et al. A novel role for abscisic acid
emerges from underground. Trends Plant Sci, 2006, 11: 434—439
2 Chen C W, Yang Y W, Lur H S, et al. A novel function of abscisic
acid in the regulation of rice (Oryza sativa L) root growth and de-
velopment. Plant Cell Physiol, 2006, 47: 1—13
3 Zhang X, Zhang L, Dong F C, et al. Hydrogen peroxide is involved
in abscisic acid–induced stomatal closure in Vicia faba. Plant
Physiol, 2001, 126: 1438—1448
4 Pei Z M, Murata Y, Benning G, et al. Calcium channels activated
by hydrogen peroxide mediate abscisic acid signalling in guard
cells. Nature, 2000, 406: 731—734
5 Mustilli A C, Merlot S, Giraudat J, et al. Arabidopsis OST1 protein
kinase mediates the regulation of stomatal aperture by abscisic acid
and acts upstream of reactive oxygen species production. Plant
Cell, 2002, 14: 3089—3099
6 Shin R, Schachtman D P. Hydrogen peroxide mediates plant root
cell response to nutrient deprivation. Proc Natl Acad Sci USA,
2004, 101: 8827—8832
7 Kwak J M, Mori I C, Pei Z M, et al. NADPH oxidase AtrbohD and
AtrbohF genes function in ROS-dependent ABA signaling in
Arabidopsis. J EMBO, 2003, 22: 2623—2633
8 Gapper C, Dolan L. Control of plant development by reactive
oxygen species. Plant Physiol, 2006, 141: 341—345
9 Noctor G, Foyer C H. Ascorbate and glutathione: Keeping active
oxygen under control. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol,
1998, 49: 249—279
10 Schopfer P. Hydroxyl radical-induced cell-wall loosening in vitro
and in vivo: Implications for the control of elongation growth.
Plant J, 2001, 28: 679—688
11 Simontacchi M, Caro A, Fraga C G, et al. Oxidative stress affects
tocopherol content in soybean embryonic axes upon imbibition and
germination. Plant Physiol, 1993, 103: 949—953
12 Demidchik V, Tester M. Sodium fluxes through nonselective cation
channels in the plasma membrane of protoplasts from Arabidopsis
roots. Plant Physiol, 2002, 128: 379—387
13 Anthony R G, Henriques R, Helfer A, et al. A protein kinase target
of a PDK1 signalling pathway is involved in root hair growth in
Arabidopsis. J EMBO, 2004, 23: 572—581
14 Rentel M C, Lecourieux D, Ouaked F, et al. OXI1 kinase is neces-
sary for oxidative burst-mediated signaling in Arabidopsis. Nature,
2004, 427: 858—861