免费文献传递   相关文献

oleosin-MT融合蛋白在拟南芥中的表达及鉴定



全 文 :第43卷 第10期
2015年10月
西北农林科技大学学报(自然科学版)
Journal of Northwest A&F University(Nat.Sci.Ed.)
Vol.43 No.10
Oct.2015
网络出版时间:2015-09-09 15:41 DOI:10.13207/j.cnki.jnwafu.2015.10.021
网络出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/61.1390.S.20150909.1541.042.html
oleosin-MT融合蛋白在拟南芥中的表达及鉴定
 [收稿日期] 2014-03-11
 [基金项目] 国家高技术研究发展计划(863)项目(2011AA100606);国家自然科学基金项目(31201237,31101172);吉林省科技厅中
青年领军人才及优秀创新团队项目(20111815);教育部博士点基金青年教师基金项目(20122223120002);吉林省科技
型中小企业创新基金项目(13C26212201223)
 [作者简介] 官丽莉(1982-),女,吉林梅河口人,实验师,主要从事药用植物与生物技术研究。E-mail:guanl2004@163.com
 [通信作者] 姜 潮 (1955-),男,加拿大人,博士,研究员,主要从事植物生物反应器研究。E-mail:chaojiang10@hotmail.com
官丽莉a,b,陈 昱a,b,朱 栋a,b,韩怡来a,b,
崔 琪a,b,李海燕a,b,李校堃a,姜 潮a
(吉林农业大学a生物反应器与药物开发教育部工程研究中心,b生命科学学院,吉林 长春130118)
[摘 要]  【目的】获得转金属硫蛋白(MT)基因的拟南芥植株,为利用植物生物反应器规模化生产 MT奠定基
础。【方法】利用融合PCR方法,扩增拟南芥MT基因与油体蛋白oleosin基因的融合基因,将融合基因克隆至表达
载体pOP上,构建重组质粒pOP-oleosin-MT。采用冻融法将质粒pOP-oleosin-MT转入根癌农杆菌EHA105中,通
过农杆菌介导法转化拟南芥,用PCR检测并筛选转基因拟南芥阳性植株,采用SDS-PAGE法检测oleosin-MT融合蛋
白的表达,用邻苯三酚自氧化法和结晶紫法测定融合蛋白的体外抗氧化活性。【结果】成功构建了植物油体特异表达
载体pOP-oleosin-MT,融合蛋白oleosin-MT在拟南芥种子中成功表达,其分子质量为26ku;总蛋白质量浓度达到50
μg/μL时,超氧阴离子的清除率最高,为58.5%;总蛋白质量浓度为10μg/μL时,羟自由基清除率可达69.7%。【结
论】成功获得转MT基因的拟南芥株系,并证明融合蛋白oleosin-MT在拟南芥中具有良好的体外抗氧化活性。
[关键词] 金属硫蛋白;拟南芥;油体蛋白;基因表达
[中图分类号] Q943.2 [文献标志码] A [文章编号] 1671-9387(2015)10-0155-07
Expression and identification of oleosin-MT
fusion protein in Arabidopsis
GUAN Li-li a,b,CHEN Yua,b,ZHU Donga,b,HAN Yi-lai a,b,
CUI Qi a,b,LI Hai-yana,b,LI Xiao-kuna,JIANG Chaoa
(aMinistry of Education Bioreactor and Drug Development Reseach Center;
b College o f Life Science,Jilin Agricultural University,Changchun,Jilin130118,China)
Abstract:【Objective】This study obtained MTgene transgenic Arabidopsis thaliana plants to improve
the plant bioreactor technology and reduce the cost of separation and purification of therapeutic proteins.
【Method】Molecular biology method(PCR)was used to amplify MTand oleosinfusion gene.Then,oleo-
sin-MTgene was cloned into the expression vector pOP to construct recombinant plasmid pOP-oleosin-MT
and the freeze-thaw method was used to transfer plasmid pOP-oleosin-MT into Agrobacterium tumefaciens
EHA105.It was transformed into Arabidopsisby Agrobacterium-mediated.Positive transgenic plants were
determined by PCR analysis and SDS-PAGE.Antioxidant activity analysis of MT protein was also detected
by pyrogalol autoxidation method and crystal violet method.【Result】Plant binary expression vector pOP-
Oleosin-MT was successfuly constructed.SDS-PAGE showed that the fusion protein expressed in Arabi-
dopsis seeds with a molecular weight of 26ku.In vitro antioxidant activity assay showed that the superox-
ide anion free radical clearance rate was the highest of 58.5% when MT protein concentration was 50
μg/μL.Total protein concentration was 10μg/μL and hydroxyl radical scavenging rate was 69.7%,indica-
ting that transgenic Arabidopsis had high antioxidant activity.【Conclusion】Arabidopsis lines with MT
gene were successfuly obtained,and it was proved that recombinant protein had good antioxidant activity.
Key words:MT protein;Arabidopsis thaliana;oleosin protein;gene expression
  金属硫蛋白(Metalothionein,MT)是一类低分
子质量(6~7ku)、富含半胱氨酸、可与大量金属离
子(如Zn2+、Cd2+和 Cu2+)相结合的独特蛋白质或
活性肽,是机体内惟一一种在金属代谢中起重要调
节作用的小分子蛋白[1]。1957年,富含Cd的金属
蛋白首次在马肾脏细胞中被发现[2]。对金属硫蛋白
进行提纯,发现其含有大量的半胱氨酸残基和金属,
并因此将其命名为“Metalothionein”[3]。研究证
实,植物 MT的高巯基含量使其在空气中极不稳
定,导致分离困难,目前仅在小麦Ec蛋白[4]和拟南
芥 MT1、MT2和 MT3[5]中分离纯化获得,MT基因
的表达可增强植物在重金属胁迫过程中的抗逆作
用,对组织细胞损伤修复具有显著功效[6-10]。同时
研究还发现,MT2可与金属结合,具有清除自由基、
防辐射、加速皮肤炎症修复和延缓衰老等功效[11-12]。
近年来,随着植物基因工程技术的不断发展,植
物表达系统日益受到重视,其中植物油体表达系统
已成为现阶段植物生物反应器研究的热点之一,已
有多种蛋白或多肽在植物中成功表达,但有关 MT
在植物油体中的表达研究尚未见报道。本研究通过
构建 MT油体特异性表达载体,转化拟南芥获得转
基因阳性植株,并对 MT蛋白的体外抗氧化活性进
行测定,旨在为研究 MT蛋白功能及其在化妆品、
药物开发中的应用提供理论参考。
1 材料与方法
1.1 材 料
1.1.1 植物材料 哥伦比亚生态型拟南芥(Arabi-
dopsis thaliana ecotype Columbia)种子,由吉林农
业大学生物反应器与教育部工程研究中心保存。
1.1.2 质粒与菌株 农杆菌菌株EHA105、植物表
达载体pOP(以pCAMBIA1390载体骨架为蓝图进
行改造后获得)、pUC19-oleosin、大肠杆菌菌株
DH5α,均由吉林农业大学生物反应器与药物开发教
育部工程研究中心构建及保存;pEASY-Blunt Clo-
ning Kit,购自北京全式金生物技术有限公司。
1.1.3 试 剂 限制性内切酶、Pfu DNA 聚合
酶、DNA 分子质量标准 Marker(DL2000)、DNA
Fragment Purification Kit Ver.2.0试剂盒、DNA小
量提取试剂盒、Agarose Gel DNA Purification Kit
试剂盒、Mini BEST Plasmid Purification Kit Ver.
2.0试剂盒及DNA Ligation Kit Ver.2等,均购自
大连宝生物工程有限公司。其他常规试剂均为国产
或进口分析纯试剂。
1.2 方 法
1.2.1 引物设计 根据 GenBank上的拟南芥
MT2基因和oleosin基因碱基序列,利用 Primer
Primier 5.0引物设计软件,分别设计MT(M1/M2)
和oleosin(Y1/Y2)特异性引物,引物合成及测序均
由金唯智生物科技(北京)有限公司完成。所设计的
引物及序列如下。
M1:5′-ATGTCTTGCTGTGGTGGAAGCTG-
3′;
M2:5′-C AAGCTTATTTGCAGGTGCAGGT-
GCAAGGGTT-3′。下划线部分为 HindⅢ的酶切
位点和保护碱基。
Y1:5′-CATGCCATGGCGGATACAGCTAG-
AGGAACCCAT-3′,下划线部分为NcoⅠ的酶切位
点和保护碱基;
Y2:5′-CTCCATCCTCTGGCAAAGCTGGC-
ATAGTAGTGTGCTGGCCACCACG-3′。
1.2.2 MT 及oleosin基因的PCR扩增 从拟南
芥叶片中提取RNA,反转录为cDNA,以此为模板,
利用MT 基因特异性引物进行 PCR扩增,50μL
PCR反应体系如下:10×Pfu Buffer(含 MgSO4)5
μL,5′端引物 M1(10μmol/L)1μL,3′端引物 M2
(10μmol/L)1μL,模板1μL(500ng/μL),Pfu
DNA聚合酶1μL,dNTP(25mmol/L)4μL,去离
子水37μL。PCR反应程序为:95℃变性4min;95
℃变性30s,56℃退火1min,72℃延伸2min,31
个循环;72 ℃ 延伸 10 min,4 ℃ 终止反应。以
pUC19-oleosin质粒为模板,Y1、Y2 为引物,利用
PCR扩增得到目的基因oleosin,体系及反应程序同
上。PCR产物在1%琼脂糖凝胶中电泳,检测并回
收目的片段,于-20℃保存。
1.2.3 oleosin-MT 基因的PCR扩增 以PCR扩
651 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第43卷
增得到的oleosin片段和MT 片段为模板,Y1和M2
分别为上、下游引物,扩增得到oleosin-MT 融合基
因片段,反应体系及程序同1.2.2节。PCR产物在
1%琼脂糖凝胶中电泳,检测并回收目的片段,于
-20℃保存。
将融合目的基因片段oleosin-MT 与pEASY-
Blunt克隆载体连接、转化大肠杆菌DH5α,阳性克
隆经PCR鉴定和酶切鉴定后,将阳性克隆摇菌保种
命名为pEASY-oleosin-MT,送测序公司进行分析。
1.2.4 含oleosin-MT 植物表达载体的构建 Nco
Ⅰ和 HindⅢ双酶切测序正确的pEASY-oleosin-
MT重组子经1%琼脂糖凝胶电泳后,割胶回收目
的片段。利用SolutionⅠ连接酶将目的基因与酶切
回收的pOP 植物表达载体连接,转化大肠杆菌
DH5α,阳性克隆经PCR鉴定和酶切鉴定后获得重
组pOP-oleosin-MT质粒,利用冻融法将测序正确
的pOP-oleosin-MT转化农杆菌 EHA105,获得用
于侵染用的工程菌株。
1.2.5 oleosin-MT 基因转化拟南芥 侵染前1d
给予待侵染拟南芥充足的水分,转化前剪掉种荚、开
花和露白的花芽。将农杆菌工程菌株接种于 YEP
液体培养基(50μg/mL Kan、100μg/mL Rif)中,28
℃、180r/min进行过夜培养。将菌液转移至离心管
中,4℃、4 000r/min离心10min收集菌体,用Flo-
ral-Dip Buffer重悬菌体。将拟南芥全部浸入重悬
的农杆菌菌液中,静置7min,放平转化后的营养钵,
用保鲜膜包裹保湿过夜,第2天可稍露一小缝,第3
天正常放置。待种子成熟后收获种子,即为T0 代。
1.2.6 拟南芥阳性植株的筛选 将收获得到的拟
南芥T0 代种子进行播种,待拟南芥幼苗长出4~6
片叶时,用体积分数1% Basta喷洒幼苗,每隔1d
1次,共3次。此时依然能够生长的幼苗即为阳性
苗。将生长状况良好的阳性拟南芥幼苗进行移栽,
每盆5株,2个月后可收获 T1 代种子。对收获的
T1 代种子进行播种和筛选,方法同T0 代;2个月后
可收获T2 代种子,对T2 代种子进行后续的外源蛋
白检测。
1.2.7 转基因拟南芥外源蛋白表达的检测 取40
粒T2 代拟南芥种子,放到特制的拟南芥研磨专用
EP管中,将30μL 50mmol/L Tris-HCl(pH=8.0)
加入EP管内,用小研棒充分研磨,研磨后用4℃、
12 000r/min离心10min,离心后液体分3层:表层
白色油膜层、中间层油液体和底层沉淀。弃沉淀,将
上2层液体混匀后即为油体蛋白提取液。取30μL
油体蛋白样品和6μL 5×Loading Buffer,混合均匀
后,沸水中煮10min,取10μL进行上样,用12%
SDS-PAGE鉴定。
1.2.8 MT蛋白抗氧化活性的测定 (1)超氧阴离
子(O-·2 )清除能力[13-16]。按照1.2.7节方法提取野
生型及转MT基因拟南芥种子油体蛋白,采用邻苯
三酚自氧化法,向试管中滴加浓度为50mmol/L的
三羟基氨基甲烷盐酸盐缓冲溶液(pH 8.2)4.5
mL,加去离子水4.2mL,混合均匀后在25℃水浴
锅中水浴20min,然后添加0.3mL邻苯三酚溶液,
立即摇匀,反应4min后滴加0.3mL 6mol/L的盐
酸终止反应,325nm 处测定吸光度 OD325,记为
ΔOD0,并以邻苯三酚溶液作为空白对照;再滴加不
同浓度的野生型及转 MT 基因拟南芥种子油体蛋
白溶 液,使 待 测 液 终 质 量 浓 度 分 别 为10~50
μg/μL,在325nm波长处测定转基因拟南芥中的
MT蛋白吸收值,4min内每隔30s读数1次,记为
ΔOD。按下式计算不同质量浓度待测物对超氧阴
离子(O-·2 )的清除率:
清除率=(ΔOD0-ΔOD)/ΔOD0×100%。
(2)羟自由基(·OH)清除能力。用结晶紫
法[17],将野生型及转MT基因拟南芥油体蛋白溶液
定容为总蛋白质量浓度为0.2mg/mL。在10mL
比色皿中分别加入0.3mL结晶紫(0.4mmol/L)溶
液、1.2mL FeSO4(1mmol/L)溶液、0.6mL H2O2
(2.0mmol/L)溶液,用磷酸氢二钠-柠檬酸溶液(pH
4.0)定容至10mL,摇匀,放置30min,测580nm处
的吸光值ODb,将不加H2O2 时580nm处的吸光值
计为 OD0,则羟自由基的产生量可以用 ΔOD=
OD0-ODb 来表征。
上述体系在加入 H2O2 之前,加入0.05,0.10,
0.15,0.20,0.25,0.30,0.35,0.40,0.45,0.50mL
的转MT基因及野生型拟南芥种子油体蛋白溶液,
测定吸光度ODa,计算表观抗羟自由基氧化率(S),
即:
S=(ODa-ODb)/(OD0-ODb)×100%。
2 结果与分析
2.1 MT基因的克隆
以拟南芥叶片RNA反转录的cDNA为模板,
利用 M1和 M2特异性引物进行PCR扩增,结果
(图1)显示,在238bp左右位置扩增出目的片段,经
DNA测序分析,同源性为100%,说明成功从拟南
芥中克隆出MT基因。
751第10期 官丽莉,等:oleosin-MT融合蛋白在拟南芥中的表达及鉴定
图1 MT基因的PCR扩增
M.DL2000DNA Marker;1.阴性对照;2.MT基因
Fig.1 PCR amplification of MTgene
M.DL2000DNA Marker;1.Negative control;2.MTgene
2.2 oleosin-MT 融合基因的克隆及验证
以pUC19-oleosin质粒为模板,Y1、Y2为引物,
通过PCR扩增目的基因oleosin,PCR扩增结果(图
2)显示,在约762bp处扩增出目的片段;以MT 和
oleosin2个目的基因为模板,Y1、M2为引物,通过
PCR扩增得取融合基因oleosin-MT,结果(图3)显
示,在1 000bp左右位置扩增出目的片段。将融合
目的基因片段oleosin-MT 与pEASY-Blunt克隆载
体连接、转化后,构建pEASY-oleosin-MT。对含有
融合基因的大肠杆菌菌液进行摇菌及PCR验证,然
后用试剂盒提取pEASY-oleosin-MT质粒,进行质
粒的NcoⅠ和 HindⅢ双酶切鉴定,结果如图4,5
所示。由图4,5可知,PCR和酶切鉴定均释放出
1 000bp左右的目的条带。送至测序公司进行分
析,结果正确,表明融合基因已融合成功。
2.3 植物表达载体pOP-oleosin-MT的构建
将融合后的oleosin-MT 基因与植物表达载体
过夜连接,转入到农杆菌EHA105感受态细胞中。
将含有pOP-oleosin-MT重组质粒的菌液过夜摇床
培养,对培养好的农杆菌菌液进行PCR鉴定,结果
(图6)显示,在1 000bp处出现目的条带,表明融合
基因已成功插入到pOP载体中,植物表达载体构建
成功。
图2 oleosin基因的PCR扩增
M.DL2000DNA Marker;1.阴性对照;2.oleosin基因
Fig.2 PCR amplification of oleosingene
M.DL2000DNA Marker;1.Negative control;2.oleosingene
图3 oleosin-MT 基因的PCR扩增
M.DL2000DNA Marker;1.阴性对照;2.oleosin-MT 基因
Fig.3 PCR amplification of oleosin-MTgene
M.DL2000DNA Marker;1.Negative control;
2.oleosin-MTgene
图4 pEASY-oleosin-MT菌液的PCR鉴定
M.DL2000DNA Marker;1.oleosin-MT 基因;2.阳性对照
Fig.4 PCR amplification of pEASY-oleosin-MT
M.DL2000DNA Marker;1.oleosin-MTgene;
2.Positive control
图5 pEASY-oleosin-MT的双酶切鉴定
M.DL2000DNA Marker;1~3.质粒酶切
Fig.5 Restriction digestion analysis of
pEASY-oleosin-MT
M.DL2000DNA Marker;1-3.Plasmid digest
851 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第43卷
图6 pOP-oleosin-MT菌液的PCR鉴定
M.DL2000DNA Marker;1.阴性对照2.oleosin-MT 基因
Fig.6 PCR amplification of plasmids pOP-oleosin-MT
M.DL2000DNA Marker;1.Negative control;2.oleosin-MTgene
图7 转基因拟南芥植株种子目标
蛋白的SDS-PAGE电泳
M.蛋白 Marker;1.非转基因植株;2~5.转基因植株
Fig.7 SDS-PAGE analysis of transgenic plant seeds
M.Protein marker;1.Wild type plant;2-5.Transgenic plants
2.4 转基因拟南芥目标蛋白的表达
经过Basta抗性筛选,初步筛选出17株拟南芥
抗性植株。分别提取4株阳性拟南芥T2 代种子的
油体蛋白,以野生型拟南芥种子的油体蛋白作阴性
对照,进行SDS-PAGE分析。由图7可见,转基因
植株oleosin-MT 2~5号在26ku处都有条带,初步
证明oleosin-MT 基因已在拟南芥T2 代种子中得到
表达。
2.5 MT蛋白的抗氧化活性检测
2.5.1 超氧阴离子清除能力 邻苯三酚吸光度值
的测定结果见表1。
表1 邻苯三酚自氧化速率及其吸光值的变化
Table 1 Changes of autoxidation rate and absorption value of pyrogalol
项目
Item
时间/s Time
0  30  60  90  120  150  180  210  240
ΔOD  0.121  0.219  0.286  0.356  0.422  0.486  0.546  0.604  0.658
  经计算可以得出邻苯三酚自氧化速率ΔA1=
2.88×10-4,计算金属硫蛋白对超氧阴离子(O-·2 )清
除率,结果如图8所示。由图8可知,转基因拟南芥
中金属硫蛋白对超氧阴离子(O-·2 )自由基的清除率
较高,当转MT基因拟南芥的总蛋白质量浓度为50
μg/μL时,超氧阴离子的清除率达到最高,为
58.5%;而野生型拟南芥中,虽然自身含有少量的金
属硫蛋白,但是对超氧阴离子自由基的清除效果较
差,这可能是野生型拟南芥中金属硫蛋白基因并未
表达所致。随着质量浓度的升高,野生型拟南芥对
超氧阴离子的的清除率变化不明显,且均不足
20%。而在拟南芥外源表达的金属硫蛋白具有较强
的超氧阴离子清除活性,随着质量浓度的增加,其对
超氧阴离子的清除率也随之升高。
图8 转基因拟南芥植株中 MT蛋白的
超氧阴离子清除活性
Fig.8 Scavenging effect of MT protein from transgenetic
Arabidopsis on superoxide anion free radical
图9 转基因拟南芥植株中 MT蛋白
对羟自由基的清除能力
Fig.9 Hydroxyl radical scavenging activity of MT
protein from transgenic Arabidopsis
951第10期 官丽莉,等:oleosin-MT融合蛋白在拟南芥中的表达及鉴定
2.5.2 羟自由基清除能力 以野生型拟南芥作为
对照,考察金属硫蛋白清除羟自由基(·OH)的能
力。由图9可以看出,随金属硫蛋白质量浓度的升
高,转MT基因拟南芥的油体蛋白对·OH 的清除
能力亦逐渐增强。当金属硫蛋白的质量浓度增加至
10μg/μL时,清除率可达到69.7%。而在野生型拟
南芥中,金属硫蛋白对羟自由基仅有微弱的清除能
力,且随着金属硫蛋白质量浓度的升高,清除率变化
并不明显。
3 结论与讨论
金属硫蛋白含有丰富的半胱氨酸残基,能通过
半胱氨酸 (Cys)上的巯基 (-SH)与金属离子结
合,具有解除金属离子毒害以及调节体内金属离子
平衡的作用[17-18]。目前,对植物金属硫蛋白功能的
研究正在逐步深入。金属硫蛋白基因中丰富的巯基
及其与重金属的结合能力,决定了其功能的多样
性[19]。Xue等[20]在筛选棉花(Gossypium hirsu-
tum)cDNA文库时发现,MT基因GhMT3a能在氧
化胁迫的逆境条件下上调表达;但当有外源抗氧化
物质存在时,GhMT3a在逆境条件下的上调表达会
受到抑制,暗示GhMT3a可能具有抗氧化功能。植
物金属硫蛋白所具有的抗氧化活性受到广泛关注,
预示在植物中可能存在另一种新型高效的抗氧化系
统,且其在植物中发挥着重要作用。
吉林农业大学生物反应器与药物开发教育部工
程研究中心保存的pOP质粒(含有Basta筛选标记
基因)是植物油体蛋白特异性表达载体,该载体加入
了特异性的菜豆启动子和终止子、35S启动子、oleo-
sin基因、Bar基因等作用原件。首先,利用此载体
将oleosin基因编码的终止子 TAA密码子修饰去
除,使得油体蛋白与目的蛋白更易于融合表达;然
后,选用菜豆特异性启动子和终止子(phaP、phaT),
使转基因种子中的目的基因可以更好地特异性表
达;最后,添加Bar基因的35S启动子和NOS poly
A终止子,以Bar基因作为抗性筛选标记,便于转
基因植株的筛选,为后续转基因植株的培育提供了
便利条件。
  目前,商品化的 MTs大多从兔肝中诱导提取,
其生产成本高、价格昂贵,寻找廉价且含有丰富
MTs的新资源是降低生产成本及扩大其应用领域
的重要途径。本研究对转 MT 基因拟南芥种子与
野生型拟南芥种子的总蛋白进行SDS-PAGE分析,
初步证实融合蛋白oleosin-MT在拟南芥种子中有
表达。野生型拟南芥中金属硫蛋白对超氧自由基虽
然有微弱的清除能力,但是随着蛋白质量浓度的升
高,清除率变化不明显,且均小于20%,而转MT基
因拟南芥总蛋白质量浓度达到50μg/μL时,超氧阴
离子的清除率达到最高,为58.5%。转MT基因拟
南芥总蛋白质量浓度增加至10μg/μL时,羟自由基
清除率可达69.7%,表明转MT基因拟南芥具有较
高的抗氧化活性。研究拟南芥种子中表达的金属硫
蛋白的生物学活性,为下一步将融合基因导入红花
油体系统表达奠定了理论基础。
[参考文献]
[1] 李晓伟,鲁 曼.金属硫蛋白对铅中毒儿童临床干预观察研究
[J].中国儿童保健杂志,2008(4):391-393.
Li X W,Lu M.Prospective study on effect of complement of
metalothionein on lead poisoning children[J].Chinese Journal
of Child Health Care,2008(4):391-393.(in Chinese)
[2] Margoshes M,Valeeb L.A cadmium protein from equine kid-
ney cretex[J].J Am Chem Soc,1957,79(17):4813-4814.
[3] Kagi J H R.Evolution,structure and chemical activity of class
Ⅰmetalothioneins:An overview[C]//Suzuki K T,Imura N,
Kimura M.Metalothionein Ⅲ:Biological Roles and Medical
Implications.Basel,Switzerland:Birkhuser Verlag,1993:29-
55.
[4] 代 勋,龚 明.植物金属硫蛋白在植物抗逆性中的作用 [J].
宁夏师范学院学报:自然科学版,2011,32(3):47-51.
Dai X,Gong M.The function of plant metalothioneins in plant
resistence[J].Journal of Ningxia Teachers University:Natural
Science,2011,32(3):47-51.(in Chinese)
[5] Mariana O,Luis W,Laurent L,et al.Functional analysis of the
metalothionein gene cgMT1isolated from the actinorhizal tree
Casuarina glauca [J].Mol Plant Microbe Interact,2007,20
(10):1231-1240.
[6] Lane B,Kajioka R,Kennedy T.The wheat-germ Ec protein is a
zinc-containing metalothionein[J].Biochemistry and Cel Biol-
ogy,1987,65(11):1001-1005.
[7] Zhou J,Goldsbrough P B.Structure,organization and expres-
sion of the metalothionein gene family in Arabidopsis[J].Mo-
lecular and General Genetics MGG,1995,248(3):318-328.
[8] Lee J,Shim D,Song W Y,et al.Arabidopsis metalothioneins
2aand 3enhance resistance to cadmium when expressed in Vi-
cia faba guard cels[J].Plant Mol Biol,2004,54(6):805-815.
[9] Evans K M,Gate house J A,Lindsay W P,et al.Expression of
the pea metalothionein-like gene PsMTAin E.coli and Arabi-
dopsis thalianaand analysis of trace metal accumulation:Impli-
cations for PsMTAfunction[J].Plant Mol Biol,1992,20(6):
1019-1028.
[10] Kile P,Winge D R,Harwood J L,et al.A plant metalothio-
nein produced in E.coli[J].FEBS Lett,1991,12(295):171-
175.
061 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第43卷
[11] 张晓钰,茹炳根.植物类 MT与植物络合肽 [J].生命科学,
2000,12(4):170-172.
Zhang X Y,Ru B G.Plant metalothionein and phytochelatins
[J].Life Sciences,2000,12(4):170-172.(in Chinese)
[12] 张博润,蔡向荣,怀文辉,等.金属硫蛋白的研究进展及应用前
景 [J].微生物学通报,1999,26(5):355-357.
Zhang B R,Cai X R,Huai W H,et al.Research progress and
application prospects of metalothionein [J].Microbiology,
1999,26(5):355-357.(in Chinese)
[13] 韩少华,朱靖博,王妍妍.邻苯三酚自氧化法测定抗氧化活性
的方法研究 [J].中国酿造,2009(6):155-157.
Han S H,Zhu J B,Wang Y Y.Measurement of antioxidant
activity by pyrogalol autoxidation[J].China Brewing,2009
(6):155-157.(in Chinese)
[14] 玄红专,桑 青,麻建军.邻苯三酚法自氧化法测定不同蜂产
品抗氧化活性的研究 [J].食品科技,2008(4):137-139.
Xuan H Z,Sang Q,Ma J J.Anti-oxidation study of different
bee products measured by pyrogalbl autoxidation method[J].
Food Science and Technology,2008(4):137-139.(in Chinese)
[15] 李连平,黄志勇,王志聪,等.小球藻锌结合金属硫蛋白Zn-
MT-like的抗氧化活性研究 [J].中国食品学报,2009,8(4):
24-27.
Li L P,Huang Z Y,Wang Z C,et al.Study on anti-oxidation
activity of Zn-MT-like induced from C.vulgaris[J].Journal
of Chinese Institute of Food Science and Technology,2009,8
(4):24-27.(in Chinese)
[16] 王晓宇,杜国荣,李 华.抗氧化能力的体外测定方法研究进
展 [J].食品与生物技术学报,2012,31(3):247-250.
Wang X Y,Du G R,Li H.Progress of analytical methods for
antixidant capacity in vitro [J].Journal of Food Science and
Biotechnology,2012,31(3):247-250.(in Chinese)
[17] Kawashima I,Inokuchi Y,Chino M,et al.Isolation of a gene
for a metalothionein protein from soybean [J].Plant Cel
Physiol,1991,32:913-916.
[18] 全先庆,高成香,王兴军,等.花生金属硫蛋白基因AhMT3a
的克隆及其表达 [J].生物技术通报,2012(3):75-79.
Quan X Q,Gao C X,Wang X J,et al.Cloning and expression
analysis of AhMT3ain peanut[J].Biotechnology Buletin,
2012(3):75-79.(in Chinese)
[19] 王 巍,谢 波,刘 芳,等.九州虫草中金属硫蛋白的诱导、
提纯及性质研究 [J].安徽医药,2013,17(3):373-375.
Wang W,Xie B,Liu F,et al.Induction,purification and nature
of metalothionein in Kyushu Cordyceps[J].Anhui Medical
and Pharmaceutical Journal,2013,17(3):373-375.(in Chi-
nese)
[20] Xue T,Li X,Zhu W,et al.Cotton metalothionein GhMT3a,a
reactive oxygen species scavenger,increased tolerance against
abiotic stress in transgenic tobacco and yeast[J].Journal of
Experimental Botany,2009,60:

339-349.
(上接第154页)
[4] 李爱华,鲁坤存,陈 灿.沅江芦荟染色体核型和Giemsa C-带
带型 [J].生物学杂志,2003,20(4):24-25.
Li A H,Lu K C,Chen C.Yuanjiang aloe karyotype and Giemsa
C-band[J].Journal of Biology,2003,20(4):24-25.(in Chi-
nese)
[5] 丁为群,张孜孜,王爱红.三种芦荟的区别及其遗传差异 [J].
安徽技术师范学院学报,2002,16(2):8-12.
Ding W Q,Zhang Z Z,Wang A H.The difference between the
three kinds of aloe and its genetic differences[J].Journal of
Anhui Technical Teachers Colege,2002,16(2):8-12.(in Chi-
nese)
[6] 曲春香,沈颂东,孟祥勋,等.木立芦荟的试管快速繁殖及核型
分析 [J].江苏农业科学,2002(4):54-55.
Qu C X,Shen S D,Meng X X,et al.In vitro rapid propagation
of Aloe arborescens Mil and karyotype analysis[J].Jiangsu
Agricultural Sciences,2002(4):54-55.(in Chinese)
[7] 纪春燕,马玉心,催大练.芦荟属四种植物染色体核型研究
[J].中国林副特产,2002(3):15-16.
Ji C Y,Ma Y X,Cui D L.Study on chromosome karyotype of
four Aloe plant[J].Journal of Chinese Forest by Products,
2002(3):15-16.(in Chinese)
[8] Spare A B.Meiosis and polen mitosis in Aloe barbadensis Mil
[J].Cyrologia,1975,40:525-533.
[9] Brandham P E.Meiotic crossing-over between sites on opposite
sides of the cen tormeres of homoeologues is frequent in hybrid
Aloeaceae[J].Genome,1990,33:170-176.
[10] 吕 琳,何聪芬,董银卯,等.木立芦荟小孢子母细胞减数分裂
与花粉育性关系的初步研究 [J].遗传,2005,27(3):429-434.
LüL,He C F,Dong Y M,et al.Preliminary study on the rela-
tionship between meiosis of polen mother cels and polen a-
bortion of Aloe arboresens Mil [J].Journal of Herenditas,
2005,27(3):429-434.(in Chinese)
[11] 胡适宜.被子植物胚胎学 [M].北京:人民教育出版社,1983.
Hu S Y.Embryology of angiosperms[M].Beijing:People’s
Education Press,1983.(in Chinese)
[12] Davis G L.Systematic embryology of the angiosperms[J].
New York:John Wiley and Sons Inc,1966,49/50:157-159.
161第10期 官丽莉,等:oleosin-MT融合蛋白在拟南芥中的表达及鉴定