免费文献传递   相关文献

拟南芥芥子油苷含量对外源茉莉酸的响应



全 文 :拟南芥芥子油苷含量对外源茉莉酸的响应
收稿日期:2010-10-16
基金项目:国家自然科学基金(31070351,30670325);中央高校基本科研业务费专项资金资助(DL09BA25)
作者简介:刘庆霞(1983-),女,硕士研究生,研究方向为细胞代谢与工程。E-mail: liuqingxia20008@163. com
*通讯作者:阎秀峰,教授,博士生导师,研究方向为植物生理生态学。E-mail: xfyan@nefu. edu. cn
刘庆霞,国 静,阎秀峰*
(东北林业大学盐碱地生物资源环境研究中心,东北油田盐碱植被恢复与重建教育部重点实验室,哈尔滨 150040)
摘 要:芥子油苷是一类含氮、含硫的次生代谢产物,可以介导植物与环境之间的相互作用,其合成受茉莉
酸类物质的调控。对拟南芥莲座叶进行外源茉莉酸甲酯喷施处理,利用实时荧光定量 PCR技术分析了处理后莲
座叶中响应茉莉酸基因 PDF1.2的表达,并利用高效液相色谱法检测了芥子油苷各组分的含量。结果表明,茉莉
酸甲酯处理后,PDF1.2基因的表达量显著上调,在 24 h达到最高值,表明外源茉莉酸甲酯能够显著诱导茉莉酸
依赖的信号反应;吲哚族和脂肪族芥子油苷各组分含量均发生变化,绝大多数在处理 24 h显著上调。表明外源茉
莉酸可诱导拟南芥莲座叶中吲哚族和脂肪族芥子油苷的积累,且在处理 24 h诱导作用最为明显。
关键词:拟南芥;芥子油苷;茉莉酸;PDF1.2基因
中图分类号:Q948. 11 文献标志码:A 文章编号:1005-9369(2011)01-0133-05
Effect of exogenous jasmonic acid on glucosinolate content in Arabi -
dopsis thaliana rosette leaves/LIU Qingxia, GUO Jing, YAN Xiufeng (Alkali Soil Natural
Environmental Science Center, Northeast Forestry University, Key Laboratory of Saline-alkali
VegetationEcologyRestoration inOil Field,Ministry of Education, Harbin 150040,China)
Abstract: Glucosinolate is a group of nitrogen- and sulfur-containing plant natural product found
mainly in Brassicaceae families, it may mediate the interaction between plants and environment. The
biosynthesis of glucosinolates is regulated by jasmonates. In this study, Arabidopsis thaliana rosette leaves
were sprayed with exogenous jasmonic acid methyl, and the expression of PDF1.2 gene and the content of
glucosinolates were analyzed. The results showed that the expression of jasmonic acid response gene
PDF1.2 significantly increased after the treatment with jasmonic acid methyl, and reached to the highest
level at 24 h; both indolic and aliphatic glucosinolates components were also affected, and most of them
significantly increased at 24 h. The results indicated that exogenous jasmonic acid could induce accu-
mulation of the indolic and aliphatic glucosinolates in Arabidopsis rosette leaves, and this induction was the
most effective at 24 h after the treatment.
Key words: Arabidopsis thaliana; glucosinolate; jasmonic acid; PDF1.2 gene
芥子油苷(Glucosinolates)是一类含氮、含硫的
植物次生代谢产物,主要分布于十字花科植物,
其降解产物异硫氰酸酯(Isothiocyanates)、硫氰酸
酯(Thiocyanates)和腈类(Nitriles)等化合物在抵御
病原微生物以及昆虫的取食等方面具有重要作用,
用以介导植物与环境之间的相互作用 [1-3]。研究表
明,外源激素茉莉酸(Jasmonic acid)等不同程度地
影响芥子油苷代谢并调节植物产生防御反应以适应
逆境[4],但有关茉莉酸信号调控芥子油苷代谢的规
律及机制尚不十分清楚。
第 42卷 第 1期 东 北 农 业 大 学 学 报 42(1): 133~137
2011年 1月 Journal of Northeast Agricultural University Jan. 2011
外源激素茉莉酸是影响芥子油苷合成的诱导
因子 [5-6],可诱导一些植物体内吲哚族芥子油苷、
脂肪族芥子油苷和芳香族芥子油苷中一些组分含量
增加,从而引起植物体内总芥子油苷含量上升[7-8]。
由于不同类型的芥子油苷代谢途径存在差异,加
之茉莉酸信号途径中各位点对芥子油苷代谢途径
的调控又各不相同,因此芥子油苷的合成对茉莉
酸的响应非常复杂,其响应规律尚不十分清楚。
茉莉酸甲酯(Jasmonic acid methyl)是茉莉酸的甲基
衍生物,在植物体内可被茉莉酸甲酯酶(Jasmonic
acid methyl esterase)催化生成茉莉酸 [9],在植物细
胞间以及植物之间的通讯联络中起重要作用[10],通
常人们利用茉莉酸甲酯替代茉莉酸,以分析茉莉
酸信号途径[7, 11]。研究表明,茉莉酸能够诱导一些
逆境应答响应基因的表达,如植物防卫素基因
PDF1.2,其表达受茉莉酸诱导,通常用作茉莉酸
信号途径的标记基因[12]。本研究通过分析外源茉莉
酸甲酯喷施处理后,拟南芥叶片中 PDF1.2基因的
表达量及芥子油苷各组分的含量,探讨拟南芥芥
子油苷各组分含量对外源茉莉酸的响应规律。
1 材料与方法
1.1 植物材料及生长条件
试验所用拟南芥(Arabidopsis thaliana)为 Co-
lumbia 生态型,种子由中国科学院植物研究所惠
赠。种子消毒冲洗后,于 4 ℃春化 3~4 d,播种于
盛有土壤与蛭石混合物(体积比 1: 2) 的花盆中,
在人工培养室中培养(温度 19~26 ℃,人工光照
9 L/15 D,光子通量密度约 150 μmol·m-2·s-1,空气
相对湿度 50%~70%)。
1.2 茉莉酸甲酯处理
将茉莉酸甲酯(Sigma)溶于含乙醇(1.5% V/V)
和 Triton-100(0.125% V/V)的水溶液 [13],配制成
200 μmol·L-1的茉莉酸甲酯溶液。选取生长 7 周、
长势一致的拟南芥幼苗(未抽薹)分为两组,对其第
九片和第十片莲座叶进行处理并取材,处理组用
200 μmol·L-1茉莉酸甲酯溶液喷施拟南芥莲座叶,
对照组用含乙醇(1.5% V/V)和 Triton-100(0.125%
V/V)的水溶液进行处理,处理 0 h取材 1次,而后
每 12 h取材 1次,共采样 5次。
1.3 实时荧光定量 PCR分析
利用 TRIzol试剂(Invitrogen Inc.)提取总 RNA,
使用 DNAase(TaKaRa Inc.)对 RNA 中所含痕量基
因组 DNA进行消化。使用 NanoDrop 1000型(Nano-
Drop Technologies Inc.)分光光度计检测 RNA 纯度
及 浓 度 。 按 照 Transcriptor First Strand cDNA
synthesis kit(TaKaRa Inc.)试剂盒说明书合成 cDNA
第一链,去离子水稀释 10 倍作为实时荧光定量
PCR的模板。
按照 TAIR 数据库(Eurogentec, Seraing, Bel -
gium)提供的基因序列,使用 Primer Express 2.x软
件(Applies Biosystems)设计基因的特异引物。
PDF1.2基因的特异引物序列分别为 5 TCATGGCT
AAGTTTGCTTCC 3 和 5 AATACACACGATTTAGC
ACC 3;以 ACTIN基因作为内参,其引物序列分
别为:5 TCCAGGAATCGTTCACAGAA 3和 5 GCT
ACAAAACAATGGGACTAAAA 3。引物由上海生工
有限公司合成。
实时荧光定量 PCR 反应参照董晓丽等的方
法 [14]。反应体系为 25 μL,其中 SYBR Premix Ex
TaqTM(2×)12.5 μL,正向、反向引物(10 μmol·L-1)
各 1 μL,cDNA模板 2 μL,超纯水 8.5 μL。实时
荧光定量 PCR在 DNA Engine OpticonTM 2(MJ Re-
search Inc.) 实时荧光定量 PCR 仪上进行。反应
程序为:95 ℃预变性 30 s;95 ℃ 20 s,55 ℃ 20 s,
72 ℃ 30 s,80 ℃ 1 s,读板,45 个循环。融解曲
线分析:60~95 ℃,每 0.5 ℃读板 1次(温度恒定 1 s
后读板)。每个样品做 3个重复。
1.4 芥子油苷的提取及测定
芥子油苷提取及测定按照 Pang等方法[15]。
2 结果与分析
2.1 PDF1.2基因表达对外源茉莉酸甲酯的响应
PDF1.2基因编码一种植物防卫素,研究中通
常将其作为茉莉酸信号途径的标记基因[13],本研究
通过测定拟南芥莲座叶中 PDF1.2基因的表达量来
判断外源茉莉酸甲酯处理信号是否传导到植体内并
诱发茉莉酸信号反应。以茉莉酸甲酯处理 0 h的莲
座叶中 PDF1.2基因的表达作为一个单位,对不同
处理时间的叶片中该基因的相对表达量进行荧光实
时定量 PCR分析。
由图 1 可以看出,茉莉酸甲酯处理后,莲座
叶中 PDF1.2 基因的表达显著上调。在处理 12 h,
其表达量已上调至 0 h 的 6.0 倍;处理 24 h 时,
·134· 东 北 农 业 大 学 学 报 第 42卷
PDF1.2基因表达量约为 0 h 的 350 倍,此时处理
与对照中 PDF1.2基因的表达量均达到最高值,茉
莉酸甲酯处理的材料中 PDF1.2基因表达量显著高
于对照(约为对照的 2.8倍);此后该基因表达水平
急剧下降。这表明,外源茉莉酸甲酯能够诱导依
赖于茉莉酸的信号反应,在 12 h内启动诱导,至
24 h达到最高值。
2.2 拟南芥莲座叶芥子油苷总量对外源茉莉酸甲
酯的响应
从图 2可以看出,茉莉酸甲酯处理后,拟南芥
莲座叶中总芥子油苷、脂肪族芥子油苷以及吲哚族
芥子油苷含量表现出相似的变化趋势,均在 24 h
时达到最高值,与相应对照相比显著增加;此后含
量开始缓慢下降,但在 36 h时其含量仍然显著高
于对照,至 48 h,仅吲哚族芥子油苷的含量显著
高于对照(约为对照的 1.1倍,P<0.05),总芥子油
苷和脂肪族芥子油苷的含量与对照相比没有显著
差异,基本恢复至 0 h 的初始水平。表明茉莉酸
甲酯能够诱导吲哚族芥子油苷和脂肪族芥子油苷
的合成。
2.3 拟南芥莲座叶脂肪族芥子油苷含量对外源茉
莉酸甲酯的响应
如图 3所示,拟南芥莲座叶中共检测出 9种脂
肪族芥子油苷,茉莉酸甲酯处理后,除 4-甲基亚
磺酰丁基芥子油苷(4-methylsulphinylbutyl gluco-
sinolate,4-MSOB)含量没有显著变化外,其余组
分含量均有显著变化。4-羟基丁基芥子油苷(4-
hydroxybutyl glucosinolate,4-OHB)、5-甲基亚磺
酰戊基芥子油苷(5-methylsulphinylpentyl glucosino-
late,5-MSOP)、6-甲基亚磺酰己基芥子油苷(6-
methylsulphinylhexyl glucosinolate, 6 -MSOH)变化
趋势基本相似,在处理 24 h 含量均达到最高值,
分别为相应对照的 1.2倍、1.4倍、1.8倍;此后含
量均显著低于相应的对照,并低于 0 h的水平。3-
甲基亚磺酰丙基芥子油苷(3-methylsulphinylpropyl
glucosinolate,3-MSOP)和 7-甲硫庚基芥子油苷
(7-methylthioheptyl glucosinolate,7-MTH)的含量
在处理 24 h达到最高值,且与对照相比差异显著;
之后含量基本恢复到 0 h的水平。8-甲硫辛基芥子
油苷(8-methylthiooctyl glucosinolate,8-MTO)与 8-
甲基亚磺酰辛基芥子油苷(8-methylsulphinyloctyl
glucosinolate,8-MSOO)含量均在处理 24 h达到最
高值,且与对照相比差异显著,均约为相应对照的
2.1倍,之后含量有所下降,但明显高于对照。3-
羟基丙基芥子油苷(3-hydroxylpropyl glucosinolate,
3-OHP)含量的最高值出现较晚,在处理 36 h达到
最高值,为 0 h的 2.0倍。
图 1 拟南芥莲座叶中 PDF1.2基因的表达
Fig. 1 Expression of PDF1.2 gene in
Arabidopsis thaliana rosette leaves
12 24 36 48
400
350
300
250
200
150
100
50
0





Re
la
tiv
e
ex
pr
es
sio
n
le
ve
l *
*
处理时间(h)
Treatment time
*
*
对照 CK
茉莉酸甲酯处理
Jasmonic acid methyl treatment
*表示茉莉酸甲酯处理与对照之间差异显著(P<0.05)。下同。
* represents significant difference between jasmonic acid methyl
treatment group and control group. The same as below.
图 2 拟南芥莲座叶中总芥子油苷、脂肪族芥子油苷及吲哚族芥子油苷总量
Fig. 2 Content of total gluconsinolates, aliphatic and indolic gluconsinolates in Arabidopsis thaliana rosette leaves
处理时间(h)Treatment time
0 12 24 36 48
2.5
2.0
1.5
1.0
0.5
0
*
*
总芥子油苷
Total gluconsinolates







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
脂肪族芥子油苷
Aliphatic gluconsinolates
0 12 24 36 48
2.0
1.5
1.0
0.5
0
*
*







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
吲哚族芥子油苷
Indolic gluconsinolates
0 12 24 36 48
0.5
0.4
0.3
0.2
0.1
0
*
*







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
*
对照 CK 茉莉酸甲酯处理 Jasmonic acid methyl treatment
刘庆霞等:拟南芥芥子油苷含量对外源茉莉酸的响应第 1期 ·135·
2.4 拟南芥莲座叶吲哚族芥子油苷含量对外源茉
莉酸甲酯的响应
由图 4可知,拟南芥莲座叶中共检测出 4种吲
哚族芥子油苷。
茉莉酸甲酯处理后,吲哚基-3-甲基芥子油苷
(Indol-3-yl-methyl glucosinolate,I3M)含量在 12 h
有所降低。1-甲氧吲哚基-3-甲基芥子油苷(1-
methoxyindol -3 -ylmethyl glucosinolate, 1MT-I3M)
经茉莉酸甲酯处理后 36 h内含量持续增高,至 36 h
达到最高值,为 0 h含量的 2.1倍;在 48 h含量降
低,低于 0 h的初始水平。4-羟基吲哚基-3-甲基
芥子油苷(4-hrdroxyindol-3-ylmethyl glucosinolate,
4OH-I3M)和 4-甲氧吲哚基-3-甲基芥子油苷(4-
methoxyindol -3 -ylmethyl glucosinolate, 4MT-I3M)
的含量在处理 24 h达到最高值,分别为 0 h的 2.0
倍和 1.5倍,与相应的对照相比均差异显著,在 36 h
含量降低,之后又出现上升的趋势,与 0 h初始含
量相比均有显著差异。
图 3 拟南芥莲座叶中脂肪族芥子油苷各组分含量
Fig. 3 Content of aliphatic glucosinolates in Arabidopsis thaliana rosette leaves
对照 CK 茉莉酸甲酯处理 Jasmonic acid methyl treatment
0 12 24 36 48
0.12
0.10
0.08
0.06
0.04
0.02
0
*
*3-OHP







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
0 12 24 36 48
0.10
0.08
0.06
0.04
0.02
0
*
3-MSOP







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
0 12 24 36 48
0.06
0.05
0.04
0.03
0.02
0.01
0
*
*4-OHB







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
*
0 12 24 36 48
1.2
1.0
0.8
0.6
0.4
0.2
0
4-MSOB







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
0 12 24 36 48
0.12
0.10
0.08
0.06
0.04
0.02
0
*5-MSOP







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
0 12 24 36 48
0.6
0.5
0.4
0.3
0.2
0.1
0
*
*
6-MSOH







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
*
0 12 24 36 48
0.10
0.08
0.06
0.04
0.02
0
*
8-MSOO







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
*
处理时间(h)Treatment time 处理时间(h)Treatment time 处理时间(h)Treatment time
处理时间(h)Treatment time 处理时间(h)Treatment time 处理时间(h)Treatment time
处理时间(h)Treatment time
*
*
*
0 12 24 36 48
0.040
0.035
0.030
0.025
0.020
0.015
0.010
0.005
0
*
7-MTH







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
处理时间(h)Treatment time
*
0 12 24 36 48
0.020
0.015
0.010
0.005
0
*
8-MTO







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
处理时间(h)Treatment time
** *
对照 CK 茉莉酸甲酯处理 Jasmonic acid methyl treatment
I3M







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
0 12 24 36 48
0.35
0.30
0.25
0.20
0.15
0.10
0.05
0
*
处理时间(h)Treatment time
1MT-I3M







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
0 12 24 36 48
0.007
0.006
0.005
0.004
0.003
0.002
0.001
0
*
处理时间(h)Treatment time
*
*
*
·136· 东 北 农 业 大 学 学 报 第 42卷
3 讨 论
茉莉酸信号途径标记基因 PDF1.2经茉莉酸甲
酯处理后表达量显著上调,表明在喷施茉莉酸甲
酯后,诱导了茉莉酸信号反应,且在 24 h诱导程
度最为强烈。与此一致,脂肪族及吲哚族芥子油
苷合成响应茉莉酸甲酯的变化趋势与 PDF1.2 基
因表达的变化趋势一致,含量均上调,且同样在
24 h达到最大值,表明吲哚族和脂肪族芥子油苷
的合成均受外源茉莉酸甲酯诱导(见图 2);脂肪
族芥子油苷中除 4-MSOB 含量没有明显增加外,
其余组分的含量与相应对照相比均显著增加;在
吲哚族芥子油苷中除 I3M外,其余组分的含量均
明显增加,这与前人的研究结果不同。Doughty等
发现,甘蓝型油菜经不同浓度的茉莉酸甲酯处理
后增加的组分几乎全是吲哚族芥子油苷 [7]。Mik-
kelsen 等利用茉莉酸甲酯处理生长 6 周的拟南芥
莲座叶,发现在检测到的脂肪族芥子油苷各组分
中只有 5-MSOP、8-MTO、8-MSOO 的含量显著
增加 [11]。这表明不同物种以及同一物种不同发育
时期,芥子油苷含量对茉莉酸的响应能力是有差
异的。
本研究表明,脂肪族芥子油苷和吲哚族芥子
油苷含量对外源茉莉酸的响应能力存在差异。脂肪
族芥子油苷的含量在处理 48 h已基本恢复至初始
水平,而此时吲哚族芥子油苷的含量则高于初始
水平,且与相应的对照相比差异显著。暗示这两
类芥子油苷合成途径中的酶对茉莉酸信号的响应
是存在差异的。芥子油苷生物合成过程可分为氨
基酸侧链延长、核心结构合成和次级修饰 3 个阶
段 [16]。其中,次级修饰阶段因芥子油苷的种类而
异。本研究结果表明,脂肪族(或吲哚族)芥子油
苷的一些组分含量对茉莉酸具有特异的响应规律
(见图 3、4),暗示这些芥子油苷组分合成过程中
参与次级修饰的酶对茉莉酸的响应能力不同,并且
同一种酶在不同处理时间对茉莉酸的响应能力可能
也有所不同。
4 结 论
外源茉莉酸甲酯能够诱导拟南芥莲座叶中芥子
油苷的合成。脂肪族芥子油苷除 4-MSOB 以外其
余组分含量均受外源茉莉酸甲酯影响,吲哚族芥子
油苷除 I3M以外其余组分含量均受外源茉莉酸甲
酯影响。这两类芥子油苷中多数组分在茉莉酸甲酯
处理 24 h含量最高。
[ 参 考 文 献 ]
[ 1 ] 陈亚州,阎秀峰.芥子油苷在植物-生物环境关系中的作用[J].
生态学报, 2007, 27(6): 2584-2593.
[ 2 ] Yan X, Chen S. Regulation of plant glucosinolate metabolism [J].
Planta, 2007, 226: 1343-1352.
[ 3 ] 乔世佳,李淑敏,孟令波.芸薹属植物对四种土传病原微生物熏
蒸效果的研究[J].东北农业大学学报, 2010, 41(5): 19-24.
[ 4 ] Brader G, Tas E, Palva E T. Jasmonate -dependent induction of
indole glucosinolates in Arabidopsis by culture filtrates of the
nonspecific pathogen Erwinia carotovora [J]. Plant Physiol, 2001,
126: 849-860.
[ 5 ] Bodnaryk R P. Potent effect of jasmonates on indole glucosinolates
in oilseed rape and mustard[J]. Phytochemistry, 1994, 35(2): 301-
图 4 拟南芥莲座叶中吲哚族芥子油苷各组分含量
Fig. 4 Content of indolic glucosinolates in Arabidopsis thaliana rosette leaves
对照 CK 茉莉酸甲酯处理 Jasmonic acid methyl treatment
4OH-I3M







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
0 12 24 36 48
0.012
0.010
0.008
0.006
0.004
0.002
0
*
处理时间(h)Treatment time
4MT-I3M







μm
ol·
g-
1
FW

Gl
uc
on
sin
ol
at
es
co
nt
en
t
0 12 24 36 48
0.18
0.16
0.14
0.12
0.10
0.08
0.06
0.04
0.02
0
*
处理时间(h)Treatment time
*
*
**
刘庆霞等:拟南芥芥子油苷含量对外源茉莉酸的响应第 1期 ·137·
305.
[ 6 ] Smolen G, Bender J. Arabidopsis cytochrome P450 cyp83B1 muta-
tions activate the tryptophan biosynthetic pathway [J]. Genetics,
2002, 160: 323-332.
[ 7 ] Doughty K J, Kiddle G A, Pye B J, et al. Selective induction of
glucosinolates in oilseed rape leaves by methyl jasmonate [J] .
Phytochemistry, 1995, 38(2): 347-350.
[ 8 ] Cipollini D F, Sipe M L. Jasmonic acid treatment and mammalian
herbivory differentially affect chemical defenses and growth of wild
mustard (Brassica kaber)[J]. Chemoecology, 2001, 11: 137-143.
[ 9 ] Thines B, Katsir L, Melotto M, et al. JAZ repressor proteins are
targets of the SCFCOI1 complex during jasmonate signaling [J].
Nature, 2007, 448: 661-666.
[10] Arimura G, Ozawa R, Shimoda T, et al. Herbivory-induced volatiles
elicit defence genes in lima bean leaves [J]. Nature, 2000, 406
(6795): 512-515.
[11] Mikkelsen M D, Petersen B L, Glawischnig E, et al. Modulation of
CYP79 genes and glucosinolate profile in Arabidopsis by defence
signaling pathways[J]. Plant Physiol, 2003, 131: 298-308.
[12] Brown R L, Kazan K, McGrath K C, et al. A role for the GCC-box in
jasmonate-mediated activation of the PDF1.2 gene of Arabidopsis
[J]. Plant Physiol, 2003, 132: 1020-1032.
[13] Mewis I, Appel H M, Schultz J C, et al. Major signaling pathways
modulate Arabidopsis glucosinolate accumulation and response to
both phloem-feeding and chewing insects[J]. Plant Physiol, 2005,
138: 1149-1162.
[14] 董晓丽,王加启,卜登攀,等.免疫刺激后小鼠肝脏内参基因稳
定性研究[J].东北农业大学学报, 2009, 40(5): 80-85.
[15] Pang Q, Chen S, Li L, et al. Characterization of glucosinolate-my-
rosinase system in developing salt stress Thellungiella halophila[J].
Physiol Plant, 2009, 136(1): 1-9.
[16] 钟海秀,陈亚州,阎秀峰.植物芥子油苷代谢及其转移[J].生物
技术通报, 2007(3): 44-48.
蔬菜农药残留研究进展
收稿日期:2010-11-17
基金项目:哈尔滨市科技创新人才研究专项资金项目(008RFXXN002);黑龙江省高校科技创新团队项目(2009td07)
作者简介:吴鹏(1983-),男,博士研究生,研究方向为黄瓜遗传育种。E-mail: wupeng216@126. com
*通讯作者:秦智伟,教授,博士生导师,研究方向为黄瓜遗传育种。E-mail: qzw303@126. com
吴 鹏,秦智伟*,周秀艳,武 涛,辛 明
(东北农业大学园艺学院,哈尔滨 150030)
摘 要:蔬菜农药残留问题已是政府、市场和消费者都非常关注的热点问题。近些年,农残的检测技术与
防治方法虽然取得了较快的发展,但从生物学、遗传学和育种的角度探索农药残留的发生机理,从生物体自身
特性解决农药残留问题的研究领域还是空白。文章综述了蔬菜农药残留的研究现状、检测技术、发生机理及防
治方法,提出利用分子生物学理论与技术挖掘生物体潜能,从遗传育种角度通过选育低农药残留的新品种来解
决蔬菜农残问题的新途径。
关键词:蔬菜;农药残留;机理;遗传育种
中图分类号:S63;S481.8 文献标志码:A 文章编号:1005-9369(2011)01-0138-07
Research progress of pesticide residues in vegetables/WU Peng, QIN Zhiwei,
ZHOU Xiuyan, WU Tao, XIN Ming (College of Horticulture, Northeast Agricultural University, Harbin
150030, China)
Abstract: Pesticide residues in vegetables have already become a hot problem that government,
market and consumer are very concerned. In recent years, detection technique and prevention methods have
第 42卷 第 1期 东 北 农 业 大 学 学 报 42(1): 138~144
2011年 1月 Journal of Northeast Agricultural University Jan. 2011