全 文 ：遗传 Hereditas (Beijing) 2014年 10月, 36(10): 985―994
www.chinagene.cn 综 述

收稿日期: 2014-05-16; 修回日期: 2014-08-04
基金项目: 国家自然科学基金项目(编号：31200203)，河北省自然科学基金项目(编号：C2012204032)和高等学校博士学科点专项科研基金项目
(编号：20121302120007)资助
作者简介: 樊锦涛，硕士研究生，专业方向：分子生物学。E-mail: afanjintao@126.com
通讯作者: 邢继红，教授，研究方向：分子生物学。Tel: 0312-7528142；E-mail: xingjihong2000@126.com；
董金皋，教授，博士生导师，研究方向：植物分子病理学。Tel: 0312-7528266；E-mail: dongjingao@126.com
DOI: 10.3724/SP.J.1005.2014.0985
网络出版时间: 2014-9-24 10:17:09
URL: http://www.cnki.net/kcms/detail/11.1913.R.20140924.1017.001.html

拟南芥 R2R3-MYB家族第 22亚族的结构与功能
樊锦涛，蒋琛茜，邢继红，董金皋
河北农业大学真菌毒素与植物分子病理学实验室，保定 071001
摘要: 拟南芥 R2R3-MYB 转录因子在拟南芥生长发育、代谢及响应生物和非生物胁迫的调控网络中具有重要
作用。根据保守的氨基酸序列，R2R3-MYB转录因子被分为 25个亚族，其中第 22亚族包含 AtMYB44、AtMYB77、
AtMYB73 和 AtMYB70 4 个基因，主要响应生物和非生物胁迫。文章从基因功能的相似性、基因表达的一致性
和基因结构的保守性 3方面综述了第 22亚族的 4个基因，并综合讨论了其在结构与功能上的冗余性和多样性。
关键词: 拟南芥；R2R3-MYB转录因子；22亚族；结构与功能
Structure and function of the 22nd subfamily in Arabidopsis
R2R3-MYB family
Jintao Fan, Chenxi Jiang, Jihong Xing, Jingao Dong
Mycotoxin and Molecular Plant Pathology Laboratory, Agricultural University of Hebei, Baoding 071001, China
Abstract: R2R3-MYB transcription factors of Arabidopsis play important roles in regulatory networks controlling
development, metabolism and responses to biotic and abiotic stresses. R2R3-MYB transcription factors can be di-
vided into 25 subfamilies based on the conserved amino acid sequences. In these subfamilies, the 22nd subfamily that
responses to biotic and abiotic stresses includ AtMYB44, AtMYB77, AtMYB73 and AtMYB70. In this review, we sum-
marize these 4 genes of the 22nd subfamily from three aspects, including the similarity of gene function, consistency
of gene expression and conservation of the genetic structure. Then we discuss the redundancy and diversity about
gene structure and function of these 4 genes.
Keywords: Arabidopsis thaliana; R2R3-MYB transcription factors; 22 subfamily; structure and function
拟南芥MYB转录因子以含有保守的MYB结构
域为共同特征，包括经典的 MYB 转录因子和
MYB-related 转录因子，共 199 个成员。MYB 结构
域是一段约含 51~52 个氨基酸的肽段，一般含有 3
个保守的色氨酸残基，间隔 18~19 个氨基酸规则排
列，参与空间结构中疏水核心的形成。根据 MYB
蛋白含 MYB 结构域不完全重复子的个数，可将其分
为 4类：(1) 单一的MYB结构域蛋白(R1/R2)；(2) R2R3
蛋白；(3) 3R 蛋白；(4) 拟南芥中新发现的 4R 蛋白。
其中，R2R3-MYB转录因子在拟南芥 MYB家族中数
986 遗传 Hereditas (Beijing) 2014 第 36卷


量最多，其蛋白结构的 N 端含有非常保守的 DNA 结
合结构域，C端含有不保守的转录激活/抑制结构域[1]。
R2R3-MYB 转录因子广泛参与拟南芥的初生和
次生代谢、生长发育，响应生物和非生物胁迫等过
程。根据 R2R3-MYB蛋白的氨基酸序列的保守性不
同，将其进一步分成 25 个亚族(图 1)。其中，第 22
亚族包含 AtMYB44、AtMYB77、AtMYB73和 AtMYB70
4 个基因，主要参与拟南芥抵抗生物和非生物胁迫
过程。该亚族基因结构保守、功能相近、表达规律
相似，表明该亚族基因在功能上可能存在冗余性，
但是该亚族基因在功能和结构上又各具特点。由此
我们推测，该亚族基因的相似性和各自的独特性是
该亚族基因功能上呈现冗余性和多样性的重要原因。
因此，本文从基因功能的相似性、基因表达的一致
性和基因结构的保守性等方面对拟南芥 R2R3-MYB
家族 22亚族基因的冗余性和多样性进行分析，为进
一步明确 R2R3-MYB转录因子的调控机制提供理论
依据。
1 R2R3-MYB家族基因功能的多样性
R2R3-MYB 家族中第 1、2、11、18、20、22
亚族参与调控拟南芥抵抗生物、非生物胁迫反应。
拟南芥 AtMYB30基因通过正调控 HR反应，刺激长
链脂肪酸的合成，从而增强拟南芥对病原菌的抗性[2]。
AtMYB30可与磷酸酶 AtsPLA2-α相互作用，促进磷
酸酶 AtsPLA2-α 从细胞质转移到细胞核中，使
AtMYB30 的转录活性受到抑制。AtsPLA2-α 突变体增
强了对病原菌的抗性，表明 AtsPLA2-α 是 AtMYB30
调控拟南芥抗病反应过程的负调节因子[3]；AtMYB96
基因可以激活植物的脱落酸(ABA)和生长素(Auxin)
的信号途径，其超表达突变体通过减少侧根的生长，
增强对干旱胁迫的耐受性[4]。进一步研究发现，MYB
转录因子具有冷胁迫因子 CBF 启动子的结合位点；
AtMYB15 可与 CBF 家族的多个基因的启动子结合，
AtMYB15的功能缺失导致 CBF家族的多个基因的表
达水平增强，同时 myb15 突变体对冷胁迫的耐受性
增强，表明 AtMYB15 是调控拟南芥冷胁迫相关基
因表达的重要成员[5]。
R2R3-MYB 家族中第 3、4、5、6、7、12 亚族
参与调控拟南芥的初生和次生代谢过程。拟南芥中
AtMYB12 参与调控拟南芥根部类黄酮的合成[6]，而
AtMYB111参与调控子叶中类黄酮的合成[7]。拟南芥
AtMYB75 基因参与调控植物体内花青素的生物合成，
其异位表达能够促进类黄酮类物质生物合成相关基
因的表达，使植物的大多数器官表现为紫色[8,10]。部
分 MYB 转录因子控制植物细胞壁的合成，如第 3
亚族的 AtMYB58 和 AtMYB63 参与拟南芥苯丙烷和
木质素的代谢；AtMYB58和 AtMYB63在次生壁加厚
的纤维和导管中特异性表达，是木质素合成的特异
调控基因；抑制 AtMYB58 和 AtMYB63 的表达会导
致次生壁缺陷、木质素含量降低；而两者过量表达
会激活木质素合成基因的表达，并伴随木质素的异
位沉积[11]。
R2R3-MYB 家族中第 9、14、15、18、19、21
亚族影响拟南芥的生长和发育过程。其中，第 9 亚
族和第 15 亚族均参与调控表皮毛的发育[12]；第 14
亚族的 AtMYB37、AtMYB38、AtMYB68和第 21亚族
的AtMYB105和AtMYB117参与调控拟南芥腋生分生
组织和横向器官的形成[13,16]；AtMYB23和 AtMYB66
参与调控拟南芥根毛的发育 [17,18]；第 18 亚族的
AtMYB33和 AtMYB65参与调控拟南芥雌蕊和花药的
发育[19]；第 19亚族的 AtMYB21和 AtMYB24参与调
控拟南芥雌蕊发育和纤维的长度[20,21]。
R2R3-MYB家族中第 13、16、23、24、25亚族
基因的功能尚未完全解析，暂时归为功能待定一类。
例如：第25亚族中包含AtMYB22、AtMYB64、AtMYB100、
AtMYB115、AtMYB118和 AtMYB119 6个基因，只有
AtMYB115和 AtMYB118的功能初步确定为参与拟南
芥的种子萌发和胚的形成。酵母双杂交实验证实，
AtMYB72 可以和乙烯信号途径中的抗病因子 EIL3
互作，初步确定 AtMYB72 是拟南芥抗病的早期信
号因子[22,23]。AtMYB26 突变体植株能够产生形态和
大小均正常的花粉，但是花药的药室内壁次生加厚
内壁木质化异常，以至于花药不能正常开裂[24]，推
测 AtMYB26与拟南芥花药的发育相关，但其具体功
能还有待进一步的证实。
第 10期 樊锦涛等: 拟南芥 R2R3-MYB家族 22亚族的结构与功能 987




图 1 根据氨基酸序列的保守性对 R2R3-MYB转录因子家族的分类[1]
98



图

2
org
族
其
最
的
性
进
和
拟
2.1
高
sen
AtM
明
生
增
AtM
显
拟
的
表
迫
8


2 共表达的
R2R3-MY
利用GEN
/)对 R2R3-M
基因不仅功能
中，参与抗逆
为明显，推
冗余性，本文
、基因表达
行分析，探讨
多样性，为明
南芥抗逆的机
R2R3-MY
胁迫反应
R2R3-MY
盐、干旱、低
sitive)突变体
YB77、AtM
显的上调[25]
型，AtMYB7
强，处理 6
YB73突变
增强，表明 A
南芥抵抗高盐
ABA 处理
转录水平明
达，表明 AtM
的响应；AtM
22亚族基因
B家族22亚
EMANIA数据
YB家族基
相似，而且
反应的第 2
测该亚族基因
从该亚族
的一致性和基
4 个基因
确 22亚族
制奠定基础
B 家族 22

B 家族 22
温等非生物胁
经 250 mmo
YB73和 AtM
；用 300 mm
3 的表达水
h 达到最大
体中 SOS1和
tMYB73可能
胁迫反应[
拟南芥野生
显增强，且在
YB44可能
YB44 超表

族基因功
库(http://pa
因进行分析
存在一些共
2亚族基因的
在功能上可
4 个基因抗逆
因结构的保
在结构和功能
各基因间的关
。
亚族基因参与
亚族基因参与
迫反应。sos
l/L NaCl处理
YB70的表达
ol/L NaCl处
平随着处理时
值；同时盐胁
SOS3基因的
负调控 SO
26]。
型 30 min 后
导管和叶片
参与调控拟南
达转基因植株
遗传 Hered
能的相似性
ges.genemani
，发现一些亚
表达的现象
共表达现象
能存在一定
功能的相似
守性等方面
上的冗余性
系及其调控
抵抗非生物
拟南芥响应
2-1(salt over
后，AtMYB4
水平均出现
理拟南芥野
间的延长而
迫过程中，
表达水平明
S反应，影响
，AtMYB4
气孔中高效
芥对干旱胁
较野生型和
itas (Beijing)


a.
。
ly
4、
4
敲除突
调控气
受程度
过抑制
白激酶
南芥脱
水过程
拟南芥
诱导 A
AtMYB
在拟南
2.2 R
生
R
对生物
均能响
单胞菌
AtMYB
SA、M
后，A
型和敲
积累明
生型 1
不影响
下游基
AtMYB
可以诱
植物响
AtMYB
件 PP2
毒蛋白
可以与
的表达
心地位
南芥中
本
可以不
酸途径
键基因
点基因
2014
变体对 ABA
孔的开合，
明显增强；
ABA 的负调
2Cs)对 AB
水过程中的
中被显著的
对干旱胁迫
tMYB73、A
73可以持续
芥抵抗低温
2R3-MYB 家
物胁迫反应
2R3-MYB 家
胁迫的响应
应沙雷氏菌
(Stenotropho
44和 AtMYB
eJA、ACC的
tMYB44 超表
除突变体明
显增多[31]；
0 min后 AtM
茉莉酸的信
因 JR2、SP
44能够响应
导植物抵抗病
应 Harpin
44 的调控，
-A和 GSL的
的互作蛋白
AtMYB44
[36]。亚精胺
，在亚精胺
，AtMYB73
课题组研究
同程度的诱
关键基因突
突变体 jar1
npr1突变体
的敏感性增
同时对钠盐
进一步的研
控因子 PP
A 进行正调控
表达水平没
诱导，表明
的响应[28]。
tMYB44 和 A
长时间上调
胁迫过程中
族 22 亚族

族 22 亚族
。AtMYB77、
(Serratia ply
monas malto
73能够响应
刺激[31,32]。例
达转基因植
显减小，H2
茉莉酸甲酯
YB44被诱导
号通路，却
、OXII 和 A
蚜虫刺激。过
原菌的侵染
后乙烯信号
进而影响植
表达[35]；在
VirE2-intera
的启动子区结
在植物抗逆
合成酶 SPD
表达水平明
发现，水杨
导 AtMYB73
变体 eds5和
及水杨酸和
中，AtMYB73
强，并能更
胁迫和干旱
究表明，AtM
2Cs(丝氨酸/
[27]。AtMY
有明显变化
AtMYB73也
另外，低温
tMYB77 的
表达，推测
具有重要功能
基因参与拟
基因参与调
AtMYB73和
muthica)和嗜
philia)的胁迫
Pst DC300
如：接种 Ps
株的病斑面
O2、胼胝质和
(MeJA)处理
表达，但是
影响茉莉酸
OS 的表达[3
敏致病性蛋
和蚜虫的危
调控因子
物防御蚜虫
研究确定根
cting protein
合，增强
和防御反应
S 的超表达
显高于野生
酸、茉莉酸
的表达，同
sid2、茉莉
茉莉酸共同
表达均受到
第 36卷
为迅速的
胁迫的耐
YB44 通
苏氨酸蛋
B73 在拟
，而在复
参与调控
处理能够
表达，且
AtMYB73
[29]。
南芥抵抗
控拟南芥
AtMYB70
麦芽窄食
刺激[30]。
0和激素
t DC3000
积较野生
PR1的
拟南芥野
AtMYB44
信号通路
3]。另外，
白(Harpin)
害[34]，在
EIN2 受
的重要元
癌农杆菌
1 (VIP1)
AtMYB44
中具有核
转基因拟
型[37]。
和乙烯均
时在水杨
酸途径关
调控的节
明显的抑
第 10期 樊锦涛等: 拟南芥 R2R3-MYB家族 22亚族的结构与功能 989


制，表明 AtMYB73响应水杨酸和茉莉酸信号途径；当
接种水稻胡麻斑病菌(Bipolaris Oryzae)后，AtMYB73
的表达水平明显上调，且 Atmyb73 突变体中 H2O2
含量明显降低，PR1、NPR1 和 PDF1.2 的表达水平
均较野生型明显增强，表明 AtMYB73通过水杨酸和
茉莉酸途径调控拟南芥抵抗 B. Oryzae的侵染[38]。
2.3 R2R3-MYB 家族 22 亚族基因参与调控拟南芥
的生长和发育过程
AtMYB77 敲除突变体中，生长素相关基因的表
达水平明显减弱；低浓度的 IAA处理或营养缺乏时，
AtMYB77 敲除突变体的侧根密度明显减少；AtMYB77
的 C 端可以和生长素响应因子 ARFs 互作，表明
AtMYB77可以响应生长素的刺激[39]；在雌蕊衰老的
不同阶段，AtMYB73的表达水平发生明显的变化，推
测 AtMYB73参与调控胚珠的发育[40]；在茎形成过程
中，AtMYB73、AtMYB77 和 AtMYB44 同时上调表达，
表明 AtMYB73、AtMYB77和 AtMYB44可能参与次生
生长过程[41]。此外，AtMYB73和 AtMYB77还能够响
应光的刺激，当黑暗处理 30 min 后，AtMYB73 和
AtMYB77的表达水平均发生明显的变化[42]。
3 R2R3-MYB家族22亚族基因表达的一致性
3.1 22亚族基因的共表达现象
在拟南芥防御反应过程中，R2R3-MYB家族 22
亚族基因 AtMYB44、AtMYB77、AtMYB73和 AtMYB70
表现出明显的共表达现象[30,43,44]。早在 1998年，研
究报道了在胚发育的晚期 AtMYB44 和 AtMYB77 表
达水平均明显增强[45]；在 fus3、lec1和 abi3突变体
中，AtMYB44和 AtMYB77的表达均受到明显的抑制。
AtMYB44、AtMYB77和 AtMYB73在拟南芥机械损伤
后均有不同程度的上调表达[46]。2004年，Guan等[47]
发现 AtMYB77 和 AtMYB73 均可以响应损伤刺激。在
sos2-1(salt overly sensitive)突变体中，AtMYB44、
AtMYB77、AtMYB73 和 AtMYB70 在 NaCl 处理后均
明显的上调[25]。在编码碳酸酐酶基因 βCA1 的敲除
突变体中，AtMYB73和 AtMYB77的表达水平均明显
下调 [48]。2010 年，Liu 等 [44]发现，AtMYB44 和
AtMYB73均能响应 Harpin蛋白的刺激；同时在研究
油菜素内酯时，发现 bri1(brassinosteroid-insensitive 1)
突变体中 AtMYB44、AtMYB77和 AtMYB73均明显下
调[43]。2012年，Wenke等[30]发现 AtMYB77、AtMYB73
和 AtMYB70 均能响应根际细菌沙雷氏菌(Serratia
plymuthica)和嗜麦芽窄食单胞菌 (Stenotrophomonas
maltophilia)的胁迫。2013年，Han等[49]发现了AtMYB44
和 AtMYB73共同响应茉莉酸诱导的抗性反应。
3.2 22亚族基因的时空表达规律的一致性
利用 AtGenExpress Visualization Tool(http://www.
weigelworld.org/resources/microarray/AtGenExpress/)[50]，
本文获得了 22亚族 4个基因在不同时期、不同部位
(根、茎、叶、整个植株、分生部位、花、雄蕊、雌
蕊和种子)的表达数据(图 3)。通过对比分析 4 个基
因在不同的组织部位、不同时间的表达水平，发现
AtMYB44、AtMYB77、AtMYB73和 AtMYB70的时空
表达规律表现出明显的一致性。尤其是在 17 d的根
部、7 d的子叶、15 d的叶片、21 d的幼苗和 8周龄
的长角果等部位，4 个基因的表达均处于较高的水
平；在 1 cm长的叶片上、茎的第 2个节间处、幼苗
第 7 d的幼苗绿色部位、6周龄成熟的花粉中和早期
心形胚中，4个基因的表达均处于较低的水平。



图 3 22亚族基因的表达规律

4 R2R3-MYB家族 22亚族基因结构的保守性
4.1 22亚族基因启动子元件的相似性
22亚族基因存在明显的共表达现象，本文推测
AtMYB44、AtMYB77、AtMYB73和 AtMYB70的启动
990 遗传 Hereditas (Beijing) 2014 第 36卷


子区可能存在着相似的顺式作用元件。利用
plantCARE (http://bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/
plantcare/html/)软件[51]，本文对 22 亚族 4 个基因的
启动子区(ATG 前 1500 bp 区域)进行分析，发现 4
个基因共同含有的元件有 11个，除了包括转录必备
元件 CAAT-box和 TATA-box之外，还含有能够响应
ABA的元件 ABRE，响应热胁迫的元件 HSE，MYB
转录因子结合的区域 MBS，参与防御反应的 TC-rich
repeats，响应生长素的 TGA-element，4个光响应元
件 Box4、G-BOX、G-box和 GAG-motif (表 1 A)。
这些结果说明，22亚族 4个基因均能够响应植物激
素(脱落酸、生长素)，逆境胁迫(干旱、热和防御反
应)和光信号(表 1 A)。
AtMYB73、AtMYB44和 AtMYB77均含有赤霉素
响应元件 P-box 和参与胚乳早期形成的元件 Skn-
1_motif。而 AtMYB44、AtMYB77 和 AtMYB70 均含
有响应光的 MYB转录因子结合区域 MRE(表 1 B)。
此外，AtMYB44和 AtMYB70均含有 2个响应参与抵
抗坏死型病原菌的茉莉酸元件 TGACG-motif 和
CGTCA-motif，AtMYB44和 AtMYB77含有响应水杨
酸的元件 TCA-element 和响应真菌激发子的
Box-W1元件，而 AtMYB73和 AtMYB77含有 2个响
应赤霉素的元件GARE-motif和TATC-box，AtMYB73
和 AtMYB70均含有响应低温胁迫的 LTR元件。
另外，通过分析每个顺式作用元件在不同基因
启动子中数量和位置，结果显示这些与抗逆有关的
顺式作用元件的数量和位置呈现多样性，并没有表
现出我们预期的相似性。这表明每个基因通过转录
调控被开启的模式是需要多种转录因子的进行不同
形式的组合来完成的。
4.2 22亚族蛋白质结构的保守性
利用 SOPMA网站[52]，进一步对 22亚族 4个基
因编码蛋白质的保守结构域进行分析。结果发现，
22亚族的 4个蛋白质一级结构域在 1~100个氨基酸
内均含有 2 个典型的 SANT 结构域，构成了经典的
R2R3-MYB结构(图 4)，在具有转录激活或抑制的 C
端均含有若干个短的重复序列。利用 Jpred3 和
SOPMA软件，对 AtMYB44、AtMYB77、AtMYB73
和 AtMYB70 蛋白质的二级结构进行分析。结果发
现，4 个蛋白中α-螺旋、β转角、无规则卷曲所占
比例也表现出明显的一致性；其中，AtMYB77 和
AtMYB44相似程度较高，AtMYB73和 AtMYB70相似
度较高(表2)。该结果与亚族分类的结果相一致(图1)。

表 1 22亚族 4个基因的启动子元件分析
Motif MYB73 MYB44 MYB77 MYB70 Motif function prediction
A
ABRE 4 2 1 1 ABA responsive element
Box 4 2 3 2 2 Light responsive element
CAAT-box 35 22 21 28 Promoter and enhancer regions
G-BOX 4 2 1 2 Light responsive element
G-box 6 7 4 3 Light responsive element
GAG-motif 3 1 1 3 Light responsive element
HSE 2 1 3 2 Heat stress responsive element
MBS 1 1 1 1 MYB binding site involved in drought
TATA-box >30 >30 >30 >30 Core promoter element
TC-rich repeats 1 2 2 2 Defense and stress responsive element
TGA-element 2 1 5 1 Auxin-responsive element
B
GT1-motif 3 2 1 0 Light responsive element
P-box 1 1 1 0 Gibberellin-responsive element
Skn-1_motif 1 3 3 0 Required for endosperm expression
circadian 1 1 0 1 Circadian control
TCCACCT-motif 1 0 1 1 Unknown
MRE 0 1 1 1 MYB binding site involved in light
注：A 为 4 个基因共有元件；B 为 3 个基因共有元件；表中斜体的均为光响应元件；加粗的为特异性的元件；表中数字代表特
异元件在不同基因启动子中的个数。
第 10期 樊锦涛等: 拟南芥 R2R3-MYB家族 22亚族的结构与功能 991




图 4 22亚族 4个蛋白的 SANT保守结构域

表 2 22亚族 4个蛋白的二级结构分析
AtMYB73 AtMYB44 AtMYB70 AtMYB77
Alpha helix 23.12% 26.89% 22.98% 26.58%
Extended strand 6.88% 11.80% 10.36% 12.62%
Beta turn 4.06% 6.89% 5.83% 5.32%
Random coil 65.94% 54.43% 60.84% 55.48%

5 展 望
拟南芥 R2R3-MYB 家族 22 亚族主要参与拟南
芥抵抗生物和非生物胁迫过程，但是该亚族中 4 个
基因 AtMYB44、AtMYB73、AtMYB77和 AtMYB70功
能并未完全明确。研究较为深入的是 AtMYB44，目
前已确定 AtMYB44位于表达调控的上游区域，影响
拟南芥的多种代谢过程。AtMYB44 参与调控拟南芥
对生物和非生物胁迫的响应及其生长、发育过程。
在 R2R3-MYB家族 22亚族中，AtMYB77和 AtMYB44
相似程度最高 (图 1)，分别被称为 AtMYBR2 和
AtMYBR1，表明它们可能存在相同的功能。但是，
目前仅发现 AtMYB77在生长素刺激的根部发育过程
中起调控作用。而 AtMYB73 的功能与 AtMYB44 较
为相似，AtMYB73 不仅参与拟南芥抵抗生物和非生
物胁迫过程，在拟南芥的发育过程中也起着重要作
用。AtMYB70 的相关研究相对较少，目前仅知
AtMYB70可能参与 Ca2+信号的调控。事实上，22亚
族 4 个基因在其介导的植物响应逆境胁迫过程中的
具体功能及其相互关系尚不清楚，比如 22亚族 4个
基因的上、下游结合因子仍未确定，4 个基因在各
种抗逆信号转导途径中的交叉调节的机制(冗余性
和多样性)还有待进一步深入研究。随着各种基因功
能研究方法的不断发展及酵母双杂交、染色质免疫
沉淀等技术体系的应用，22亚族及 R2R3-MYB转录
因子所调控的植物重要生理生化活动的机制将会进
一步得到阐明。
植物在生长发育过程中，经常受到各种环境(低
温、干旱、土壤盐渍化及病原物侵染等)的胁迫。在
长期的进化过程中，植物形成了抵抗逆境胁迫的多
种防御机制。当受到逆境胁迫时，植物体内产生一
系列的信号传递，激发植物自身的防御体系，提高
抵抗胁迫的能力。植物对逆境胁迫的响应是一个涉
及多基因、多信号途径、多基因产物的复杂过程。
转录因子作为一种具有特殊结构的蛋白分子在植物
抗逆过程中发挥重要的调控功能，它直接或间接的
调控多个抗逆相关的功能基因的表达。阐明抗逆相
关各转录因子的功能以及调控机制是目前植物胁迫
生物学研究的热点领域，在提高作物对逆境胁迫的
分子育种中，增加或改良某个关键转录因子的调控
功能，可以激活或抑制多个功能基因的表达，从而
提高植物的综合抗逆性(抗冻、抗旱、抗盐及抗病虫
害等)，为培育具有广谱、持久抗性的作物新品种具
有重大意义，将在植物抗逆性改良方面拥有广阔的
应用前景。
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(责任编委: 张宪省)




综合信息
“第六届全国微生物遗传学学术研讨会”在温州举行

由中国遗传学会微生物遗传专业委员会主办、温州医科大学和浙江省微生物学会等联合承办的“第六届全
国微生物遗传学学术研讨会”于 2014年 9月 19-22日在温州医科大学召开。来自全国各地科研院所及高校的 200
余位代表参加了本次研讨会。会议接收论文摘要 106 篇，并汇编出版了《第六届全国微生物遗传学学术研讨会
论文摘要集》。本次会议集中展现了我国微生物遗传学及相关领域研究的最新成果和前沿进展，对进一步推进
我国微生物遗传学的研究和发展具有重要意义。
9月 20日，大会开幕式在温州医科大学育英学术馆举行。开幕式由大会秘书长、温州医科大学包其郁教授
主持。大会执行主席、中国遗传学会微生物遗传专业委员会主任、中国科学院微生物研究所向华研究员致开幕
词；温州医科大学副校长吕建新教授致欢迎词。
在本次大会上，陈润生院士和赵国屏院士分别就“非编码序列、非编码基因和非编码 RNA”和“微生物遗
传与合成生物学”作了院士特邀报告；中国遗传学会副理事长、中国科学院微生物研究所谭华荣研究员就“放
线菌群体感应信号分子介导的抗生素生物合成与调控”作了大会特邀报告；中国科学院微生物研究所向华研究
员、华南农业大学张炼辉教授、山东大学张玉忠教授、中国科学院天津工业生物技术研究所张学礼研究员、中
国科学院微生物研究所钟瑾研究员、浙江大学李永泉教授、中国科学院武汉病毒研究所周宁一研究员、西南大
学谢建平教授等专家先后做了大会报告，报告内容涵盖 CRISPR-Cas 系统、群感效应、抗生素和细菌素合成与
调控、细胞工厂构建、海洋适冷菌及分枝杆菌等相关遗传与适应机制、DNA重组工程技术在合成生物学领域的
应用等。报告内容精炼，演讲精彩，会场学术交流气氛浓厚，受到与会者的一致好评。
本次研讨会分别设置了“微生物遗传机制及分子调控”和“微生物代谢及合成生物学”两个分会场。
本次会议期间，还召开了“第九届中国遗传学会微生物遗传专业委员会第二次会议”。会议由向华主任主
持，白林泉、陈向东、刘钢、包其郁、冯红、傅钰、黄广华、李永泉、李越中、莫日根、覃重军、谢建平、张
玉忠、周宁一等 15位委员参加，并邀请中国遗传学会谭华荣副理事长出席。会议通过了包其郁教授关于第六届
全国微生物遗传学学术研讨会的组织工作报告和财务报告等。会议讨论了下次学术研讨会的承办事宜，决定“第
七届全国微生物遗传学学术研讨会”于 2016年夏季在呼和浩特举行，由内蒙古大学承办。
本次会议得到温州医科大学、浙江省医学遗传学重点实验室、浙江省模式生物与应用技术重点实验室、浙江省
微生物学会及中国科学院微生物研究所的大力支持；一些生命科学相关仪器、试剂公司也给予了一定的支持和
赞助，特此致谢。
（向华，包其郁）
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