免费文献传递   相关文献

葡萄风信子外植体直接再分化花芽和营养芽的研究



全 文 :第43卷 第6期
2015年6月
西北农林科技大学学报(自然科学版)
Journal of Northwest A&F University(Nat.Sci.Ed.)
Vol.43 No.6
Jun.2015
网络出版时间:2015-05-11 15:03 DOI:10.13207/j.cnki.jnwafu.2015.06.020
网络出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/61.1390.S.20150511.1503.020.html
葡萄风信子外植体直接再分化花芽和营养芽的研究
 [收稿日期] 2014-09-08
 [基金项目] 国家自然科学基金项目(31170652)
 [作者简介] 刘妮妮(1989-),女,陕西榆林人,在读硕士,主要从事园林植物分子育种研究。E-mail:15191461927@163.com
 [通信作者] 刘雅莉(1960-),女,陕西西安人,教授,博士生导师,主要从事园林植物遗传育种研究。E-mail:lyl6151@126.com
刘妮妮a,b,刘雅莉a,b,娄 倩a,c,杨慧萍a,b
(西北农林科技大学a旱区作物逆境生物学国家重点实验室/农业部西北地区园艺作物生物学与种质创制重点实验室,
b林学院,c园艺学院,陕西 杨凌712100)
[摘 要]  【目的】探索葡萄风信子直接再生花芽体系的建立,为葡萄风信子外植体直接再分化花芽研究提供参
考。【方法】以葡萄风信子‘亚美尼亚’花蕾外植体为材料,MS为基础培养基,在均添加0.1mg/L 2,4-D的条件下,分别
用不同质量浓度的6-BA(0,0.5,1,2,3,4mg/L)、GA3(0,0.5,1,2,3,4mg/L)和玉米素(0,0.05,0.1,0.5,1,2mg/L)处
理,筛选出诱导花芽的最佳激素及最适质量浓度;以 MS+6-BA(或玉米素)2mg/L+2,4-D 0.1mg/L研究开花时花瓣切
片、花葶、叶片以及叶片诱导的愈伤组织诱导直接再分化花芽的情况。【结果】用 MS+2mg/L 6-BA+0.1mg/L 2,4-D
处理葡萄风信子花蕾时,可在花蕾基部直接再分化出具有蓝色的花芽,且花芽分化率最高,达60.2%。花葶、花瓣切片、
叶片和愈伤组织在同样条件下只能诱导产生愈伤组织、营养芽。说明花蕾是诱导花芽分化的最佳外植体,且最适培养基
为 MS+2mg/L 6-BA+0.1mg/L 2,4-D。【结论】建立了葡萄风信子外植体直接再分化花芽体系。
[关键词] 葡萄风信子‘亚美尼亚’;直接再分化花芽;营养芽;组织培养
[中图分类号] S682.2+9 [文献标志码] A [文章编号] 1671-9387(2015)06-0187-06
Direct regenerated floral and vegetative buds from
explants of Muscari armeniacum
LIU Ni-ni a,b,LIU Ya-li a,b,LOU Qiana,c,YANG Hui-pinga,b
(aState Key Laboratory of Crop Stress Biology in Arid Areas,Ministry of Agriculture Key Laboratory of Horticultural
Plant Biology and Germplasm Innovation,b College of Forestry,c College of Horticulture,
Northwest A&F University,Yangling,Shaanxi 712100,China)
Abstract:【Objective】The study investigated the optimal tissue culture conditions for Muscari arme-
niacumto directly induce the regeneration of floral buds.【Method】Floral buds explants of M.armeniacum
were used as materials.With 0.1mg/L 2,4-D,the buds were treated with different concentrations of 6-BA
(0,0.5,1,2,3,4mg/L),GA3(0,0.5,1,2,3,4mg/L)and ZT(0,0.05,0.1,0.5,1,2mg/L),respectively to
select the optimal induction conditions for bud differentiation.Using MS+2mg/L 6-BA(or ZT)+0.1
mg/L 2,4-D,effects of different explants including young floral bud,petal segment,pedicel,young leaf and
calus on the optimal induction conditions of flower bud were also studied.【Result】The optimal induction
conditions for bud differentiation were MS+2mg/L 6-BA+0.1mg/L 2,4-D.The optimal induction ex-
plant was floral bud with induction rate of 60.2%.With the same hormones conditions,pedicel,sliced pet-
als,leaf and calus explants can only be induced to form calus and vegetative buds.So the optimal induction
explant is floral buds,optimal induction condition is MS+2mg/L 6-BA+0.1mg/L 2,4-D.【Conclusion】
Optimal culture system for M.armeniacumto directly induce the bud differentiation was established.
Key words:Muscari armeniacum;direct regeneration of floral buds;vegetative buds;tissue culture
  葡萄风信子(Muscari)是一种多年生春季球根
花卉,属于天门冬科风信子亚科葡萄风信子属。葡
萄风信子花期较长,其花序小而精致,花色呈现特殊
的蓝色,其繁殖方式主要是以退化的鳞茎进行无性
繁殖。此外,葡萄风信子是异花授粉植物,其总状花
序通常由顶端的不育花和中下部的可育花组成。可
育花为两性花,雌雄同体,其既能在蜜蜂等昆虫的帮
助下接受异花的花粉,少数情况也能通过自花授粉
正常繁殖后代[1]。一些品种还存在明显的不育性
状,如葡萄风信子‘白魔术’(M.aucheri ‘White
Magic’)。部分濒危品种如渐变葡萄风信子(M.
latifolium)和天蓝葡萄风信子(M.azureum)等的
鳞茎在自然条件下几乎不产生子球或产生子球的速
度非常缓慢[2]。目前对该属物种的快繁和保护主要
依靠组织培养技术,针对许多品种的葡萄风信子材
料已先后建立了较成熟的快繁体系,如M.racemo-
sum[3]、M.macrocarpum[4]、M.aucheri[5]、M.azu-
reum[6]、M.mirium[7]和 M.muscarimi[2];关于利用
愈伤组织[8-9]和原生质体构建再生体系[10]也有一些
报道,但是有关葡萄风信子直接再分化花芽的研究
尚未见报道。葡萄风信子的40多个种展现出不同
程度的蓝色[11],为研究单子叶植物蓝色花形成机理
提供了理想的材料。但是通常情况下从播种到实生
苗开花至少需要3年的时间,生长周期较长,这在一
定程度上限制了对植物基因功能验证工作的进展,从
而限制了利用分子生物技术进行花色育种的进展。
植物外植体直接再生花芽是在离体条件下诱导
外植体经历脱分化和再分化过程后形成花器官。已
有报道称在布罗瓦利亚花[12]、石龙芮[13]、大蒜[14]、
矮通泉草[15]等植物的愈伤组织中得到了无叶花芽的
直接分化。外植体能否再分化出花芽与其自身的发
育、营养组分及激素的种类和用量有密切的关系,且
在其他条件相同的情况下,激素的种类和用量起着决
定性的作用。本研究利用葡萄风信子‘亚美尼亚’花
蕾、花葶、花瓣和幼叶为材料,诱导产生愈伤组织,研
究外源激素6-BA、GA3、玉米素用量及其与2,4-D配
比对这些材料诱导产生营养芽和花芽的影响,以期为
葡萄风信子外植体直接再分化研究提供参考。
1 材料与方法
1.1 材 料
以葡萄风信子‘亚美尼亚’(Muscari armenia-
cum)为材料,于2014-03取材于西安植物园,并种植
于西北农林科技大学种质资源圃。分别采集盛花期
不同花序部位的花蕾及花葶、花瓣和幼叶。
1.2 方 法
1.2.1 材料消毒和培养 将所取材料先用自来水
冲洗干净,体积分数75% 酒精浸泡30s后,用质量
分数0.1% 升汞(氯化汞,HgCl2)消毒,花蕾和花瓣
切片消毒5min,花葶和幼叶消毒10min,然后用无
菌水冲洗4次,待用。花蕾和愈伤组织(由 MS+
0.6mg/L 6-BA+0.1mg/L 2,4-D培养基诱导产
生)直接接种到诱花培养基,花葶和幼叶切成1cm
大小的切块后再分别接入诱花培养基,花瓣中间纵
切成两半接种。接种后的材料放入白天(20±2)
℃,夜晚(20±1)℃的环境中培养,28~30d转接一
次。分别于添加不同外源激素的 MS培养基中培
养,每隔5d将培养物从三角瓶中取出,在连续变倍
实体显微镜(SMZ1500)下拍照记录其外观形态变
化。
1.2.2 6-BA对花蕾花芽和营养芽诱导的影响 以
MS为基本培养基,加入不同质量浓度的6-BA进行
处理,6-BA 质量浓度设置为0,0.5,1,2,3 和4
mg/L,同时加入2,4-D 0.1mg/L。各处理的培养
基为蔗糖30g/L,植物凝胶3g/L,pH 5.8。对照组
为不添加任何激素的空 MS。花蕾培养在内盛30
mL培养基的玻璃瓶中,使用透气封口膜封口。培养
50d后,观察记录从花蕾上直接分化花芽的分化率。
1.2.3 GA3 对花蕾花芽和营养芽诱导的影响 以
MS为基本培养基,加入不同质量浓度的GA3 进行
处理,GA3 质量浓度设置为0,0.5,1,2,3和4
mg/L,同时加入2,4-D 0.1mg/L。各处理的培养
基为蔗糖30g/L,植物凝胶3g/L,pH 5.8。对照组
为不添加任何激素的空 MS。花蕾培养在内盛30mL
培养基的玻璃瓶中,使用透气封口膜封口。培养50d
后,观察记录从花蕾上直接分化花芽的分化率。
1.2.4 玉米素(ZT)对花蕾花芽和营养芽诱导的影
响 以 MS为基本培养基,加入不同质量浓度的玉
米素,玉米素质量浓度设置为0,0.05,0.1,0.5,1和
2mg/L,同时加入2,4-D 0.1mg/L。各处理的培养
基为蔗糖30g/L,植物凝胶3g/L,pH 5.8。对照组
为不添加任何激素的空 MS。花蕾培养在内盛30mL
培养基的玻璃三角瓶中,用透气封口膜封口。培养50
d后,观察记录从花蕾上直接分化花芽的分化率。
881 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第43卷
1.2.5 外植体诱导花芽和营养芽的比较 以MS+
2mg/L 6-BA+0.1mg/L 2,4-D和 MS+2mg/L
玉米素+0.1mg/L 2,4-D为培养基,培养供试花
蕾、花瓣、花葶、幼叶及诱导的愈伤,60d后观察其
诱导组织情况。
1.2.6 分化率的计算 诱导形成花芽(营养芽、根)
分化率=诱导形成花芽(营养芽、根)的外植体数/所
培养的外植体总数×100%。
2 结果与分析
2.1 葡萄风信子花芽和营养芽发生的形态学观察
2.1.1 花 芽 观察结果显示,不同发育时期的葡
萄风信子花蕾外植体在附加2mg/L 6-BA,0.1
mg/L 2,4-D的 MS培养基上,只有含苞待放的花蕾
可以在其基部直接再生花芽(图1-A,B),其他类型
的花蕾都出现褐化死亡现象。离体培养5~40d的
花蕾培养物在连续变倍实体显微镜下所观察到的形
态变化如图1-D-I所示。外植体接种5~10d,花
蕾基部和花葶、叶片切口处都可以形成愈伤组织(图
1-D),这些愈伤组织进一步发育形成白色或绿色的
原基状突起(图1-E,F)。培养20d后,原基进一步
长大并且有颜色形成(图1-G)。25d后,随着进一
步发育,花芽已长到肉眼可见,几片扁平状结构合起
来形成花蕾(图1-H)。40d后,扁平状合起来形成的
花蕾颜色进一步加深,顶端开裂,成簇的花芽向外翻
卷(图1-I)。对照组花蕾内子房逐渐膨大(图1-C)。
图1 离体培养葡萄风信子花蕾直接再分化花芽的显微形态观察
A,B.花蕾外植体材料,箭头所示为诱导花芽的最佳部位,标尺=1cm;C.对照组花蕾;
D-I.花蕾在 MS+2mg/L 6-BA+0.1mg/L 2,4-D培养基中离体培养5,10,15,20,25,40d后的形态;标尺=1mm
Fig.1 Micro-morphological changes of direct floral buds regeneration of Muscari armeniacum in vitro
A,B.Explants,arrow shows the best induction parts of floral buds;Bar=1cm;C.Floral bud of control;D-I.Micro-morphological changes of
young floral buds 5,10,15,20,25,and 40days after culture in vitro at MS+2mg/L 6-BA+0.1mg/L 2,4-D medium;Bar=1mm
2.1.2 营养芽 葡萄风信子外植体在附加6-BA
和2,4-D的 MS培养基上可诱导营养芽和愈伤组织
的发生(图2-A-I)。培养1周后花葶、叶片和花瓣
切片边缘均有愈伤组织形成,且愈伤组织表面光滑
稍透明;培养时间稍长还可以在外植体表面形成类
似的体表愈伤组织。观察这2种愈伤组织的特点发
现,其均呈肿胀状,因此统称为肿胀状愈伤组织。这
些愈伤组织在进一步培养以后表面逐渐形成许多顶
端稍尖的独立个体,完全不透明的乳白色个体为营
养芽原基,同时还具有绿色的不定芽(图2-B)。乳
白色原基进一步生长可形成幼叶,幼叶迅速伸长,顶
部由乳白色逐渐转变为浅绿色,叶形呈管状(图2-
E)。管状幼叶进一步伸长和加粗,除基部还保持白
色外其余部分由浅绿色转为深绿色。初代培养2个
月后即成为具有小鳞茎的幼苗(图2-F)。
981第6期 刘妮妮,等:葡萄风信子外植体直接再分化花芽和营养芽的研究
图2 葡萄风信子花蕾、花葶、幼叶、花瓣切片离体培养直接再生营养芽和愈伤组织
A.花蕾直接再生不定芽和愈伤组织;B,C.花葶直接再生不定芽和愈伤组织;D,G.幼叶直接再生愈伤组织和根毛;
E,F.不定芽培养1~2个月后基部逐渐膨大开始发育成鳞茎;H.花瓣切块外植体;I.花瓣切块产生的愈伤组织。标尺=1cm
Fig.2 Direct regeneration of floral and vegetative buds from young floral buds,pedicel,
young leaf and petal of Muscari armeniacum in vitro
A.Direct regeneration of shoots and calus from young floral buds;B,C.Direct regeneration of shoots and calus from pedicel;D,G.Direct
regeneration of calus and roots from young leaf;E,F.Shoots for 1-2months after culture;H.Explants of petal;I.Calus from petal.Bar=1cm
2.2 外源激素对葡萄风信子再分化花芽和营养芽
的影响
为了探索外源激素对离体培养再分化花芽的影
响,以葡萄风信子花蕾为外植体进行试验,在培养基
中均添加0.1mg/L 2,4-D,培养50d后,观察记录
从花蕾上直接分化花芽的分化率(表1)。表1结果
表明,单独使用2,4-D进行处理只能诱导愈伤组织
发生。向培养基中添加6-BA,且6-BA质量浓度小
于0.5mg/L时,培养的花蕾上无花芽形成,只有愈
伤组织和营养芽。在1mg/L 6-BA+0.1mg/L
2,4-D培养基上,既有营养芽也有花芽,且花芽分化
率为37.3%;在2mg/L 6-BA+0.1mg/L 2,4-D培
养基上,花芽分化率最高,达60.2%。进一步计算
比较可以看出,当6-BA质量浓度大于2mg/L时,
营养芽和花芽分化率均有随6-BA质量浓度升高而
下降的趋势,且分化的花芽和营养芽均不正常,经常
呈畸形或玻璃状。当培养基中添加GA3 时,任何质
量浓度梯度中都至少有80%的花蕾外植体分化形
成愈伤组织,1mg/L GA3+0.1mg/L 2,4-D为花
蕾愈伤组织诱导的最适培养基,但无营养芽和花芽
形成。玉米素和2,4-D配合使用时,外植体只能诱
导形成愈伤组织,当玉米素质量浓度高于0.1mg/L
091 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第43卷
时,愈伤诱导率为100%。
表1 外源激素对葡萄风信子花蕾直接再生花芽的影响
Table 1 Effect of exogenous hormones on direct regeneration of floral buds of Muscari armeniacum
外源激素种类
Type of exogenous
hormones
激素质量浓度/
(mg·L-1)
Hormone concentration
直接再分化率/% Rate of direct regeneration
愈伤组织诱导率
Calus inductivity
花芽分化率
Flower buds
frequencies
营养芽分化率
Vegetative buds
frequencies
根分化率
Shoots
frequencies
0  82.4  0  0  32.4
0.5  100.0  17.1  8.3  11.2
6-BA
1  100.0  37.3  21.5  0
2  20.4  60.2  30.8  0
3  86.7  25.0  14.4  0
4  80.0  10.0  10.0  0
0  82.4  0  0  32.4
0.5  88.6  0  0  0
GA3 1  100.0  0  0  0
2  95.3  0  0  0
3  87.5  0  0  0
4  80.0  0  0  0
玉米素
Zeatin
0  82.4  0  0  32.4
0.05  85.7  0  0  11.2
0.1  100.0  0  0  0
0.5  100.0  0  0  0
1  100.0  0  0  0
2  100.0  0  0  0
  注:2,4-D 0.1mg/L,培养50d后,观察记录从花蕾上直接再生花芽和不定芽的频率(被污染的材料未统计在内);数值代表3次重复的平
均值。
Note:2,4-D 0.1mg/L,calculated on the 50day after young floral buds were cultured in vitro(The contaminated explants were not calculat-
ed).Each value represents the mean of 3replications.
2.3 葡萄风信子不同器官外植体直接再分化花芽
从表1可以看出,花蕾外植体在 MS+6-BA 2
mg/L+2,4-D 0.1mg/L培养基上能诱导出花芽,
且花芽分化率最高。因此,为了弄清从其他器官上
分离的外植体对再分化花芽的影响,选用 MS+6-
BA 2mg/L+2,4-D 0.1mg/L培养基对不同器官
上分离的外植体进行试验,进一步探讨葡萄风信子
各种器官再生花芽的能力;同时以玉米素2mg/L
和2,4-D 0.1mg/L的培养基对不同器官上分离的
外植体进行试验。结果(表2)表明,在附加6-BA 2
mg/L和2,4-D 0.1mg/L的培养基上,只有花蕾可
以诱导形成花芽,幼叶、花葶、花瓣切片和愈伤组织
都只能诱导再分化营养芽和愈伤组织。玉米素2
mg/L和2,4-D 0.1mg/L的培养基上,所有外植体
都只能再分化营养芽或愈伤组织。
表2 葡萄风信子不同器官离体培养再生诱导情况
Table 2 Floral buds regenerated directly from various organs of Muscari armeniacumcultured in vitro
培养基
Medium
外植体类型
Type of explants
诱导物类型
Regenrated material
MS+6-BA 2mg/L+
2,4-D 0.1mg/L
幼花蕾 Young floral bud 愈伤、营养芽、花芽Calus,vegetative buds,floral buds
花瓣切块Petal segment 愈伤、营养芽Calus,vegetative buds
花葶Pedicel 愈伤Calus
幼叶Young leaf 愈伤、营养芽Calus,vegetative buds
愈伤组织Calus 愈伤、营养芽Calus,vegetative buds
MS+玉米素(ZT)
2mg/L+
2,4-D 0.1mg/L
幼花蕾 Young floral bud 愈伤、营养芽Calus,vegetative buds
花瓣切块Petal segment 愈伤、营养芽Calus,vegetative buds
花葶Pedicel 愈伤Calus
幼叶Young leaf 愈伤Calus
愈伤组织Calus 愈伤、营养芽Calus,vegetative buds
3 讨论与结论
迄今为止,在葡萄风信子中已经清楚了诱导胚
状体、营养芽和根再分化生长素和细胞分裂素的最
佳配比[2,16],但对花芽分化的诱导尚未见报道,在其
他植物中虽然已有花芽分化的报道[17],但进展不
191第6期 刘妮妮,等:葡萄风信子外植体直接再分化花芽和营养芽的研究
大。从所用的外源激素来看,基本上是 KT(kinet-
in)或6-BA与IAA的不同配比。Goh[18-19]研究表
明,6-BA可以促进杂种石斛兰整体植株的花芽发
端,诱导花芽发生。同时一些研究者发现,适当质量
浓度的6-BA能够促进植物的花芽分化,但当质量
浓度过高或过低时则抑制花芽分化[20]。可见,不同
质量浓度的6-BA对花芽分化的影响不同,在使用
细胞分裂素时应选择合适的质量浓度。
本研究通过对葡萄风信子‘亚美尼亚’进行组织
培养,探讨了不同外植体和外源激素对其离体培养
直接再生花芽的影响,结果表明,当6-BA质量浓度
为2mg/L时,只有花蕾外植体能诱导直接再分化
花芽;GA3 和玉米素不能诱导花芽。研究结果还表
明,MS培养基中仅附加2,4-D只能诱导外植体形
成愈伤组织;附加玉米素则能诱导外植体再分化直
接形成愈伤组织;附加 GA3 只能诱导产生愈伤组
织;附加一定比例的6-BA与2,4-D除能诱导营养
芽外,还能诱导形成大量具有蓝色的不正常花芽。
试验中诱导葡萄风信子除花蕾外的外植体产生
不正常花芽,经过2次继代后长成畸形花芽。造成
此结果的原因可能有两种:一是高质量浓度6-BA
促进花芽分化,抑制其正常开花;二是葡萄风信子属
于球根花卉,自然状态下是在夏季花芽分化并经过
一段时间的低温春化处理后才正常开花,而本试验
中植物材料没有经过低温处理,因此只有花蕾外植
体才能诱导出花芽,其他外植体尚需进一步研究。
[参考文献]
[1] Canale A,Beneli G,Benvenuti S.First record of insect polina-
tors visiting Muscari comosum (L.)Miler(Liliaceae-Hya-
cinthaceae),an ancient Mediterranean food plant[J].Plant Bi-
osystems,2013,DOI:10.1080/11263504.2013.863810.
[2] Uzun S,ParmaksizI,Uranbey S,et al.In vitro micropropaga-
tion from immature embryos of the endemic and endangered
Muscari muscarimi Medik [J].Turkish Journal of Biology,
2014,38:83-88.
[3] Kromer K.The effect of light conditions on regeneration and
level of endogenous growth regulators in Muscari racemosum
L.Mil.bulb-scale sections cultured in vitro [J].Acta Horti-
culturae,1989,251:173-182.
[4] Ozel C A,Khawar K M,Unal F.In vitro axilary bulblet regen-
eration of Turkish yelow grape hyacinth (Muscari macro-
carpumSweet)from twin scale explants[J].Research Journal
of Agriculture and Biological Science,2007,3:924-929.
[5] Uranbey S.Stimulating effects of different basal media and cy-
tokinin types on regeneration of endemic and endangered Mus-
cari aucheri [J].Archives of Biological Science(Belgrade),
2010,62:663-667.
[6] Uranbey S,Ipek A,Caliskan M,et al.In vitro bulblet induction
from bulb scales of endangered ornamental plant Muscari azu-
reum [J].Biotechnology and Biotechnological Equipment,
2010,24:1843-1848.
[7] Nasircilar A G,Mirici S,Karaguzel O,et al.In vitro propaga-
tion of endemic and endangered Muscari mirumfrom different
explant types[J].Turkish Journal of Botany,2011,35:37-43.
[8] Suzuki S,Nakano M.Agrobacterium-mediated production of tr-
ansgenic plants of Muscari armeniacum Leichtl.ex Bak[J].
Plant Cel Report,2002,20:835-841.
[9] Mori S,Nakano M.Somatic embryo induction from leaf and
flower bud-derived cali in several Muscari species and cultivars
[J].Propagation of Ornamental Plants,2004,4:58-62.
[10] Nakano M,Tanaka S,Kagami S,et al.Plantlet regeneration
from protoplasts of Muscari armeniacumLeichtl.ex Bak[J].
Plant Biotechnology,2005,22:249-251.
[11] Doussi M A,Thanos C A.Ecophysiology of seed germination
in Mediterranean geophytes.1:Muscari spp.[J].Seed Sci-
ence Research,2002,12(3):193-201.
[12] Ganapathy P S.Floral morphogenesis and flowering in aseptic
cultures of Browallia demissa L [J].Biologia Plantarum,
1969,11(2):165-174.
[13] Konar R N,Nataraja K.In vitro control of floral morphogene-
sis in Ranunculus sceleratus L[J].Phytomorphology,1964,
14:558-563.
[14] Chaouat L.Flowers formation from calus in garlic(Allium sa-
tivumL.)[J].Bul Soc Bot Fr,1983,130(1):9-14.
[15] Raste A P,Ganapathy P S.In vitro behavior of inflorescences
segments of Mazus plumilus [J].Phytomorphology,1970,
20:367-374.
[16] Azad M A K,Amin M N.Effects of hormonal and basal nutri-
ent medium on in vitro regeneration of an ornamental plant
Muscari armeniacum Leichtlin.ex Baker[J].Plant Tissue
Culture Biotechnology,2012,22:113-126.
[17] Yu H,Ito T,Zhao Y X,et al.Floral homeotic genes are tar-
gets of gibberelin signaling in flower development[J].USA
Proceedings of the National Academy of Sciences,2004,101
(20):7827-7832.
[18] Goh C J.Flowering gradient along the stem axis in an orchid
hybrid Aranda deborah [J].Ann Bot,1975,39:931-934.
[19] Goh C J.Hormonal regulation of flowering in a sympodial or-
chid hybrid Dendrobium Louisae[J].New Phytol,1979,82:
375-380.
[20] Nadgauda R S,John C K,Parasharami V A,et al.A compari-
son of in vitro and in vitro flowering in bamboo:Bambusa
arundinacea [J].Plant Cel Tissue Culture,1997,48:181-
188.
291 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第43卷