全 文 ：种植转 Bt基因棉土壤中 Bt蛋白的分布*
付庆灵1 摇 陈愫惋1 摇 胡红青1**摇 李摇 珍1 摇 韩晓芳1 摇 王摇 朴1,2
( 1 华中农业大学资源与环境学院, 武汉 430070; 2 武汉市园林科学研究所, 武汉 430081)
摘摇 要摇 采用盆栽试验结合酶联免疫法(ELISA)测定了转 Bt 基因抗虫棉及常规棉花不同生
育期根际及非根际土壤中的 Bt蛋白含量.结果表明:红壤、黄棕壤及黄褐土种植转 Bt 基因棉
花后根际土中 Bt蛋白含量显著高于非根际土,而种植常规棉花的根际土与非根际土中 Bt 蛋
白含量差异不显著.在初蕾期转 Bt 基因棉根际土中的 Bt 蛋白含量为黄褐土>黄棕壤>红壤,
分别为常规棉根际土的 144% 、121%和 238% ;而在盛花期为黄棕壤>黄褐土>红壤,分别为常
规棉根际土的 156% 、116%和 197% .无论种植转 Bt基因棉还是常规棉,供试土壤的根际和非
根际土中 Bt蛋白含量都随棉花生育期的推进先增加后减少,在盛花期达最大值.整个生育期
内,转 Bt基因棉根际土中的 Bt蛋白含量大于其非根际土;种植转 Bt基因棉土壤中 Bt蛋白含
量高于常规棉,说明转 Bt基因棉花的 Bt蛋白可释放到根际土中.
关键词摇 Bt棉花摇 Bt蛋白摇 酶联免疫法(ELISA) 摇 根际土摇 非根际土
文章编号摇 1001-9332(2011)06-1493-06摇 中图分类号摇 Q948; S154. 1; X172摇 文献标识码摇 A
Distribution of Bt protein in transgenic cotton soils. FU Qing鄄ling1, CHEN Su鄄wan1, HU Hong鄄
qing1, LI Zhen1, HAN Xiao鄄fang1, WANG Pu1,2 ( 1College of Resource and Environment, Hua鄄
zhong Agricultural University, Wuhan 430070, China; 2Wuhan Botanical Garden Scientific Research
Institute, Wuhan 430081, China) . 鄄Chin. J. Appl. Ecol. ,2011,22(6): 1493-1498.
Abstract: A pot experiment with red soil, yellow brown soil, and yellow cinnamon soil was conduc鄄
ted to detect the Bt protein content in rhizosphere and non鄄rhizosphere soils at different growth sta鄄
ges of transgenic Bt cotton and common cotton by using enzyme linked immunosorbent assay
(ELISA). With the planting of transgenic Bt cotton, the Bt protein content in rhizosphere soil was
significantly higher than that in non鄄rhizosphere soil; while in common cotton soils, there was no
significant difference in the Bt protein content between rhizosphere soil and non鄄rhizosphere soil. At
bud stage of transgenic Bt cotton, the Bt protein content in rhizosphere soil was in the order of
yellow cinnamon soil > yellow brown soil > red soil, being 144% , 121% , and 238% of that in
common cotton rhizosphere soil; at florescence stage of transgenic Bt cotton, the Bt protein content
in rhizosphere soil was in the order of yellow brown soil > yellow cinnamon soil > red soil, being
156% , 116% , and 197% of that in common cotton rhizosphere soil, respectively. Regardless of
planting Bt cotton or common cotton, the Bt protein content in rhizosphere and non鄄rhizosphere soils
had an initial increase with the growth of cotton, peaked at florescence stage, and then decreased.
Throughout the whole cotton growth period, the Bt protein content in transgenic Bt cotton rhizo鄄
sphere soil was higher than that in Bt cotton non鄄rhizosphere soil, and also, higher than that in
common cotton rhizosphere soil, indicating that transgenic Bt cotton could release its Bt protein to
rhizosphere soil.
Key words: Bt cotton; Bt protein; ELISA; rhizosphere soil; non鄄rhizophere soil.
*国家自然科学基金项目(40671087 和 41001140)资助.
**通讯作者. E鄄mail: hqhu@ mail. hzau. edu. cn
2010鄄11鄄30 收稿,2011鄄03鄄18 接受.
摇 摇 苏云金芽孢杆菌 (Bacillus thuringiensis)简称
Bt,是土壤中广泛存在的一种革兰氏阳性菌,在其芽
孢形成过程中产生杀虫晶体蛋白,即 Bt 蛋白[1] . Bt
蛋白分为 琢鄄外毒素、茁鄄外毒素、啄鄄内毒素和虱因子,
目前被广泛应用于转基因抗虫育种实践的主要是
啄鄄内毒素.截至 2009 年底,全球种植转基因作物的
面积超过了 1郾 3 亿 hm2,其中转基因棉花占全球棉
应 用 生 态 学 报摇 2011 年 6 月摇 第 22 卷摇 第 6 期摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇
Chinese Journal of Applied Ecology, Jun. 2011,22(6): 1493-1498
花种植面积的近 1 / 2,我国种植转 Bt 基因棉的面积
占棉花种植总面积(540 万 hm2)的 68% [2] .
转基因棉花的种植产生了显著的经济和社会效
益[1],但其引发的环境安全问题也逐渐成为争论的
焦点. Bt蛋白在不同作物组织和生育期的表达具有
一定的时空效应[3-7],转 Bt 棉花叶片和茎秆的毒素
表达量显著高于根系[8] .但转 Bt作物可通过根系分
泌物源源不断地向根际土壤释放外源基因及其表达
产物[9] .沈法富等[10]研究表明,转 Bt基因抗虫棉根
际微生物区系与常规棉花有差异,且各生育期影响
效果不同.芮玉奎[11]通过酶联免疫法(ELISA)研究
发现,转 Bt 抗虫棉根际土壤 Bt 蛋白含量显著高于
常规棉,特别是从苗期到盛花期抗虫棉根际土壤 Bt
蛋白含量比常规棉高 200 ~ 300 ng·g-1 . Bt 蛋白进
入土壤后能快速与土壤活性颗粒结合抵抗微生物的
分解,从而长期保持杀虫活性[12-13] . Bt 蛋白在土壤
中的环境化学行为因土壤类型而异,目前有关种植
转 Bt作物后不同土壤中 Bt蛋白分布状况的研究尚
未见报道.为此,本文以华中地区广泛种植转 Bt 棉
花的 3 种土壤(黄褐土、黄棕壤和红壤)为材料,通
过盆栽试验,采用 ELISA测定种植转 Bt棉和常规棉
后根际及非根际土壤中 Bt蛋白的含量,并分析其在
不同生育期的变化特征,旨在为转 Bt基因棉种植后
的根际环境变化和土壤环境安全评价提供借鉴.
1摇 材料与方法
1郾 1摇 试验材料与试验设计
盆栽试验在华中农业大学温室大棚中进行.供
试土壤包括红壤、黄棕壤和黄褐土 3 种.红壤采自湖
北咸宁温泉林业生态园,母质为 Q2 沉积物,现种茶
树;黄棕壤采自孝感新铺镇远光村,母质为 Q3 沉积
物,前作为棉花;黄褐土采自枣阳城关西部苗圃基
地,母质也为 Q3 沉积物,前作为红薯. 3 种土壤均采
自表层 0 ~ 20 cm,采后经风干过 2 mm 筛,装袋备
用.土壤基本性质见表 1.
摇 摇 转 Bt 棉品种为科抗 312,常规棉品种为华农棉
1 号,种子由华中农业大学植物科技学院提供,每品
种各土壤类型均 4 次重复.塑料盆容积为 椎 45 cm伊
15 cm,每盆装土 12郾 5 kg. 化肥做底肥施入,用量为
尿素 0郾 312 g·kg-1,磷酸二氢钾 0郾 242 g·kg-1,与
土混匀.将棉花种子浸种催芽后于 2007 年 5 月 1 日
播种,覆盖薄膜至出苗,每钵定苗 6 株. 定时定量浇
水以保持土壤含水量为田间持水量,其他栽培管理
按常规进行.
分别于初蕾期 (7 月 6 日)、盛蕾期 (7 月 15
日)、盛花期(7 月 22 日)、成铃期(7 月 30 日)和吐
絮期(8 月 7 日)采集根际和非根际土壤样品供测
定.采集时在每盆中选取长势一致的棉株,轻轻挖去
2 cm表层土,再挖出全部根系,抖落土壤,取附着于
根系上的土壤即为根际土,收集其余土壤为非根际
土.土样采集后装于密封袋中,于-70 益超低温冰箱
保存.
1郾 2摇 土壤 Bt蛋白的测定
1郾 2郾 1 试剂配制 摇 1)样品提取液:2郾 66 g Na2CO3,
2郾 922 g NaCl,0郾 5 g PVP,1 g VC,加入 500 mL蒸馏
水. 2)洗涤液:4郾 0 g NaCl,0郾 1 g KH2PO4,1郾 48 g
Na2HPO4·12H2O,0郾 5 mL Tween鄄20,加入 500 mL
蒸馏水. 3)抗体稀释液:4郾 0 g NaCl,0郾 1 g KH2PO4,
1郾 48 g Na2HPO4 ·12H2O,0郾 5 g 白明胶,0郾 5 mL
Tween鄄20,加入 500 mL 蒸馏水. 4 )底物缓冲液:
2郾 55 g C6H8O7,9郾 215 g Na2HPO4·12H2O,0郾 5 mL
Tween鄄20,加入 500 mL蒸馏水. 5)底物溶液:0郾 01 g
邻苯二胺,4 mL 底物缓冲液,加入 2 滋L 30% H2O2
(现配现用). 6)终止液:2 mol·L-1 H2SO4 .
1郾 2郾 2 测定步骤摇 取土样 1 g,加入 1 mL 样品提取
液,充分摇匀后于 4 益冰箱放置过夜,隔天取出,在
10000 r· min-1离心 20 min,取上清液待测.
测定过程参照王保民等[14]的方法.在酶标板孔
表 1摇 供试土壤基本性质
Table 1摇 Basic properties of tested soils
土壤类型
Soil type
pH 有机质
Organic
matter
(g·kg-1)
阳离子
交换量
CEC
(cmol·
kg-1)
全氮
Total N
(g·kg-1)
全磷
Total P
(g·kg-1)
碱解氮
Alkali鄄
hydrolyzable
N (mg·
kg-1)
速效磷
Available
P
(mg·
kg-1)
速效钾
Available
K
(mg·kg-1)
Bt蛋白
Bt protein
(ng·g-1)
质地(美国制)
Texture
(American
system)
红壤
Red soil
4郾 50 11郾 1 14郾 6 1郾 17 0郾 196 97郾 9 1郾 91 103郾 9 0郾 108 砂粘土
Sandy clay
黄棕壤
Yellow brown soil
5郾 70 18郾 5 17郾 8 2郾 07 0郾 446 92郾 7 9郾 54 124郾 6 0郾 646 砂壤
Sandy loam
黄褐土
Yellow cinnamon soil
6郾 16 18郾 6 26郾 7 2郾 22 0郾 547 96郾 2 19郾 80 131郾 8 0郾 398 砂粘壤
Sandy clay loam
4941 应摇 用摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 22 卷
中加入 Bt蛋白标准和待测样品(每孔 100 滋L),3 次
平行.将酶标板放入湿盒中,37 益包被 3 h;取出甩
干,加入洗涤液,轻敲酶标板 30 s,甩掉洗涤液并吸
干,重复洗涤 4 次;加入用抗体稀释液 1 颐 4000 稀释
的抗体(每孔 100 滋L),湿盒中 37 益温育 30 min;洗
板同上;加入用抗体稀释液 1 颐 2000 稀释的酶标二
抗(每孔 100 滋L),湿盒中 37 益温育 30 min;洗板同
上;加入现配的底物溶液(每孔 100 滋L),湿盒中
37 益温育 15 min;加入 2 mol·L-1 H2SO4 终止反应
(每孔 50 滋L);酶标仪测定样品的 OD490值.
1郾 3摇 数据处理
本文采有 SAS 软件对不同处理间的数据进行
方差分析,并用最小显著差异法(LSD)进行多重比
较.图中数据为平均值依标准差.
2摇 结果与分析
2郾 1摇 不同类型土壤中棉花根际土的 Bt蛋白含量
2郾 1郾 1 初蕾期根际土 Bt 蛋白含量 摇 由图 1A 可知,
转 Bt棉花初蕾期(7 月 6 日)根际土中,黄褐土的 Bt
蛋白含量最高,达到 1郾 83 ng·g-1,黄棕壤次之,红壤
最小,为 1郾 58 ng·g-1,三者间差异不显著.种植常规
棉花的根际土中,黄棕壤的 Bt 蛋白含量最高,为
1郾 49 ng·g-1,黄褐土次之,为 1郾 28 ng·g-1,红壤仍最
低,为 0郾 67 ng·g-1,黄棕壤和黄褐土 Bt 蛋白含量分
别是红壤的 2郾 23倍和 1郾 92倍,三者间差异显著.
摇 摇 初蕾期种植转 Bt 基因棉花后 3 种类型土壤根
际土中 Bt蛋白含量均大于常规棉,且差异显著. 黄
褐土、黄棕壤和红壤根际土中 Bt蛋白含量分别为常
规棉的 1郾 44、1郾 21 和 2郾 38 倍. 表明种植转 Bt 基因
棉花可使更多的 Bt蛋白进入根际土壤中. 3 种类型
土壤中,由于红壤有机质含量低,酸性强,较不适合
棉花生长,因此种植两种棉花后,根际土的 Bt 蛋白
含量均最低.
2郾 1郾 2 盛花期根际土 Bt 蛋白含量 摇 由图 1B 可知,
盛花期(7 月 22 日)转 Bt 棉花根际土中 Bt 蛋白含
量以黄棕壤最高,达 2郾 38 ng·g-1,黄褐土次之,红
壤最小,为 1郾 08 ng·g-1,三者间差异显著.而种植常
规棉后,以黄棕壤根际土的 Bt 蛋白含量最大,为
1郾 53 ng·g-1,黄褐土次之,红壤最小(0郾 49 ng·g-1);
其中黄棕壤和黄褐土之间无显著差异,但都与红壤有
显著差异.与初蕾期相似,3 种土壤上转 Bt基因棉花
根际土的 Bt蛋白含量都高于常规棉花,其中黄褐土
没有显著差异,其余两种土壤有显著差异.
图 1摇 棉花初蕾期(A)和盛花期(B)根际土中 Bt蛋白含量
Fig. 1摇 Contents of Bt protein in cotton rhizosphere soil at bud
(A) and flowering (B) stages.
CK: 常规棉 Common cotton; T: 转 Bt棉 Transgenic Bt cotton. 玉: 黄
褐土 Yellow cinnamon soil; 域: 黄棕壤 Yellow brown soil; 芋: 红壤
Red soil. 下同 The same below. 不同小写字母表示不同土壤类型间
差异显著(P<0郾 05) Different small letters meant significant difference
among different soil types at 0郾 05 level.
2郾 2摇 不同生育期棉花根际土的 Bt蛋白含量
2郾 2郾 1 黄褐土根际土的 Bt 蛋白含量摇 从图 2 可知,
黄褐土上两种棉花的根际土 Bt 蛋白含量都随生长
期延长先增加后减少. 转 Bt 基因棉花根际土 Bt 蛋
白含量在初蕾期为 1郾 83 ng·g-1,盛蕾期增加到
3郾 67 ng·g-1,而后下降,在吐絮期(8 月 7 日)只有
0郾 79 ng·g-1,仅为盛蕾期的 22% . 常规棉初蕾期
根际土的 Bt 蛋白含量为 1郾 28 ng·g-1,盛蕾期增至
2郾 56 ng·g-1, 而 后 逐 渐 减 小, 吐 絮 期 降 低 至
0郾 64 ng·g-1 .在整个生育期内,转 Bt 基因棉花根际
土 Bt蛋白含量一直高于常规棉花.
2郾 2郾 2 黄棕壤根际土的 Bt 蛋白含量 摇 黄棕壤转 Bt
基因棉初蕾期根际土 Bt 蛋白含量为 1郾 81 ng·g-1,
盛蕾期达到最大值,为 3郾 61 ng·g-1,而后一直下降,
在吐絮期仅有 0郾 79 ng·g-1 .常规棉花根际土初蕾期
Bt蛋白含量为 1郾 49 ng·g-1,盛蕾期达 2郾 97 ng·g-1,
而后逐渐减小,在吐絮期仅 0郾 72 ng·g-1 .整个试验期
内,转 Bt基因棉花根际土的 Bt 蛋白含量一直高于常
规棉花根际土(图 2).
2郾 2郾 3 红壤根际土的Bt蛋白含量 摇 由图2可知,红
59416 期摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 付庆灵等: 种植转 Bt基因棉土壤中 Bt蛋白的分布摇 摇 摇 摇 摇 摇
图 2摇 棉花不同生长期根际土中 Bt蛋白含量的变化
Fig. 2摇 Changes of content of Bt protein in cotton rhizosphere soil at different growth stages.
Bu: 初蕾期 Bud stage; Sq: 盛蕾期 Squaring stage; Fl: 盛花期 Flowering stage; Bo: 成铃期 Boll stage; Bop: 吐絮期 Boll鄄opening stage. 下同 The
same below.
壤转 Bt基因棉花和常规棉花都在生长初期 Bt 含量
呈增加趋势,盛蕾期到盛花期急剧下降,至吐絮期缓
慢降低.另外,在整个试验期内,种植转 Bt基因棉花
根际土的 Bt蛋白含量均高于常规棉花根际土.
综上,黄棕壤、黄褐土和红壤根际土的 Bt 蛋白
含量在整个生育期内都随生育期延长先增加后减
小,在盛蕾期达到最大,且转 Bt 基因棉根际土的 Bt
蛋白含量均高于常规棉根际土.
2郾 3摇 转 Bt 基因棉花不同生育期非根际土的 Bt 蛋
白含量
由图 3 可知,3 种土壤种植转 Bt 基因棉花后非
根际土的 Bt蛋白含量随生育期的变化趋势与根际
土一致,在盛蕾期达到最大值,随后一直减小,到吐
絮期达到最小值.黄褐土转 Bt基因棉花盛蕾期根际
土和非根际土的 Bt蛋白含量分别为 3郾 67 ng·g-1和
2郾 29 ng·g-1,相差 1郾 38 ng·g-1,而在成铃期时两
者相差最小,仅 0郾 30 ng·g-1 . 在整个试验期内,黄
褐土种植转 Bt基因棉的根际土 Bt蛋白含量一直大
于非根际土. 在整个生育期内,黄棕壤和红壤转Bt
图 3摇 转 Bt基因棉花非根际土 Bt蛋白含量的变化
Fig. 3摇 Changes of content of Bt protein in non鄄rhizosphere soil
of transgenic Bt cotton.
基因棉根际土的 Bt蛋白含量也都高于非根际土.与
黄褐土不同的是,黄棕壤根际土与非根际土的 Bt蛋
白含量差值在盛花期达最大值,为 1郾 23 ng·g-1,到
吐絮期达最小值,为 0郾 13 ng·g-1;而红壤根际土与
非根际土的 Bt蛋白含量差值到盛蕾期达最大,随后
一直减小,到吐絮期达最小.
3摇 讨摇 摇 论
随着转基因作物的大面积种植,其生态安全性
也逐渐引起社会关注.大量研究[8-9,15]证实,转 Bt基
因植物可通过植株残留和根系分泌释放 Bt 蛋白进
入土壤. Saxena等[15]报道,转 Bt 玉米能通过根部渗
出物释放 Bt蛋白进入周围土壤,而且保持了很强的
杀虫活性.转 Bt基因水稻也能通过根系分泌物向土
壤中导入 Bt蛋白[8] .本试验结果显示,种植 Bt棉和
常规棉的 3 种土壤均可检测到 Bt蛋白的存在,但 Bt
棉根际土中 Bt蛋白含量显著高于常规棉,且根际土
中 Bt蛋白含量显著高于其非根际土,这一结果证实
了转 Bt棉花能通过根系分泌的方式向土壤中释放
Bt蛋白. 从整个生育期来看,3 种土壤中 Bt 蛋白含
量都有相似的规律. 种植转 Bt 棉花后,根际土和非
根际土中 Bt蛋白都随生育期推进先增加后减少,这
与孙彩霞等[8] “Bt 蛋白随着棉株的生长发育、成熟
衰老而呈下降趋势冶的研究结论一致. 说明土壤中
Bt蛋白含量与植株的生长发育有关,营养生长旺盛
时可表达更多的 Bt 蛋白,而转为生殖生长时 Bt 蛋
白的分泌量逐渐减少. 张小四等[16]研究也表明,蕾
期棉花植株的 Bt蛋白含量随时间延长而升高,进入
盛蕾期后,其表达量降低. 本研究结果显示,常规棉
根际和非根际土中均存在 Bt蛋白,但两者之间含量
差异不显著,表明土壤环境中本来就存在 Bt 蛋白,
6941 应摇 用摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 22 卷
但 Bt 棉的种植可显著增加土壤中 Bt 蛋白的含量.
种植常规棉和转 Bt棉的土壤中 Bt蛋白含量随生育
期推移具有相同的变化趋势,表明种植转 Bt棉土壤
中 Bt蛋白含量的变化不完全取决于转 Bt棉花根系
Bt蛋白的表达量,还与不同生育期作物的生理生化
状况有关,这尚待进一步研究.
芮玉奎[11]利用相同的方法分析了种植常规棉
(石远 321)和转基因抗虫棉(99B和 SGK321)根际土
Bt蛋白含量,结果表明,从苗期到盛花期抗虫棉根际
土壤 Bt蛋白含量比常规棉高 200 ~300 ng·g-1 .其根
际土中 Bt蛋白含量远高于本试验处理,这可能与供
试转 Bt 棉花品种及环境条件不同有关. 陈德华
等[17]研究表明,转 Bt 棉品种不同,其 Bt 蛋白含量
不同;王家宝等[18]也指出,环境条件(干旱或渍涝、
肥力状况等)也会影响 Bt 蛋白的表达,这就要求对
转 Bt作物的安全评价要遵循“个案原则冶.此外,土
壤中 Bt蛋白与土壤颗粒结合很紧密,难于被提取,
目前常用提取方法的提取率不尽相同. Palm 等[19]
报道,Bt蛋白在不同土壤中的提取率可达 61% ~
70% ,王建武等[20] 研究认为这一范围为 68% ~
79% ,Wang等[21]发现不同土壤间和不同提取剂对
Bt蛋白的提取率存在显著差异. 因此,有必要开展
高效率提取剂的研究.
在以往的研究中,关于不同土壤类型 Bt蛋白的
比较很少见.本试验选择了黄褐土、黄棕壤和红壤 3
种类型土壤进行比较,结果表明,蕾期 Bt 棉根际土
的 Bt蛋白含量为黄褐土>黄棕壤>红壤,而在盛花
期为黄棕壤>黄褐土>红壤,而且都达到显著差异,
在吐絮期为黄褐土、黄棕壤>红壤. 在红壤上,棉花
蕾期、花铃期和吐絮期 Bt 蛋白含量都表现为最少,
这主要是由于棉花在红壤上的生长状况最差,其根
系表达量少,这也从一个侧面揭示了 Bt蛋白的分泌
与棉花的生长状况有关.大量研究显示,进入土壤中
的 Bt蛋白能与土壤活性颗粒(如蒙脱石、高岭石、腐
殖质等)快速结合,且 Bt蛋白仅与粘土颗粒结合,与
砂粒和粉粒结合较少[12-13,22] . Bt 蛋白在土壤中的环
境化学行为受土壤颗粒的矿物组成、比表面、阳离子
交换量、有机质含量等因素的综合影响. Fu 等[23-24]
研究表明,Bt蛋白在不同土壤颗粒上的最大吸附量
为黄褐土>红壤>黄棕壤,且吸附量与土壤环境中低
分子量有机酸和离子配体等有关. 土壤颗粒外表面
积和表面电荷密度的增加会增加其对 Bt 蛋白的吸
附[25] .但关于有机质对 Bt 蛋白的影响研究结论并
不一致,有研究者认为有机质能增加粘土对 Bt蛋白
的吸附[26-27],但 Pagel鄄Wieder 等[28]则指出,土壤有
机质的增加可能减少对 Bt 蛋白的吸附. 总之,土壤
类型不同,其物质组成和环境条件不同,进入土壤的
Bt蛋白在其中的吸附、解吸以及降解行为存在差
异.因此,有必要进一步开展不同类型土壤上种植转
Bt作物的生态风险评价研究,以期为其环境安全评
价提供依据.
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作者简介摇 付庆灵,女,1980 年生,博士.主要从事 Bt植物生
态安全研究,发表论文 20 余篇. E鄄mail: Fuqingling@ mail.
hzau. edu. cn
责任编辑摇 张凤丽
8941 应摇 用摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 22 卷