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12β-羟基藜芦酰棋盘花胺对小鼠小脑和大脑皮层组织DNA损伤的影响



全 文 :中医骨伤科杂志,2004,12(4):16-20.
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12β-羟基藜芦酰棋盘花胺对小鼠小脑和大脑皮层组织 DNA损伤的影响
郭敬功1, 李 林2, 刘迎滑3, 王江英2, 李沙沙2, 沈 姗2, 魏晓利3, 丛 悦2* ,
王天晓3*
(1. 河南大学生命科学学院,河南 开封 475004;2. 河南大学药学院药物研究所,河南 开封 475004;
3. 河南大学药学院中药研究所,河南 开封 475004)
收稿日期:2016-01-21
基金项目:国家自然基金项目 (21102035);河南省科技厅基础研究项目 (142300410128) ;河南省教育厅自然科学项目 (14A180030)
作者简介:郭敬功 (1982—),男,博士生,从事生物学研究。Tel:(0371)22857224,E-mail:jgguo@ henu. edu. cn
* 通信作者:丛 悦 (1978—),女,副教授,从事中药药效物质基础研究。Tel:(0371)23880680,E-mail:congyue1027@ 163. com
王天晓 (1975—),女,教授,从事中药药理研究。Tel:(0371)23880680,E-mail:wtx1975@ 126. com
摘要:目的 探讨 12β-羟基藜芦酰棋盘花胺 (12β-hydroxylveratroylzygadenine,Vog)引起小鼠小脑和大脑皮层组织
DNA损伤的影响。方法 取 132 只雄性昆明种小鼠,随机分为空白组,Vog 高 (2. 50 μmol /kg)、低剂量组
(0. 25 μmol /kg),给药 7 d。采用彗星实验检测小脑和大脑皮层 DNA损伤及修复情况;酶联免疫法检测 8-羟基脱氧鸟
苷 (8-OHdG)、醌氧化还原酶 (NQO1)含有量;比色法测定小脑和大脑皮层活性氧自由基 (ROS)、丙二醛
(MDA)、一氧化氮 (NO)含有量和总超氧化物歧化酶 (T-SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶 (GSH-Px)活力;RT-PCR检
测小脑和大脑皮层 8-羟基鸟嘌呤 DNA糖苷酶 (Ogg1)和血红素加氧酶-1 (Ho-1)mRNA 表达。结果 Vog 明显提高
小鼠小脑和大脑皮层 MDA、ROS、NO以及尿液中 8-OHdG含有量,降低 GSH-Px 和 T-SOD 活力,以及 NQO1 含有量,
上调 Ogg1 表达。停药后第 3 天 DNA修复接近正常水平,8-OHdG 含有量接近正常水平。结论 Vog 可能引起氧化应
激,导致 DNA损伤。Vog同时上调 Ogg1 表达,为抗氧化防御状态和 DNA修复系统的代偿性调节。
关键词:12β-羟基藜芦酰棋盘花胺;DNA损伤;氧化应激;DNA修复
中图分类号:R966 文献标志码:A 文章编号:1001-1528(2016)08-1668-05
doi:10. 3969 / j. issn. 1001-1528. 2016. 08. 002
DNA damage of 12β-hydroxylveratroylzygadenine to cerebellum and cerebral
cortex of mice
GUO Jing-gong1, LI Lin2, LIU Ying-hua3, WANG Jiang-ying2, LI Sha-sha2, SHEN Shan2,
WEI Xiao-li3, CONG Yue2* , WANG Tian-xiao3*
(1. School of Life Science,Henan University,Kaifeng 475004,China;2. Institute of Pharmacy,Pharmaceutical College,Henan University,Kaifeng
475004,China;3. Institute of Chinese Materia Medica,Pharmaceutical College,Henan University,Kaifeng 475004,China)
ABSTRACT:AIM To investigate DNA damage of 12β-hydroxylveratroylzygadenine (Vog)to mouse cerebellum
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and cerebral cortex. METHODS One hundred and thirty-two male mice were randomly divided into the control
group,Vog high-(2. 50 μmol /kg)and Vog low-dose groups (0. 25 μmol /kg). Comet assay was used to detect
DNA damage and repair of mouse cerebellum and cerebral cortex. Their levels of 8-hydroxy- deoxyguanosine (8-
OHdG)and quinone oxidoreductase (NQO1)were determined by enzyme-linked immunosorbent assay. The col-
orimetry was applied to measuring reactive oxygen species (ROS),methane dicarboxylic aldehyde (MDA) ,nitric
oxide (NO) ,total superoxide dismutase (T-SOD)and glutathione peroxidase (GSH-Px). RT-PCR was performed
to examine the levels of 8-hydroxyl-guanine DNA glycosylase (Ogg1)and hemeoxygenase-1 (Ho-1)mRNA.
RESULTS Vog could significantly increase the levels of MDA,ROS,NO and 8-OHdG;reduce NQO1 level and
the vitality of GSH-Px and T-SOD;and increase Ogg1 mRNA expressions in mouse cerebellum and cerebral cortex.
Meanwhile,DNA damage was repaired and the content of 8-OHdG was restored close to the normal level on the
third day after Vog withdrawn. CONCLUSION Vog may cause oxidative stress and consequently lead to DNA
damage;at the same time it also raises the expression of Ogg1 mRNA as a compensatory adjustment to the antioxi-
dant defense status and DNA repair systems.
KEY WORDS:12β-hydroxylveratroylzygadenine;DNA damage;oxidative stress;DNA repair
神经细胞 DNA 损伤是神经毒性研究领域的一
个重要方向。神经细胞 DNA损伤因素有自身因素、
物理因素和化学因素,均导致体内 DNA结构改变。
氧化应激是组织细胞 DNA损伤的重要因素之一[1]。
当 DNA损伤发生时,细胞通过一系列应答反应,
如细胞周期停滞、DNA 修复、细胞凋亡等,以维
持基因组的稳定性。然而脑组织 DNA修复能力低,
所以 DNA修复系统缺陷导致 DNA损伤的积累,最
终导致神经变性即神经毒性[2-5]。藜芦为百合科藜
芦 (Veratrum nigrum L.)植物,其根和根茎入药,
味苦,辛,性寒,大毒,具有催吐、袪风痰、杀虫
疗疮的功效,治疗中风、癫痫、疥癣秃疮、喉痹
症、痰涎涌盛、高血压等疾病[6]。前期研究证实
藜芦生物碱是藜芦引起神经 DNA 损伤的主要毒性
成分[7]。12β-羟基藜芦酰棋盘花胺 (12β-hydroxyl-
veratroylzygadenine,Vog)是从藜芦中提取分离的
一种甾体生物碱类成分[8]。研究表明 Vog 能显著
引起小鼠小脑和大脑皮层的 DNA 损伤,并呈剂量
依赖性[9]。但目前关于 Vog 对小鼠小脑和大脑皮
层的 DNA损伤与修复效应的文献报道较少。本研
究以雄性昆明种小鼠为研究对象,从氧化应激角
度,观察 Vog 对小鼠小脑和大脑皮层 DNA 损伤的
影响,以 Ogg1 和 Ho-1 的 mRNA 表达水平来评价
DNA修复活性和氧化应激防御状态。将有助于揭
示其神经毒性的作用机理,对藜芦的减毒和毒效关
系研究具有重要意义。
1 材料与方法
1. 1 实验动物 健康雄性昆明种小鼠及普通饲料
均购于郑州大学实验动物中心,小鼠体质量 22 ~
25 g,SPF级,许可证号:SCXK (豫)2010-0002。
1. 2 药物与试剂 Vog的纯度 ≥ 98%,由本实验
室制备[8],分子式为 C36H51NO11,相对分子质量为
673. 346 2。8-羟基脱氧鸟苷 (8-OHdG)检测试剂
盒购于上海西唐生物科技有限公司。丙二醛
(MDA)、谷胱甘肽过氧化物酶 (GSH-Px)、总超
氧化物歧化酶 (T-SOD)、活性氧族 (ROS)、一氧
化氮 (NO)及醌氧化还原酶 (NQO1)检测试剂
盒均购于南京建成生物工程研究所。8-羟基鸟嘌呤
DNA糖苷酶 (Ogg1)和血红素加氧酶-1 (Ho-1)
RT-PCR试剂盒购于北京全式金生物公司。
1. 3 分组及给药 取雄性昆明种小鼠 132 只,普
通饲料适应性喂养 1 周后,随机分为空白组 (52
只)、Vog低剂量组 (0. 25 μmol /kg,28 只)、Vog
高剂量组 (2. 50 μmol /kg,52 只)。每大组根据测
试生化指标数,空白组分为 13 组,低剂量组分为
7 组,高剂量组分为 13 组,每组 4 只。Vog 用
0. 05%二甲基亚砜 (DMSO)双蒸水溶解,灌胃给
药,连续给药 7 d;空白组灌胃给予等体积 0. 05%
DMSO 双蒸水。所有小鼠实验期间自由进食、
饮水。
1. 4 小鼠小脑和大脑皮层 DNA损伤修复 分别在
末次给药后 1 h、停药第 1 天、停药第 3 天、停药
第 7 天,断头取小鼠小脑和大脑皮层。采用彗星实
验,检测 DNA损伤修复情况,具体实验方法参照
文献[7,10]。
1. 5 小鼠尿液中 8-OHdG 含有量的检测 小鼠放
入代谢笼,分别在末次给药后 1 h、停药第 1 天、
停药第 3 天、停药第 7 天,收集 16 h 尿液 (空腹
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状态),3 000 r /min离心 20 min。取上清液,按照
试剂盒说明进行处理,以 450 nm波长测其吸光度,
计算其 8-OHdG的含有量。
1. 6 小鼠小脑及大脑皮层标本采集 于末次给药
后 1 h,断头取小脑和大脑皮层组织,按质
量 (g) ∶ 体积 (mL) = 1 ∶ 9 的比例加入生理盐
水,冰水浴条件下匀浆,3 000 r /min 离心 15 min,
取上清液,严格按照试剂盒说明,测定小脑和大脑
皮层组织的 MDA、NO、ROS、NQO1、GSH-Px、T-
SOD活性等生化指标。
1. 7 小鼠小脑及大脑皮层 Ogg1 和 Ho-1 mRNA 水
平检测 于末次给药后 1 h,取小鼠大脑皮层和小
脑组织 50 ~ 100 mg 剪碎,Trizol 法提取总 RNA,
然后采用 EasyScript Two-Step RT-PCR SuperMix 法
进行逆转录和 PCR,所得产物用含终质量浓度
1 μg /mL溴乙啶的 1. 0%琼脂糖凝胶做电泳检测,
用凝胶成像分析系统检测结果,并用 GelAnalyzer
2010 分析软件分析结果。
1. 8 统计学处理 所有数据采用 SPSS 17. 0 应用
软件进行统计学分析。数据均以 x ± s 表示,采用
单因素方差分析,判断总体显著性差异,组间比较
采用 t检验方法,P < 0. 05 具有统计学差异。
2 结果
2. 1 Vog引起小鼠小脑和大脑皮层 DNA 损伤及自
身修复 如图 1 所示,Vog高剂量组显著引起小鼠
小脑和大脑皮层 DNA损伤 (P < 0. 01);高剂量组
在停药第 1 天仍可以显著引起小鼠小脑和大脑皮层
DNA损伤 (P < 0. 01),而在停药后的第 3、7 天,
Vog引起的小脑和大脑皮层 DNA 损伤不显著,即
修复接近正常水平,与空白对照组比较无差异
(P > 0. 05)。
注:与空白组比较,**P < 0. 01
图 1 Vog对小鼠小脑和大脑皮层 DNA损伤的影响 (x ±
s,n =4)
Fig. 1 Effects of Vog on brain cells DNA in cerebellum
and cerebral cortex of mice (x ± s,n =4)
2. 2 Vog对小鼠尿液中 8-OHdG含有量的影响 如
图 2A所示,与空白组比较,Vog低、高剂量组小鼠
尿液中 8-OHdG含有量显著升高 (P < 0. 01)。如图
2B所示,Vog 高剂量组在停药第 1 天,8-OHdG 含
有量仍较高,与空白组比较,有显著性差异 (P <
0. 01),而在停药第 3 天,8-OHdG 含有量接近正常
水平,与空白对照组比较无差异 (P !0. 05)。
注:与空白组比较,**P < 0. 01
图 2 Vog对小鼠尿液中 8-OHdG的影响 (x ± s,n =4)
Fig. 2 Effects of Vog on 8-OHdG concentrations in urine of mice (x ± s,n =4)
2. 3 Vog 对小鼠小脑和大脑皮层 MDA、NO、
ROS、GSH-Px、T-SOD、NQO1 生化指标的影响
与空白组比较,Vog低、高剂量组小鼠小脑和大脑
皮层的 MDA和 NO含有量显著升高,GSH-Px 活力
显著降低 (P < 0. 05,P < 0. 01)。Vog 高剂量组小
鼠小脑和大脑皮层 ROS 含有量显著升高而 T-SOD
活力显著降低 (P < 0. 05,P < 0. 01)。Vog 低、高
剂量组小鼠小脑和高剂量组大脑皮层的 NQO1 含有
量显著降低 (P < 0. 05,P < 0. 01)。见图 3。
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注:与空白组比较,* P < 0. 05,**P < 0. 01
图 3 Vog对小鼠小脑和大脑皮层 MDA、NO、ROS、GSH-Px、T-SOD、NQO1 的影响 (x ± s,n =4)
Fig. 3 Effects of Vog administration on MDA,NO,ROS,GSH-Px,T-SOD,NQO1 in cerebellum and cerebral
cortex of mice (x ± s,n =4)
2. 4 Vog对小鼠小脑和大脑皮层 Ho-1 和 Ogg1 mR-
NA表达的影响 RT-PCR 结果显示,与空白组比
较,Vog 高剂量组小鼠小脑和大脑皮层中 Ogg1
mRNA表达增加,有显著性差异 (P < 0. 05,P <
0. 01),而 Vog 高剂量组小鼠小脑和大脑皮层中
Ho-1 的 mRNA表达有增加趋势,但没有统计学差
异 (P !0. 05),见图 4。
3 讨论
氧化应激是组织细胞 DNA 损伤的重要因素之
一,中枢神经细胞是极为活跃的细胞,神经细胞膜
过多的多不饱和脂肪酸和低氧防御系统使得脑组织
易于受到氧化损伤。毒性药物主要通过引起氧化应
激反应损伤神经细胞 DNA,导致 DNA 碱基烷基
化、碱基脱落、断裂、交联。细胞具有一整套抗氧
化防御机制和 DNA 修复系统以抵制自由基的损伤
作用和处理未被清除的自由基。ROS 和 NO是脑组
织氧化应激的重要源头,并容易发生细胞膜脂质过
氧化,产生小分子 MDA,这些均可对 DNA 造成损
伤,而机体的抗氧化酶体系包括 GSH-Px、T-SOD、
NQO1 等可以清除这些自由基和过氧化物。
前期研究发现 Vog高、低剂量均引起小鼠大脑
皮层和小脑 DNA 的显著性损伤[9]。所以本实验从
氧化应激角度研究 Vog引起小鼠大脑皮层和小脑组
织 DNA损伤效应。研究结果显示,Vog 引起小鼠
大脑皮层和小脑 ROS、NO、MDA 水平显著升高,
注:与空白组比较,* P < 0. 05,**P < 0. 01
图 4 Vog对小鼠小脑和大脑皮层 Ogg1 和 Ho-1 mRNA
表达的影响 (x ± s,n =4)
Fig. 4 Ogg1 and Ho-1 expressions in mice cerebral cortex
and cerebellum after Vog administration (x ± s,
n =4)
NQO1 水平、GSH-Px、T-SOD 活力显著降低;此
外,小鼠尿液中 DNA 氧化损伤的分子标志物 8-
OHdG含有量也显著升高。由此推测,Vog 可通过
引起小鼠脑组织氧化应激而导致 DNA损伤。
此外,研究发现 Vog引起小鼠大脑皮层和小脑
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的 DNA 损伤在停药后第 3 天可以修复至接近正常
水平。8-OHdG是公认的内源性及外源因素对 DNA
氧化损伤的生物标志物,8-OHdG 导致 DNA 链碱
基配对颠换,该突变与肿瘤发生发展及某些疾病有
密切关系[11-12],在停药后第 3 天开始,8-OHdG 含
有量接近正常水平。这些结果表明脑细胞具有
DNA损伤的自动修复能力。我们同时检测了 Vog
对具有碱基切除修复能力 OGG1 及具有抗氧化防御
作用 HO-1 的影响。一般认为 OGG1 的表达主要受
氧化应激的调节,OGG1 的碱基切除修复能力是化
学致癌物质或环境中有害物质引起细胞内氧化应激
的又一生物分子标志物[13],其在体内特异识别 8-
OHdG并将其切除修复。HO-1 可通过减少促氧化
物质水平及增加抗氧化物质含有量来发挥抗氧化作
用,从而提高机体的抗氧化防御状态。HO-1 的诱
导被认为能在各种氧化应激状态下参与组织细胞的
抗氧化应激损伤,对机体起到保护作用[14]。研究
结果显示,Vog可增加小鼠大脑和小脑皮层组织的
Ogg1 和 Ho-1 的 mRNA 水平。Ho-1 上调表明脑组
织增加了对抗 Vog引起氧化应激的抗氧化能力,同
时 Ogg1 上调提示脑组织增强了 DNA 修复能力,
以上这些是脑细胞抗氧化防御状态和 DNA 修复系
统的代偿性调节。
综上,Vog可通过引起小鼠脑组织的氧化应激
而导致 DNA损伤,这种 DNA损伤可通过自身防御
系统得到部分修复,但是 Vog 对小鼠脑组织 DNA
损伤作用仍不可忽视,因为化学物质引起的 DNA
损伤及修复频率的增加,也会增加致突变和致癌的
可能性[15]。
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