免费文献传递   相关文献

SO_2胁迫对红花檵木光合速率和叶绿素荧光参数的影响



全 文 :第44卷 第10期
2016年10月
西北农林科技大学学报(自然科学版)
Journal of Northwest A&F University(Nat.Sci.Ed.)
Vol.44 No.10
Oct.2016
网络出版时间:2016-09-07 09:03 DOI:10.13207/j.cnki.jnwafu.2016.10.014
网络出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/61.1390.S.20160907.0903.028.html
SO2胁迫对红花檵木光合速率和
叶绿素荧光参数的影响
 [收稿日期] 2015-03-27
 [基金项目] 四川省农作物育种攻关项目(2011NZ0098-10)
 [作者简介] 侯利钦(1989-),女,四川阆中人,在读硕士,主要从事园林植物逆境生理研究。
 [通信作者] 周兰英(1960-),女,四川西昌人,教授,博士生导师,主要从事园林植物及林木遗传育种研究。
侯利钦,周兰英,蒲光兰,戴晓会
(四川农业大学 林学院,四川 雅安625014)
[摘 要]  【目的】了解不同质量浓度SO2 对红花檵木光合速率及叶绿素荧光参数的影响,为园林植物的栽培
与利用提供理论依据。【方法】采用人工模拟熏气法,以0(对照),2.86,5.71和14.28mg/m3 4个SO2 质量浓度对红
花檵木进行密闭熏气3d,1周后利用LI-6400光合仪和PAM-2500便携式荧光仪分别测定叶片光合参数及叶绿素荧
光参数,研究SO2 胁迫对红花檵木光合特性的影响。【结果】随着SO2 质量浓度的增加,红花檵木叶片净光合速率
(Pn)、气孔导度(Gs)、蒸腾速率(Tr)下降,胞间CO2 浓度(Ci)上升;初始荧光(Fo)增加,其中14.28mg/m3 SO2 处理
比对照显著增加23.71%;最大荧光产量(Fm)、PSⅡ的最大光化学效率(Fv/Fm)、PSⅡ潜在活性(Fv/Fo)降低,其中
14.28mg/m3 SO2 处理下Fv/Fo较对照下降51.75%。不同SO2 质量浓度下各叶绿素荧光参数的光响应结果表明,
随着光强的增加,PSⅡ实际光合量子产量Y(Ⅱ)、光化学淬灭系数qP下降,非光化学淬灭系数qN、PSⅡ光合电子传
递速率ETR上升。【结论】5.71和14.28mg/m3 SO2 处理会引发红花檵木PSⅡ反应中心比例降低,光合电子传递受
阻,PSⅡ色素吸收的光能用于光化学电子传递的份额减少,光能转化效率和潜在活性降低,进而影响植株的正常光合
作用。
[关键词] SO2 胁迫;红花檵木;光合速率;叶绿素荧光
[中图分类号] S687.201 [文献标志码] A [文章编号] 1671-9387(2016)10-0100-07
Efects of SO2stress on photosynthetic rate and chlorophyl
fluorescence parameters of Loropetalumchinensevar.rubrum
HOU Liqin,ZHOU Lanying,PU Guanglan,DAI Xiaohui
(College of Forestry,Sichuan Agricultural University,Ya’an,Sichuan625014,China)
Abstract:【Objective】This study investigated the effects of SO2stress on photosynthetic rate and
chlorophyl fluorescence parameters in leaves of Loropetalum chinense var.rubrumto improve its cultiva-
tion and utilization.【Method】The influence of SO2on L.chinense var.rubrumwas studied by fumigation
for 3din this experiment.There were four SO2treatments with concentrations of 0(CK),2.86,5.71,14.28
mg/m3,respectively.After one week,LI-6400photosynthesis system and PAM-2500portable X-ray fluo-
rescence spectrometer were used to measure leaf photosynthetic parameters and chlorophyl fluorescence
parameters of L.chinense var.rubrum.【Result】With the increase of SO2concentration,net photosynthetic
rate(Pn),stomatal conductance(Gs)and transpiration rate(Tr)decreased,while intercelular CO2(Ci)
increased.Concentration of dark fluorescence yield(Fo)also increased and its highest concentration in-
creased significantly by 23.71% compared to CK.Maximum fluorescence yield(Fm),maximum PSⅡ
quantum yield(Fv/Fm),and latent PSⅡquantum yield(Fv/Fo)decreased.The Fv/Fo in treatment of
14.28mg/m3 SO2decreased by 51.75%compared with CK.With the increase of photosynthetic active radi-
ation,PSⅡactual photosynthetic quantum yield Y(Ⅱ)and coefficient of photochemical quenching(qP)
decreased and coefficient of non-photochemical quenching(qN)and electron transport rate(ETR)in-
creased.【Conclusion】The SO2treatments with concentrations of 5.71and 14.28mg/m3 decreased PSⅡ
reaction center ratio of L.chinense var.rubrum,blocked photosynthetic electron transport,decreased the
rate of photochemistry electron transfer to total absorbed energy by PSⅡpigment,and reduced energy con-
version efficiency and potential activity,which affected normal photosynthesis.
Key words:sulfur dioxide stress;Loropetalum chinense var.rubrum;photosynthetic rate;chlorophyl
fluorescence parameters
  近年来,我国各大城市空气质量状况持续下降,
反映出我国当前最严重的问题就是环境污染。在各
种环境问题中,大气污染是亟需解决的首要问题[1]。
SO2 是大气污染物的主要成分之一,其在大气中分
布广泛、排放量大,有“大气污染的元凶”之称[2],在
一些发达的工业城市污染尤其严重,对生态系统有
明显的影响。SO2 所含的硫元素是植物生长的必需
元素,但过量的SO2 则会对植物造成胁迫。研究表
明过量的SO2 会影响植物的新陈代谢[3]、生长发
育[4]、相关基因的表达[5]等。对植物生长发育有重
要作用的光合系统对SO2 胁迫更为敏感,如过量的
SO2 会引起植物叶片净光合速率、气孔导度、蒸腾速
率等的变化,改变叶绿体类囊体膜上光系统反应中
心色素和聚光色素的组成比例[6],同时会改变PSⅠ
和PSⅡ的能量分配,妨碍光合作用的碳同化,降低
电子传递速率[7],最终导致PSⅡ反应中心部分失
活[3]。叶绿素荧光参数包含着光合作用过程的重要
信息,在探测逆境对光合作用影响方面具有独特的
作用,能够反映光合系统的“内在性”特点[8-9],被视
为研究植物光合作用与环境关系的内在探针,目前
已广泛应用于植物生态[10]、逆境生理[11]等方面。越
来越多的研究都把光合系统的变化作为判断植物响
应环境变化的重要指标。
红花檵木(Loropetalum chinense var.rubrum)
为金缕梅科(Hamamelidaceae)檵木属常绿灌木,主
要分布在长江流域及以南地区。由于其较高的观赏
价值和较强的生态适应性,被作为城市园林绿化的
重要树种,一度成为研究的热点。目前关于红花檵
木的研究主要集中在扦插繁殖、遗传多样性[12]、叶
色变化[13]、组织培养技术[14]、高温和重金属胁迫[15]
等方面,而关于SO2 胁迫下红花檵木光合系统方面
的内容少见报道。本试验选用盆栽红花檵木为试验
材料,研究其在SO2 胁迫下的光合作用参数及叶绿
素荧光参数变化,分析SO2 胁迫下红花檵木叶片光
合能力和PSⅡ光能利用与能量分配以及电子传递
效率的变化,为揭示其叶片光合机构对SO2 的生理
代谢响应机制和抗硫植物的筛选提供参考。
1 材料与方法
1.1 材 料
供试材料为3年生红花檵木,由四川省成都市
温江花卉园艺公司提供。将其种植于直径为15
cm、装有3kg土壤的黑色塑料盆中。培养盆放置于
四川农业大学熏气室中,每隔2d浇1次水,选取生
长状况一致的红花檵木苗作为本研究的试验材料。
1.2 SO2 处理方法
试验按SO2 质量浓度分为0(对照),2.86,5.71
和14.28mg/m3 4个处理,每处理3次重复,每重复
15株植株。熏香由碎木屑和硫磺粉均匀混合制成。
经SO2 测定仪(Z-1300,USA)测量,空气中平均每
支熏香燃放后释放的 SO2 质量浓度约为 0.71
mg/m3,因此各处理SO2 质量浓度分别约为每支熏
香释放SO2 质量浓度的0,4,8和20倍。
试验前1周,将试验材料置于27m3(3m×3
m×3m)的熏气室内。2014年7月1-3日每天
08:00-20:00,按照各处理设计的SO2 质量浓度,
点燃熏香进行密闭熏气处理,熏香燃放的高度离地
面0.5m,每天熏气12h结束后打开熏气室和顶棚。
1.3 指标测定
2014-07-10,从每个处理中随机选3棵植株,每
棵植株选取由顶端开始第3-4片叶,测定光合特性
指标及叶绿素荧光参数,结果取平均值。
1.3.1 光合特性指标 采用LI-6400光合仪(LI-
COR,美国)测定叶片净光合速率(Pn)、气孔导度
(Gs)、胞间CO2 浓度(Ci)和蒸腾速率(Tr)。
1.3.2 叶绿素荧光参数 采用PAM-2500(Walz,
101第10期 侯利钦,等:SO2 胁迫对红花檵木光合速率和叶绿素荧光参数的影响
德国)测定叶绿素荧光参数。荧光参数光响应曲线
根据 White等[16]的方法进行测绘。测定前,叶片暗
适应20min,然后开启检测光(0.15μmol/(m
2·
s))得到叶绿素荧光参数初始荧光(Fo),再由饱和脉
冲光(4 000μmol/(m
2·s),0.8s)测得最大荧光
Fm。计算出可变荧光Fv(Fv=Fm-Fo)、PSⅡ最
大光化学效率Fv/Fm和PSⅡ潜在光化学效率Fv/
Fo。利用PAM-2500测定叶片的快速光响应曲线,
将叶片暴露于连续光强(PAR)梯度(0,10,20,50,
100,150,200,250,350,500,650,800,1 250和1 500
μmol/(m
2·s))下,测定PSⅡ的实际光合量子产量
[Y(Ⅱ)]、光化学淬灭系数(qP)、非光化学淬灭系数
(qN)、表观电子传递速率(ETR)等参数值,上述参
数均由选定模式下的系统自动生成。
1.4 数据分析
用Excel 2013进行数据整理、计算、作图,使用
SPSS 20.0软件对不同质量浓度SO2 胁迫下红花檵
木叶片光合特性指标进行相关性分析,对叶绿素荧
光参数进行单因素方差分析,并采用LSD法进行多
重比较分析。
2 结果与分析
2.1 不同质量浓度SO2 对红花檵木叶片光合速率
的影响
由表1可知,不同质量浓度SO2 对红花檵木叶
片光合参数的影响各不相同。随着SO2 质量浓度
的增加,叶片净光合速率(Pn)、气孔导度(Gs)、蒸腾
速率(Tr)的变化均表现为先增加后降低。低质量
浓度SO2 处理(2.86mg/m3)下各指标值与对照无
显著差异;高质量浓度SO2 处理(14.28mg/m3)下
Pn、Gs、Tr分别比对照显著降低55.97%,41.07%
和48.49%,Ci比对照增加6.51%。相关性分析显
示,Pn与Gs(r=0.968*)和Tr(r=0.967*)均呈显
著的正相关关系,而与 Ci呈负相关关系 (r=
-0.555)。
表1 不同质量浓度SO2 处理下红花檵木叶片光合特性的比较
Table 1 Effects of different SO2mass concentrations on photosynthetic characteristics of Loropetalum chinense var.rubrum
SO2质量浓度/(mg·m-3)
SO2mass concentration
Pn/(μmol·m-2·s-1) Gs/(mmol·m-2·s-1) Ci/(μmol·mol-1) Tr/(mmol·m-2·s-1)
0  4.263±0.075a 0.056±0.000 1a 232.40±2.154b 2.091±0.003a
2.86  4.274±0.045a 0.058±0.000 1a 235.70±1.187b 2.092±0.007a
5.71  3.238±0.107b 0.044±0.000 2b 233.90±4.323b 1.767±0.008b
14.28  1.877±0.064c 0.033±0.000 2c 247.54±2.871a 1.077±0.006c
  注:同列数据后标不同英文字母者表示差异显著(P<0.05)。表2同。
Note:Different letters in each column show significant difference(P<0.05).The same for Table 2.
2.2 SO2 胁迫对红花檵木叶片Fo、Fm、Fv/Fm 和
Fv/Fo的影响
初始荧光Fo与PSⅡ反应中心活性有关[13]。
由表2可知,充分暗适应下,与对照相比,红花檵木
叶片初始荧光Fo除2.86mg/m3 SO2 处理下降外,
5.71和14.28mg/m3 SO2 处理的红花檵木Fo均显
著(P<0.05)增加,其中14.28mg/m3 SO2 处理的
Fo较对照增加了23.71%,最为显著。
表2 不同质量浓度SO2 处理下红花檵木叶片叶绿素荧光参数的比较
Table 2 Effects of different SO2mass concentrations on chlorophyl fluorescence parameters of
Loropetalum chinense var.rubrum
SO2质量浓度/(mg·m-3)
SO2mass concentration
Fo  Fm  Fv/Fm  Fv/Fo
0  0.367±0.005c 1.963±0.037a 0.813±0.001a 4.344±0.033a
2.86  0.357±0.008c 1.808±0.073b 0.802±0.004a  4.058±0.091b
5.71  0.417±0.010b 1.429±0.048c 0.708±0.017b  2.432±0.198c
14.28  0.454±0.012a 1.404±0.030c 0.677±0.002c 2.096±0.015d
  最大荧光产量(Fm)是PSⅡ反应中心处于完全
关闭时的荧光产量,可以反映通过PSⅡ的电子传递
情况。由表2可知,随着SO2 质量浓度的增加,各
处理 Fm 值均较对照显著降低,5.71mg/m3 与
14.28mg/m3 SO2 处理之间无显著性差异,14.28
mg/m3 SO2 处 理 的 Fm 较 对 照 显 著 降 低 了
28.48%。
荧光参数最大光化学效率(Fv/Fm)和潜在活
性(Fv/Fo),常用于度量植物叶片PSⅡ反应中心捕
获激发能的效率和PSⅡ潜在活性,是光化学反应的
2个重要参数[17]。由表2可知,与对照相比,各处理
的Fv/Fm 和Fv/Fo均降低,其中5.71和14.28
201 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第44卷
mg/m3 SO2 处理的Fv/Fm、Fv/Fo均显著降低,
14.28mg/m3 SO2 处理的Fv/Fm 较对照下降了
16.73%,Fv/Fo较对照下降了51.75%。这表明在
2.86mg/m3 SO2 处理下,红花檵木叶片PSⅡ反应
中心仍然具有捕获激发能的效率及潜在活性,可以
经过一段时间的恢复来维持自身暗反应,而14.28
mg/m3 SO2 处理则降低了红花檵木PSⅡ的潜在光
能转化效率。
2.3 SO2 胁迫下红花檵木叶片Y(Ⅱ)、qP、qN 与
ETR 的光响应
Y(Ⅱ)是PSⅡ实际光合量子产量,指示植物在
一段时间内持续地对光能的有效转化能力[18],该值
越大表明PSⅡ光能转化率越高,则PSⅡ活性越强。
由表3可知,各处理的Y(Ⅱ)随着光强的增加总体
呈降低的趋势,2.86和0mg/m3 SO2 处理下Y(Ⅱ)
总体水平高于5.71和14.28mg/m3 SO2 处理;在
光强大于500μmol/(m
2·s)时,14.28mg/m3 SO2
处理下的Y(Ⅱ)小于5.71mg/m3 SO2 处理,说明
14.28mg/m3 SO2 胁迫后的红花檵木在光强大于
500μmol/(m
2·s)的环境下对光能的有效转化能力
降低。
表3 不同质量浓度SO2 处理下红花檵木Y(Ⅱ)的快速光响应变化
Table 3 Rapid light-response of Y(Ⅱ)of Loropetalum chinense var.rubrumto different SO2mass concentrations
PAR/(μmol·m-2·s-1)
SO2质量浓度/(mg·m-3)SO2mass concentration
0  2.86  5.71  14.28
0  0.497±0.021c 0.625±0.030b 0.700±0.025a 0.478±0.024c
10  0.623±0.025bc  0.702±0.029a 0.677±0.024ab  0.567±0.028c
20  0.636±0.028bc  0.700±0.029a 0.665±0.023ab  0.591±0.020c
50  0.643±0.020ab  0.696±0.025a 0.632±0.022b 0.602±0.020b
100  0.648±0.017ab  0.689±0.024a 0.558±0.018c  0.607±0.020bc
150  0.643±0.023ab  0.672±0.024a 0.492±0.025c  0.592±0.026b
200  0.629±0.022a 0.643±0.022a 0.452±0.023c 0.547±0.017b
250  0.605±0.024a 0.603±0.023a 0.416±0.021c 0.477±0.024b
350  0.566±0.019a 0.541±0.017a 0.368±0.018b 0.397±0.020b
500  0.513±0.019a 0.471±0.021b 0.325±0.016c 0.319±0.016c
650  0.450±0.023a 0.399±0.020b 0.283±0.014c 0.254±0.013c
800  0.380±0.017a 0.325±0.016b 0.236±0.012c 0.203±0.010d
1 250  0.257±0.016a 0.220±0.011b 0.166±0.008c  0.134±0.007d
1 500  0.223±0.011a 0.189±0.009b 0.144±0.007c  0.110±0.006d
  注:同行数据后标不同英文字母者表示差异显著(P<0.05)。表4-6同。
Note:Different letters in each row show significant difference(P<0.05).The same for Tables 4-6.
  荧光光化学淬灭系数qP指PSⅡ天线色素吸收
光能后,用于光合作用电子传递的份额,反映了
PSⅡ天线色素吸收的光能用于光化学电子传递的
比例[19]。由表4可知,同一光强下,随着SO2 质量
浓度的增加,红花檵木的qP总体呈现降低的趋势,
这反映了高质量浓度的SO2 对红花檵木光合作用
的电子传递有抑制作用。
表4 不同质量浓度SO2 处理下红花檵木qP的快速光响应变化
Table 4 Rapid light-response of qPof Loropetalum chinense var.rubrumto different SO2mass concentrations
PAR/(μmol·m-2·s-1)
SO2质量浓度/(mg·m-3)SO2mass concentration
0  2.86  5.71  14.28
0  1.000±0a 1.000±0a 1.000±0a 1.000±0a
10  1.000±0a 1.000±0a 0.964±0.028b 1.000±0a
20  1.000±0a 1.000±0a 0.959±0.038b 1.000±0a
50  1.000±0a 1.000±0a 0.935±0.037b 1.000±0a
100  1.000±0a 0.999±0.035a 0.873±0.034b 1.000±0a
150  1.000±0a 0.976±0.029a 0.817±0.041b 0.999±0.039a
200  1.000±0a 0.936±0.027a 0.778±0.029b 0.931±0.037a
250  1.000±0a 0.890±0.035b 0.735±0.017c 0.858±0.033b
350  0.958±0.028a 0.837±0.032b 0.668±0.023c 0.769±0.028b
500  0.898±0.035a 0.777±0.019b 0.605±0.027c 0.661±0.033c
650  0.826±0.021a 0.697±0.015b 0.538±0.027c 0.549±0.027c
800  0.735±0.027a 0.598±0.020b 0.458±0.023c 0.454±0.023c
1 250  0.536±0.017a 0.426±0.021b 0.330±0.017c  0.305±0.015c
1 500  0.481±0.024a 0.375±0.019b 0.291±0.015c  0.255±0.013d
301第10期 侯利钦,等:SO2 胁迫对红花檵木光合速率和叶绿素荧光参数的影响
  荧光非光化学淬灭系数qN 反映PSⅡ反应中
心对天线色素吸收过量光能后以热能形式耗散掉的
光能部分[20]。非光化学淬灭过程是植物的一种自
我保护机制,能对处于逆境胁迫的植物光合机构起
到一定的保护作用[21]。本研究中,qN 的变化与qP
相反(表5),即qN 随着光强的增加而上升。最大光
强下,14.28mg/m3 SO2 处理下qN 较对照显著升
高了36.78%,2.86mg/m3 SO2 处理下qN 值与对
照差异不显著。说明2.86mg/m3 SO2 处理对红花
檵木PSⅡ 光合作用的电子传递份额无明显影响,
而14.28mg/m3 SO2 处理的植物吸收过量光能后
不能及时以热能的形式耗散,从而造成光合机构失
活或破坏。
表5 不同质量浓度SO2 处理下红花檵木qN 的快速光响应变化
Table 5 Rapid light-response of qNof Loropetalum chinense var.rubrumto different SO2mass concentrations
PAR/(μmol·m-2·s-1)
SO2质量浓度/(mg·m-3)SO2mass concentration
0  2.86  5.71  14.28
0  0±0a 0±0a 0±0a 0±0a
10  0±0a 0±0a 0±0a 0±0a
20  0±0a 0±0a 0±0a 0±0a
50  0±0a 0±0a 0±0a 0±0a
100  0±0a 0±0a 0±0a 0±0a
150  0±0a 0±0a 0±0a 0±0a
200  0±0b 0±0b 0.009±0ab   0.045±0.002a
250  0±0b 0±0b 0.140±0.007a 0.153±0.008a
350  0.011±0.001b 0±0b 0.290±0.015a 0.332±0.017a
500  0.045±0.002a 0.120±0.006b 0.464±0.023d 0.474±0.024c
650  0.153±0.008a 0.303±0.015b 0.561±0.028c 0.583±0.029c
800  0.332±0.017a 0.422±0.021b 0.621±0.021c 0.652±0.023c
1 250  0.474±0.014a 0.516±0.016a 0.667±0.013b  0.699±0.025b
1 500  0.541±0.017a 0.556±0.018a 0.690±0.025b  0.740±0.017b
  PSⅡ光合电子传递速率ETR反映实际光强下
的表观电子传递效率,用于度量光化学反应用于碳
固定的电子传递情况[21-22]。由表6可知,各处理随
光强的增加ETR 均呈上升趋势;在光强超过500
μmol/(m
2·s)后,随SO2 质量浓度升高ETR降低。
在最大光强下,14.28mg/m3 SO2 处理的ETR显著
低于对照,相比对照下降了50.88%,这表明PSⅡ光
合电子传递受阻,意味着此质量浓度SO2 处理下光
合作用中心结构可能有所受损。
表6 不同质量浓度SO2 处理下红花檵木ETR的快速光响应变化
Table 6 Rapid light-response of ETRof Loropetalum chinense var.rubrumto
different SO2mass concentrations μmol/(m
2·s)
PAR/(μmol·m-2·s-1)
SO2质量浓度/(mg·m-3)SO2mass concentration
0  2.86  5.71  14.28
0  0.2±0.01b 0.3±0.01a 0.3±0.01a 0.2±0.01b
10  2.9±0.25b 3.2±0.16a 2.8±0.14bc  2.6±0.13c
20  5.1±0.25a 5.6±0.20a 5.3±0.21a 5.2±0.16a
50  14.0±0.50a 14.6±0.53a 13.5±0.60a 13.4±0.57a
100  26.4±1.32a 27.2±1.36a 22.3±1.11b 25.2±1.26a
150  39.4±1.97a 39.8±1.99a 29.6±1.48b 36.5±1.82a
200  52.6±2.63a 52.1±2.60a 37.2±1.86c 46.0±2.30b
250  69.8±3.49a 67.3±3.35a 47.1±2.35c 55.1±2.75b
350  88.4±4.42a 82.0±4.10a 56.7±2.83b 62.4±3.12b
500  106.8±3.34a 95.4±3.77b 66.8±3.34c 66.8±3.34c
650  122.1±3.11a 105.1±3.25b 75.7±3.78c 69.1±3.45c
800  134.5±2.72a 112.1±3.60b 82.5±4.12c 72.2±3.61d
1 250  140.9±3.04a 117.8±3.89b 89.5±4.47c 74.4±3.72d
1 500  147.0±4.35a 120.3±4.01b 92.1±4.60c 72.2±3.61d
3 讨论与结论
光合作用是植物生长和物质积累的基础,在植
物的生长发育过程中具有重要意义。光合作用的强
弱可作为判断植物生长状况和抗逆性的指标。本研
究中,低质量浓度SO2(2.86mg/m3)处理对红花檵
401 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第44卷
木的Pn、Gs、Ci、Tr均无显著影响,植株表现出较强
的光合能力。高质量浓度SO2(14.28mg/m3)处理
使Pn、Gs、Tr显著下降,Ci显著上升,可能是由于
在高质量浓度SO2 环境下,红花檵木光合系统受到
损害,导致CO2 固定能力下降。
与表观的光合指标相比,叶绿素荧光参数更能
反映植物光合系统的内在特性。叶绿素荧光常用于
评价光合机构的功能和环境胁迫对其的影响[23]。
植物的荧光参数与SO2 污染程度之间具有一定的
相关性,不同植物的荧光参数对SO2 污染的响应存
在显著差别[24]。本研究中,红花檵木Fm、Fv/Fm、
Fv/Fo随着SO2 胁迫质量浓度的增加而降低,其中
Fv/Fm是衡量植物光合性能的重要指标,也是目前
使用最多的一个荧光参数。在非胁迫条件下,植物
叶片的Fv/Fm 较恒定,一般介于0.80~0.85[25]。
本试验中,对照和2.86mg/m3 SO2 处理的Fv/Fm
都在此范围内,可以认为2.86mg/m3 SO2 处理并
未对红花檵木的正常生长造成影响,而 14.28
mg/m3 SO2 处理下Fv/Fm 则显著低于此区间值,
可以推测此高质量浓度SO2 会抑制红花檵木的光
合作用。
光化学淬灭系数qP 和非光化学淬灭系数qN
的变化反映了叶片对激发能利用的情况[26]。本研
究结果中,qP和qN 随光强的增加表现出相反的变
化趋势。在光强大于250μmol/(m
2·s)后,同一光
强下,5.71和14.28mg/m3 SO2 处理下qN 显著高
于其他处理,表明强光下红花檵木叶片叶黄素循环
系统充分启动,用来防止过剩激发能对光合机构的
破坏,由此可以认为红花檵木仍然能忍耐这一质量
浓度的SO2,具有较强的SO2 适应性及自我修复能
力。本研究中在光强达到一定值后,Y(Ⅱ)、qP、
ETR均随SO2 质量浓度增加而下降,说明在高质量
浓度SO2 胁迫下,红花檵木PSⅡ原初电子受体QA
的重新氧化能力减弱,PSⅡ的电子传递活性下降,
引起碳同化降低,导致还原态 QA所携带的电子难
以传递到其后的电子传递体上,使得整个光合电子
传递过程受阻。
综上所述,不同质量浓度的SO2 处理导致红花
檵木Pn、Gs、Tr下降,Ci上升;Fm、Fv/Fm、Fv/Fo
下降,Fo上升;Y(Ⅱ)、qP、ETR 下降,qN 上升。
2.86mg/m3 SO2 处理对红花檵木PSⅡ的实际光合
量子产量及电子传递速率无显著影响,5.71和
14.28mg/m3 SO2 处理会引起红花檵木PSⅡ反应
中心光合电子传递受阻,PSⅡ色素吸收的光能用于
光化学电子传递的份额减少,光能转化效率和潜在
活性降低,光合系统受到损害,CO2 固定能力降低,
进而影响植株的正常光合作用。
[参考文献]
[1] 边红枫,刘静玲.我国城市大气污染及其生物防治对策研究
[J].东北师大学报(自然科学版),2001(1):79-83.
Bian H F,Liu J L.Air polution and bio-control study in Chi-
nese city[J].Journal of Northeast Normal University(Natural
Science Edition),2001(1):79-83.
[2] 曹洪法.我国大气污染及其对植物的影响 [J].生态学报,
1990,10(1):7-12.
Cao H F.Air polution and its effects on plants in China[J].
Acta Ecologica Sinica,1990,10(1):7-12.
[3] 高吉喜,潘凤云,周兴宝.二氧化硫对植物新陈代谢的影响:Ⅱ.
对光合、呼吸与物质代谢的影响 [J].环境科学研究,1997(6):
8-12.
Gao J X,Pan F Y,Zhou X B.Effects of SO2on plant metabo-
lism:Ⅱ.Effects on photosynthesis,respiration and nutrient
material metabolism[J].Research of Environmental Sciences,
1997(6):8-12.
[4] 俞 飞,殷秀敏,伊力塔,等.酸雨对杉木幼苗叶绿素荧光及生
长量的影响 [J].东北林业大学学报,2014,42(1):6-9.
Yu F,Yin X M,Yi L T,et al.Effects of acid rain on chlorophyl
fluorescence in leaf and growth of Chinese fir seedlings[J].
Journal of Northeast Forestry University,2014,42(1):6-9.
[5] 李利红.二氧化硫胁迫下拟南芥防御基因的差异表达及表观遗
传调控机制研究 [D].太原:山西大学,2012.
Li L H.Study of differential expression of defense-related
genes and epigenetic mechanism of Arabidopsis in response to
sulfur dioxide[D].Taiyuan:Shanxi University,2012.
[6] 关岚岚,刘 楠,韦 强,等.华南地区8种藤本植物叶绿素荧
光特性对模拟二氧化硫污染的响应 [J].热带亚热带植物学
报,2008(2):95-103.
Guan L L,Liu N,Wei Q,et al.Responses of chlorophyl fluo-
rescence to simulated SO2polution in eight liana species in
South China[J].Journal of Tropical and Subtropical Botany,
2008(2):95-103.
[7] Okpodu C M,Alscher R G,Grabau E A,et al.Physiological,bi-
ochemical and molecular effects of sulfur dioxide[J].Journal of
Plant Physiology,1996,148(3):309-316.
[8] 林世青,许春辉,张其德,等.叶绿素荧光动力学在植物抗性生
理学、生态学和农业现代化中的应用 [J].植物学通报,1992,9
(1):1-16.
Lin S Q,Xu C H,Zhang Q D,et al.Some application of chloro-
phyl fluorescence kinetics to plant stress physiologyphy teo-
cology and agricultural modernization[J].Chinese Buletin of
Botany,1992,9(1):1-16.
[9] 李鹏民,高辉远,Strasser R J.快速叶绿素荧光诱导动力学分析
在光合作用研究中的应用 [J].植物生理与分子生物学学报,
2005,31(6):559-566.
501第10期 侯利钦,等:SO2 胁迫对红花檵木光合速率和叶绿素荧光参数的影响
Li P M,Gao H Y,Strasser R J.Application of the fast chloro-
phyl fluorescence induction dynamics analysis in photosynthe-
sis study[J].Journal of Plant Physiology and Molecular Biolo-
gy,2005,31(6):559-566.
[10] 衣艳君,李芳柏,刘家尧.尖叶走灯藓(Plagiomnium cuspida-
tum)叶绿素荧光对复合重金属胁迫的响应 [J].生态学报,
2008(11):5437-5444.
Yi Y J,Li F B,Liu J Y.Physiological response of chlorophyl
fluorescence in moss Plagiomnium cuspidatum to mixture
heavy metal solution[J].Acta Ecologica Sinica,2008(11):
5437-5444.
[11] 万雪琴,张 帆,夏新莉,等.镉处理对杨树光合作用及叶绿素
荧光参数的影响 [J].林业科学,2008(6):73-78.
Wan X Q,Zhang F,Xia X L,et al.Effects of cadmium on pho-
tosynthesis and chlorophyl fluorescence parameters of solu-
tion-cultured poplar plants[J].Scientia Silvae Sinicae,2008
(6):73-78.
[12] 唐前瑞.红花檵木遗传多样性及其叶色变化的生理生化研究
[D].长沙:湖南农业大学,2001.
Tang Q R.Study on the genetic diversity among Loropetalum
chinense var.rubrumintroductions and changes of physiology
and biochemistry during its leaf colour transformation[D].
Changsha:Hunan Agricultural University,2001.
[13] 袁 明,万兴智,杜 蕾,等.红花檵木叶色变化机理的初步研
究 [J].园艺学报,2010,37(6):949-956.
Yuan M,Wan X Z,Du L,et al.Mechanism on leaf color trans-
formation of Loropetalum chinense Olive var.rubrum[J].Ac-
ta Horticulturae Sinica,2010,37(6):949-956.
[14] 李炎林,于晓英,熊兴耀,等.红花檵木花粉单倍体愈伤组织的
诱导与培养 [J].湖南农业大学学报(自然科学版),2012,37
(6):632-636.
Li Y L,Yu X Y,Xiong X Y,et al.Induction and cultivation of
haploid calus of Loropetalum chinense var.rubrum [J].Jour-
nal of Hunan Agricultural University (Natural Sciences),
2012,37(6):632-636.
[15] 王妙媛.Pb2+、Cd2+胁迫对红花檵木生长及生理生化特性的
影响 [D].长沙:湖南农业大学,2011.
Wang M Y.Effect of Pb2+and Cd2+stress on the growth and
physiological and biochemical characteristics of Loropetalum
chinense var.rubrum [D].Changsha:Hunan Agricultural U-
niversity,2011.
[16] White A J,Critchley C.Rapid light curve:a new fluorescence
method to assess the state of the photosynthetic apparatus
[J].Photosynthesis Research,1999,59:63-72.
[17] 李志军,罗青红,伍维模,等.干旱胁迫对胡杨和灰叶胡杨光合
作用及叶绿素荧光特性的影响 [J].干旱区研究,2009(1):45-
52.
Li Z J,Luo Q H,Wu W M,et al.The effects of drought stress
on photosynthetic and chlorophyl fluorescence characteristics
of Populus euphratica and P.pruinosa [J].Arid Zone Re-
search,2009(1):45-52.
[18] Kramer D M,Johnson G,Kirats O,et al.New fluorescence
parameters for the determination of QA redox state and exci-
tation energy fluxes[J].Photosynthesis Research,2004,79
(2):209-218.
[19] 林 栋,冯朝阳,吕世海,等.短尾铁线莲叶绿素荧光特性研究
[J].西北植物学报,2008(11):2299-2305.
Lin D,Feng C Y,LüS H,et al.Chlorophyl fluorescence chra-
crerisrics of Clematis brevicaudata[J].Acta Bot Boreal Occi-
dent Sin,2008(11):2299-2305.
[20] 钱永强,周晓星,韩 蕾,等.Cd2+胁迫对银芽柳PSⅡ叶绿素
荧光光响应曲线的影响 [J].生态学报,2011(20):6134-6142.
Qian Y Q,Zhou X X,Han L,et al.Rapid light-response
curves of PSⅡchlorophyl fluorescence parameters in leaves of
Salix leucopitheciasubjected to cadmium-ion stress[J].Acta
Ecologica Sinica,2011(20):6134-6142.
[21] 张守仁.叶绿素荧光动力学参数的意义及讨论 [J].植物学通
报,1999,16(4):444.
Zhang S R.Some application of chlorophyl fluorscence kinet-
ics to plant stress physiologyphy teocology and agricultural
modernization[J].Chinese Buletin of Botany,1999,16(4):
444.
[22] 陈 梅,唐运来.高温胁迫下苋菜的叶绿素荧光特性 [J].生
态学杂志,2013(7):1813-1818.
Chen M,Tang Y L.Chlorophyl fluorescence characteristics of
Amaranthus tricolor L.under high temperature stress[J].
Acta Ecologica Sinica,2013(7):1813-1818.
[23] 康博文,李文华,刘建军,等.ALA对红掌叶片光合作用及叶
绿素荧光参数的影响 [J].西北农林科技大学学报(自然科学
版),2009,37(4):97-102.
Kang B W,Li W H,Liu J J,et al.Effects of ALA treatment
on photosynthetic and chlorophyl fluorescence dynamics of
Anthurium andraeanum [J].Journal of Northwest A&F Uni-
versity(Nat Sci Ed),2009,37(4):97-102.
[24] 洪 渊,张冬鹏,黄俊华.硫污染对9种园林植物叶片硫含量
与叶绿素荧光参数的影响 [J].生态科学,2008(6):558-560.
Hong Y,Zhang D P,Huang J H.Effect of SO2on leave’s sul-
fur content and chlorophyl fluorescence of gardens plants in
Shenzhen[J].Acta Ecologica Sinica,2008(6):558-560.
[25] Genty B,Briantais J,Baker N R.The relationship between the
quantum yield of photosynthetic electron transport and
quenching of chlorophyl fluorescence[J].Biochimica et Bio-
physica Acta(BBA)-General Subjects,1989,990(1):87-92.
[26] 鲁 艳,李新荣,何明珠,等.不同浓度 Ni、Cu处理对骆驼蓬
光合作用和叶绿素荧光特性的影响 [J].应用生态学报,
2011,22(4):936-942.
Lu Y,Li X R,He M Z,et al.Influence of different concentra-
tion Ni and Cu on the photosynthesis and chlorophyl fluores-
cence characteristics of Peganum harmala [J].Chinese Jour-
nal of Applied Ecology,2011,22(4):936-942.
601 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第44卷