全 文 ：海金子中柽柳素-3-O-芸香糖苷和芦丁的
分离及含量测定
〔摘要〕 目的 研究海金子 70%乙醇提取物的化学成分；建立 HPLC 测定海金子中柽柳素-3-O-芸香糖苷、芦丁的
含量。方法 采用硅胶柱色谱进行分离纯化，利用波谱技术、色谱技术进行结构鉴定。采用 Agela Technologies Promosil
C18(200 mm×4.6 mm，5 μm)，流动相为甲醇-0.4%磷酸水溶液（34∶66），流速为 1.0 mL/min，检测波长为 254 nm，柱温为
40 ℃对不同采集时间、不同部位的海金子中的柽柳素-3-O-芸香糖苷、芦丁进行含量测定。 结果 分离鉴定了 2 个黄
酮苷类化合物，分别为柽柳素-3-O-芸香糖苷和芦丁。 柽柳素-3-O-芸香糖苷在 0.254~1.145 μg 范围、芦丁在 0.341~
1.533 μg 范围与其峰面积呈良好的线性关系；平均回收率：柽柳素-3-O-芸香糖苷为 100.08%，RSD 为 1.09%(n=6)，芦
丁为 99.89%，RSD 为 1.41%（n=6）。 结论 两种化合物首次从该植物中分离得到。 所建立的 HPLC 简便、准确、重现性
好，结果准确可靠，可用于海金沙中柽柳素-3-O-芸香糖苷和芦丁的测定。
〔关键词〕 海金子；柽柳素-3-O-芸香糖苷；芦丁；高效液相色谱
〔中图分类号〕R284．1 〔文献标识码〕A 〔文章编号〕doi:10.3969/j.issn.1674－070X.2012.07.013.045.05
Separation and determination of tamarix prime -3 -O -ruti-
noside and rutin in Pittosporum. Illicioides Mak.
PENG Yi-bo1,2, LIU Yang1,2, LI Na1,2, LIU Yu-qing1,2, XIE Yi2, WANG Shi-qiang2
(1. TCM University of hunan, Changsha, Hunan 410208, China;
2. Institute of Chinese Materia Medica, TCM Academy of Hunan, Changsha, Hunan 410013, China)
〔Abstract〕 Objective To investigate the chemical constituents in 70% alcohol extract of Pit-
tosporum. Illicioides Mak. and develop an HPLC method for determination of tamarix prime-3-O-
rutinoside and rutin in Pittosporum. Illicioides Mak. Methods The chemical constituents were iso-
lated by column chromatography over silica gel. The Structures of the two compounds were eluci-
dated by spectroscopic and chromatographic analysis. Agela Technologies Promosil C18 column
(200 mm×4.6 mm, 5 μm) was used with methanol-0.4% phosphoric acid (34:66) as mobile phase.
The flow rate was 1.0 mL/min. The UV detection wavelength was 254 nm and the column temper-
ature was 40 ℃. According to these conditions, the contents of tamarix prime-3-O-rutinoside and
rutin in different parts of Pittosporum. Illicioides Mak cropped at different time were determined.
Results The two flavone glycosides were identified as tamarix prime-3-O-rutinoside and rutin. The
linear response range of tamarix prime -3 -O -rutinoside and rutin were 0.254 ~1.145 μg and,
0.341 ~1.533 μg, respectively. The average recoveries of these compounds were 100.08% (RSD =
1.09%) and 99.89%(RSD=1.41%), respectively. Conclusion The two kinds of compounds were iso-
lated from Pittosporum. Illicioides Mak for the first time. This established method in this study is
simple, reliable, reproducible and accurate for the analysis of tamarix prime-3-O-rutinoside and
rutin in Pittosporum. Illicioides Mak.
〔Key words〕 Pittosporum. Illicioides Mark; tamarix prime-3-O-rutinoside; rutin; HPLC
彭一波 1，2，刘 阳 1，2，李 娜 1，2，刘玉琴 1，2，谢 谊 2，王实强 2*
（1.湖南中医药大学，湖南 长沙 410208；2.湖南省中医药研究院中药研究所，湖南 长沙 410013）
〔收稿日期〕2012－04－14
〔作者简介〕彭一波（1987-），女，浙江安吉人，在读硕士研究生，从事天然药物化学专业。
〔通讯作者〕* 王实强，研究员，硕士研究生导师，E-mail：wsq8135@163.com。
2012 年 7 月第 32 卷第 7 期
Jul． 2012 Vol． 32 No． 7
湖 南 中 医 药 大 学 学 报
Journal of TCM Univ． of Hunan 45
海桐花科 （Pittosporaceae） 海桐花属（Pittospo-
rum Banks） 植物海金子 （Pittosporum. illicioides
Mak.）分布于福建、浙江、江苏、安徽、江西、湖北、湖
南、贵州等省，国外产地有日本 [1]。 海金子的根民间
用于风湿性关节炎、坐骨神经痛、骨折、胃痛、牙痛、
高血压及神经衰弱，还具有良好的杀精子作用 [2-3]。
海金子叶可用于蛇咬伤，疮疖肿毒，过敏性皮炎和
外伤出血[3]。海金子的干燥种子称为“山枝仁”，被贵
州和四川两省的地方标准收载， 具有清热利湿、生
津止咳、收敛止泻的功效。 用于心烦，口渴咽痛，痢
疾，肠炎，白带，体倦乏力等 [4-5]。 海金子在四川几乎
都为野生，多生长在悬崖峭壁或斜坡上，采集十分
困难，加上利润微薄，少有人愿意采集，导致商品来
源不足。
为了更深入地研究海金子的活性物质， 从海金
子叶中提取、 分离得到活性化合物柽柳素-3-O-芸
香糖苷和芦丁，这两种化合物在海金子中首次发现。
目前关于海金子中这两种化合物的高效液相色谱分
析方法未见文献报道。 本文建立了快速预处理、分
离效果好的高效液相色谱分析法， 测定不同采集时
间、 海金子不同部位两种化合物的含量。 为开发和
利用海金子提供参考依据。
1 实验材料
1.1 实验仪器
岛津 LC-10ATvp 高效液相色谱仪（日本岛津公
司），N2000双通道色谱工作站 （浙江大学智能信息
工程研究所）；岛津 UV-2450 型紫外分光光度仪（日
本岛津公司）；INOVA-400 核磁共振仪 （Varian 公
司 ）；Avatar 370 FT -IR 型 红 外 光 谱 仪 （Thermo
Nicolet 公司 ）；LCQ Advantage 型质谱仪 （Thermo
Finnigan 公司 ）；C10558 型 TLC visualizer 成像仪
（瑞士卡玛公司）；SZ-93A 双蒸馏水器（上海亚荣生
化仪器厂）；KQ2200B 型超声波清洗器（昆山市超声
仪器有限公司）；AE240 型分析天平 （METTLER 公
司）。
1.2 药品与试剂
柽柳素-3-O-芸香糖苷对照品（自制），HPLC 测
定含量大于 98%；芦丁对照品（中国药品生物制品
检定所提供，含量测定用，批号 100080-200707）；甲
醇、磷酸为色谱纯；其他试剂均为分析纯；水为双重
蒸馏水。 海金子样品由课题组成员从保靖、吉首、花
垣采集， 经湖南省中医药研究院中药研究所生药室
鉴定，为海金子（Pittosporum. illicioides Mak.)全草，
取其叶、茎皮、果实阴干，供样品含量测试用。
2 方法与结果
2.1 提取分离
将海金子（花垣 8 月）叶（500 g）的 70%乙醇提
取物，依次用石油醚、水饱和正丁醇萃取，回收正丁
醇得提取物（3.5 g）。 采用硅胶柱进行分离，从石油
醚∶乙酸乙酯（1∶1，V/V）洗脱液中得到深黄色颗粒状
晶体，重结晶得化合物Ⅰ（约 200 mg），从乙酸乙酯∶
甲醇=（4∶1，V/V） 洗脱液中得到黄色粉末状结晶，重
结晶得化合物Ⅱ（约 300 mg）。
2.2 结构鉴定
化合物Ⅰ进行 UV、1H -NMR、13C -NMR、ESI -
MS、IR光谱鉴定， 化合物Ⅱ进行 UV、TLC、HPLC 鉴
定。
2.2.1 化合物Ⅰ的波谱数据及鉴定
UV λMeOmaxH nm(logε):254(4.32)，356(4.26)，可初
步判断有黄酮化合物基本母核。
ESI -MS m/z：623 [M -H] - 。 IRνKBrmax/cm：
3382，1652，1604，1500，1452，1360，1291。
1H NMR(400 MHz，DMSO-d6)δ：6.44（d，1H，J=
1.6 Hz，H-6），6.21 （d，1H，J=1.6 Hz，H-8），7.86（d，
1H，J=1.2 Hz，H-2′），7.52（dd，1H，J=8.4 Hz，1.2Hz，
H-6′），6.91（d，1H，J=8.4 Hz，H-5′），3.84（s，3H，4′-
OCH3），5.44 （d，1H，J=7.2 Hz，glc-H-1＂），3.22～3.41
（m，6H，glc-H-2＂～6＂），0.98 （d，3H，J=6.0 Hz，rha-
CH3）。
13C NMR(100 MHz，DMSO-d6)δ：156.8（C-2），
133.3 （C-3），177.7 (C -4)，161.5 （C-5），99.0 （C-6），
164.4（C-7），94.1（C-8），156.8（C-9），104.3（C-10），
121.4（C-1′ )，113.6（C-2′），147.2（C-3′），149.7（C-
4′ ），115.6 （C-5′ ），122.6 （C-6′ ），101.5 （C-1＂），76.7
（C-2＂），76.2（C-3＂），70.6（C-4＂），74.6（C-5＂），67.1
（C-6＂），101.2（C-1），70.4（C-2），70.9（C-3），
72.1（C-4），68.6（C-5），18.0（C-6）。 以上波谱
数据与柽柳素-3-O-芸香糖苷的文献数据[6]一致，故
鉴定为柽柳素-3-O-芸香糖苷。
2.2.2 化合物Ⅱ的结构鉴定
薄层鉴别： 取化合物Ⅱ 10.1 mg， 用甲醇定容
至 10 mL， 制成化合物Ⅱ溶液 ； 取芦丁对照品
湖南中医药大学学报 2012 年第 32 卷46
1.芦丁；2.柽柳素-3-O-芸香糖苷
图 1 对照品（A）及海金子药材叶（花垣 8月）供试品（B）HPLC图
10.5 mg，用甲醇溶解定容至 10 mL，即得芦丁对照
品溶液。 照薄层色谱法[7]试验，吸取上述两种溶液各
5 μL，分别点于同一硅胶 G 薄层板上，分别以不同
的展开剂展开：（1）二氯甲烷∶甲醇∶甲酸（15∶7∶0.5）；
（2）三氯甲烷 ∶甲醇 ∶水（2∶1∶0.3）下层 20 mL 加甲酸
0.2 mL；（3）三氯甲烷∶丙酮∶冰醋酸（2∶1.5∶0.2）。 展距
为 15 cm，取出，晾干。 置紫外光灯（365 nm）下检
视。 结果化合物Ⅱ溶液的色谱中， 在与芦丁对照品
相应的位置处显黑色斑点。
紫外鉴别： 向化合物Ⅱ的甲醇溶液（26.8 μg/mL）
分别加入甲醇钠、乙酸钠、乙酸钠/硼酸、三氯化铝及三
氯化铝/盐酸诊断试剂， 试验数据（λmaxnm）：256，266
sh，296 sh，358 （MeOH）；272，328，410 （NaOMe）；
272，302 sh，420 （AlCl3）；268，300，366 sh，398（AlCl3/
HCl）；272，324，382 （NaOAc）；262，298，378 （NaOAc/
H3BO3）。 将上述各种 UV图谱与文献[8]比较，结果与芦
丁一致。
高效液相色谱鉴别： 取芦丁对照品适量， 制成
100 μg/mL 对照品溶液； 取化合物Ⅱ适量， 制成
100 μg/mL 的化合物Ⅱ试液，在“2.3.1”色谱条件下
分别检测。 发现化合物Ⅱ与芦丁对照品在相同的保
留时间（15.4 min）出峰。 综上，化合物Ⅱ鉴定为芦
丁。
2.3 含量测定
2.3.1 色谱条件与系统适应性 采用 Agela Tech-
nologies Promosil C18(200 mm×4.6 mm，5 μm)色谱
柱；流动相为甲醇-0.4%磷酸水溶液（34∶66）；流速
为 1.0 mL/min； 检测波长为 254 nm； 柱温为
40 ℃； 理论塔板数按柽柳素-3-O-芸香糖苷计不
低于 5 000。 结果见图 1。
2.3.2 对照品溶液的制备 称取柽柳素-3-O-芸香
糖苷对照品和芦丁对照品适量，精密称定，用 50%
甲醇溶解并定量稀释成含柽柳素-3-O-芸香糖苷
100 μg/mL，芦丁 100 μg/mL的混合对照品溶液。
2.3.3 供试品溶液的制备 药材粉碎 （过一号筛），
取粉末 0.5 g，精密称定，置具塞锥形瓶中，精密加入
50%甲醇 25 mL，称定重量，超声提取 30 min，放冷
至室温，用 50%甲醇补足失去的质量，摇匀，用微孔
滤膜（0.45 μm）滤过，取续滤液即得。
2.3.4 线性关系的考察 精密称取柽柳素-3-O-芸
香糖苷对照品和芦丁对照品适量，用 50%甲醇分别
配成每 1 mL 含柽柳素-3-O-芸香糖苷 0.254 4 mg
和每 1 mL 含芦丁 0.340 8 mg 的 2 份母液， 分别
吸取柽柳素-3-O-芸香糖苷母液 2、3、5、7、9 mL
于 10 mL 容量瓶 ； 分别吸取芦丁母液 2、3、5、7、
9 mL 于 10 mL 容量瓶， 用 50%甲醇稀释至刻度。
分别吸取以上 10 个稀释液和 2 个母液各 5 μL 注
入液相色谱仪。 以对照品进样量（μg）为横坐标，色
谱峰面积积分值（mv）为纵坐标，绘制标准曲线。 结
果见表 1。
2.3.5 精密度实验 精密吸取海金子（花垣 8月）叶
供试品溶液，按上述色谱条件和测定方法，连续进样
6 次， 以柽柳素-3-O-芸香糖苷和芦丁峰面积积分
值计算，RSD 分别为 1.71%和 1.82%，结果表明本法
精密度良好。
2.3.6 稳定性实验 精密吸取同一份海金子 （花垣
8 月）叶供试品溶液，按上述色谱条件和测定方法，
分别在0、2、4、6、8、10、12 h 进样，测定色谱峰面积，
表 1 柽柳素-3-O-芸香糖苷和芦丁的线性关系考察
对照品
柽柳素-3-O-芸香糖苷
芦丁
回归方程
y=704 505x+47 694
y=546 174x+26 976
r
0.999 8
0.999 8
线性范围（μg）
0.254~1.145
0.341~1.533
15
.4
07
31
.7
48
15
.3
12
31
.4
26
A
B
彭一波，等 海金子中柽柳素-3-O-芸香糖苷和芦丁的分离及含量测定第 7 期 47
表 3 芦丁回收率试验 （n=6）表 2 柽柳素-3-O-芸香糖苷回收率试验 （n=6）
样品称样
量（mg）
248.34
251.38
249.05
241.08
248.80
250.88
样品中的
量（mg）
1.365 9
1.382 6
1.369 8
1.325 9
1.368 4
1.378 9
加入对照
品量（mg）
1.102 1
1.102 1
1.484 0
1.484 0
1.725 5
1.725 5
测得量
（mg）
2.478 2
2.499 3
2.848 6
2.795 8
3.111 5
3.088 1
回收率
（%）
100.75
101.06
99.62
98.94
101.29
98.82
平均回
收率（%）
100.08
RSD
（%）
1.09
样品称样
量（mg）
234.12
232.65
231.19
238.67
241.23
245.60
样品中的
量（mg）
1.123 8
1.116 7
1.109 7
1.145 6
1.157 9
1.178 9
加入对照
品量（mg）
0.750 9
0.750 9
1.040 2
1.040 2
1.330 8
1.330 8
测得量
（mg）
1.856 1
1.888 8
2.134 5
2.179 6
2.487 2
2.523 6
回收率
（%）
98.34
101.90
98.61
99.46
99.87
101.2
平均回
收率（%）
99.89
RSD
（%）
1.41


 
         
9 9 5 9 9 3 8 9 5 9 3 8 9 9 8



0.69 0.80 0.69 1.07 0.91 0.90 0.55 0.05 0.05 0.05 0.05 0.01 0.07 0.15 0.18
 0.38 1.08 0.72 0.53 1.26 0.17 0.48 0.01 0.07 0 0 0.03 0 0.25 0.33
表 4 不同采集地、时间海金子叶、茎皮、果实中柽柳素-3-O-芸香糖苷和芦丁含量 （n=2，%）
以柽柳素-3-O-芸香糖苷和芦丁峰面积积分值计
算，RSD 分别为 1.52%和 1.73%，结果表明供试品在
12 h内基本稳定。
2.3.7 重复性实验 按“2．3．3”方法制备海金子（花
垣 8 月）叶样品 5 份，在“2．3．1”色谱条件下分析，测
得柽柳素-3-O-芸香糖苷的平均含量为 0.54%，RSD
为 1.76% ， 芦丁的平均含量为 0.47% ，RSD 为
1.34%，结果表明该方法重现性良好。
2.3.8 加样回收率试验 精密称取已知柽柳素-3-
O-芸香糖苷和芦丁含量的海金子（花垣 8 月）叶粉
末（过一号筛）12 份，每份 0.25 g，分两组，一组精密
加入柽柳素-3-O-芸香糖苷， 另一组精密加入芦丁
对照品适量，按“2．3．3”方法制备待测液，各精密吸取
5 μL 进样，在“2．3．1”色谱条件下分析测定，计算回
收率。 测定结果见表 2～3。
2.3.9 样品含量测定 取不同采集时间的海金子
叶、茎皮、果实的粉末（过一号筛），按“2.3.3”项下方
法制备供试品溶液，精密吸取对照品溶液和供试品
溶液各 5 μL，注入液相色谱仪，依照“2．3．1”色谱条
件测定，采用外标法计算含量，结果见表 4。
注：表中 9 月表示老叶，9 月’表示嫩叶。
3 讨论
3.1 色谱条件选择
色谱柱： 本实验分别使用了伊利特 Hypersil
BDS C18 (250 mm×4.6 mm，5 μm) 柱，Agela Tech-
nologies Promosil C18 (200 mm×4.6 mm，5 μm) 柱，
Waters Symmetry C18(3.9 mm×150 mm，5 μm)柱，发
现 Agela Technologies Promosil C18 (200 mm ×
4.6 mm，5 μm)柱，分离情况较好。
流动相的选择：甲醇-0.2%磷酸[9]，拖尾，适当增
加磷酸百分含量，甲醇-0.4%磷酸，峰形好。 摸索流
动相比例，甲醇-0.4%磷酸水溶液（34∶66），分离情况
较好。
检测波长的选择： 柽柳素-3-O-芸香糖苷的紫
外光谱图有两个特征吸收峰， 最大吸收波长分别为
254 nm 和 356 nm。 因 254 nm 处的 ε 值大于
356 nm 处的 ε值，故选用 254 nm 为检测波长。
柱温的选择： 比较柱温 30、35、40 ℃时的色谱
图，在 40 ℃时分离度符合要求、理论塔板数较高。
3.2 样品处理方法的选择
提取溶剂考察：取海金子（花垣 8月）叶粉末（过
一号筛），8 份，每份 0.5 g，分别用不同的溶剂提取：
95%、70%、50%、20%乙醇及 100%、70%、50%、20%
甲醇，其他提取和测定条件相同。 测得样品含量，结
果 50%甲醇提取最完全。
提取方法考察：取海金子（花垣 8月）叶粉末（过
一号筛），2 份，每份 0.5 g，分别回流、超声30 min，
其他提取和测定条件相同。 测得样品含量， 结果超
湖南中医药大学学报 2012 年第 32 卷48
（本文编辑 杨 瑛）
[6] 李子璇，江 海，曹小勇，等.石蒜植株中加兰他敏的分布与含量
测定[J]. 江苏农业科学，2009(3): 290-292.
[7] 栾 伟.石蒜中加兰他敏的微波辅助提取、分离和分析的研究[D].
中山大学硕士学位论文， 2004.
[8] 聂媛媛，周海翔，彭 菲，等.HPLC 法测定黄花石蒜不同部位的加
兰他敏含量[J].湖南中医药大学学报，2009，29（5）：51-53.
[9] 李子璇，江 海，曹小勇，等.石蒜植株中加兰他敏的分布与含量
测定[J].江苏农业科学，2009（3）：290-292.
[10] Liang P， Pardee A B. Differtential display of eukaryot-
ic messenger RNA by mean of the polymerase chain reaction
[J]. Science，1992，257(5072):967-971.
[11] 唐金凤，鲁耀邦，桂柳姿.黄花石蒜花蕊和花葶组织中总 RNA 提
取方法的比较[J].湖南中医药大学学报，2012，32（1）：31-34.
[12] 梁宏伟，王长忠，李 忠，等.聚丙烯酰胺凝胶快速、高效银染方
法的建立[J].遗传，2008，30（10）：1 379-1 382.
[13] 王永成，巩振辉，李大伟，等.利用 mRNA 差异显示技术克隆辣椒
抗疫病相关基因片段[J].北方园艺，2008（12）：149-152.
[14] 陶 杰，单 颖，荆迎军，等.mRNA 差异显示法筛选和克隆东亚
飞蝗抗药性相关基因[J].南开大学学报（自然科学版），2009，42
（1）:107-111.
[15] 茹巧美，裴真明，郑海雷.忽地笑愈伤组织培养条件对加兰他敏
合成的影响[J].广西植物，2010，30（3）：411-415.
[16] 赵志敏，钟湘云，杨 帅，等.黄花石蒜愈伤组织培养研究[J].湖南
中医药大学学报，2009，29（5）：48-50.
[17] 肖 艳，彭 菲，王 清，等.黄花石蒜的组织培养研究[J].湖南中
医学院学报，2006，26（1）：27-28.
[18] 王晓燕，王鹏凯，黄敏仁，等.加兰他敏在忽地笑营养器官中的定
位（简报）[J].分子细胞生物学报，2007，40(5):339-345.
[19] 袁菊红，胡绵好，夏 冰.石蒜属不同种间生物碱含量差异性研
究[J].江西农业大学学报，2010，32（3）：560-565.
[20] 陈 斌.石蒜生物碱的高速逆流色谱制备、含量动态变化及合成
途径关键酶 PAL 基因核心片段克隆的研究[D].重庆：西南大学
硕士学位论文，2009.
声效果比回流好。
提取时间考察：取海金子（花垣 8月）叶粉末（过
一号筛），4 份， 每份 0.5 g， 分别超声 20、30、45、
60 min 放冷，其他提取和测定条件相同。 测得样品
含量，结果 30 min 样品可提取完全。
3.3 结果分析
芦丁结构鉴定中，由于有中检所对照品提供，采
用液相色谱结合薄层色谱进行鉴别， 比照样品与对
照品的保留时间与 Rf值确定该化合物为芦丁；而柽
柳素－3－O芸香糖苷无法定对照品，故选用波谱技术
进行结构鉴定。
从表 4中可以看出海金子叶、茎皮、果实中柽柳
素-3-O-芸香糖苷和芦丁含量差异显著， 两个化合
物叶含量最高； 不同采集时间海金子柽柳素-3-O-
芸香糖苷和芦丁含量差异显著， 其中柽柳素-3-O-
芸香糖苷 8月含量较低， 芦丁 3月含量较低。 本文
采用 HPLC 测定几个不同采集时间海金子叶、茎皮、
果实中柽柳素-3-O-芸香糖苷和芦丁的含量， 为海
金子的开发利用提供了实验依据。
参考文献：
[1] 中国科学院《中国植物志》编辑委员会．中国植物志[M]．北京：科学
出版社，2005，53（2）：16．
[2] 秦松云，吴 红，钟明芳．四川省海桐花属药用植物的种类与分布
[J]．资源开发与保护，1991，8（4）：265-267．
[3] 聂田田，白 虹，王元书．海桐花属植物化学成分及药理活性研究
进展[J]．齐鲁药事，2010，29（6）：354-357．
[4] 罗达尚．新修晶珠本草[M]．成都：四川科学技术出版社，2004：513．
[5] 张 俊，蒋桂华，敬小莉 ．山枝仁质量标准初步研究[J]．中药与临
床，2011，2（1）：15-19．
[6] El -Sayed N H， Abu Dooh A M， El -KhrisySAM， et al．
Flavonoids of Cassia italica[J]．Phytochemistry，1992，31(6)：2 187-
2 189．
[7] 中华人民共和国卫生部药典委员会 ．中华人民共和国药典[S]．北
京：中国医药科技出版社，2010：附录 34．
[8] 匡海学．中药化学[M]．北京：中国中医药出版社，2003：157．
[9] 王锦军，杨成雄．马齿苋中黄酮化合物的高效液相色谱分析[J]．解
放军药学学报，2010，26（4）：345-347．
（上接第 36页）
（本文编辑 杨 瑛）
!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!
彭一波，等 海金子中柽柳素-3-O-芸香糖苷和芦丁的分离及含量测定第 7 期 49