全 文 ：第３３卷第３期
２０１５年６月
上 海 交 通 大 学 学 报 （农 业 科 学 版）
ＪＯＵＲＮＡＬ　ＯＦ　ＳＨＡＮＧＨＡＩ　ＪＩＡＯＴＯＮＧ　ＵＮＩＶＥＲＳＩＴＹ（ＡＧＲＩＣＵＬＴＵＲＡＬ　ＳＣＩＥＮＣＥ）
Ｖｏｌ．３３Ｎｏ．３
　Ｊｕｎ．２０１５
文章编号：１６７１－９９６４（２０１５）０３－００６５－０６　 ＤＯＩ：１０．３９６９／Ｊ．ＩＳＳＮ．１６７１－９９６４．２０１５．０３．０１０
收稿日期：２０１４－０７－２９
基金项目：上海市研究生教育创新计划项目（园艺学）
作者简介：杨俊俊（１９９０－），女，硕士生，研究方向：植物生物技术，Ｅ－ｍａｉｌ：ｘｉａｏｓｈａ８５４５２６８＠１６３．ｃｏｍ；
潘俊松（１９７１－）为本文通讯作者，男，博士，副教授，研究方向：黄瓜遗传育种，Ｅ－ｍａｉｌ：ｊｓｐａｎ７１＠ｓｊｔｕ．ｅｄｕ．ｃｎ
辣木快速繁殖体系
杨俊俊，曲美玲，李　月，潘俊松，何欢乐，蔡　润
（上海交通大学 农业与生物学院，上海２００２４０）
摘　要：研究通过对辣木种子消毒方法、增殖阶段６－苄氨基腺嘌呤（６－ＢＡ）浓度、生根阶段吲哚丁
酸（ＩＢＡ）浓度、移栽炼苗时间进行筛选，确定辣木种子适宜的消毒方法为７５％的酒精浸泡３０ｓ后
用１％ ＮａＣｌＯ消毒１５ｍｉｎ；增殖培养基为 ＭＳ＋１．０ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ＋３０ｇ／Ｌ蔗糖＋７．０ｇ／Ｌ琼脂
（ｐＨ５．８）；生根培养基为１／２ＭＳ＋０．４ｍｇ／Ｌ　ＩＢＡ＋３０ｇ／Ｌ蔗糖＋７．０ｇ／Ｌ琼脂（ｐＨ５．８）；移栽时
炼苗６ｄ较适宜。由此建立了辣木快速繁殖体系，为规模化生产辣木提供参考。
关键词：辣木；快速繁殖；离体培养
中图分类号：Ｑ９４３．１　　　　文献标识码：Ａ
Ｒａｐｉｄ　Ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ　Ｓｙｓｔｅｍ　ｏｆ　Ｍｏｒｉｎｇａ　ｏｌｅｉｆｅｒａ　Ｌａｍ．
ＹＡＮＧ　Ｊｕｎ－ｊｕｎ，ＱＵ　Ｍｅｉ－ｌｉｎｇ，ＬＩ　Ｙｕｅ，ＰＡＮ　Ｊｕｎ－ｓｏｎｇ，ＨＥ　Ｈｕａｎ－ｌｅ，ＣＡＩ　Ｒｕｎ
（Ｓｃｈｏｏｌ　ｏｆ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ　ａｎｄ　Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｓｈａｎｇｈａｉ　Ｊｉａｏｔｏｎｇ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｓｈａｎｇｈａｉ　２００２４０，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｄｉｓｉｎｆｅｃｔｉｏｎ　ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ　ａｎｄ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｍｅｄｉａ　ｗｅｒｅ　ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ　ｔｏ　ｄｅｖｅｌｏｐ　ａ　ｃｏｎｖｅｎｉｅｎｔ　ｓｙｓｔｅｍ　ｆｏｒ
Ｍｏｒｉｎｇａ　ｏｌｅｉｆｅｒａ　Ｌａｍ．ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ　ｓｏａｋｉｎｇ　ｔｈｅ　ｆｒｅｓｈ　ｓｈｅｌｅｄ　ｍｏｒｉｎｇａ　ｓｅｅｄｓ　ｗｉｔｈ
７５％ａｌｃｏｈｏｌ　ｆｏｒ　３０ｓ，ｔｈｅｎ　１％ ＮａＣｌＯ　ｆｏｒ　１５ｍｉｎ　ｃａｎ　ａｃｈｉｅｖｅ　ｔｈｅ　ｂｅｓｔ　ｄｉｓｉｎｆｅｃｔｉｏｎ　ｅｆｆｅｃｔ．Ｔｈｅ　ａｐｐｒｏｐｒｉａｔｅ
ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ　ｍｅｄｉｕｍ　ｗａｓ　ＭＳ＋１．０ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ （６－Ｂｅｎｚｙｌａｍｉｎｏｐｕｒｉｎｅ）＋３０ｇ／Ｌ　ｓｕｃｒｏｓｅ＋７．０ｇ／Ｌ
ａｇａｒ（ｐＨ５．８）．Ｔｈｅ　ｐｒｏｐｅｒ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｍｅｄｉｕｍ　ｗａｓ　１／２ＭＳ＋０．４ｍｇ／Ｌ　ＩＢＡ（Ｉｎｄｏｌｅ－３－Ｂｕｔｙｔｒｉｃ　ａｃｉｄ）＋３０ｇ／
Ｌ　ｓｕｃｒｏｓｅ＋ａｇａｒ　７．０ｇ／Ｌ（ｐＨ５．８）．Ｔｈｅ　ｓｕｉｔａｂｌｅ　ａｃｃｌｉｍａｔｉｚａｔｉｏｎ　ｔｉｍｅ　ｗａｓ　６ｄａｙｓ．Ｔｈｅ　ｓｔｕｄｙ　ｅｓｔａｂｌｉｓｈｅｄ
ｔｈｅ　ｍｏｒｉｎｇａ　ｒａｐｉｄ　ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ　ｓｙｓｔｅｍ，ａｎｄ　ｐｒｏｖｉｄｅｄ　ｔｅｃｈｎｉｃａｌ　ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｌａｒｇｅ－ｓｃａｌｅ　ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ
ｍｏｒｉｎｇａ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：ｍｏｒｉｎｇａ；ｒａｐｉｄ　ｐｒｏｐａｇａｔｉｏｎ；ｔｉｓｓｕｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ
　 　 辣 木 科 （Ｍｏｒｉｎｇａｃｅａｅ）只 有 一 个 辣 木 属
（Ｍｏｒｉｎｇａ），共有１４个种，在我国进行食用及开发
利用的有印度传统辣木（Ｍｏｒｉｎｇａ　ｏｌｅｉｆｅｒａ　Ｌａｍ．）、
印度改良种辣木（Ｍ．ｏｌｅｉｆｅｒａ　Ｌａｍ．ＰＫＭ　１和ＰＫＭ
２）和非洲辣木（Ｍ．ｓｔｅｎｏｐｅｔａｌａ　Ｌａｍ．）［１］。辣木家族
中最负盛名，研究最多的为辣木 （Ｍ．ｏｌｅｉｆｅｒａ
Ｌａｍ．）［２］，多年生热带落叶乔木，原产非洲东北部和
印度北部的喜马拉雅山麓以及红海沿岸等自然条件
恶劣的地方。辣木是一种既具有生态价值又具有经
济价值的多用途树种［３］，含有丰富的氨基酸、维生
素、矿物质元素和活性酶类物质，抗逆性强，且全株
可利用，具有食用、营养保健、工业、药用等多种用
途，是一种用途广、经济价值高的多功能经济树种，
因此被誉为“奇迹树”［４－５］。
上 海 交 通 大 学 学 报 （农 业 科 学 版） 第３３卷
因辣木用途广泛，我国云南、海南、四川、福建等
地都进行了引种栽培。我国引种栽培的辣木目前主
要依靠种子进行繁殖。辣木种子适宜随采随播，发
芽率随储存时间的延长而降低［６］。我国辣木资源有
限，辣木种子价格非常昂贵，而利用组织培养建立辣
木快速繁殖体系可以在短期内得到大量优质辣木种
苗，有利于我国辣木生产的快速发展。国内关于以
种子为外植体进行辣木离体培养的研究并不多，且
种子消毒方法使用的化学药品多具有较强的危害
性，进行辣木增殖和生根的培养基配方添加激素较
多。本试验旨在通过简单快捷的方法建立辣木快速
繁殖体系，对辣木的种子消毒方法、芽的诱导增殖、
根的诱导培养和移栽炼苗时间进行了探讨，以期筛
选出最佳的辣木快速繁殖培养程序，为辣木工厂化
大规模生产提供参考。
１　材料与方法
１．１　材料
试验材料辣木（Ｍ．ｏｌｅｉｆｅｒａ　Ｌａｍ．）由海南立诺
农业生物技术有限公司提供。
１．２　方法
１．２．１　种子消毒与初始培养
挑选保存良好的饱满辣木种子，去除纸质白翼。
将辣木种子用７５％酒精浸泡３０ｓ，无菌水冲洗３
次，１％的次氯酸钠（ＮａＣｌＯ）溶液分别浸泡１０、１５、
２０ｍｉｎ，无菌水冲洗５次，用滤纸吸干后将其接种于
１／２ＭＳ培养基（本文所用培养基均含蔗糖３０ｇ／Ｌ，
琼脂７．０ｇ／Ｌ，ｐＨ５．８），２５±２℃，１６ｈ／８ｈ（光／暗）
条件下培养。每个处理１０粒种子，６次重复。接种
后２０ｄ统计种子的污染率、死亡率、发芽率。从中
挑选出最适消毒方法，消毒后分别浸种１０、２０、３０
ｍｉｎ，统计其发芽率及最短发芽时间。
１．２．２　诱导及增殖培养
在 ＭＳ培养基中添加６－苄氨基腺嘌呤（６－ＢＡ），
其终浓度分别为０、０．５、１．０、１．５、２．０ｍｇ／Ｌ。种子
发芽后，切去无菌苗的顶芽和根，将带有下胚轴的子
叶节段放置于 ＭＳ培养基上，待其长出不定芽约２
ｃｍ时，从基部切下芽条，接种于含不同６－ＢＡ浓度
的培养基中，每处理１０个外植体，３次重复，每２周
切下约２ｃｍ的芽条继代１次，观察记录再生芽情
况，并计算芽增殖倍数（增殖倍数＝分化芽数／接种
芽数），选出最佳诱导及增殖培养基。
１．２．３　生根培养
以 １／２ＭＳ 为 基 础 培 养 基，添 加 吲 哚 丁 酸
（ＩＢＡ），使其终溶度分别为０、０．２、０．４、０．６、０．８、１．０
ｍｇ／Ｌ。将增殖４代得到的约３～４ｃｍ的健壮小苗
从基部切下分别接种于含不同ＩＢＡ浓度的培养基
中，每处理６个外植体，３次重复。观察记录２０ｄ内
生根情况，选出最佳生根培养基。
１．２．４　移栽试验
生根培养１５ｄ后，辣木幼苗已长出大量健壮的
根，此时将三角瓶的封口膜除去，在２５±２℃，１６ｈ／
８ｈ（光／暗）的条件下炼苗，分别于０、３、６、９ｄ后将
植株从瓶中取出，清洗植株根部培养基，并移栽至穴
盘已灭菌的有机基质（Ｎ＋Ｐ２Ｏ５＋Ｋ２Ｏ２％，有机
质４０％）中，置于２５±２℃，１６ｈ／８ｈ（光／暗）培养
箱中，盖上透明的保湿罩子，留小孔与外界进行气体
交换。随移栽天数增加不断扩大小孔面积，１周之
后取下罩子。２０ｄ后统计移栽成活率。
１．２．５　数据处理
试验数据用Ｅｘｃｅｌ进行初步处理，之后用ＤＰＳ
数据处理软件进行方差分析、ＬＳＤ多重比较。
２　结果与分析
２．１　消毒方法及浸种时间对种子污染和发芽的
影响
辣木种子接种后，无污染的种子一般４ｄ后种
胚开始膨大，５～６ｄ长出胚根，１０ｄ左右长出１ｃｍ
的小苗，约１５ｄ出芽整齐，长成６ｃｍ高的小苗。接
种后１５ｄ还未发芽的种子以后基本不会再发芽。
由表１可以看出，ＮａＣｌＯ处理１０ｍｉｎ与１５、２０
ｍｉｎ达显著差异水平，但后两者之间无显著性差异，
ＮａＣｌＯ处理１５与２０ｍｉｎ发芽率分别可达８１．７％、
８０．０％。故辣木种子用１％ ＮａＣｌＯ处理１５或２０
ｍｉｎ均可达到较好的消毒效果。在此消毒方式的基
础上确定浸种时间，由表２可以看出，浸种时间各处
理间均无显著性差异，但浸种时间为１０ｍｉｎ时发芽
率最高，达８３．３％，随着浸种时间的延长，发芽率不
仅没有增加，反而有所降低，经观察发现浸种时间过
长导致种子表皮破损，可能是该原因导致发芽率
降低。
综上，辣木接种时可采用７５％酒精浸泡３０ｓ＋
１％ ＮａＣｌＯ浸泡１５ｍｉｎ＋无菌水浸种１０ｍｉｎ的
方式。
６６
第３期 杨俊俊，等：辣木快速繁殖体系
表１　ＮａＣｌＯ处理时间对辣木种子消毒效果的影响
Ｔａｂ．１　Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ＮａＣｌＯ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｔｉｍｅ　ｏｎ　ｄｉｓｉｎｆｅｃｔｉｏｎ
ＮａＣｌＯ处
理时间／ｍｉｎ
ＮａＣｌＯ
ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
种子
总数
Ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ
ｓｅｅｄｓ
污染数
Ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ
ｐｏｌｕｔｅｄ　ｓｅｅｄｓ
死亡数
Ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ
ｄｅａｄ　ｓｅｅｄｓ
发芽数
Ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ
ｇｅｒｍｉｎａｔｅｄ
污染率／％
Ｐｏｌｕｔｉｏｎ
ｒａｔｅ
死亡率／％
Ｄｅａｔｈ　ｒａｔｅ
发芽率／％
Ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
ｒａｔｅ
１０　 ６０　 ２２　 ４　 ３４　 ３６．７　 ６．７　 ５６．７ｂ
１５　 ６０　 ８　 ３　 ４９　 １３．３　 ５．０　 ８１．７ａ
２０　 ６０　 ７　 ５　 ４８　 １１．７　 ８．３　 ８０．０ａ
　　注：同列中不同字母表示差异显著（Ｐ＜０．０５），下同。
Ｎｏｔｅ：Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ａｌｐｈａｂｅｔ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｓａｍｅ　ｃｏｌｕｍｎ　ｉｎｄｉｃａｔｅｓ　ｔｈｅ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ　ｉｓ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ（Ｐ＜０．０５）．Ｔｈｅ　ｆｏｌｏｗｉｎｇ　ｔａｂｌｅ　ｉｓ　ｔｈｅ　ｓａｍｅ．
表２　浸种时间对辣木种子发芽的影响
Ｔａｂ．２　Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｓｏａｋｉｎｇ　ｔｉｍｅ　ｏｎ　Ｍｏｒｉｎｇａｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
浸种时间／ｍｉｎ
Ｓｏａｋｉｎｇ　ｔｉｍｅ
种子数
Ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ｓｅｅｄｓ
最短出苗时间／ｄ
Ｔｉｍｅ　ｏｆ　ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
发芽数
Ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
发芽率／％
Ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ　ｒａｔｅ
０　 ６０　 １１　 ４９　 ８１．７ａ
１０　 ６０　 ９　 ５０　 ８３．３ａ
２０　 ６０　 ８　 ４７　 ７８．３ａ
３０　 ６０　 ９　 ４５　 ７５．０ａ
２．２　芽的诱导增殖研究
通过观察发现，辣木在 ＭＳ＋６－ＢＡ（浓度分别为
０、０．５、１．０、１．５、２．０ｍｇ／Ｌ）的培养基中均可生长，
当６－ＢＡ浓度达到２．０ｍｇ／Ｌ时，从外观上看丛芽数
目众多，其数目无法统计，节间极短。另外由于切割
时对辣木茎段造成创伤，一般３ｄ后茎段基部开始
膨大，产生愈伤组织，不同浓度６－ＢＡ的培养基中茎
段出现愈伤组织的时间比较接近。
由表３可以看出，６－ＢＡ 浓度为０、０．５、１．０
ｍｇ／Ｌ时各水平间达差异显著水平，６－ＢＡ　１．０与１．５
ｍｇ／Ｌ之间无显著差异。辣木在 ＭＳ＋１．０ｍｇ／Ｌ　６－
ＢＡ的培养基中增殖倍数较高，且茎段基部仅有少
量愈伤组织产生，适宜作为辣木增殖培养基。此外，
通过多次继代发现，６－ＢＡ浓度为０、０．５、１．０ｍｇ／Ｌ
可继代１０次以上，继代苗依然健壮，而６－ＢＡ浓度
为１．５、２．０ｍｇ／Ｌ时，增殖至第５代时出现植株黄
化，增殖至第６代时，植株出现黄化，并逐渐死亡
现象。
表３　６－ＢＡ浓度对辣木芽诱导的影响
Ｔａｂ．３　Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　６－ＢＡ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｎ　ｂｕｄｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ
６－ＢＡ浓度／（ｍｇ·Ｌ－１）
Ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　６－ＢＡ
芽生长情况
Ｇｒｏｗｔｈ　ｏｆ　ｂｕｄｓ
平均增殖倍数／％
Ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ　ｒａｔｉｏ
０ 芽伸长明显，芽数量增加不明显，节间较长，茎段基部有微量愈伤组织 １．８ｃ
０．５ 芽伸长明显，芽数量生长亦明显，节间较长，茎段基部有少量愈伤组织产生 ３．９ｂ
１．０ 芽伸长不明显，芽数量增加明显，节间不长，茎段基部有少量愈伤组织产生 ６．５ａ
１．５ 芽伸长不明显，芽数量增加明显，节间较短，茎段基部愈伤组织量较多 ６．０ａ
２．０ 芽伸长不明显，芽数量增加明显，节间极短，茎段基部形成大量愈伤组织 —
　　注：“—”代表丛芽数目众多，无法统计数据。
Ｎｏｔｅ：“—”ｒｅｆｅｒｓ　ｔｏ　ｔｈｅ　ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ｂｕｄｓ　ｃａｎｎｏｔ　ｂｅ　ｃｏｕｎｔｅｄ．
２．３　诱导生根
试验结果（表４、图１）表明，辣木幼苗较易生根，
在１／２ＭＳ培养基中添加不同浓度的ＩＢＡ均可生
根。随着ＩＢＡ浓度的增大，幼苗根系逐渐粗壮，生
根量逐渐增多，但辣木根系与茎间的愈伤组织也随
着增加，过大面积的愈伤组织在后续清洗根系时容
易导致根系脱落，不利于移栽。
因此在选择辣木适宜生根培养基时，不仅要考虑
生根率和单株生根量，还要考虑根系与茎间的愈伤组
情况，以及辣木整株的生长状况。通过观察发现，在
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上 海 交 通 大 学 学 报 （农 业 科 学 版） 第３３卷
ＩＢＡ浓度为０．４ｍｇ／Ｌ时，辣木生根质量较高，不仅每
株苗上生根数量较多，根系粗壮，辣木根系与茎间的
愈伤组织也不多，且植株生长良好。故选择１／２ＭＳ
＋０．４ｍｇ／Ｌ　ＩＢＡ为辣木适宜生根培养基。
表４　ＩＢＡ浓度对辣木生根的影响
Ｔａｂ．４　Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ＩＢＡ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｎ　Ｍｏｒｉｎｇａ　ｒｏｏｔｉｎｇ
Ｉ－ＢＡ浓度／
（ｍｇ·Ｌ－１）
Ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ
ｏｆ　Ｉ－ＢＡ
最短生
根时间／ｄ
Ｔｉｍｅ　ｏｆ　ｒｏｏｔｉｎｇ
生根率／％
Ｒｏｏｔｉｎｇ
ｒａｔｅ
平均根数
Ａｖｅｒａｇｅ　ｒｏｏｔ　ｎｕｍｂｅｒ
ｐｅｒ　ｅｘｐｌａｎｔ
根系生长情况
Ｇｒｏｗｔｈ
ｏｆ　ｒｏｏｔ
０　 ６　 １００　 ２．２ｄ 根系细弱，基部生有少量愈伤组织
０．２　 ６　 １００　 ３．５ｃ 根系较细弱，基部生有少量愈伤组织
０．４　 ５　 １００　 ６．０ｂ 根系较粗壮，基部生有少量愈伤组织
０．６　 ５　 １００　 ６．２ｂ 根系较粗壮，基部生有大量愈伤组织
０．８　 ５　 １００　 ８．０ａ 根系粗壮，基部生有大量愈伤组织
１．０　 ５　 １００　 ７．０ａｂ 根系较粗壮，基部生有大量愈伤组织
图１　ＩＢＡ浓度对辣木生根的影响
注：图１中各处理以１／２ＭＳ为基础培养基，添加不同溶度的ＩＢＡ，Ａ～Ｆ分别表示ＩＢＡ浓度为０、０．２、０．４、０．６、０．８、１．０ｍｇ／Ｌ。
Ｆｉｇ．１　Ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ＩＢＡ　ｏｎ　ｍｏｒｉｎｇａ　ｒｏｏｔｉｎｇ
Ｎｏｔｅ：Ｅａｃｈ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｉｎ　ｆｉｇ．１ａｄｄｅｄ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ＩＢＡ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｂａｓｉｓ　ｏｆ　１／２ＭＳ，Ａ－Ｆ　ｉｓ　ｒｅｆｅｒｒｅｄ　ｔｏ　ＩＢＡ　０、０．２、０．４、０．６、０．８、１．０
ｍｇ／Ｌ．
２．４　最适炼苗时间的筛选
通过观察发现，当炼苗天数为６ｄ时移栽成活
率最高，为８６．７％，与其他炼苗天数间达差异显著
水平。当炼苗天数为０ｄ时，移栽成活率最低，为
３．３％，可见不经过炼苗不能直接进行移栽。当炼苗
天数为３ｄ时移栽成活率为５６．７％，死亡植株大多
表现为枯黄、失水严重。当炼苗天数为９ｄ时移栽
成活率为２０．０％，植株大多因污染而死亡，植株表
面被菌丝覆盖。
表５　辣木最适炼苗时间试验
Ｔａｂ．５　Ｔｈｅ　ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｓｅｅｄｌｉｎｇ　ｈａｒｄｅｎｉｎｇ－ｏｆｆ　ｄａｙｓ　ｏｎ
ｔｈｅ　ｓｕｒｖｉｖａｌ　ｒａｔｅ　ｏｆ　ｍｏｒｉｎｇａ
炼苗时间／ｄ
Ｄａｙｓ　ｏｆ　ｓｅｅｄｌｉｎｇ
ｈａｒｄｅｎｉｎｇ－ｏｆｆ
移栽数
Ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ
ｅｘｐｌａｎｔｓ
成活数
Ｓｕｒｖｉｖａｌ
ｎｕｍｂｅｒ
成活率／％
Ｓｕｒｖｉｖａｌ
ｒａｔｅ
０　 ３０　 １　 ３．３ｃ
３　 ３０　 １７　 ５６．７ｂ
６　 ３０　 ２６　 ８６．７ａ
９　 ３０　 ６　 ２０．０ｃ
８６
第３期 杨俊俊，等：辣木快速繁殖体系
３　讨论
３．１　辣木种子消毒
在进行植物组织培养时，外植体的消毒是必不
可少的关键性步骤之一。罗云霞对辣木种子采用
０．１％升汞消毒２５～４０ｍｉｎ，发芽率达７０．３％～
７８．３％［７］；赵翠翠用ＮａＣｌＯ对辣木种子消毒时污染
率达１００％，用０．１％升汞消毒处理１０ｍｉｎ得到无
菌苗，污染率为１９．５８％，萌发率为７７．９２％［８］。升
汞消毒固然可以得到辣木无菌苗，但升汞为剧毒化
学试剂，操作中存在安全隐患，并且升汞的毒性也会
对辣木造成一定的伤害。本试验采用 ＮａＣｌＯ消毒
达到了比较满意的效果，而在操作过程中又大大降
低了安全隐患。
本试验在后续观察中发现保存２年的种子发芽
率仅为２０．０％，且污染率高于保存１年的种子，张
婧在进行辣木快速繁殖时发现类似现象［９］，故在进
行辣木种子消毒处理时应采用保存１年以下的
种子。
３．２　芽诱导与增殖
罗云霞在辣木增殖培养基中添加了０．６ｍｇ／Ｌ
６－ＢＡ＋０．１ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ，增殖倍数可达５．８［５］。本
研究采用的辣木增殖培养基仅添加了６－ＢＡ，不仅减
少了激素种类，增殖倍数也有所提高。本试验发现
组培苗培养时间过长会出现幼苗黄化、叶片脱落现
象，推测其原因可能是辣木组培苗消耗营养较快，继
代周期以２周１次为宜。
在不同６－ＢＡ浓度培养基中，辣木外植体随６－
ＢＡ浓度增加，其节间长度逐渐缩短，促进腋芽萌
发，但抑制了苗的伸长生长。这与向素琼［１０］和武新
琴［１１］的研究结果相符。在生产实践中进行增殖时
可采用 ＭＳ＋１．０ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ的培养基，以较高的
增殖能力得到较多的组培苗，先在继代５～６次后转
入 ＭＳ培养基或 ＭＳ＋０．５ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ的培养基中
培养两周，促进伸长，之后转入生根培养基进行生根
培养。
３．３　生根与炼苗移栽
辣木生根一般采用ＩＢＡ、ＮＡＡ 及ＩＡＡ。朱伟
银采用１／２ＭＳ＋０．１ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ＋０．２ｍｇ／Ｌ　ＩＢＡ
生根率达６１．２５％［１２］。罗云霞指出 ＮＡＡ 浓度为
０．０５ｍｇ／Ｌ时生根率为８０％，随 ＮＡＡ浓度升高生
根率降低，ＩＢＡ浓度为０．１ｍｇ／Ｌ时生根率达９８％，
须根４～５根［１３］。赵翠翠采用１／２ＭＳ＋０．１ｍｇ／Ｌ
ＮＡＡ生根率达５３．０３％，平均根数达６．７根。采用
ＭＳ＋０．５ｍｇ／Ｌ　ＩＡＡ时生根率达７８．０６％，平均根
数为３．２４根［８］。本试验ＩＢＡ浓度为０．４ｍｇ／Ｌ时
生根率达１００％，平均根数可达６根。可见仅用
ＩＢＡ即可达到生根效果。
罗云霞提出炼苗要使组培苗根部变成黄褐色之
后再进行移栽［１３］。本试验中炼苗６ｄ后移栽成活率
最高，此时组培苗出现将要污染的迹象而又未大面
积污染。
３．４　辣木快速繁殖程序
综合本试验结果，总结辣木适宜的快速繁殖程
序为：保存１年以下的辣木种子７５％酒精处理３０ｓ
后采用１％ ＮａＣｌＯ　１５ｍｉｎ进行消毒，浸种１０ｍｉｎ
后接种于１／２ＭＳ培养基；利用种子发芽得到的无
菌苗，切下子叶节放置在 ＭＳ培养基上，待６～７ｄ
长出大量不定芽后，切下单芽，接种于增殖培养基
（ＭＳ＋１．０ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ）中进行增殖；当带芽茎段长
至２～３ｃｍ时，将其切下接种于生根培养基（ＭＳ＋
０．４ｍｇ／Ｌ　ＩＢＡ）中，１４ｄ左右辣木幼苗长出大量健
壮的根，此时将培养瓶的封口膜除去，在２５±２℃，
１６ｈ／８ｈ（光／暗）的条件下炼苗６ｄ，清洗植株根系，
移栽至灭过菌的基质中，盖上透明的保湿罩子，留小
孔与外界进行气体交换；随移栽天数增加不断扩大
小孔面积，１周之后取下罩子。
本研究建立了辣木快速繁殖体系，平均增殖倍
数可达６左右，平均３５ｄ可得到生根组培苗，且方
法简便，种子处理采用消毒剂危害性小，增殖和生根
添加激素种类较少，生产实践中便于规范性操作，为
辣木规模化生产应用提供参考。
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２００７．
（上接第６４页）
不同成熟度的配子体材料等因素对繁殖效果的
影响。
本文采用棕榈垫作为立体绿化的载体。此外，
有专利表明旧衣服和纸浆经过处理后也可以用来栽
培苔藓，并且可以生产出苔藓群落用于结构物表面
绿化［１４］。因此，在今后的试验中，可以考虑不同来
源的栽培支持物，比较它们的效果，结合成本等因
素，为大规模绿化模块的生产提供可操作性的方案。
藓类植物在绿化载体上的繁殖和生长适应性评
估上，本文提出了一个综合评估指数，能够较好地将
各指标综合在一起，对研究的藓类植物的适用性进
行了排序。从现有的１０个指标来分析，东亚砂藓和
细叶莲叶藓有较好的生长表现。在同等条件下栽培
１６种顶蒴藓类，仅有以上５种藓类有较好的生长状
况，分析其所属科得到，东亚砂藓是紫萼藓科，细叶
莲叶藓和双色真藓都是真藓科，剑叶扭口藓和缺齿
小石藓是丛藓科。因此，在今后立体绿化藓类植物
种类筛选中，注意从紫萼藓科、真藓科和丛藓科的种
类中进行筛选。
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