全 文 ：热 带 农 业 科 技 2016,39(2）
Tropical Agricultural Science & Technology
辣木种苗组培快繁技术研究
李惠波，李海泉，周堂英，杨 迪
（云南省热带作物科学研究所，云南 景洪 666100）
摘要：对辣木的组织培养和种苗移栽管理技术进行研究，结果表明：适宜辣木的腋芽生长培养基为
MS+1.0 mg/L IBA+0.5 mg/L6-BA，生根培养基为MS+1.5～2.0 mg/L IBA，添加 0.5 g/L 活性炭。辣木组
培苗移栽时应控制空气湿度＞90%。
关键词：辣木；种苗；组培快繁
中图分类号：S59 文献标识码：A 文章编号：1672-450X（2016）02-0014-03
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Rapid Propagation of Moringa oleifera in vitro
LI Huibo，LI Haiquan，ZHOU Tangying，YANG Di
Yunnan Institute of Tropical Crops, Jinghong 666100, China
Abastract: Experiments of tissue culture and seedling transplanting of Moringa oleifera were conducted. The results have indi-
cated that the optimun conditions for axillary growth of Moringa oleifera is in medium of MS +1.0 mg/L IBA+ 0.5 mg/L 6-BA
while MS+1.5～2.0 mg/L IBA，adding activated Carbon 0.5g/L for rooting. Humidity should be controlled to more than 90%
while seedling transplanting.
Key words: Moringa oleifera; seedlings; rapid propagation in vitro
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收稿日期：2016－03－09
辣木（Moringa oleifera）又称鼓槌树，是辣木科
（Moringaceae）辣木属（Moringa Adans.）植物，它有很
多种，其中最具利用价值的是多油辣木（M. oleif-
era Lam.）［1］，也是目前栽培面积最大、研究最多的
辣木种。近年来，随着中国古巴辣木合作的开展
和我国政府对辣木研究及其栽培加工利用的重
视，国内辣木产业发展和相关研究蓬勃兴起，对辣
木优良种苗的需求也日显急迫。目前生产上使用
的辣木种苗多为实生植株，性状表现丰富多样，枝
条颜色有绿色与红色、被毛与无毛的差别，植株有
开花多少、生长势强弱的差别，不同种类的口感也
略有不同，且毒性也有差别［2］。因此，有必要对辣
木进行优选，并通过组织培养技术进行快繁，满足
生产需求。
辣木组织培养现有的报道中，多以辣木种子作
为外植体建立无菌体系，并对其进行增殖及生根
诱导研究［3］；也有零星采用实生植株的茎段作为
外植体进行组培研究的报道［4］。本研究首先通过
筛选出性状优异的实生单株，再以辣木优选单株
的茎尖和枝条作为外植体建立无菌快繁体系，筛
选出组培快繁的适宜培养基，获得生长性状优良、
整齐一致的辣木种苗；通过此技术还能为辣木新
品种的选育节约大量时间。
1 材料和方法
1.1 辣木组织培养
1.1.1 外植体的选择和处理
选择生长健壮，开花少或不开花的植株为外植
体供体植株。以刚抽出的新枝条作为外植体，去
除叶片，并以腋芽为外植体长度中心，切成 2～
3 cm 的茎段，用 75%酒精灭菌 30 s 后用无菌水冲
洗，再用 0.1%的升汞灭菌 20 min，无菌水冲洗 3
遍。将灭菌后的茎段两端切除，接入培养基中。
1.1.2 腋芽生长培养基筛选
以 MS 培养基为基础培养基，生长素 IBA 设
0.5 mg/L、1 mg/L、1.5 mg/L、2.0 mg/L 四种浓度，分裂
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DOI:10.16005/j.cnki.tast.2016.02.005
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素选择常用的 6-BA，设 0.5 mg/L、0.8 mg/L、1.2 mg/L
三 种浓度，共 12 个培养基配方组合。加入糖
30 g/L，调整培养基 pH值为 5.8～6.0。
观察并记录不同激素配比对辣木组培苗生长
的影响，筛选出适宜辣木外植体的生长培养基。
1.1.3 生根培养基筛选
选择培养基配方为 MS+IBA（0.5 mg/L、1 mg/L、
1.5 mg/L、2 mg/L）+活性炭 0.5 mg/L，切取 3 cm 左右
的茎尖为材料，接种到培养基中进行筛选。
1.2 组培苗移栽管理
将已生根的组培苗移至室外练苗 3～5 d，取出
用多菌灵 100 倍液进行处理，于温室大棚内（空气
湿度＞60%，夜晚达到 90%）移栽到栽培基质中。
移栽时对以下两种移栽方法进行对比：
（1）打开瓶口后立即进行移栽和喷雾，并用塑
料布密封保湿。
（2）打开瓶口后立即进行移栽和喷雾，不密封
保湿，每隔2 h喷雾加湿。
待移栽苗成活且开始生长后逐渐减小空气湿
度和增加光照，使其正常生长。记录两种移栽方
法对组培苗生长的影响。
2 结果与分析
2.1 腋芽生长培养基的筛选结果
辣木茎段和茎尖在培养基中有伤口的一端极
易形成愈伤组织，但愈伤组织再分化出幼苗很
难。腋芽生长很快，约 15 d 腋芽就能长到 5 cm 左
右，且只要有芽点的地方都会发出新芽（图 1）。因
此，培养基筛选时，以新芽生长最快、愈伤组织较
少的培养基为最佳。
经过试验，6-BA 的用量与愈伤组织的生长成
正相关，IBA 的用量与芽苗的生长速度呈正相关，
但当 IBA 浓度达到 2.0 mg/L 时，芽苗由于生长太快
而变得极其幼嫩且不够粗壮。因此，选择 MS+
1.5 mg/L IBA+0.5 mg/L 6-BA为辣木腋芽生长的最佳
配方，每 20～30 d繁殖一代。
2.2 生根培养基的筛选结果
为了同时达到抑制愈伤组织的生长和生根的
目的，在生根培养基中添加活性炭和生长素 IBA。
由于活性炭的添加大大降低了生长素促进生长的
作用，故选择较大浓度的 IBA，配方为 MS+1.5～
2.0 mg/L IBA 添加 0.5 g/L 活性炭，生长迅速且生根
良好（图 2）。
2.3 组培苗的移栽管理
通过观察，从辣木树上采摘的新鲜枝条在离开
母体后极易掉叶和萎蔫，判断辣木的组培苗移栽
应需要较高的空气湿度，因而组培苗移栽选择在
温室大棚内进行。通过试验，辣木组培苗的叶片
在短暂（1 h以上）的较低空气湿度（＜80%）条件下
就会萎蔫掉落，甚至茎尖也会枯萎。因此，必须移
栽后立即喷雾并用塑料布密封保湿，成活率可达
到95%以上。
3 讨论
随着辣木的普及推广，辣木的组织培养相关研
究也越来越多，但由于育种研究的滞后，并且以种
子作为外植体进行灭菌相对简单，通常的做法都
是直接以种子为材料进行组培繁殖［3］。到目前为
止，仍极少有通过对实生苗单株进行优选并进行
组培无性繁殖的报道［5］。
辣木属于速生植物，自身激素含量较高，在培
养基配制时考虑低浓度的激素用量。在生长培养
图1 辣木腋芽组培苗 图2 辣木组培苗生根
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基的筛选中，王洪峰等［6］未加入 IBA也可获得辣木
组培苗。本研究认为，IBA的用量与芽苗的生长速
度呈正相关，但当 IBA浓度达到 2.0 mg/L 时，芽苗由
于生长太快而变得极其幼嫩且不够粗壮，加入一
定量浓度的 IBA 更有利于达到获得优质的辣木组
培苗的目的。
辣木组培苗的伤口极易产生愈伤组织，在组培
生根时也非常容易产生愈伤组织，且愈伤组织很
难再分化出幼苗。因此，在生根培养基中需要添
加一定量活性炭抑制愈伤组织生长，这与赵翠翠
等［6］的研究结论一致。
辣木移栽时所需湿度高，这也是阻碍辣木组培
种苗繁殖的一大难点［7］。辣木组培苗的叶片在短
暂（1 h以上）的较低空气湿度（＜80%）条件下就会
萎蔫掉落，甚至茎尖也会枯萎。因此，移栽后必须
立即喷雾并用塑料布密封保湿措施，以提高移栽
植株的成活率。
本研究所建立的辣木组培快繁技术完全可以
为辣木的新品种筛选节约大量时间和使辣木田间
种植的生长表现达到整齐一致。
参考文献：
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科学研究院，2013．
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[3] 武新琴，智顺．不同激素配比对辣木组培苗生长的影响
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[4] 杨俊俊，曲美玲，李月，等．辣木快速繁殖体系［Ｊ］．上
海交通大学学报（农业科学版），2015（3）：65-70.
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研究［Ｊ］．西南农业学报，2015（5）：2218-2222．
[6]王洪峰，韦强．利用辣木茎段建立植株再生体系的研究
［Ｊ］．浙江林业科技，2008（5）：40-43．
[7] 赵翠翠．多用途木本植物辣木快繁体系建立的研究
［Ｄ］．福州：福建农林大学，2012．
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《热带农业科技》是由云南省热带作物科学研究所与云南省热带作物学会主办的省级科技期刊（1977
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有：天然橡胶、热带亚热带果蔬、药用与功能植物、香料与饮料作物、热带观赏园艺、热区经济作物、专题论
述等，报道重点为天然橡胶、咖啡、热带亚热带水果、药用与功能植物、热带花卉等资源开发利用与保护。
本刊是我国西南片区专门报道热带农业科研与产业发展的科技期刊，也是全国为数不多的热带农业领域
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