免费文献传递   相关文献

The Study of Genetic Diversity in Tibetan Pig of Tibet

西藏藏猪遗传多样性研究



全 文 :·研究报告·
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2015, 31(5):224-230
藏猪是世界上少有的高原型猪种,是唯一能够
适应高原海拔气候和以放牧为主的猪种[1]。藏猪主
产于青藏高原,包括云南迪庆藏猪、四川阿坝及甘
孜藏猪、甘肃的合作猪以及分布于西藏自治区山南、
林芝、昌都等地的藏猪类群。由于近年来繁殖育种
手段不断改进,高强度选育,加之生态环境的改变,
致使许多拥有丰富遗传资源的地方品种数量锐减,
纯种藏猪的分布范围和数量正在不断减少,已面临
种群灭绝的危险[2]。因此,最大限度地保存藏猪的
遗传多样性是藏猪保护与利用面临的突出问题。
mtDNA D-loop,即 mtDNA 的非编码区,该区的
进化速率较其他区域高 5-10 倍,是目前 mtDNA 研
究的热点,被广泛应用于哺乳动物遗传多样性和种
内、种间亲缘关系等方面的研究[3-5],甘佳等[6]以
微卫星标记测定了四川境内阿坝、稻城和德格 3 个
藏猪遗传多样性。近年来,应用 mtDNA 研究猪的遗
传多样性及系统发育比较多[7-9],Gou 等[10]评估了
随机和选择性繁殖猪种群之间的遗传多样性,结果
收稿日期 :2014-09-10
基金项目 :国家自然科学基金(青年)项目(31101682)
作者简介 :郭永博,男,硕士研究生,研究方向 :动物遗传理论与应用 ;E-mail :guoyongbo016@163.com
通讯作者 :蔡原,女,博士,副教授,研究方向 :动物遗传育种与繁殖 ;E-mail :caiyuan@gsau.edu.cn
西藏藏猪遗传多样性研究
郭永博  蔡原
(甘肃农业大学动物科学技术学院,兰州 730070)
摘 要 : 采用 mtDNA D-loop 作为分子标记,对西藏的 4 个藏猪群体(林芝、山南、昌都和日喀则)遗传多样性进行了研究。
结果表明,西藏藏猪 mtDNA D-loop 高变区 A+T 含量(62.90%)明显高于 G+C 含量(37.1%),富含 A 和 T,存在碱基偏倚性。在
长度为 435 bp 的序列中,共检测到 20 个变异位点,界定了 26 个单倍型,单倍型多样度(Hd)为 0.705±0.021,平均核苷酸差异
数(k)为 1.231,核苷酸多样度(Pi)为 0.002 83。其中,Hd、k 和 Pi 在昌都藏猪群体中最高,日喀则藏猪最低。此外,Hap1 和
Hap3 单倍型是 4 个群体的共享单倍型,表明 4 个藏猪群体存在两个共同的母系祖先单倍型。
关键词 : 藏猪 ;mtDNA D-loop ;单倍型 ;遗传多样性
DOI :10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2015.05.034
The Study of Genetic Diversity in Tibetan Pig of Tibet
Guo Yongbo Cai Yuan
(Faculty of Animal Science & Technology,Gansu Agriculture University,Lanzhou 730070)
Abstract: mtDNA D-loop was selected as a marker to determine genetic diversity of the 4 Tibetan pig populations(Nyingchi, Shannan,
Chamdo and Shigatse)in Tibet. The results showed A + T content(62.90%)was significantly higher than the G + C content(37.1%),
indicating that Tibetan pigs’ mtDNA D-loop was rich in A and T; there was the presence of a base bias. A total of 20 variable sites and 26
haplotypes were identified in the 435 bp nucleotide sequence of mtDNA D-loop, haplotype diversity(Hd)was 0.705 ± 0.021, the average
number of nucleotide differences(k)was 1.231, and nucleotide diversity(Pi)was 0.00283. Among them, Hd, k and Pi were the highest
in Chamdo Tibetan pig population, and lowest in Shigatse. In addition, Hap1 and Hap3 were 4 shared haplotypes, revealing that there were 2
common maternal ancestor haplotypes in 4 Tibetan pig populations.
Key words: Tibetan pig ;mtDNA D-loop ;haplotype ;genetic diversity
2015,31(5) 225郭永博等:西藏藏猪遗传多样性研究
表明随机繁育种群单倍型多样性显著大于选择性繁
育种群 ;Li 等[11]研究了西藏野猪的遗传适应与高
海拔有关,表征了家猪唾液分泌增加的遗传基础 ;
Jiao 等[12]测定藏猪的遗传多样性发现,合作猪目前
具有较高的遗传多样性,可以进行合理利用 ;Zhao
等[13]利用 mtDNA 研究了中国猪的起源和演化,表
明了中国国内猪可能是起源于野生长江中游地区及
中国南方的公猪 ;Gou 等[14]通过研究藏猪、亚洲
家猪和野猪 mtDNA 高变区,认为在西藏高原和东南
亚岛屿地区存在家猪的两个新的起源中心 ;张亚平
等[15]测定了云南 4 个地方猪品种的 mtDNA D-loop
高变区,结果显示 mtDNA 多态能有效作为品种内遗
传多样性指标,及云南 4 个地方猪品种大多数个体
起源于一个野猪亚种[15]。以 mtDNA 分子标记研究
西藏藏猪遗传多样性报道较少,因此,本研究对分
布在西藏 4 个藏猪 mtDNA D-loop 高变区序列进行研
究,以期为藏猪资源保护提供参考依据。
1 材料与方法
1.1 材料
本研究采集了西藏林芝藏猪、山南藏猪和昌都
藏猪 3 个群体共 267 头藏猪血液样品,详见表 1。
1.2 方法
1.2.1 试验方法 参照 《分子克隆实验指南》[16],
采用常规酚 - 氯抽提法提取基因组 DNA。根据发
表 在 GenBank 中 的 西 藏 藏 猪 mtDNA D-loop 序 列
(Accession :AF486868) 设 计 引 物 :上 游 引 物(P-
L16405):5-ATACCAATCACTAGCATCAT-3 ;下 游
引 物(P-H653):3-CCGGATCATGAGTTCCATGAA-
GT-5。
进行聚合酶链式反应,PCR 扩增反应体系体
积 为 :60 μL, 其 中 :10×Buffer 5.0 μL(Mg2+ 1.5
mmol/L)、dNTP(2.5 mmol/L)1.0 μL、 上 下 游 引 物
各 5 μL、Taq DNA 聚合酶(5 U/μL)0.25 μL、模板
DNA 1 μL,加双蒸水至 28.0 μL。扩增条件 :94℃ 2
min;94℃ 20 s,58℃ 30 s,72℃ 1.5 min,35 个循环;
72℃ 10 min,4℃保存。PCR 产物经 1% 的琼脂糖凝
胶电泳检测,扩增产物送上海生工生物工程股份有
限公司纯化并进行双向测序。
1.2.2 数据处理 测得的原始序列,通过 Chromas-
Version2.33(http://www.technelysium. com.au/chromas.
html)进行人工编辑,校对电泳峰图与碱基对应关系,
剪切非研究区域序列。分析中引用来自于 GenBank
(http ://www.ncbi.nlm.nih.gov/Genbank/index.html)
的 西 藏 藏 猪 相 关 序 列, 见 表 1。 并 用 MEGA 5.0
(http ://www.megasoftware.net)建立序列数据库,采
用 Clustal X 1.8(http ://www.igbmc.ustrasbg.fr/pub/
ClustalX)进行同源序列比对分析。采用 DnaSP 5.10.1
(http ://www.ub.edu/dnasp) 进 行 核 苷 酸 变 异 位 点、
单核苷酸多态性、单倍型数目、单倍型多样性分析
以及计算单倍型多样度、核苷酸多样度和平均核苷
酸差异度。
表 1 样品信息
群体 样品量 GenBank 登录号 来源
林芝藏猪(LT) 119
122
HQ148311-15、HQ148326-43
JX068141-236
未提交
(Guo X,2011)
(Jin L,2013)
本研究
山南藏猪(ST) 8
11
72
AY463062、AY486116
DQ152868、DQ152874、DQ152892 DQ379101-2
AF486856
HQ148356-66
未提交
(Gongora J,2004)
(Fang M,2006)
(Yang J,2004)
(Guo X,2011)
本研究
昌都藏猪(CT) 17
73
HQ148394-410
未提交
(Guo X,2011)
本研究
日喀则藏猪(RT)
合计
24
446
JX068117-40 (Jin L,2013)
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2015,Vol.31,No.5226
2 结果
2.1 mtDNA D-loop高变区SNPs分析
西 藏 藏 猪 mtDNA D-loop 高 变 区 经 扩 增、 测
序、编辑后,获得长度为 435 bp 核苷酸序列。用
MAGE5.0 软件进行碱基分析发现,T、C、A 和 G 4
种核苷酸的平均比例分别为 27%、24%、35.90% 和
13.10%,A+T 含量(62.90%)明显高于 G+C 含量
(37.1%),可见藏猪 mtDNA D-loop 高变区富含 A 和 T,
同时体现了哺乳动物线粒体 DNA 碱基组成的基本
特点。利用 Dnasp5.10.1 软件对 4 个藏猪 446 个个体
的 mtDNA D-loop 区进行单核苷酸多态性分析(single
nucleotide polymorphism,SNP),共检测到 20 个多态
位点,占所测核苷酸的 4.60%,说明该核苷酸序列
突变率小,有较好的稳定性,其中有 3 个单一多态
位点和 17 个简约信息位点(表 2)。
表 2 西藏藏猪 mtDNA D-loop 高变区变异位点数统计
群体 变异位点 单一多态位点 简约信息位点
林芝藏猪(LT) 12 0 12
山南藏猪(ST) 13 3 10
昌都藏猪(CT) 16 5 11
日喀则藏猪(RT) 2 0 2
碱基变异数(S)分布结果(图 1-A)表明,在
第 1-40 个碱基之间没有发现碱基变异,说明这是
一个相对保守的区域,变异区在第 41 个碱基与 435
个碱基之间,而高变区集中在第 157-417 碱基之
间。核苷酸多样度(Pi :序列间每个位点的平均核
苷酸差异数)变化趋势(图 1-B)显示,D-loop 区核
苷酸多样度最高峰值出现在第 250 碱基左右(图 1)。
2.2 遗传多样性分析
核苷酸多样性分析表明,西藏藏猪单倍型多样
度(Hd±Sd)、核苷酸多样度(Pi)和平均核苷酸差
异 数(k) 分 别 为 0.705±0.021、0.002 83 和 1.231。
其中,山南藏猪和昌都藏猪两个群体的 3 个多样性
参数均高于西藏藏猪的整体水平,而林芝藏猪和日
喀则藏猪群体均低于整体水平(表 3)。无论从单倍
型数、单倍型多样度还是核苷酸多样度来看,昌都
藏猪遗传多样性最高,而日喀则藏猪最低。
2.3 单倍型分析
西藏藏猪单倍型分析表明,根据检测到的 20 个
多态位点,界定了 26 个单倍型(Hap1-Hap26,表
4)。其中,两个及以上群体的共享单倍型共有 13 个,
而 4 个群体共享的只有 2 个(Hap1 和 Hap3)。群体
S
Pi
0
0 100 200 300 400⻡สս㖞bp
0 100 200 300 400⻡สս㖞bp
0.002
0.004
0.006
0.008
0.010
0
2
4
6
8
B
A
图 1 mtDNA D-loop 高变区序列碱基变异(A)及核苷酸
多样度(B)分布
表 3 西藏藏猪 mtDNA D-loop 遗传多样性
群体 样本数 单倍型数 单倍型多样度(Hd) 核苷酸多样度(Pi) 平均核苷酸差异数(k)
林芝藏猪(LT) 241 14 0.538±0.036 0.00198 0.86
山南藏猪(ST) 91 14 0.816±0.029 0.00351 1.525
昌都藏猪(CT) 90 17 0.883±0.014 0.00431 1.876
日喀则藏猪(RT) 24 3 0.420±0.110 0.00127 0.551
西藏藏猪 446 26 0.705±0.021 0.00283 1.231
注 :西藏藏猪遗传多样性参数是对 4 个群体的整体分析
2015,31(5) 227郭永博等:西藏藏猪遗传多样性研究
间的特有单倍型数差异较大,除日喀则藏猪没有特
有单倍型,其他 3 个群体都存在特有单倍型,其中
林芝藏猪特有单倍型数最多(6 个),占单倍型总数
的 23.08%,山南藏猪特有单倍型最少(3 个)。单倍
型频率差异较大,Hap1 单倍型频率最高,有 229 个
个体,Hap6、Hap3、Hap9 和 Hap16 频率依次降低,
个体数分别为 51、42、32 和 29。其余 11 个单倍型
频率都低于 10。
表 4 西藏藏猪 mtDNA D-loop 高变区变异位点分布
单倍型 变异位点 林芝(LT) 山南(ST) 昌都(CT) 日喀则(RT) 合计
Hap_1 GTGCTCGCTCGCTAATCTAA 160 33 18 18 229
Hap_2 ..................G. 3 3
Hap_3 .....T...T.......... 18 10 12 2 42
Hap_4 .....T.....T........ 3 3
Hap_5 ...T.T...T.......... 2 2
Hap_6 .....T.............. 30 8 13 51
Hap_7 ...T.T.............. 1 1
Hap_8 ....CT.......G...... 2 2
Hap_9 ......A............. 6 11 15 32
Hap_10 ...............C.... 5 1 1 7
Hap_11 ....C....T.......C.. 2 1 3
Hap_12 .................C.. 1 1 2
Hap_13 A.................G. 4 1 1 6
Hap_14 ............C....... 4 4
Hap_15 ....C............... 1 1
Hap_16 .........T.......... 14 11 4 29
Hap_17 .......T............ 1 1
Hap_18 .....T...T.....C.... 3 3 6
Hap_19 .....TA............. 3 2 5
Hap_20 ..........A......... 2 3 5
Hap_21 ....CT...T.......... 1 1
Hap_22 .C.T....CT......T... 2 2 4
Hap_23 .....T...T....G..... 2 2
Hap_24 .................C.T 1 1
Hap_25 .........T.....C.... 3 3
Hap_26 ..A..............C.. 1 1
注 :圆点表示与第一个序列有相同碱基 ;变异位点中由上至下的数字表示变异位点的位置
3 讨论
3.1 藏猪mtDNA D-loop高变区序列特征
由于饲养量下降和杂交改良等因素,藏猪资源
受到严重威胁[17],现已被列入《 国家级畜禽遗传
资源保护名录》。开展藏猪种质资源调查研究,可
为其遗传资源保护提供科学依据。本研究通过西藏
藏猪 mtDNA D-loop 序列遗传多样性来揭示遗传资
源的保护必要性。在分析的 446 头西藏藏猪 mtDNA
D-loop 长度为 435 bp 的核苷酸序列中,不考虑插入、
缺失和 Poly(C)末端长度变异的条件下,共检测
到 20 个变异位点,占核苷酸总数的 4.60%,表明西
藏藏猪具有较低的遗传变异,其中,昌都藏猪碱基
变异位点数最多(16 个),日喀则最少(2 个),说
明昌都藏猪受选育程度和人工选择机率较其他 3 个
群体高,而日喀则藏猪可能由于地域差异、长期近
交使得基因群体内具有较高的遗传一致性,这与蔡
原等[7]研究一致。mtDNA 分子是由很不均一的片
段构成的,G+C 含量在 21%-50%,其中无脊椎动物
为 21%-43%,脊椎动物为 37%-50%[18],本试验中
为 37.10%,略高于变化范围最低值。碱基组成分析
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2015,Vol.31,No.5228
表明,A+T 平均含量 62.90%,显著高于 G+C 含量
37.10%。其中,A+T 的含量可以反映出序列的变异性,
具有高比例的 A+T 可能是 D-loop 序列变异较快的原
因之一,同时也说明 mtDNA D-loop 高变区富含 A、
T,表现出很强的碱基偏倚性,这一结果与 mtDNA
D-loop 序列进行家禽[19,20]、羊[21,22]、牛[23,24]和
猪[25,26]等家养动物的研究结果一致。
3.2 西藏藏猪遗传多样性分布规律
单倍型多样度(Hd)和核苷酸多样度(Pi)是
衡量一个 mtDNA 变异程度的两个重要指标,Hd 值
和 Pi 值越大,多样性程度越高,遗传多样性越丰富,
反之,多样性程度越低,遗传多样性越贫乏。另外,
mtDNA 的单倍型多样性指数也可以衡量种内的变异
程度,它的含义类似于核 DNA 的杂合度[27]。据统
计同种动物的个体之间的平均核苷酸顺序奇异值在
0.3%-4.0%,有时甚至可高达 10%[28]。本研究的西
藏藏猪 4 个,总的单倍型数 20 个,单倍型多样度
(Hd±Sd)为 0.705±0.021,平均核苷酸差异数(k)
为 1.231,核苷酸多样度(Pi)为 0.002 83。研究结
果显示,昌都藏猪、山南藏猪单倍型多样度、平均
核苷酸差异数、核苷酸多样度均高于整体水平,而
林芝藏猪低于整体水平,日喀则藏猪明显低于整体
水平,并且依次降低,证明昌都和山南藏猪品种的
遗传变异程度较高,遗传基础比较广泛,具有丰富
的遗传多样性[29],可能由于昌都藏猪的群体数量较
大且分布范围较广,而日喀则藏猪则局限在一个较
为封闭的环境中,与其它群体之间基因交流的机会
极少[30]。基于 mtDNA D-loop 序列对梅山猪、二花
脸、 苏 钟 猪 和 保 山 猪 遗 传 多 样 性 分 析 表 明, 其
Hd 和 Pi 值 分 别 为 0.784、0.400、0.838、0.883 和
0.005 6、0.000 9、0.004 7、0.003 9,表明二花脸的
多样性低于其他 3 个猪种[31]。采用相同的研究方法
研究表明合作、迪庆、甘孜、阿坝 4 个藏猪群体 Hd
分别为 0.963、0.930、0.303 和 0.830,Pi 分别为 0.008 2、
0.005 5、0.000 7 和 0.003 6[12]。本研究中,藏猪 Hd
和 Pi 分别为 0.705 和 0.002 83,与梅山猪、二花脸、
苏钟猪和保山猪及藏猪合作群体、迪庆群体和阿坝
群体相比,其遗传多样性仅高于二花脸猪和藏猪中
的甘孜群体,说明了西藏藏猪群体受人工选择的影
响小,长期自然条件产生的突变类型在该群体中得
到积累,但可能由于与外界交流少,群体内近亲高
度繁殖,使其遗传多样性比较有限[32]。同时,瓶颈
效应与人工选择共同导致了西藏藏猪等在内的中国
家猪遗传多样性的降低,特别是高强度选择猪种对
地方猪种的杂交产生的后果更为严重。对 26 个单倍
型进行区域分布研究发现,昌都藏猪单倍型多样度
最高,也高于西藏藏猪的整体水平,同时相对于其
它 3 个群体,单倍型数最多,也说明昌都藏猪的遗
传多样性最丰富。联合国粮农组织历年关于家养动
物报告中都涉及到有关遗传多样性调查的内容,不
断改进和完善保存理论和保存机制,不断加大各区
域保种项目的投资力度[33],因此,在藏猪遗传资源
保护过程中应该遵循遗传多样性原则进行优先保护。
3.3 西藏藏猪系统发生关系
Hap1 和 Hap3 是 4 个群体的共享单倍型,说明
可能具有共同的两个母系起源。有研究表明,包括
藏猪在内的家猪来源于欧洲野猪和亚洲野猪[34-36],
而且是多次驯化事件的结果[37],就不同藏猪群体而
言存在着共同的母系起源,但在几千年的驯化中形
成了不同的进化分枝,由于生活环境差异各群体也
存在一定数量的特有单倍型,且频率差异较大[25],
其中藏猪的进化分支有一定的地理特征,即群体特
异性,欧洲起源家猪与亚洲起源家猪及藏猪明显的
分为两个不同的进化枝,在藏猪群体中西藏藏猪与
甘孜猪处于同一个进化枝,而合作猪形成了一个相
对独立的进化分枝,阿坝猪在各个进化枝中都有出
现[12],而西藏藏猪中除日喀则藏猪没有特有单倍型,
其它 3 个都存在特有单倍型,其中林芝藏猪特有单
倍型数最多(6 个),占单倍型总数的 23.08%,山南
藏猪特有单倍型最少(3 个)。可能由于日喀则藏猪
没有经过长期的自然选择和人工选择,受人工选育
的程度低,致使该群体没有形成各自独特的遗传结
构,其余 3 个群体虽然在遗传结构上有独特性,但
它们都属于一个地区,与日喀则藏猪群体有密切的
关系[38,39]。
4 结论
本研究对西藏藏猪 mtDNA D-loop 高变区特征、
遗传多样性分布规律和系统发生关系研究表明,昌
2015,31(5) 229郭永博等:西藏藏猪遗传多样性研究
都藏猪的遗传多样性最高,山南藏猪、林芝藏猪、
日喀则藏猪遗传多样性依次降低,说明昌都藏猪的
群体数量较大且分布的范围较广,而日喀则藏猪则
局限在一个较为封闭的环境中,群体间相距较远,
基因交流的机会较少,外界交流较少,群体内高度
近交繁殖,受人工选育程度低,但它们可能具有共
同两个母系起源,在遗传资源保护过程中应遵循遗
传多样性原则进行优先保护。
参 考 文 献
[1] 辛盛鹏 , 石达 , 晋美加措 , 等 . 西藏自治区藏猪遗传资源保护
与开发利用研究[J]. 中国牧业通讯 , 2011(4):49-51.
[2] 强巴央宗 , 谢庄 , 田发益 . 高原藏猪现状与保种策略[J]. 中
国畜牧杂志 , 2001, 37(6):46-47.
[3] Brown WM. Mechanism of evolution in animal mitochondrial
DNA[J]. The New York Academy of Sciences, 1981, 361(1):
119-134.
[4] Grossi SF, Lui JF, Garcia JE, et al. Genetic diversity in wild(Sus
scrofa scrofa)and domestic(Sus scrofa domestica)pigs and their
hybrids based on polymorphism of a fragment of the D-loop region in
the mitochondrial DNA[J]. Genet Mol Res, 2006, 5(4):564-
568.
[5] Royo LJ, Alvarez I, Beja-Pereira A, et al. The origins of Iberian
horses assessed via mitochondrial DNA[J]. Journal of Heredity,
2005, 96(6):663-669.
[6] 甘佳 , 帅素容 , 江建平 , 李书伟 . 四川三个藏猪的微卫星遗传
多样性分析[J]. 四川畜牧兽医 , 2010, 37(12):27-29.
[7] 蔡原 , 赵生国 . 藏猪遗传多样性研究及系统关系研究[J]. 国
外畜禽学 :猪与禽 , 2011(5):60-62.
[8] 杨具田 , 臧荣鑫 , 卢建雄 . 蕨麻猪种质资源保护与开发利用[J].
畜牧与兽医 , 2003, 35(12):15-16.
[9] 孙俊丽 , 张冰 , 马青艳 , 等 . 陆川猪 mtDNA D-loop 序列遗传多
样性分析[J]. 中国畜牧兽医 , 2010, 37(6):122-125.
[10] Qu KX, Wu GS, Gou X, et al. Genetic differentiations between
randomly and selectively breed pig populations in Yunnan,
China[J]. Zoological Research, 2011, 32(3):255-261.
[11] Li M, Tian S, Jin L, et al. Genomic analyses identify distinct
patterns of selection in domesticated pigs and Tibetan wild
boars[J]. Nat Genet, 2013, 45(12):1431-1438.
[12] Jiao T, Zhao S, Wang C, et al. Mitochondrial DNA D-Loop diversity
of Tibetan Pig populations[J]. The Philippine Agricultural
Scientist, 2009, 92(4):362-369.
[13] Yu G, Xiang H, Wang J, et al. The phylogenetic status of typical
Chinese native pigs :analyzed by Asian and European pig
mitochondrial genome sequences[J]. Journal of Animal Science
and Biotechnology, 2013, 4(1):9.
[14] Yang S, Zhang H, Mao H, et al. The local origin of the Tibetan Pig
and additional insights into the origin of Asian Pigs[J]. PLoS
One, 2011, 6(12):e28215.
[15] 苟潇 , 亐开兴 , 吴桂生 , 等 . 云南 4 个地方猪品种 mtDNA 多态
及其起源分化研究[C]// 中国畜牧兽医学会 2004 年学术年
会暨第五届全国畜牧兽医青年科技工作者学术研讨会论文集
(上册). 北京 :中国畜牧兽医学会 , 2004 :237-241.
[16] Sambrook J, Russell DW. Molecular Cloning :A Laboratory
Manual[J]. 3rd. New York :Cold SpringHarbor Laboratory
Press, 2002 :484-485.
[17] 李云南 . 乡城县藏猪资源的保护及建议[J]. 四川畜牧兽医 ,
2009(11):8-9.
[18] Jia SG, Chen H, Zhang GX, et al. Genetic variation of mitochondrial
D-loop region and evolution analysis in some Chinese cattle
breeds[J]. Genet Genomics, 2007, 34 :510-518.
[19] Bhuiyan MS, Chen S, Faruque S, et al. Genetic diversity and
maternal origin of Bangladeshi chicken[J]. Molecular Biology
Reports, 2013, 40(6):4123-4128.
[20] 赵生国 . 亚洲部分鸡种系统发育研究及遗传资源优先保护顺
序评估[D]. 兰州 :甘肃农业大学 , 2009 :1-117.
[21] Chen SY, Su YH, Wu SF, et al. Mitochondrial diversity and
phylogeographic structure of Chines e domestic goats[J].
Molecular Phylogenetics and Evolution, 2005, 37(3):804-814.
[22] 赵倩君 . 中国部分绵羊的起源、遗传多样性及保护研究[D].
北京 :中国农业科学院 , 2007 :1-101.
[23] 赖松家 . 中国三个牛种遗传多样性和分子系统进化研究[D].
雅安 :四川农业大学 , 2004 :1-119.
[24] 雷初朝 , 陈宏 , 杨公社 . 中国部分黄牛品种 mtDNA 遗传多态
性研究[J]. 遗传学报 , 2004, 31(1):55-62.
[25] Larson G, Dobney K, Albarella U, et al. Worldwide phylogeogr-
aphy of wild boar reveals multiple centers of pig domestication[J].
Science, 2005, 307(5715):1618-1621.
[26] 姚永芳 , 徐怀亮 , 杨晓军 . 野猪遗传学研究进展[J]. 经济动
物报 , 2007, 11(2):112-115.
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2015,Vol.31,No.5230
[27] Nei M, Tajima F. DNA polymorphism detectable by restruction
endonnucleases[J]. Genetics, 1981, 97 :145-163.
[28] Neigel JE, Avise JC. Application of a random walk model
to geographic distributions of animinal mitochondrial DNA
variation[J]. Genetics, 1993, 135(4):1209-1220.
[29] Yang SI, Wang ZG, Liu B, et al. Genetic vari—ation and
relationships of eighteen Chinese indigenous pig breeds[J].
Genet Sel Evol, 2003, 35(6):657-667.
[30] 陈国宏 , 季从亮 , 王敏强 , Steffen Weigend. 12 个中国地方鸡种
群体遗传结构及遗传多样性分析[J]. 畜牧兽医学报 , 2006,
37(2):105-111.
[31] 刘益平 , 邢光东 , 陈仕毅 , 等 . 苏种猪和太湖猪的线粒体 D 环
部分序列比较分析[J]. 江苏农业学报 , 2007, 23(3):200-
203.
[32] Ai H, Huang L, Ren J. Genetic diversity, linkage disequilibrium
and selection signatures in Chinese and Western pigs revealed
by genome-wide SNP markers[J]. PLoS One, 2013, 8(2):
e56001.
[33] FAO. The Global Stratery for the management of farm animal
genetic[R]. Rome, Italy, 2007.
[34] Giuffra E, Kijas JMH, Amarger V, et al. The origin of the
domestic pig :independent domestication and subsequent
introgression[J]. Genetics, 2000, 154 :1785-1791.
[35] Watanabe T, HayashiI Y, Kimura J, et al. Pig mitochondrial
DNA :polymorphism, restriction map orientation, and sequence
data[J]. Biochem Genet, 1986, 24 :385-396.
[36] Okumura N, Ishiguro N, Nakano M, et al. Geographic population
structure and sequence divergence in the mitochondrial DNA
control region of the Japanese wild boar(Sus scrofa leucomystax),
with reference to those of domestic pigs[J]. Biochem Genet,
1996, 34 :179-189.
[37] Wu GS, Yao YG, Qu KX, et al. Population phylogenomic analysis
of mitochondrial DNA in wild boars and domestic pigs revealed
multiple domestication events in East Asia[J]. Genome Biol,
2007, 8 :R245.
[38] 刘丽 , 赵生国 , 蔡原 , 等 . 早胜牛及其杂交群体遗传多样性研
究[J]. 农业生物技术学报 , 2014, 22(3):317-325.
[39] Li JY, Luo Z. Research on the habits and characteristics of Tibet
pigs on Tibet Plateau[J]. Ecol Domestic Anim, 1993, 14(1):
18-21.
(责任编辑 马鑫)