全 文 :·研究报告·
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2012年第9期
收稿日期 : 2012-03-12
基金项目 : 江苏省高校自然基金项目(KJD180004), 江苏省科技创新与成果转化(重大科技支撑与自主创新)专项引导资金项目(BE2011644),
江苏省企业博士集聚计划项目 , 徐州工程学院校级课题(XKY2009123)
作者简介 : 高兆建 , 男 , 研究方向 : 应用微生物学 ; E-mail: gaozhaojian@126.com
弹性蛋白酶(elastase)是一种以水解不溶性
弹性蛋白质为主的广谱蛋白水解酶,它主要从动物
胰脏中分离获得。微生物类群如细菌、放线菌、真
菌也都有分泌胞外弹性蛋白酶的报道[1]。弹性蛋
白酶在多个领域都有重要用途。在医药领域,主要
作为治疗高血脂症,防止动脉粥样硬化的生化药
物[2];在食品工业,因其在不同种类蛋白质存在
的情况下,对不溶性的弹性蛋白具有较高的水解活
性,故在肉类加工中,弹性蛋白酶可以用于肉的嫩
化处理[3];在日化工业中,弹性蛋白酶可以添加
到化妆品中,去除面部角质化的死皮,具有美化皮
肤的功效[4]。故该酶具有较好的应用前景和较高
的商业价值。我国该产品的生产是从猪胰脏中提
取,由于脏器资源不足和分离纯化的工艺繁琐,生
产成本较高,这大大限制了弹性蛋白酶的应用领
域。近年来,因微生物来源的弹性蛋白酶有产量
短芽孢杆菌低温弹性蛋白酶酶学特性分析
高兆建 巫有华 张桂英 李同祥 张莉
(徐州工程学院食品(生物)工程学院,徐州 221008)
摘 要: 旨在从短芽孢杆菌(Bacillus brevis)XZE116发酵液中分离纯化低温弹性蛋白酶,并对酶学性质进行研究。利用硫
酸铵分级盐析、DEAE-Sepharose阴离子交换层析和 Sephadex G-75分子筛凝胶过滤层析等方法进行纯化。结果显示,分离纯化到了
均一的酶蛋白,酶纯度提高了 37.21倍,回收率为 35.3%。SDS-PAGE及 Sephadex G-75分子筛凝胶过滤层析显示酶蛋白为单亚基
蛋白,分子量是 32.6 kD。最适作用温度 25℃。在 pH7.5-10.5范围内酶活性及稳定性较高,最适作用 pH9.0,Mg2+对酶有明显激活
作用。丝氨酸蛋白酶特异性抑制剂强烈抑制酶活性,表明所纯化到的弹性蛋白酶属于丝氨酸蛋白酶。酶对阴离子表面活性剂(0.1%
SDS)、阳离子表面活性剂(0.1% CTAB)和非离子型表面活性剂(1% Tween80)均具有很强的稳定性。鉴于短芽孢杆菌 XZE116
弹性蛋白酶具有以上优良酶特性,它在肉品嫩化领域具有潜在的应用价值。
关键词: 短芽孢杆菌 XZE116 低温弹性蛋白酶 分离纯化 酶学性质
Characterization of Cold-active Elastase from Bacillus brevis
Gao Zhaojian Wu Youhua Zhang Guiying Li Tongxiang Zhang Li
(Department of Food Engineering (Bioengineering),Xuzhou Institute of Technology,Xuzhou 221008)
Abstract: It was to purify a cold-active elastase from Bacillus brevis XZE116 and to characterize the enzyme. We purified the elastase
from strain XZE116 using precipitation with ammonium sulfate,DEAE-Sepharose ion exchange chromatography and Sephadex G-75 gel
filtration chromatography and examined the characterization of the elastase. Results showed the elastase from strain XZE116 was purified to
homogeneity with a 37.21-fold increase in specific activity and 35.3% recovery. Elastase purified is composed of a single polypeptide chain
having an apparent molecular mass of 32.6 kD as determined by SDS-PAGE and gel filtration through Sephadex G-75 column. The enzyme
was highly active and stable in the pH range of 7.5-10.5,with an optimum at pH9.0. It exhibited maximal activity at 25℃. The elastase was
obviously activated by Mg2+. Its activity was strongly inhibited by serine-protease inhibitors,suggesting that the purified enzyme is a serine-
protease. The enzyme showed extreme stability towards anionic (0.1% SDS),cationic (0.1% CTAB) non-ionic surfactants (1% Tween80).
Considering its promising properties,the elastase from Bacillus brevis XZE116 may find potential application in meat tenderization field.
Key words: Bacillus brevis XZE116 Cold-active elastase Purification Characterization
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2012年第9期150
高、稳定性好、分离纯化工艺简单、不受原料限制
等优势,已越来越受到人们的关注。近年来已经从
枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)[4]、地衣芽孢杆菌
(Bacillus licheniformis)[5]、藤黄微球菌(Micrococcus
luteus)[6]、铜绿假单胞菌(Pseudomonas aerugino-
sa)[7]、嗜碱芽孢杆菌(alkalophilic Bacillus)[8]等微
生物中分离到弹性蛋白酶。这些酶能否在食品加工
及其他行业中使用还受到诸多因素的限制,如环境、
pH 值、温度、氧化剂以及金属离子等对蛋白酶活性
及稳定性的影响。
本实验室分离到一株产生弹性蛋白酶活性较高
的短小芽孢杆菌(Bacillus brevis)XZE116,初步研
究发现该菌株所产弹性蛋白酶低温下酶活性较高。
本研究通过对该酶的分离纯化和酶学性质进行分析,
旨在为对其深入研究提供参考。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 主要试剂和仪器 Sephadex G-75、DEAE-Sep-
harose购自瑞典Amersham pharmacia公司;弹性蛋白、
刚果红 -弹性蛋白从 Sigma 公司购买;其他试剂均为
国产或进口分析纯。蛋白纯化系统为 AKTA Explorer
型美国安玛西亚公司产品 ;蛋白电泳槽 DYCP-31BN
型北京六一仪器厂 ;台式冷冻离心机 SIGMA3K30 型
德国 Sigma 公司。
1.1.2 菌种和培养基
1.1.2.1 菌种 弹性蛋白酶菌株本实验室分离筛选
得到。鉴定并命名为短芽孢杆菌(Bacillus brevis)菌
株 XZE116。
1.1.2.2 培养基和培养条件 种子培养基(g/L):蛋
白胨 5,葡萄糖 10,酵母膏 5,KH2PO4 2,MgSO4·
7H2O 0.1,pH7.0,121℃蒸汽灭菌 15 min。
摇瓶发酵培养基(g/L):干酪素 10,蛋白胨 5,
酵母膏 5,葡萄糖 5,K2HPO4 1,KH2PO4 0.5,MgSO4·
7H2O 0.1,pH7.0,121℃灭菌 15 min。
种子液培养温度 30℃,摇床转速 180 r/min,培
养 18 h 后将培养好的菌液按 6% 的接种量接种于装
有发酵培养基中,摇瓶容量 500 mL,装量 100 mL,
培养温度 26℃,摇床转速 180 r/min,培养时间 36 h。
发酵结束后。发酵培养物在 4℃下 6 000 r/min 离心
20 min,去除细胞,上清液做进一步分离纯化。
1.2 方法
1.2.1 酶的分离纯化 发酵上清液中加入硫酸铵至
0-90% 饱和度,4℃静置过夜,6 000 r/min 冷冻离
心 30 min,沉淀用少量缓冲液溶解,透析除盐。测
定不同区间透析液的酶活力和蛋白质含量,确定盐
析适宜的硫酸铵饱和度。透析后粗酶液上样 DEAE-
Sepharose fast flow(2.5 cm×30 cm)阴离子交换柱,
用 0-1.0 mol/L NaCl 溶液进行线性洗脱,洗脱速度为
0.5 mL/min,每管收集 4 mL。测定收集管中溶液的
酶活力。有活性部分合并,装入透析袋,聚乙二醇
20000 包埋浓缩,浓缩后的样品上样 Sephadex G-75
(1.6 cm×90 cm)分子筛凝胶柱。洗脱液经紫外检测
并分部收集(3 mL/管),将有活性的部分合并,用
于检测酶纯度及用于酶学性质的研究。
1.2.2 酶活性检测 参照 Sachar[9]的方法进行酶活
测定。称取 10 mg 刚果红-弹性蛋白,加入 pH8.0,0.2
mol/L 的硼酸缓冲液,取 1 mL 适当稀释的酶液,于
25℃振荡反应 1 h,加入 pH6.0,0.2 mol/L 磷酸缓冲
液 2 mL 终止反应,12 000 r/min 离心 5 min,测定上
清液在 590 nm 处的吸光度。以不加酶液反应系统为
空白对照,该条件下,水解 1 mg 刚果红- 弹性蛋白
所需的酶量定义为一个弹性蛋白酶活单位。
1.2.3 蛋白浓度测定 采用 Lowry 法测定蛋白浓
度[10],以牛血清白蛋白制作蛋白浓度标准曲线。
1.2.4 分子量测定
1.2.4.1 凝胶过滤 蓝色葡聚糖上样 Sephadex G-75
色谱柱,测定柱空隙体积(Vo),然后上样标准蛋白
及样品蛋白,测定各蛋白的洗脱体积(Ve),以各标
准蛋白的洗脱体积同柱空隙体积的比率(Ve/Vo)与
标准蛋白的分子量对数(log MW)制作标准曲线。
从标准曲线中求出该弹性蛋白酶的表观分子量。标
准蛋白为兔磷酸化酶 B、牛血清白蛋白、兔肌动蛋白、
胰蛋白酶抑制剂和鸡蛋清溶菌酶。
1.2.4.2 SDS-PAGE SDS-PAGE 参照 Laemmli 等[11]
的方法进行,分离胶浓度 12%,浓缩胶浓度 5%。将
样品及标准蛋白〔兔磷酸化酶 B (97.4 kD)、牛血清
白蛋白(66.2 kD)、兔肌动蛋白(43 kD)、牛碳酸酐
酶(31 kD)、胰蛋白酶抑制剂(20.1 kD)、鸡蛋清溶
2012年第9期 151高兆建等 :短芽孢杆菌低温弹性蛋白酶酶学特性分析
菌酶(14.4 kD)〕上样凝胶,以相对迁移率对分子
量作图,从图中求出该弹性蛋白酶的分子量。
1.2.5 弹性蛋白酶性质研究
1.2.5.1 温度和 pH 值的影响 最适温度的测定在
0.02 mol/L 的硼酸缓冲液中,不同温度(10-55℃)
下进行酶促反应。热稳定性测定是将酶在不同温度
(40-80℃)下保温 120 min,每隔 30 min 测定酶活,
冰水中冷却,按照标准方法测定残余酶活。以未经
过热处理的酶液作为空白对照(100%)。
纯化后的弹性蛋白酶在不同 pH(6.0-12.0)下
进行酶促反应以测定其最适 pH。pH 稳定性测定是
将酶液加入到 20 mmol/L 的不同 pH 值缓冲液中,于
30℃保温 1 h,按照标准方法测定酶活性。所用缓冲
液 :pH6.0-7.5 的磷酸氢二钠-磷酸二氢钠缓冲液,
pH8.0-8.5 的 Tris-HCl 缓冲液,pH9.0-10.5 的甘氨酸-
氢氧化钠缓冲液,pH11.0-12.0 的磷酸氢二钠-氢氧
化钠缓冲液。
1.2.5.2 金属离子、抑制剂和表面活性剂的影响 取
适当稀释的酶液,向其中分别加入用蒸馏水配制
的金属盐溶液,使金属离子终浓度达到 5 mmol/L,
30℃保温 1 h 后,标准方法测定残余酶活。
将各种不同的酶抑制剂与酶液混合,在 30℃孵
育 1 h 后,标准方法测定残余酶活。
测定表面活性剂对酶稳定性的影响,纯化后的
酶液同表面活性剂 30℃孵育 1 h,标准方法测定残
余酶活。以上均以不加金属离子、表面活性剂及抑
制剂的酶液作为空白对照(100%)。
2 结果
2.1 弹性蛋白酶的分离纯化
弹性蛋白酶在硫酸铵饱和度大于 35% 时开始析
出,并且在较广的硫酸铵饱和度范围内存在,故收
集 35%-80% 饱和区间内的蛋白沉淀进行透析。充
分透析后,很大部分色素及杂蛋白从粗酶液中去除,
接着样品上样 DEAE-Sepharose FF 阴离子交换柱,
洗脱曲线如图 1 所示。样品中大部分杂蛋白及残余
色素完全同酶蛋白分开。在 NaCl 浓度约为 0.7 mol/L
时,酶蛋白洗脱出。合并有酶活性的收集管,聚乙
二醇 20000 包埋法浓缩,继续上样 Sephadex G-75 分
子筛凝胶柱。检测到一个蛋白峰含有较强酶活性(图
2)。经过以上纯化步骤,酶比活力达到1 607.84 U/mg,
纯化了 35.3 倍,回收率 37.21%(表 1)。
经过以上各步分离纯化的酶液 SDS-PAGE 检测,
考马斯亮蓝 R-250 染色,脱色后显现单一条带,说
明该酶已经达到电泳纯,结果(图 3)显示,对比
分子量标准蛋白的相对迁移距离,计算得到样品蛋
白质的分子量约为 32.6 kD,与通过 Sephadex G-75
表 1 短芽孢杆菌 XZE116弹性蛋白酶的分离纯化
纯化步骤 总活力 (U) 总蛋白 (mg) 比活力 (U/mg) 产率 (%) 纯化倍数 (n-fold)
Culture supernatant 24 356 563.67 43.21 100.00 1.00
Ammonium sulfate Precipitation 20 589 202.75 101.55 84.53 2.35
DEAE- Sepharose 14 090 21.37 659.38 57.85 15.26
Sephadex G-75 8 598 5.35 1 607.84 35.30 37.21
图 2 Sephadex G-75分子筛凝胶过滤层析图 1 DEAE-Sepharose FF离子交换层析
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2012年第9期152
色谱柱测得的分子量相一致。由此推断,纯化到的
弹性蛋白酶是单亚基蛋白。
pH7.0-11.0 之间酶活性仍能保持 85% 以上,在
pH6.0 和 pH12.0 活性还有接近 60%,表明弹性蛋白
酶酸碱耐受性很强,特别是在碱性环境下酶较稳定。
图 3 短芽孢杆菌 XZE116弹性蛋白酶 SDS-PAGE图谱
M. 低分子量标准蛋白质;1. 分子筛凝胶过滤层析;
2. 离子交换层析 ;3. 硫酸铵盐析
2.2 弹性蛋白酶的酶学性质
2.2.1 最适作用温度及热稳定性 酶在不同温度下
的测定结果如图 4 所示。在温度 10-25℃之间,酶
活性随温度上升大幅增加 ;但当温度高于 25℃时,
酶活性逐渐降低 ;当温度高于 55℃时,酶活性极
低,相对酶活仅有 20% 左右。故酶最适作用温度
为 25℃。
图 5 温度对短芽孢杆菌 XZE116弹性蛋白酶稳定性的影响
图 4 温度对短芽孢杆菌 XZE116弹性蛋白酶活性的影响
图 6 pH对短芽孢杆菌 XZE116弹性蛋白酶活性及
稳定性的影响
2.2.3 金属离子、表面活性剂及抑制剂对酶活性的
影响 纯化后的酶液中分别加入金属离子、表面活
性剂及酶特异性抑制剂,孵育 1 h 后标准方法测定
酶活。结果(表 2)显示,在 5 mmol/L 的浓度下,
Hg2+、Pb2+ 对酶有强烈抑制作用,Ca2+、Zn2+、Fe2+、
Na+ 和 K+ 对酶活性无显著作用,Mn2+、Cu2+ 能轻微
地抑制酶活性 ;但 Mg2+ 对酶有显著的激活作用,初
步推测 Mg2+ 在酶的催化中心结构方面具有一定的
功能。表面活性剂不同程度地抑制酶活性,其中
Trition X-100 抑制作用最强,经过处理后,相对酶活
降至 65%,Tween-80 对酶活性无显著影响。金属螯
合剂 EDTA 对酶有轻微的抑制作用。丝氨酸蛋白酶
特异性抑制剂 PSFM 几乎完全抑制酶活性,表面菌
株 XZE116 弹性蛋白酶属于丝氨酸蛋白酶。E-64 对
酶活性几乎没有影响,故该酶不属于半胱氨酸型蛋
白酶。
3 讨论
菌株 XZE116 弹性蛋白酶分子量与报道的弹
酶的热稳定性结果如图 5 所示,弹性蛋白酶在
50℃以下比较稳定,经过 90 min 的孵育后,残余酶
活性都在 85% 以上。
2.2.2 酶的最适作用 pH 及稳定性 在不同 pH 的缓
冲体系中,25℃下测定酶活性,在 pH9.0 之前,酶
活性快速增加,而在 pH9.0 之后,酶活性逐渐降低,
故酶的最适作用 pH9.0(图 6)。
弹性蛋白酶 pH 值稳定性结果如图 6 所示,在
2012年第9期 153高兆建等 :短芽孢杆菌低温弹性蛋白酶酶学特性分析
性蛋白酶相比较,同源于滕黄微球菌(Micrococcus
luteus)(32.812 kD)[6]、铜绿假单胞菌(Pseudomonas
aeruginosa)(33 kD)[7]、枯草芽孢杆菌(Bacillus
subtilis)(31 kD)[12]弹性蛋白酶分子量相接近,比
来源于地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)(29
kD)[13]、嗜碱芽孢杆菌(alkalophilic Bacillus)(23.7-25
kD)[8]、绵羊胰腺(25 kD)[14]弹性蛋白酶分子量要大,
但小于来自嗜水气单胞菌(Aeromonas hydrophila)(38
kD)[15]的弹性蛋白酶分子量。
本研究中弹性蛋白酶最适作用温度比所报道的
大部分弹性蛋白酶最适温度都要低,如滕黄微球菌
(Micrococcus luteus)(57-59℃)[6]、嗜碱芽孢杆菌
(alkalophilic Bacillus Ya-B)(60℃)[16]、地衣芽孢杆
菌(Bacillus licheniformis)(55℃)[13],铜绿假单胞
菌(Pseudomonase aeruginosa)(50℃)[17]等,但同
所报道的基因重组弹性蛋白酶温度(28℃)比较接
近[18]。较低的温度下酶保持高活性,在弹性蛋白酶
的应用中具有重要意义。弹性蛋白酶在肉类嫩化中
具有重要应用。嫩化的工艺条件,特别是嫩化温度,
对肉的品质影响较大。所报道的弹性蛋白酶最适作
用温度一般都在 30℃以上,在该温度下做肉嫩化处
理,很容易滋生腐败微生物,引起肉的腐败变质。
故常规的弹性蛋白酶,肉类嫩化应用中受到限制。
弹性蛋白酶热稳定性研究发现,在 50℃以下
比较稳定,高于该温度,酶活性急剧降低,表明酶
热稳定性较差。同所报道的其他微生物如嗜水气
单胞菌(Aeromonas hydrophila)[19]、枯草芽孢杆菌
(Bacillus subtilis)[12]等弹性蛋白酶比较,短芽孢杆
菌 XZE116 弹性蛋白酶对高温敏感,短时间即可引
起酶的失活,但低温下稳定性较好。综合考虑酶的
最适作用温度和热稳定性,该酶适合在低温环境下
应用。
酶最适作用 pH9.0,比嗜碱芽孢杆菌(alkalophi-
lic Bacillus Ya-B)最适作用 pH11.75[8]要低,但比
来源于枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)[12]、毕赤酵母
重组菌[20]、 地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)[5]
的弹性蛋白酶最适作用 pH 要高。
目前,虽然有几种来源于微生物的弹性蛋白酶
被分离纯化,但来源于短芽孢杆菌的弹性蛋白酶还
未见报道。
4 结论
本课题组采用硫酸铵分级盐析、DEAE-Sepha-
rose 阴离子交换层析和 Sephadex G-75 分子筛凝胶过
滤层析的纯化方法,结合弹性蛋白酶的活性凝胶电
泳检测,纯化到了电泳纯的酶蛋白。从短芽孢杆菌
XZE116 中分离并纯化了胞外弹性蛋白酶,该酶也与
其他的弹性蛋白酶相似,分子量 32.6 kD。但与其他
报道显著不同的是,本课题组分离的弹性蛋白酶最
适反应温度仅为 25℃,远远低于所报道的温度范围。
酶学性质研究表明,短芽孢杆菌 XZE116 弹性蛋白
酶不仅在较低的温度下具有高活性,而且较广的碱
性条件下维持高活性并十分稳定,而且高浓度的表
面活性剂都对酶活性无较大影响。在 pH7.5-10.0 之
间孵育 1 h,测得酶活高于 85%。相对来说,它是一
种低温下活性较高的弹性蛋白酶。这些优良特性使
该酶在食品领域有着潜在应用价值。
参 考 文 献
[1] 陈启和 , 何国庆 , 邬应龙 . 弹性蛋白酶产生菌的筛选及其发酵
条件的初步研究 . 浙江大学学报 :农业与生命科学版 , 2003, 29
(1):59-64.
表 2 抑制剂及金属离子对弹性蛋白酶活性的影响
试剂 浓度 相对酶活(%)
None - 100±3.1
Na+ 5.0 mmol/L 102±1.5
K+ 5.0 mmol/L 100±2.6
Mg2+ 5.0 mmol/L 128±6.4
Ca2+ 5.0 mmol/L 94±2.4
Mn2+ 5.0 mmol/L 78±3.8
Fe2+ 5.0 mmol/L 91±2.9
Cu2+ 5.0 mmol/L 80±3.6
Zn2+ 5.0 mmol/L 91±4.8
Hg2+ 5.0 mmol/L 34±1.6
Pb2+ 5.0 mmol/L 27±4.4
SDS 0.1% 79.2±3.1
CTAB 0.1% 80.9±2.9
Tween-80 1% 91±3.1
Trition X-100 1% 65±2.3
EDTA 5.0 mmol/L 83.4±2.7
PSFM 4.0 mmol/L 9.2±0.8
E-64 0.2 mmol/L 99±4.2
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2012年第9期154
[2] Robert L, Robert AM, Jacotot B. Elastin elastase atherosclerosis
revisited. Atherosclerosis, 1998, 140(2):281-295.
[3] Takagi H, Kondou M, Hisatsuka T, et al. Alkaline elastase from an
alkalophilic Bacillus strain on the tenderization of beef meat. Journal
of Agricultural and Food Chemistry, 1992, 40(12):2364-2368.
[4] Xu Y, He GQ, Li JJ. Effective extraction of elastase from Bacillus sp.
fermentation broth using aqueous two-phase system. Journal of Zhe-
jiang University Science, 2005, 6(11):1087-1094.
[5] 章海锋 , 阮晖 , 刘婧 , 等 . 地衣芽孢杆菌 ZJUEL31410 产胞外
弹性蛋白酶的分批发酵研究 . 中国食品学报 , 2009, 9(1):
130-136.
[6] Clark DJ, Hawrylik SJ, Kavanagh E, Opheim DJ. Purification and
characterization of a unique alkaline elastase from Micrococcus
luteus. Protein Expression and Purification, 2000, 18(1):46-55.
[7] Bever RA, Iglewski BH. Molecular characterization and nucleotide
sequence of the Pseudomonas aeruginosa elastase structural gene.
Journal of Bacteriology, 1988, 170(9):4309-4314.
[8] Tsai YC, Juang RY, Lin SF, et al. Production and further characte-
rization of an alkaline elastase produced by alkalophilic Bacillus
strain Ya-B. Applied and Environmental Microbiology, 1988, 54
(12):3156-3161.
[9] Sachar LA, Winter KK, Sicher N, Frankel S. Photometric method for
estimation of elastase activity. Proc Soc Expeti Biol Med, 1955(90):
323.
[10] Lowry OH, Rosebrough NJ. Protein measurement with the Folin
phenol reagent. Journal of Biological Chemistry, 1951(193):
265-269.
[11] Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of
the head of bacteriophage T4. Nature, 1970(227):68012-68015.
[12] 赖文 , 刘书亮 , 吴琦 , 詹莉 . 枯草芽孢杆菌弹性蛋白酶的纯化
及酶学性质的研究 . 食品与发酵工业 , 2010, 36(6):25-30.
[13] 傅明亮 , 刘晓杰 , 刘倩 , 等 . 地衣芽孢杆菌弹性蛋白酶纯化和
性质研究 . 食品科学 , 2011, 32(7):216-219.
[14] Erlendsson LS, Filippusson H. Purification and characterization
of ovine pancreatic elastase. Comparative Biochemistry and
Physiology Part B :Biochemistry and Molecular Biology, 1998, 120
(3):549-557.
[15] 刘永杰 , 陆承平 . 嗜水气单胞菌弹性蛋白酶的纯化及特性分
析 . 中国兽医学报 , 2006, 26(1):54-56.
[16] Tsai YC, Lin SF, Li YF, et al. Characterization of an alkaline
elastase from alkalophilic Bacillus Ya-B. Biochimica et Biophysica
Acta (BBA)-General Subjects, 1986, 883(3):439-447.
[17] 贺稚非 , 陈宗道 , 李洪军 , 高兆建 . 胞外弹性蛋白酶的理化特
性及其影响因素 . 食品与发酵工业 , 2005, 31(4):10-13.
[18] Lin XJ, Xu W, Huang KL, et al. Cloning, expression and
characterization of recombinant elastase from Pseudomonas
aeruginosa in Picha pastoris. Protein Expression and Purification,
2009, 63(2):69-74.
[19] Meng X, Liu Y, Lu C. Expression, purification and molecular
characterization of elastase from Aeromonas hydrophila strain J-1.
Acta Microbiologica Sinica, 2009, 49(12):1613-1620.
[20] 谷新晰 , 许文涛 , 黄昆仑 , 等 . 重组弹性蛋白酶诱导表达、纯
化及酶学特性研究 . 食品科学 , 2009, 30(19):227-231.
(责任编辑 马鑫)