糖类化合物一直被认为是生物结构的重要组成部分和能量来源。近年来的研究发现,糖类化合物特别是寡糖具有细胞识别等多种生物功能,因此引起了人们日益广泛的关注。寡糖的色谱分离是糖生物学中重要的研究领域之一,小型化和高通量制备可能会成为寡糖色谱分离的发展方向。对寡糖色谱分离方面的最新进展进行综述。
关键词:寡糖;分离;高效阴离子交换色谱;石墨化碳液相色谱;亲水作用色谱
中图分类号:Q533; O657.7 文献标志码:A
全 文 :第23卷 第7期
2011年7月
Vol. 23, No. 7
Jul., 2011
生命科学
Chinese Bulletin of Life Sciences
文章编号:1004-0374(2011)07-0703-11
寡糖色谱分离研究进展
傅 青,张秀莉*,郭志谋,梁鑫淼*
(中国科学院大连化学物理研究所分离分析重点实验室,大连 116023)
摘 要:糖类化合物一直被认为是生物结构的重要组成部分和能量来源。近年来的研究发现,糖类化合物
特别是寡糖具有细胞识别等多种生物功能,因此引起了人们日益广泛的关注。寡糖的色谱分离是糖生物学
中重要的研究领域之一,小型化和高通量制备可能会成为寡糖色谱分离的发展方向。对寡糖色谱分离方面
的最新进展进行综述。
关键词:寡糖;分离;高效阴离子交换色谱;石墨化碳液相色谱;亲水作用色谱
中图分类号:Q533; O657.7 文献标志码:A
Recent progress in oligosaccharide separation by high-performance liquid
chromatography
FU Qing, ZHANG Xiu-Li*, GUO Zhi-Mou, LIANG Xin-Miao*
(Key Lab of Separation Science for Analytical Chemistry, Dalian Institute of Chemical Physics, Chinese Academy of
Sciences, Dalian 116023, China)
Abstract: Carbohydrates play important roles as structural materials in plants and as energy sources in organism.
Recently, carbohydrates, especially oligosaccharides attracted more and more attentions due to its biological
function in the cellular interaction and recognition. Separation of oligosaccharides by high performance liquid
chromatography (HPLC) is one of the most important and challenging research fields in glycobiology. In the present
review, we would like to discuss the recent advances on oligosaccharides separation by HPLC. Miniaturization and
high-throughput preparation are potential research directions in oligosaccharides separation.
Key words: oligosaccharides; separation; HPAEC; graphitized carbon liqudi chromatography; HILIC
收稿日期:2011-01-30
基金项目:国家自然科学基金项目 ( 3 0 8 0 1 5 1 3,
20805046);中国科学院知识创新工程重要方向项
目 (KSCX2-YW-R-214);国家重大新药创制专项
(2009ZX09301-012,2009ZX09501-011)
*通信作者:E-mail: 张秀莉, zhangxiuli@dicp.ac.cn; 梁
鑫淼, liangxm@dicp.ac.cn
糖类化合物被认为是能量的来源,生物结构的
重要组成部分,同时具有多种生物功能。根据聚合
度不同,糖类物质可分为单糖、寡糖和多糖。寡糖
因分布于细胞表面,往往与细胞间的相互作用、识
别和防御等生物功能相关 [1-2]。因此,寡糖的化学
表征是理解上述生物过程的关键步骤之一。此外,
各种植物多糖,如纤维素、淀粉、菊粉以及细菌多
糖等通常也通过酶解或化学降解至寡糖水平进行分
析。质谱和核磁谱技术常被用来对寡糖结构进行详
细的表征。由于寡糖样品的复杂性,在进行结构表
征前,通常需要对样品进行分离。寡糖的分离是糖
生物学研究中的难点之一,因为寡糖为典型的极性
分子,具有相似的化学组成,存在多种可能的异构
体、多种连接方式和分支结构。
目前,可用于寡糖分离的色谱技术包括反相色
谱 [3-4]、石墨化碳液相色谱、阴离子交换色谱、亲
水作用色谱、毛细管电泳 [5-6]以及凝集素亲和色谱 [7-8]
等。反相色谱的分离对象通常为衍生化的寡糖样品,
∙ 技术与应用∙
生命科学 第23卷704
因为寡糖分子中含有大量的羟基,非衍生的寡糖
很难在传统的反相固定相上有好的保留;高效毛细
管电泳已被证明可用于分离各种寡糖及其异构体,
各种电泳技术具体包括毛细管胶束电动色谱、毛细
管电色谱、毛细管凝胶电泳和毛细管区带电泳;凝
集素亲和色谱是利用凝集素与特异性糖基专一结合
的特性而实现寡糖的分离。石墨化碳液相色谱、阴
离子交换色谱和亲水作用色谱是寡糖分离中最常用
的色谱技术,本文综述了这三种色谱技术在寡糖分
离方面的最新进展,同时关注流动相组成、保留机
理、异构体分离和检测器选择等影响寡糖分离的重
要因素。
1 高效阴离子交换色谱(high performance
anion exchange chromatography, HPAEC)
1.1 简介与应用
糖类化合物是一种多羟基醛或酮,在高 pH值
的流动相中,会部分或全部以阴离子形式存在,从
而在阴离子交换柱上被保留并得到分离。HPAEC
的固定相是具有高强度和高稳定性的高效阴离子交
换树脂,常用的 HPAEC色谱柱包括 CarboPac PA1、
CarboPac PA10和 CarboPac PA100(Dionex)。HPAEC
与脉冲安培检测器 (pulsed amperometric detection,
PAD)联用,是寡糖色谱分析的有效手段之一。
HPAEC-PAD可分析非衍生化的寡糖,具有高分辨
率、高选择性和低检测限的特点,该方法已被广泛
用于定性和定量分析不同样品中的寡糖成分,包括
食品、糖蛋白、植物、动物和合成样品中的各种中性、
酸性寡糖,线性、支链寡糖以及 N-连接的寡糖等 (表
1)。
1.2 溶剂对寡糖色谱保留的影响
HPAEC的流动相通常为非挥发性的高浓度钠
盐,在 NaOH溶液中加入 NaOAc,可有效增加流
动相的洗脱能力;而 NaNO3的洗脱能力更强,通
过在分析的后半段加入 NaNO3的方式,可以达到
快速分析寡糖,特别是高聚合度寡糖的目的 [29]。
Corradini等 [10]研究发现,流动相中添加固定的、
高浓度的 NaOH溶液,可避免流动相 pH值波动,
防止检测器背景信号的提高。Grey等 [12]系统研究
了流动相组成对分离中性和酸性寡糖的影响。流动
表1 HPAEC在寡糖分离中的应用
样品 寡糖种类 检测 文献
甜菜 支链阿拉伯寡糖 PAD, MALDI-TOF-MS (离线) [9]
发酵牛奶 菊粉类寡糖,果寡糖 PAD [10]
大豆糖类 葡萄糖,果糖,蔗糖,棉籽糖,水苏糖 PAD [11]
糖蛋白 18种中性和唾液酸化寡糖 PAD [12]
小麦粉 果聚糖 PAD [13]
蜂蜜,玉米糖浆 麦芽寡糖 PAD [14]
蜂蜜 单糖,寡糖 PAD [15]
大麦β-葡聚糖 3-O-β-cellobiosyl-D-glucse, PAD [16]
3-O-β-cellotriosyl-D-glucose
益生元半乳寡糖混合物 半乳寡糖 PAD, ESI-MS [17]
洋蓟菊粉酶解物 菊粉类寡糖(IOS) PAD [18]
根瘤菌荚膜多糖 酸性寡糖 PAD, ESI-MS [19]
黑麦木聚糖 短链阿拉伯木寡糖 PAD, MALDI-TOF-MS (离线) [20]
亚麻籽黏质物 阿拉伯木寡糖 PAD [21]
米糠 木寡糖 PAD [22]
小麦木聚糖 单取代/双取代阿拉伯木寡糖 PAD, MALDI-TOF-MS (离线) [23]
龙舌兰 果寡糖 PAD, ESI-MS (离线) [24]
尖吻蝮 降纤酶(N-连接寡糖) PAD [25]
酸奶 半乳寡糖 PAD [26]
合成 6′-galactosyl-lactulose PAD [27]
肝素 6种硫酸化寡糖 PAD, MALDI-TOF-MS (离线) [28]
发酵牛奶 果寡糖 (FOS, DP 6-7), PAD [29]
菊粉类寡糖 (IOS, DP 4-7)
PAD,脉冲安培检测器;ESI-MS,电喷雾电离质谱;MALDI-TOF-MS,基质辅助激光解吸电离飞行时间质谱;DP,聚合度。
傅 青,等:寡糖色谱分离研究进展第7期 705
相中 NaOH的浓度由 125 mmol/L降低至 75 mmol/L
时,中性寡糖的保留时间增加近一倍;NaOAc溶液
浓度由 2.5 mmol/L增加至 10 mmol/L,中性寡糖的
保留时间迅速降低,即使 NaOH溶液保持较低的浓
度 (﹤71 mmol/L);中性寡糖的最优分离条件是
NaOH浓度为 55~71 mmol/L,NaOAc溶液的浓度
为 2.5或 0 mmol/L。酸性寡糖在 HPAEC中的保留
强于中性寡糖,可在最后一个中性寡糖洗脱后,梯
度增加流动相中的NaOAc溶液浓度 (2.9 mmol/L增至
123 mmol/L),使得酸性寡糖洗脱,达到同时分离中
性和酸性寡糖的目的 (图 1)。
2 石墨化碳液相色谱(graphitized carbon
liquid chromatography)
2.1 简介与应用
石墨化碳液相色谱的固定相为多孔石墨化碳填
料,其由六方形排列、共价结合的碳原子层构成,
层间由范德华力联系,具有均匀的表面结构,稳定
性高,适用的 pH范围为 1~14。石墨化碳固定相分
离寡糖时,使用的流动相主要包括水、乙腈或甲醇,
同时添加挥发性酸 (甲酸、乙酸和三氟乙酸 )和挥
发性缓冲盐 (甲酸铵、乙酸铵和碳酸氢铵 )。自
1991年 Koizumi等 [30-31]首次使用石墨化碳色谱柱
(Hypercarb)分离单糖和二糖以来,石墨化碳固定相
已被广泛用于分离分析各种样品 (植物、组织、真菌、
饮料等 )中的寡糖,包括果寡糖、卡拉胶寡糖、甘
露寡糖和 N-/O-连接寡糖等 (表 2)。
2.2 保留机理与保留行为
寡糖在石墨化碳固定相上的保留机理包括了疏
水作用、极性作用以及离子相互作用。Gruppen等 [41]
系统研究了各种中性、酸性寡糖在石墨化碳固定相
上的保留行为。实验结果表明,中性寡糖 β-(1,4)-
葡寡糖和 β-(1,4)-木寡糖的保留时间长于 β-(1,4)-半
乳寡糖、β-(1,4)-甘露寡糖和 α-(1,4)-葡寡糖。β-(1,4)-
葡寡糖和 β-(1,4)-木寡糖中的羟基都处于平伏键的
方向,β-(1,4)-半乳寡糖和 β-(1,4)-甘露寡糖中各有
一个羟基处于轴向方向,而 α-(1,4)连接的方式导致
寡糖的分子结构为螺旋式。由此可以看出,中性寡
糖的保留取决于单糖的连接方式和空间结构,寡糖
的结构越接近平面,与石墨化碳表面的作用位点也
越多,保留也就越强。酸性寡糖 α-(1,4)-半乳糖醛
酸寡糖 (DP 2-10) 随着梯度增加的三氟乙酸
(0.002%/min) 依次洗脱,如果将其进行甲基酯化,
带电的羧基被有效屏蔽,α-(1,4)-半乳糖醛酸寡糖
的保留时间明显降低。该结果证明了酸性寡糖在石
墨化碳固定相上的保留行为主要取决于其所带的净
电荷。
2.3 异构体分离与溶剂影响
石墨化碳固定相最大的优点在于对异构体能够
进行有效分离。Lebrilla等 [44]使用石墨化碳液相色
谱 -质谱联用分离人乳寡糖 (HMOs),提取荷质比 (m/
z)为 1221.5的色谱图,可以得到至少 6个色谱峰,
保留时间从 15.90到 21.49 min,实验结果证明了寡
糖结构的复杂性和多变性,同时也说明了石墨化碳
固定相分离异构体的能力。Tanimoto等 [40]分别使
用氨基柱和石墨化碳柱分离酿酒酵母中的甘露寡
糖,甘露三糖 (M3)在氨基柱上为 1个峰,而在石
墨化碳柱上被分成 2个峰,分别为异构体M3-1和
图1 梯度分离中性和酸性寡糖标准品
生命科学 第23卷706
M3-2。Whitelock等
[38]的研究结果也证明了石墨化
碳固定相可有效区分硫酸软骨素二糖异构体。流动
相组成不同,也会对石墨化碳分离异构体的能力产
生影响。Lafosse等 [34]分离 ι-卡拉胶寡糖时,用甲
醇取代乙腈,可实现异构体的分离。该小组在分离 κ-
卡拉胶寡糖时发现,流动相中乙腈浓度降低,可有
效提高异构体分离的选择性;甲酸盐的选择性高于
乙酸盐,但这种差异会随着流动相中乙腈浓度的增
加而降低 [35]。Altmann和 Pabst[50]系统研究了离子
强度、pH值等因素对石墨化碳固定相分离酸性寡
糖的影响。对于唾液酸化的 N-连接寡糖的分离,
作者提出了两个有效的溶剂系统:10 mmol/L 碳
酸氢铵 (pH 7.8~8.0),具有最强的洗脱能力;30~
65 mmol/L甲酸铵 (pH 2.6~3.0),对异构体的分离具
有最好的选择性。
3 亲水作用色谱(hydrophilic interaction
liquid chromatography, HILIC)
3.1 简介
HILIC 的 概 念 由 Alpert[51] 于 1990 年 提 出,
HILIC可以看作是正相色谱 (normal-phase liquid
chromatography, NPLC)在水溶性流动相领域的延
伸。HILIC模式下,流动相通常为水 (﹤40%)和有
机溶剂 (一般为乙腈 ),固定相为亲水的极性材料。
HILIC非常适用于分离极性化合物,如代谢产物 [52]、
糖类 [53]、药物 [54]、天然产物 [55]等,近年来受到了
持续而广泛的关注。与反相 C18固定相不同,
HILIC的固定相具有多样性的特点,除了传统的硅
胶、氨丙基键合硅胶外,还包括各种官能团修饰的
硅胶,如酰胺基、氰基、二醇基、两性离子、环糊
精等,以及聚合物固定相。
3.2 硅胶和氨基修饰硅胶固定相
硅胶固定相是一种典型的正相色谱固定相,在
HILIC模式下也得到了广泛的应用,通常被用来分
离相对分子质量较小的极性化合物,特别是药物,
在分离大分子如糖类、肽类和蛋白质方面的应用较
少。氨基修饰硅胶固定相从 1975年开始就被
Linden等 [56]用于单糖和寡糖的分离,在 20世纪 90
年代末,其被广泛用来分离各种样品 (种子提取物、
合成样品、细胞、黏液素和人乳 )中不同类型的寡
糖 [57]。由于氨基官能团和还原性糖可反应生成
Schiff碱,造成不可逆吸附,导致样品丢失及固定
相表面官能团的改变,因此,近年来关于使用氨基
固定相分离寡糖的报道逐渐减少。Gilmore等 [58]使
用氨基制备柱 (1×25 cm)和分析柱 (0.46×25 cm)分
离得到脊椎动物组织和酵母中长醇连接的寡糖。
表2 石墨化碳液相色谱在寡糖分离中的应用
样品 寡糖种类 检测 文献
黑麦草,新西兰麻 果寡糖 (DP 3-49) ESI-MS [32]
人肺组织,支气管肺泡灌洗液 硫酸化二糖 ESI-MS [33]
ι-卡拉胶 ι-卡拉胶寡糖 ELSD [34]
κ-卡拉胶 κ-卡拉胶寡糖 ELSD [35]
血浆糖蛋白 聚糖 MALDI-FT-ICR-MS [36]
啤酒 麦芽寡糖 (MOSs) ESI-MS, MALDI-FT-ICR-MS [37]
牛关节软骨可聚蛋白多糖 硫酸软骨素寡糖 ESI-MS [38]
人乳寡糖 LNF-Ⅰ, LNF-Ⅱ, MFLNH-Ⅲ, LND-Ⅰ ESI-MS [39]
酿酒酵母 甘露寡糖 RI [40]
多种植物细胞壁多糖 中性、酸性寡糖 ELSD [41]
甜菜 线性/支链阿拉伯寡糖 ELSD, ESI-MS [42]
胎球蛋白,核糖核酸酶B, 糖肽中常见单糖 ESI-MS [43]
过氧化物酶,人α1酸性糖蛋白
黏蛋白,人乳 O-连接寡糖,人乳寡糖 (HMOs) ESI-MS [44]
鼠脑 Thy-1 N-连接寡糖 ESI-MS [45]
核糖核酸酶B N-连接寡糖 UV, ESI-MS [46]
人血清 中性/酸性N-连接寡糖 MALDI-FT-MS [47]
拟南芥 蔗糖,麦芽糖,海藻糖,磷酸化糖 ESI-MS [48]
小麦杆 水溶性寡糖 (DP 2-20) ESI-MS [49]
DP,聚合度;ESI-MS,电喷雾电离质谱;ELSD,蒸发光散射检测器;MALDI-FT-MS,基质辅助激光解吸电离-傅里叶变换
离子回旋共振质谱;RI,示差折光检测器;UV,紫外检测器。
傅 青,等:寡糖色谱分离研究进展第7期 707
Häusler等 [59]使用氨基柱与蒸发光散射检测器联用,
定量分析样品中的乳糖含量。氨基柱还用于纯化分
离乳果糖的衍生物 [27]。
3.3 酰胺修饰硅胶固定相
酰胺修饰硅胶固定相是近年来应用最为广泛
的亲水作用色谱固定相之一 (表 3),常见的酰胺色
谱柱包括 TSKgel Amide-80色谱柱 (Tosoh, Tokyo,
Japan)和GlycoSep N色谱柱 (ProZyme, San Leandro,
CA, USA)。酰胺固定相具有高的化学稳定性,低
活性,不易与样品发生不可逆吸附。Tolstikov和
Fiehn[55] 比较了三种色谱柱 (Polyhydroxyethyl A,
TSKgel Amide-80, Silica)分离强极性化合物的能力。
实验结果证明使用酰胺色谱柱可以获得最佳的分离
效果,与质谱联用,可定量分析笋瓜叶中各种强极
性化合物。Deguchi等 [60]将离子交换柱与酰胺柱联
用,构建在线二维系统,用于同时分离分析人血清
蛋白中的中性和唾液酸化的N-连接寡糖。Zaia等 [61]
发展了芯片形式的亲水作用色谱 -质谱联用技术
(HILIC/MS on chip),其芯片整合了酰胺固定相捕集
柱、分析柱和电喷雾喷嘴等装置,可以达到低流速
下稳定的电喷雾状态。该技术已成功用于分析动物
组织中肝素寡糖。
3.4 两性离子固定相
两性离子 (zwitterion)是指一个分子中同时存
在正电荷中心和负电荷中心。Irgum等 [62-64]发展两
性离子作为离子交换色谱固定相时,发现两性离子
具有良好的亲水性。随着近年来亲水作用色谱的
发展,两性离子固定相被用作亲水作用色谱固定
表3 HILIC模式下酰胺和两性离子固定相在寡糖分离中的应用
固定相 色谱柱 样品 寡糖种类 检测 文献
酰胺 TSKgel Amide-80 动物组织 肝素寡糖, 硫酸乙酰 ESI-MS [61]
肝素寡糖
笋瓜叶 寡糖, 糖苷, 氨基糖、 ESI-MS [55]
氨基酸, 核苷
肝素 肝素己糖混合物, 肝素- ESI-MS [66]
抗凝血酶复合物
蛋黄 唾液酸寡糖, 唾液酸 CAD [67]
糖蛋白 (mAb, rhEPO) 2-氨基苯甲酰胺标记的 FL [68]
N-连接寡糖
胎牛血清 (FBS) N-连接寡糖 ESI-MS [69]
血蓝蛋白 (KLH), N-连接寡糖 ESI-MS [70]
辣根过氧化酶 (HRP)
N-连接寡糖中常见单糖 ELSD [71]
食品 单糖, 寡糖 FL [72]
髯海豹, 冠海豹乳液 多支链寡糖 MALDI-TOF-MS [73]
样品
GlycoSep N 卵清蛋白, 免疫球 2-氨基吖啶酮标记葡 FL, ESI-MS [74]
蛋白, Fc融合蛋白 寡糖、N-连接寡糖
鼠尿液 2-氨基吖啶酮标记葡 FL, ESI-MS [75]
寡糖, 唾液酸乳糖
人、牛免疫球蛋白及 3-(乙酰氨基)-6-氨 FL, MALDI-TOF-MS [76]
单克隆抗体 基吖啶标记寡糖
两性离子 ZIC-HILIC 半乳寡糖混合物 半乳寡糖(DP 2-10) ESI-MS [77]
拟南芥 糖类相关代谢物 ESI-MS [78]
人血清免疫球蛋白 2-氨基吡啶标记的 FL,UV, ESI-MS [79]
(IgG) N-连接寡糖
糖蛋白 (AGP) 2-氨基吡啶标记的 FL, UV, ESI-MS [65]
N-连接寡糖
酰胺、两性 TSKgel Amide-80, 人血清蛋白 2-氨基吡啶标记的中性, FL, ESI-MS [60]
离子 ZIC-HILIC 唾液酸化N-连接寡糖
ESI-MS,电喷雾电离质谱;CAD,电雾式检测器;FL,荧光检测器; ELSD,蒸发光散射检测器;MALDI-TOF-MS,基质
辅助激光解吸电离飞行时间质谱;UV,紫外检测器;DP,聚合度。
生命科学 第23卷708
相,并以 ZIC-HILIC的名字实现了商品化 (表 3)。
Deguchi等 [65]研究了中性和唾液酸化的寡糖在
ZIC-HILIC色谱柱上的保留行为,当流动相中的
NH4OAc浓度由 5 mmol/L增加至 20 mmol/L时,中
性寡糖的保留时间小幅度增加,唾液酸化的寡糖保
留时间则显著增加。作者推测,中性寡糖的保留行
为受亲水作用的影响,NH4OAc浓度增加,固定相
上的富水层厚度增加,导致中性寡糖保留时间增加;
酸性寡糖的保留除了受亲水作用的影响外,很大程
度上受到静电作用的影响。这种静电作用来自唾液
酸中的羧基与固定相的磺酸基之间的静电排斥力,
会随着流动相中 NH4OAc浓度的增加而迅速降低,
从而使酸性寡糖的保留时间大幅度增加。此外,作
者在 ZIC-HILIC色谱柱上实现了中性 /酸性寡糖异
构体的分离,证明了两性离子固定相具有良好的结
构识别能力。两性离子固定相也可与离子交换色谱
联用,构建二维分离系统,分离复杂样品中的中性
和酸性寡糖 [60]。
除了上述已经商品化的 ZIC-HILIC色谱柱,
Liang等 [80]发展了一种新型的两性离子固定相
Click CA,已成功的用于糖肽的选择性富集。Click
CA的合成步骤简单,具有高亲水性、高选择性的
特点,是一种新型的、有潜力的 HILIC两性离子固
定相,其在寡糖分离方面的应用还需进一步的研究。
3.5 环糊精修饰硅胶固定相
根据葡萄糖单元的数量不同,环糊精 (cyclodex-
trins, CD)可分为 α-、β-和 γ-CD。CD修饰硅胶固
定相被广泛用于手性分离 [81-83],也可作为亲水作用
色谱固定相用于寡糖的分离。Berthod等 [84]研究了
寡糖在 β-CD固定相上的保留行为,认为分配作用
以及固定相与寡糖之间的氢键作用是分离的主要机
理。与质谱检测器联用,β-CD色谱柱已成功用于
分离分析不同类型的寡糖,如纤维寡糖、葡寡糖、
甘露寡糖 [85]和菊粉类寡糖 [86]。
3.6 糖基修饰(Click saccharides)硅胶固定相
单糖、二糖和寡糖是典型的强极性分子,含有
大量的羟基官能团,具有独特的结构,是一种理想
的硅胶表面修饰基团。固体表面的糖基固载可以通
过 D-A(Diels-Alder)反应 [87]和硫醇加成 [88]反应实
现,但上述反应存在反应效率低的缺点。2001年,
Sharpless等 [89]提出“点击化学”(Click Chemistry)
的概念,该反应具有产率高、立体选择性强、反应
条件简单、副产物无害、产物易分离等特点,其代
表反应为铜催化的叠氮 -炔基 Husigen环加成反应
(copper-catalyzed azide-alkyne cycloaddition)。基于
点击化学原理,Liang等 [90-94]实现了糖基官能团
在硅胶表面的固载,合成了一系列糖基修饰的
HILIC固定相,包括葡萄糖 (Click Glucose)、麦芽
糖 (Click Maltose)、β-CD(Click β-CD)、壳寡糖 (Click
Chitooligosaccharide)等色谱柱。糖基修饰的硅胶固
定相具有高柱效、高选择性和稳定性,适用于分离
各种强极性化合物,如单糖、寡糖、糖醇、核苷、
氨基酸等,是一类新型的 HILIC固定相。
HILIC模式下,流动相中乙腈的起始浓度较高,
样品可能会因为溶解度的问题而析出。当进样量较
大 (制备级 )时,此问题可能会更加突出。Liang
等 [95]发展的 Click Maltose色谱柱具有很好的亲水
性,可有效降低流动相中乙腈的起始浓度,从而解
决样品溶解度的问题;同时,Click Maltose色谱柱
也表现出良好的选择性和稳定性。作为一种新型的
HILIC固定相,Click Maltose色谱柱已成功的用于
不同类型寡糖的分离 (分析级 )和纯化 (制备级 ),
包括中性 (半乳寡糖 )、碱性 (壳寡糖 )、酸性 (半
乳糖醛酸寡糖 )和强酸性寡糖 (卡拉胶寡糖 ),以及
大分子寡糖 (果寡糖,DP 5-50;壳寡糖,DP 5-25)(图
2)和天然产物地黄 (Rehmannia glutinosa Libosch.)
中的寡糖 [95]。
3.7 整体柱
整体柱固定相近年来也受到较多的关注,整体
柱材料具有高化学稳定性、低柱压、高传质速率等
特点。Que和 Novotny[96]合成氰基、氨基整体柱,
它们与质谱联用,可用于单糖、糖醇和寡糖的分离
分析。氰基整体柱分离了单糖、二糖的混合物以及
三种单糖 (fucose, N-acetylglucosamine, glucose) 的
异构体;氨基整体柱则有效分离了麦芽寡糖 (DP
1-9),同时也表现出对异构体的分离能力。Ikeggami
等 [53,97]发展了聚丙烯酰胺 (polyacrylamide, PAAm)
修饰的硅胶整体柱。动力学分析表明,在保证相同
柱效下,整体柱的分析速度可以达到填充柱 (5 µm)
的 3倍。与 ESI-MS联用,PAAm-硅胶整体柱可用
于分离分析非衍生的单糖和寡糖。
4 检测器
寡糖分析常用的检测器包括脉冲安培检测器
(PAD)、紫外检测器 (UV)、荧光检测器 (FL)、蒸发
光散射检测器 (ELSD)、电雾式检测器 (CAD)和质
谱检测器 (MS)等。
PAD通常与 HPAEC联用,具有高灵敏度、低
傅 青,等:寡糖色谱分离研究进展第7期 709
检测限的优点,常用于寡糖的定性和定量分析。但
该检测手段也有一定的局限性:(1) 无法得到寡糖
聚合度、组成等详细的化学信息,往往需要使用尺
寸排阻色谱 (size exclusion chromatography, SEC)对
寡糖样品进行预处理后再分析;(2) 缺少寡糖标准
品 (特别是聚合度大于 5的寡糖标准品 ),较难绘
制标准曲线;(3) 检测信号易受寡糖结构和相对分
子质量变化的影响。
蒸发光散射检测器 (evaporative light scattering
detection, ELSD)是寡糖分析中常用的检测器之一,
其工作原理包括喷雾、流动相蒸发和检测三个步骤。
Beilmann等 [59]系统考察了各种因素对 ELSD的影
响,实验中需要优化的参数包括取样器位置、雾化
气体流速、漂移管温度和样品溶液中的含水量。电
雾式检测器 (charged aerosol detection, CAD)可检测
无紫外吸收的化合物,因此也可作为寡糖分析的检
测器。Inagaki等 [67]报道使用 CAD检测唾液酸化
寡糖和唾液酸,其检测灵敏度高于紫外吸收检测,
低于荧光检测。
质谱检测器 (mass spectrometry, MS)是寡糖结
构分析的重要工具,可获取寡糖相对分子质量、单
糖组成、连接方式等信息,结果精确,灵敏度高。
HPAEC与MS联用时,必须使用离线 [98]或在线 [17]
的方式除去流动相中高浓度的非挥发性钠盐;石墨
化碳液相色谱和亲水作用色谱使用的流动相与质谱
有好的兼容性,因此,在使用这两种色谱技术时,
越来越多的报道开始使用质谱检测器对寡糖进行定
性和定量分析。面对丰富的实验数据 (寡糖保留时
间、相对分子质量、多级质谱碎片等 ),需要使用
化学计量学的方法将这些信息有效整合。因此,寡
糖质谱数据库的构建将成为重要的研究方向。
Campbell等 [99]成功构建了 HILIC模式下 2-氨基苯
甲酰胺衍生寡糖的数据库。考虑到寡糖样品的复杂
性、液相色谱种类和质谱模式的多样性,寡糖质谱
数据库的构建必将是一个长期而复杂的工作。
5 展望
HPAEC-PAD方法具有非常高的选择性和灵敏
度,是分析寡糖种类和含量的常规手段。由于
HPAEC使用的是非挥发性、高浓度的钠盐,对系
统的要求较高,并且不能直接和质谱联用,限制了
HPAEC的进一步发展。HILIC和石墨化碳色谱都
在经历着小型化的过程,纳米级 [100]和芯片上 [61]的
HILIC(nano-HILIC and HILIC on chip)以及 HILIC整
体柱 [53]的出现,都极大地提高了分析灵敏度;而纳
米级 [44,46-47]石墨化碳液相色谱的出现,也有望在寡
糖异构体分离方面有更好的表现。
除了固定相的小型化,发展高选择性、高稳定
图2 大相对分子质量的果寡糖(a)和壳寡糖(b)在麦芽糖色谱柱上的分离色谱图
生命科学 第23卷710
性的制备级寡糖分离色谱柱也是寡糖研究的重要方
向。制备级色谱柱的使用,可实现寡糖样品的高通
量制备,获取高纯度的寡糖化合物,从而构建寡糖
标准品库。在此基础上,可进一步与生物学表征相
结合,从而实现糖类化合物的化学信息与生物信息
的融合,为探索糖类化合物的生理活性发挥重要作
用。
[参 考 文 献]
[1] Zhang Y, Luo SZ, Tang YJ, et al. Carbohydrate-protein
interactions by “clicked” carbohydrate self-assembled
monolayers. Anal Chem, 2006, 78(6): 2001-8
[2] Wang CC, Huang YL, Ren CT, et al. Glycan microarray of
Globo H and related structures for quantitative analysis of
breast cancer. Proc Natl Acad Sci USA, 2008, 105(33):
11661-6
[3] Chen X, Flynn GC. Analysis of N-glycans from
recombinant immunoglobulin G by on-line reversed-phase
h igh-performance l iquid chromatography/mass
spectrometry. Anal Biochem, 2007, 370(2): 147-61
[4] Alley WR, Madera M, Mechref Y, et al. Chip-based
reversed-phase liquid chromatography-mass spectrometry
of permethylated N-l inked glycans: a potent ial
methodology for cancer-biomarker discovery. Anal Chem,
2010, 82(12): 5095-106
[5] Zhuang Z, Starkey JA, Mechref Y, et al. Electrophoretic
analysis of N-glycans on microfluidic devices. Anal Chem,
2007, 79: 7170-5
[6] Mechref Y, Novotny MV. Glycomic analysis by capillary
electrophoresis-mass spectrometry. Mass Spectrom Rev,
2009, 28(2): 207-22
[7] Durham M, Regnier FE. Targeted glycoproteomics: Serial
lectin affinity chromatography in the selection of O-
glycosylation sites on proteins from the human blood pro-
teome. J Chromatogr A, 2006, 1132(1-2): 165-73
[8] Qiu RQ, Regnier FE. Use of multidimensional lectin affi-
nity chromatography in differential glycoproteomics. Anal
Chem, 2005, 77(9): 2802-9
[9] Westphal Y, Kuhnel S, de Waard P, et al. Branched arabi-
no-oligosaccharides isolated from sugar beet arabinan.
Carbohydr Res, 2010, 345(9): 1180-9
[10] Borromei C, Cavazza A, Merusi C, et al. Characterization
and quantitation of short-chain fructooligosaccharides and
inulooligosaccharides in fermented milks by high-perfor-
mance anion-exchange chromatography with pulsed am-
perometric detection. J Sep Sci, 2009, 32(21): 3635-42
[11] Giannoccaro E, Wang YJ, Chen PY. Comparison of two
HPLC systems and an enzymatic method for quantificati-
on of soybean sugars. Food Chem, 2008, 106: 324-30
[12] Grey C, Edebrink P, Krook M, et al. Development of a
high performance anion exchange chromatography analy-
sis for mapping of oligosaccharides. J Chromatogr B Ana-
lyt Technol Biomed Life Sci, 2009, 877(20-21): 1827-32
[13] Haska L, Nyman M, Andersson R. Distribution and cha-
racterisation of fructan in wheat milling fractions. J Cereal
Sci, 2008, 48(3): 768-74
[14] Morales V, Corzo N, Sanz ML. HPAEC-PAD oligosaccha-
ride analysis to detect adulterations of honey with sugar
syrups. Food Chem, 2008, 107(2): 922-8
[15] Ouchemoukh S, Schweitzer P, Bey MB, et al. HPLC sugar
profiles of Algerian honeys. Food Chem, 2010, 121(2):
561-8
[16] Yoo DH, Lee BH, Chang PS, et al. Improved quantitative
analysis of oligosaccharides from lichenase-hydrolyzed
water-soluble barley β-glucans by high-performance an-
ion-exchange chromatography. J Agric Food Chem, 2007,
55(5): 1656-62
[17] Coulier L, Timmermans J, Bas R, et al. In-depth characte-
rization of prebiotic galacto-oligosaccharides by a combi-
nation of analytical techniques. J Agric Food Chem, 2009,
57(18): 8488-95
[18] Ronkart SN, Blecker CS, Fourmanoir H, et al. Isolation
and identification of inulooligosaccharides resulting from
inulin hydrolysis. Anal Chim Acta, 2007, 604(1): 81-7
[19] Chataigne G, Couderc F, Poinsot V. Polysaccharides ana-
lysis of sinorhizobial capside by on-line anion exchange
chromatography with pulsed amperometric detection and
mass spectrometry coupling. J Chromatogr A, 2008,
1185(2): 241-50
[20] Rantanen H, Virkki L, Tuomainen P, et al. Preparation of
arabinoxylobiose from rye xylan using family 10 Asper-
gillus aculeatus endo-1,4-β-D-xylanase. Carbohydr Po-
lym, 2007, 68(2): 350-9
[21] Guilloux K, Gaillard I, Courtois J, et al. Production of
Arabinoxylan-oligosaccharides from Flaxseed (Linum usi-
tatissimum). J Agric Food Chem, 2009, 57(23): 11308-13
[22] Gullon P, Gonzalez-Munoz MJ, van Gool MP, et al. Pro-
duction, refining, structural characterization and fermenta-
bility of rice husk xylooligosaccharides. J Agric Food
Chem, 2010, 58(6): 3632-41
[23] Pastell H, Tuomainen P, Virkki L, et al. Step-wise enzy-
matic preparation and structural characterization of singly
and doubly substituted arabinoxylo-oligosaccharides with
non-reducing end terminal branches. Carbohydr Res,
2008, 343(18): 3049-57
[24] Ravenscroft N, Cescutti P, Hearshaw MA, et al. Structural
analysis of fructans from agave americana grown in south
africa for spirit production. J Agric Food Chem, 2009,
57(10): 3995-4003
[25] Luo XQ, Yang HX, Liang CG, et al. Structural characteri-
zation of N-linked oligosaccharides of Defibrase from
Agikistrodon acutus by sequential exoglycosidase diges-
tion and MALDI-TOF mass spectrometry. Toxicon, 2010,
55(2-3): 421-9
[26] Martinez-Villaluenga C, Cardelle-Cobas A, Corzo N, et al.
Study of galactooligosaccharide composition in commer-
cial fermented milks. J Food Compos Anal, 2008, 21(7):
540-4
[27] Cardelle-Cobas A, Martinez-Villaluenga C, Villamiel M,
et al. Synthesis of oligosacccharides derived from lactulo-
se and pectinex ultra SP-L. J Agric Food Chem, 2008,
傅 青,等:寡糖色谱分离研究进展第7期 711
56(9): 3328-33.
[28] Bultel L, Landoni M, Grand E, et al. UV-MALDI-TOF
mass spectrometry analysis of heparin oligosaccharides
obtained by nitrous acid controlled degradation and high
performance anion exchange chromatography. J Am Soc
Mass Spectrom, 2010, 21(1): 178-90
[29] Borromei C, Cavazza A, Corradini C, et al. Validated
HPAEC-PAD method for prebiotics determination in syn-
biotic fermented milks during shelf life. Anal Bioanal
Chem, 2010, 397(1): 127-35
[30] Koizumi K, Okada Y, Fukuda M. High-Performance li-
quid-chromatography of monosaccharides and oligosac-
charides on a graphitized carbon column. Carbohydr Res,
1991, 215(1): 67-80
[31] Koizumi K. High-performance liquid chromatographic se-
paration of carbohydrates on graphitized carbon columns.
J Chromatogr A, 1996, 720(1-2): 119-26
[32] Harrison SJ, Fraser K, Lane GA, et al. A reverse-phase li-
quid chromatography/mass spectrometry method for the
analysis of high-molecular-weight fructooligosaccharides.
Anal Biochem, 2009, 395(1): 113-5
[33] Barroso B, Didraga M, Bischoff R. Analysis of
proteoglycans derived sulphated disaccharides by liquid
chromatography/mass spectrometry. J Chromatogr A,
2005, 1080(1): 43-8
[34] Antonopoulos A, Favetta P, Lafosse M, et al. Characterisa-
tion of iota-carrageenans oligosaccharides with high-per-
formance liquid chromatography coupled with evaporative
light scattering detection. J Chromatogr A, 2004, 1059(1-
2): 83-7
[35] Antonopoulos A, Herbreteau B, Lafosse M, et al. Compa-
rative analysis of enzymatically digested κ-carrageenans,
using liquid chromatography on ion-exchange and porous
graphitic carbon columns coupled to an evaporative light
scattering detector. J Chromatogr A, 2004, 1023(2): 231-8
[36] Bereman MS, Williams TI, Muddiman DC. Development
of a nanoLC LTQ orbitrap mass spectrometric method for
profiling glycans derived from plasma from healthy, be-
nign tumor control, and epithelial ovarian cancer patients.
Anal Chem, 2009, 81(3): 1130-6
[37] Clowers BH, Dodds ED, Seipert RR, et al. Dual polarity
accurate mass calibration for electrospray ionization and
matrix-assisted laser desorption/ionization mass spectro-
metry using maltooligosaccharides. Anal Biochem, 2008,
381(2): 205-13
[38] Estrella RP, Whitelock JM, Packer NH, et al. Graphitized
carbon LC-MS characterization of the chondroitin sulfate
oligosaccharides of aggrecan. Anal Chem, 2007, 79: 3597-
606
[39] Broberg A. High-performance liquid chromatography/
electrospray ionization ion-trap mass spectrometry for
analysis of oligosaccharides derivatized by reductive ami-
nation and N,N-dimethylation. Carbohydr Res, 2007,
342(11): 1462-9
[40] Tanimoto T, Ikuta A, Sugiyama M, et al. HPLC analysis of
manno-oligosaccharides derived from Saccharomyces ce-
revisiae mannan using an amino column or a graphitized
carbon column. Chem Pharm Bull, 2002, 50(2): 280-3
[41] Westphal Y, Schols HA, Voragen AGJ, et al. Introducing
porous graphitized carbon liquid chromatography with
evaporative light scattering and mass spectrometry detec-
tion into cell wall oligosaccharide analysis. J Chromatogr
A, 2010, 1217(5): 689-95
[42] Westphal Y, Kuhnel S, Schols HA, et al. LC/CE-MS tools
for the analysis of complex arabino-oligosaccharides. Car-
bohydr Res, 2010, 345(15): 2239-51
[43] Hammad LA, Saleh MM, Novotny MV, et al. Multiple-
reaction monitoring liquid chromatography mass spectro-
metry for monosaccharide compositional analysis of gly-
coproteins. J Am Soc Mass Spectrom, 2009, 20(6): 1224-
34
[44] Ninonuevo M, An HJ, Yin HF, et al. Nanoliquid chroma-
tography-mass spectrometry of oligosaccharides employ-
ing graphitized carbon chromatography on microchip with
a high-accuracy mass analyzer. Electrophoresis, 2005,
26(19): 3641-9
[45] Itoh S, Kawasaki N, Hashii N, et al. N-linked oligosaccha-
ride analysis of rat brain Thy-1 by liquid chromatography
with graphitized carbon column/ion trap-Fourier transform
ion cyclotron resonance mass spectrometry in positive and
negative ion modes. J Chromatogr A, 2006, 1103(2): 296-
306
[46] Lewandrowski U, Sickmann A. Online dual gradient re-
versed-phase/porous graphitized carbon nanohplc for pro-
teomic applications. Anal Chem, 2010, 82(12): 5391-6
[47] Chu CS, Ninonuevo MR, Clowers BH, et al. Profile of na-
tive N-linked glycan structures from human serum using
high performance liquid chromatography on a microfluidic
chip and time-of-flight mass spectrometry. Proteomics,
2009, 9(7): 1939-51
[48] Antonio C, Larson T, Gilday A, et al. Quantification of su-
gars and sugar phosphates in Arabidopsis thaliana tissues
using porous graphitic carbon liquid chromatography-
electrospray ionization mass spectrometry. J Chromatogr
A, 2007, 1172(2): 170-8
[49] Robinson S, Bergstrom E, Seymour M, et al. Screening of
underivatized oligosaccharides extracted from the stems
of Triticum aestivum using porous graphitized carbon li-
quid chromatography-mass spectrometry. Anal Chem,
2007, 79(6): 2437-45
[50] Pabst M, Altmann F. Influence of electrosorption, solvent,
temperature, and ion polarity on the performance of LC-
ESI-MS using graphitic carbon for acidic oligosacchari-
des. Anal Chem, 2008, 80(19): 7534-42
[51] Alpert AJ. Hydrophilic-interaction chromatography for the
separation of peptides, nucleic acids and other polar com-
pounds. J Chromatogr, 1990, 499: 177-96
[52] Schiesel S, Laemmerhofer M, Lindner W. Multitarget
quantitative metabolic profiling of hydrophilic metabolites
in fermentation broths of β-lactam antibiotics production
by HILIC-ESI-MS/MS. Anal Bioanal Chem, 2010,
396(5): 1655-79
[53] Ikegami T, Horie K, Saad N, et al. Highly efficient analy-
sis of underivatized carbohydrates using monolithic-silica-
生命科学 第23卷712
based capillary hydrophilic interaction (HILIC) HPLC.
Anal Bioanal Chem, 2008, 391(7): 2533-42
[54] van Nuijs ALN, Tarcomnicu I, Bervoets L, et al. Analysis
of drugs of abuse in wastewater by hydrophilic interaction
liquid chromatography-tandem mass spectrometry. Anal
Bioanal Chem, 2009, 395(3): 819-28
[55] Tolstikov VV, Fiehn O. Analysis of highly polar com-
pounds of plant origin: combination of hydrophilic inte-
raction chromatography and electrospray ion trap mass
spectrometry. Anal Biochem, 2002, 301(2): 298-307
[56] Linden JC, Lawhead CL. Liquid chromatography of sac-
charides. J Chromatogr A, 1975, 105(1): 125-33
[57] Churms SC. Recent progress in carbohydrate separation
by high-performance liquid chromatography based on hy-
drophilic interaction. J Chromatogr A, 1996, 720(1-2): 75-
91
[58] Kelleher DJ, Karaoglu D, Gilmore R. Large-scale isola-
tion of dolichol-linked oligosaccharides with homogeneo-
us oligosaccharide structures: determination of steady-sta-
te dolichol-linked oligosaccharide compositions. Glycobiology,
2001, 11(4): 321-33
[59] Beilmann B, Langguth P, Hausler H, et al. High-perfor-
mance liquid chromatography of lactose with evaporative
light scattering detection, applied to determine fine partic-
le dose of carrier in dry powder inhalation products. J
Chromatogr A, 2006, 1107(1-2): 204-7
[60] Deguchi K, Keira T, Yamada K, et al. Two-dimensional
hydrophilic interaction chromatography coupling anion-
exchange and hydrophilic interaction columns for separa-
tion of 2-pyridylamino derivatives of neutral and sia-
lylated N-glycans. J Chromatogr A, 2008, 1189(1-2): 169-
74
[61] Staples GO, Bowman MJ, Costello CE, et al. A chip-based
amide-HILIC LC/MS platform for glycosaminoglycan
glycomics profiling. Proteomics, 2009, 9(3): 686-95
[62] Jiang W, Irgum K. Covalently bonded polymeric zwitter-
ionic stationary phase for simultaneous separation of inor-
ganic cations and anions. Anal Chem, 1998, 71(2): 333-44
[63] Jiang W, Irgum K. Synthesis and evaluation of polymer-
based zwitterionic stationary phases for separation of ionic
species. Anal Chem, 2001, 73(9): 1993-2003
[64] Viklund C, Sjögren A, Irgum K, et al. Chromatographic
interactions between proteins and sulfoalkylbetaine-based
zwitterionic copolymers in fully aqueous low-salt buffers.
Anal Chem, 2000, 73(3): 444-52
[65] Takegawa Y, Deguchi K, Ito H, et al. Simple separation of
isomeric sialylated N-glycopeptides by a zwitterionic type
of hydrophilic interaction chromatography. J Sep Sci,
2006, 29(16): 2533-40
[66] Naimy H, Leymarie N, Bowman MJ, et al. Characterization
of heparin oligosaccharides binding specifically to
antithrombin III using mass spectrometry. Biochemistry,
2008, 47(10): 3155-61
[67] Inagaki S, Min JZ, Toyo’oka T. Direct detection method
of oligosaccharides by high-performance l iquid
chromatography with charged aerosol detection. Biomed
Chromatogr, 2007, 21(4): 338-42
[68] Melmer M, Stangler T, Schiefermeier M, et al. HILIC
analysis of fluorescence-labeled N-glycans from recombinant
biopharmaceuticals. Anal Bioanal Chem, 2010, 398(2):
905-14.
[69] Wang X, Emmett MR, Marshall AG. Liquid chromatography
electrospray ionization fourier transform ion cyclotron
resonance mass spectrometric characterization of N-linked
glycans and glycopeptides. Anal Chem, 2010, 82(15):
6542-8
[70] Wuhrer M, Koeleman CAM, Deelder AM, et al. Normal-
phase nanoscale liquid chromatography - mass spectrometry
of underivatized oligosaccharides at low-femtomole
sensitivity. Anal Chem, 2004, 76(3): 833-8
[71] Karlsson G, Winge S, Sandberg H. Separation of monosacc-
harides by hydrophilic interaction chromatography with
evaporative light scattering detection. J Chromatogr A, 2005,
1092(2): 246-9
[72] Kakita H, Kamishima H, Komiya K, et al. Simultaneous
analysis of monosaccharides and oligosaccharides by
high-performance liquid chromatography with postcolumn
fluorescence derivatization. J Chromatogr A, 2002,
961(1): 77-82
[73] Kinoshita M, Ohta H, Higaki K, et al. Structural character-
ization of multibranched oligosaccharides from seal milk
by a combination of off-line high-performance liquid
chromatography-matrix-assisted laser desorption/
ionization-time-of-flight mass spectrometry and sequential
exoglycosidase digestion. Anal Biochem, 2009, 388(2):
242-53
[74] Charlwood J, Birrell H, Bouvier ESP, et al. Analysis of
oligosaccharides by microbore high-performance liquid
chromatography. Anal Chem, 2000, 72(7): 1469-74
[75] Charlwood J, Birrell H, Tolson D, et al. Early indication of
effects of puromycin aminonucleoside using a fluorimetric
assay of 2-aminoacridone-derivatized carbohydrates in
urine. Anal Biochem, 2000, 283(2): 250-7
[76] Charlwood J, Skehel JM, Camilleri P. Immobilisation of
antibodies in gels allows the improved release and
identification of glycans. Proteomics, 2001, 1(2): 275-84
[77] Sinclair HR, de Slegte J, Gibson GR, et al. Galactooligosac-
charides (GOS) inhibit vibrio cholerae toxin binding to its
GM1 receptor. J Agric Food Chem, 2009, 57(8): 3113-9
[78] Antonio C, Larson T, Gilday A, et al. Hydrophilic interaction
chromatography/electrospray mass spectrometry analysis of
carbohydrate-related metabolites from Arabidopsis thaliana
leaf tissue. Rapid Commun Mass Spectrom, 2008, 22(9):
1399-407
[79] Takegawa Y, Deguchi K, Keira T, et al. Separation of iso-
meric 2-aminopyridine derivatized N-glycans and N-
glycopeptides of human serum immunoglobulin G by
using a zwitterionic type of hydrophilic-interaction chro-
matography. J Chromatogr A, 2006, 1113(1-2): 177-81
[80] Yu L, Li X, Dong J, et al. Selective enrichment of N-linked
glycopeptides by using a highly hydrophilic matrix syn-
thesized via click chemistry. Anal Methods, 2010, 2(11):
1667-70
[81] Hinze WL, Riehl TE, Armstrong DW, et al. Liquid chro-
傅 青,等:寡糖色谱分离研究进展第7期 713
matographic separation of enantiomers using a chiral .
beta.-cyclodextrin-bonded stationary phase and conventio-
nal aqueous-organic mobile phases. Anal Chem, 1985,
57(1): 237-42
[82] Li YJ, Song CH, Zhang LY, et al. Fabrication and evaluati-
on of chiral monolithic column modified by β-cyclodextrin
derivatives. Talanta, 2010, 80(3): 1378-84
[83] Lv YQ, Mei DP, Pan XX, et al. Preparation of novel beta-
cyclodextrin functionalized monolith and its application in
chiral separation. J Chromatogr B Analy Technol Biomed
Life Sci, 2010, 878(26): 2461-4
[84] Berthod A, Chang SSC, Kullman JPS, et al. Practice and
mechanism of HPLC oligosaccharide separation with a
cyclodextrin bonded phase. Talanta, 1998, 47(4): 1001-12
[85] Liu Y, Urgaonkar S, Verkade JG, et al. Separation and cha-
racterization of underivatized oligosaccharides using li-
quid chromatography and liquid chromatography-elec-
trospray ionization mass spectrometry. J Chromatogr A,
2005, 1079(1-2): 146-52
[86] Yang ZM, Yi YT, Gao CC, et al. Isolation of inulin-type
oligosaccharides from Chinese traditional medicine: Mo-
rinda officinalis How and their characterization using ESI-
MS/MS. J Sep Sci, 2010, 33(1): 120-5
[87] Houseman BT, Mrksich M. Carbohydrate arrays for the
evaluation of protein binding and enzymatic modification.
Chem Biol, 2002, 9(4): 443-54
[88] Houseman BT, Gawalt ES, Mrksich M. Maleimide-
functionalized self-assembled monolayers for the
preparation of peptide and carbohydrate biochips.
Langmuir, 2003, 19(5): 1522-31
[89] Kolb HC, Finn MG, Sharpless KB. Click chemistry:
diverse chemical function from a few good reactions.
Angew Chem-Int Edit, 2001, 40(11): 2004-21
[90] Guo ZM, Lei AW, Liang XM, et al. Click chemistry: a new
facile and efficient strategy for preparation of functionalized
HPLC packings. Chem Commun, 2006(43): 4512-4
[91] Guo ZM, Lei AW, Zhang YP, et al. "Click saccharides":
novel separation materials for hydrophilic interaction
liquid chromatography. Chem Commun, 2007(24): 2491-3
[92] Guo ZM, Jin Y, Liang T, et al. Synthesis, chromatographic
evaluation and hydrophilic interaction/reversed-phase
mixed-mode behavior of a “Click β-cyclodextrin”
stationary phase. J Chromatogr A, 2009, 1216(2): 257-63
[93] Fu Q, Guo ZM, Liang T, et al. Chemically bonded maltose
via click chemistry as stationary phase for HILIC. Anal
Methods, 2010, 2(3): 217-24
[94] Huang HX, Jin Y, Xue MY, et al. A novel click chitooligosac-
charide for hydrophilic interaction liquid chromatography.
Chem Commun, 2009(45): 6973-5
[95] Fu Q, Liang T, Zhang X, et al. Carbohydrate separation by
hydrophilic interaction liquid chromatography on a click
maltose column. Carbohydr Res, 2010, 345(18): 2690-7
[96] Que AH, Novotny MV. Separation of neutral saccharide
mixtures with capillary electrochromatography using
hydrophilic monolithic columns. Anal Chem, 2002,
74(20): 5184-91
[97] Ikegami T, Fujita H, Horie K, et al. HILIC mode
separation of polar compounds by monolithic silica
capillary columns coated with polyacrylamide. Anal
Bioanal Chem, 2006, 386(3): 578-85
[98] Hilz H, de Jong LE, Kabel MA, et al. A comparison of
liquid chromatography, capillary electrophoresis, and mass
spectrometry methods to determine xyloglucan structures
in black currants. J Chromatogr A, 2006, 1133(1-2): 275-
86
[99] Campbell MP, Royle L, Radcliffe CM, et al. GlycoBase
and autoGU: tools for HPLC-based glycan analysis. Bio-
informatics, 2008, 24(9): 1214-6
[100] Kirsch S, Muthing J, Peter-Katalinic J, et al. On-line nano-
HPLC/ESI QTOF MS monitoring of α 2-3 and α 2-6 sia-
lylation in granulocyte glycosphingolipidome. Biol Chem,
2009, 390(7): 657-72