免费文献传递   相关文献

The effects of the endophytic fungus Ceratobasidum stevensii B6 on Fusarium oxysporum in a continuously cropped watermelon field

内生真菌角担子菌B6对连作西瓜土壤尖孢镰刀菌的影响



全 文 :
摇 摇 摇 摇 摇 生 态 学 报
摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 (SHENGTAI XUEBAO)
摇 摇 第 32 卷 第 15 期摇 摇 2012 年 8 月摇 (半月刊)
目摇 摇 次
放牧对青藏高原东部两种典型高寒草地类型凋落物分解的影响 张艳博,罗摇 鹏,孙摇 庚,等 (4605)…………
北京地区外来入侵植物分布特征及其影响因素 王苏铭,张摇 楠,于琳倩,等 (4618)……………………………
温带混交林碳水通量模拟及其对冠层分层方式的响应———耦合的气孔导度鄄光合作用鄄能量平衡模型
施婷婷,高玉芳,袁凤辉,等 (4630)
………
……………………………………………………………………………
洞庭湖景观格局变化及其对水文调蓄功能的影响 刘摇 娜,王克林,段亚锋 (4641)……………………………
大辽河口水环境污染生态风险评估 于摇 格,陈摇 静,张学庆,等 (4651)…………………………………………
标准化方法筛选参照点构建大型底栖动物生物完整性指数 渠晓东,刘志刚,张摇 远 (4661)…………………
不同年龄段大连群体菲律宾蛤仔 EST鄄SSR多样性 虞志飞,闫喜武,张跃环,等 (4673)………………………
基于地统计分析西印度洋黄鳍金枪鱼围网渔获量的空间异质性 杨晓明,戴小杰,朱国平 (4682)……………
广东罗坑自然保护区鳄蜥生境选择的季节性差异 武正军,戴冬亮,宁加佳,等 (4691)…………………………
甘肃兴隆山森林演替过程中的土壤理化性质 魏摇 强,凌摇 雷,柴春山,等 (4700)………………………………
短轮伐期毛白杨不同密度林分土壤有机碳和全氮动态 赵雪梅,孙向阳,康向阳,等 (4714)……………………
放牧对呼伦贝尔草地植物和土壤生态化学计量学特征的影响 丁小慧,宫摇 立,王东波,等 (4722)……………
UV鄄B辐射增强对抗除草剂转基因水稻 CH4 排放的影响 娄运生, 周文鳞 (4731)……………………………
基于核磁共振波谱的盐芥盐胁迫代谢组学分析 王新宇,王丽华,于摇 萍,等 (4737)……………………………
广西甘蔗根际高效联合固氮菌的筛选及鉴定 胡春锦,林摇 丽,史国英,等 (4745)………………………………
不同稻蟹生产模式对土壤活性有机碳和酶活性的影响 安摇 辉,刘鸣达,王耀晶,等 (4753)……………………
大兴安岭火烧迹地恢复初期土壤微生物群落特征 白爱芹,傅伯杰,曲来叶,等 (4762)…………………………
川西北冷杉林恢复过程中土壤动物群落动态 崔丽巍,刘世荣,刘兴良,等 (4772)………………………………
内生真菌角担子菌 B6 对连作西瓜土壤尖孢镰刀菌的影响 肖摇 逸,戴传超,王兴祥,等 (4784)………………
西江颗粒直链藻种群生态特征 王摇 超,赖子尼,李跃飞,等 (4793)………………………………………………
大型人工湿地生态可持续性评价 张依然,王仁卿,张摇 建,等 (4803)……………………………………………
孢粉、炭屑揭示的黔西高原 MIS3b期间古植被、古气候演变 赵增友,袁道先,石胜强,等 (4811)……………
树干径流对梭梭“肥岛冶和“盐岛冶效应的作用机制 李从娟,雷加强,徐新文,等 (4819)………………………
豆科作物鄄小麦轮作方式下旱地小麦花后干物质及养分累积、转移与产量的关系
杨摇 宁,赵护兵,王朝辉,等 (4827)
………………………………
……………………………………………………………………………
一次陆源降雨污水引起血红哈卡藻赤潮的成因 刘义豪,宋秀凯,靳摇 洋,等 (4836)……………………………
盐城国家级自然保护区景观格局变化及其驱动力 王艳芳,沈永明 (4844)………………………………………
城市屋顶绿化资源潜力评估及绿化策略分析———以深圳市福田中心区为例
邵天然,李超骕,曾摇 辉 (4852)
……………………………………
…………………………………………………………………………………
黄河三角洲区域生态经济系统动态耦合过程及趋势 王介勇,吴建寨 (4861)……………………………………
重庆市生态功能区蝴蝶多样性参数 李爱民,邓合黎,马摇 琦 (4869)……………………………………………
专论与综述
干旱半干旱区不同环境因素对土壤呼吸影响研究进展 王新源,李玉霖,赵学勇,等 (4890)……………………
土壤呼吸的温度敏感性———全球变暖正负反馈的不确定因素 栾军伟,刘世荣 (4902)…………………………
森林土壤甲烷吸收的主控因子及其对增氮的响应研究进展 程淑兰,方华军,于贵瑞,等 (4914)………………
湖泊氮素氧化及脱氮过程研究进展 范俊楠,赵建伟,朱端卫 (4924)……………………………………………
研究简报
刈割对人工湿地风车草生长及污水净化效果的影响 吕改云,何怀东,杨丹菁,等 (4932)………………………
学术信息与动态
全球气候变化与粮食安全———2012 年 Planet Under Pressure国际会议述评 安艺明,赵文武 (4940)…………
期刊基本参数:CN 11鄄2031 / Q*1981*m*16*338*zh*P* ¥ 70郾 00*1510*35*
室室室室室室室室室室室室室室
2012鄄08
封面图说: 水杉是中国特有种,国家一级保护植物,有植物王国“活化石冶之称,是 1946 年由中国的植物学家在湖北的利川磨刀
溪发现的。 水杉曾广泛分布于北半球,第四纪冰期以后,水杉属的其他种类全部灭绝,水杉确在中国川、鄂、湘边境
地带得以幸存,成为旷世奇珍。 水杉耐水,适应力强,生长极为迅速,其树干通直挺拔,高大秀颀,树冠呈圆锥形,姿
态优美,枝叶繁茂,入秋后叶色金黄。 自发现后被人们在中国南方广泛种植,成为著名的绿化观赏植物,现在中国水
杉的子孙已遍及中国和世界 50 多个国家和地区。
彩图提供: 陈建伟教授摇 北京林业大学摇 E鄄mail: cites. chenjw@ 163. com
第 32 卷第 15 期
2012 年 8 月
生 态 学 报
ACTA ECOLOGICA SINICA
Vol. 32,No. 15
Aug. ,2012
http: / / www. ecologica. cn
基金项目:国家科技支撑计划资助项目(2009BADC6B05);中国科学院知识创新工程重大资助项目(KSCX 1鄄YW鄄09); 江苏省高校优势学科建设
工程资助项目
收稿日期:2011鄄11鄄02; 摇 摇 修订日期:2012鄄06鄄14
*通讯作者 Corresponding author. E鄄mail: xxwang@ issas. ac. cn
DOI: 10. 5846 / stxb201111021653
肖逸,戴传超,王兴祥,刘付燕,王宏伟.内生真菌角担子菌 B6 对连作西瓜土壤尖孢镰刀菌的影响.生态学报,2012,32(15):4784鄄4792.
Xiao Y, Dai C C, Wang X X, Liu F Y, Wang H W. The effects of the endophytic fungus Ceratobasidum stevensii B6 on Fusarium oxysporum in a
continuously cropped watermelon field. Acta Ecologica Sinica,2012,32(15):4784鄄4792.
内生真菌角担子菌 B6 对连作西瓜土壤
尖孢镰刀菌的影响
肖摇 逸1,戴传超1,王兴祥2,3,*,刘付燕1,王宏伟1
(1. 南京师范大学生命科学学院,江苏省微生物资源产业化工程技术研究中心,江苏省微生物与功能基因组学重点实验室,南京摇 210046;
2. 中国科学院土壤环境与污染修复重点实验室(南京土壤研究所),南京摇 210008;
3. 江西省红壤生态研究重点实验室,中国科学院红壤生态实验站,鹰潭摇 335211)
摘要:建立了快速定量检测土壤中角担子菌(Ceratobasidum stevensii)B6 的实时定量 PCR方法,同时跟踪了土壤中尖孢镰刀菌数
量的动态变化,以及不同的发酵组分对开花期西瓜土壤微生物区系的影响。 PCR扩增分析表明引物 Cf1 / Cr1 有很好的特异性,
能对角担子菌 B6 特异性扩增得到 371bp的条带,对其它 10 株真菌不能有效扩增。 使用荧光定量 PCR 对施加角担子菌 B6 的
土壤总 DNA扩增,结果表明将活菌 B6 固体发酵物施加到土壤 1 周后,B6 的数量有一定的增殖,达到 7. 4 log(pg DNA / g 干土),
随着时间推移,数量逐渐减少,在第 5 周的时候低于检测限;而液体发酵液处理从一开始施加到土壤后,B6 的数量就开始逐渐
减少,在第 4 周的时候就低于检测限。 施加活的 B6 菌 4 周内能够有效地控制尖孢镰刀菌的数量(尖孢镰刀菌数量维持在 5伊
103 CFU / g干土左右),之后随着 B6 数量的减少尖孢镰刀菌数量大量增加。 活菌 B6 在土壤中能够存活 1 个月左右,不会过度
影响土著微生物区系,是一株环境友好型菌株,对土壤微环境的干扰较小。
关键词:西瓜;角担子菌 B6;尖孢镰刀菌(FO);实时定量 PCR;DGGE
The effects of the endophytic fungus Ceratobasidum stevensii B6 on Fusarium
oxysporum in a continuously cropped watermelon field
XIAO Yi1, DAI Chuanchao1, WANG Xingxiang2, 3,*, LIU Fuyan1, WANG Hongwei1
1 Jiangsu Engineering and Technology Research Center for Industrialization of Microbial Resources, Jiangsu Key Laboratory for Microbes and Functional
Genomics, College of Life Science, Nanjing Normal University, Nanjing 210046, China
2 Key Laboratory of Soil Environment and Pollution Remediation, Institute of Soil Science, Chinese Academy of Sciences, Nanjing 210008, China
3 Jiangxi Key Laboratory of Ecological Research of Red Soil, Experimental Station of Red Soil, Chinese Academy of Sciences, Yingtan 335211, China
Abstract: Serious obstacles exist for the continuous cropping of watermelon (Citrullus lanatus). It has previously been
shown that following application of living Ceratobasidum stevensii B6 mycelia, the quantity of Fusarium oxysporum (FO) in
continuously cropped soil at the harvest stage decreased by 29. 9% , while the total yield and soluble sugar content of the
fruit increased by 103. 8% and 35. 1% compared with the control. Here we further discuss the mechanisms by which B6
may alleviate watermelon cropping problems. We developed a real鄄time polymerase chain reaction (PCR) assay to detect
and quantify B6 in soil, and monitored the dynamics of the FO population in the soil. We also evaluated the effects of
different fermentation components on the soil microflora, using Denatured Gradient Gel Electrophoresis ( DGGE). B6鄄
specific DNA primers were designed based on the internal transcribed spacer ( ITS) sequence. Amplification of B6 DNA
http: / / www. ecologica. cn
using Cf1 / Cr1 primers yielded a single 371 bp鄄long product; no product was obtained in the other ten fungal species tested.
The detection limit of the system was 100 fg / 滋L of B6 genomic DNA. To replicate the watermelon cropping system as
closely as possible, a surface layer (5—20 cm depth) of an Ultisol was sampled from a 3鄄year old continuously cropped
upland watermelon site, at the Red Soil Experimental Station, Chinese Academy of Agricultural Sciences, Yongzhou,
Hunan Province ( N26毅 45忆, E111毅 53忆) . Pot experiments were conducted in the botanical garden of Nanjing Normal
University; these were a control ( A), an inactivated B6 liquid broth ( B), an activated B6 liquid broth ( C), an
inactivated B6 solid fermentation (D), and an activated B6 solid fermentation (E). When the solid fermentation of B6 was
inoculated into soil, the level of genomic DNA reached its highest at 7. 4 log (pg / g dry soil) after one week, but decreased
below the detection limit after 5 weeks. When liquid broth of B6 was inoculated into soil, the level of genomic DNA
decreased immediately, and was below the detection limit after 4 weeks. B6 was not detected in other treatments, meaning
that B6 was low in the natural environment. The population of FO was effectively controlled by treatments C and E during
the first 4 weeks ( FO was about 5 伊 103 CFU / gDM), and then from the fifth week FO increased rapidly. DGGE
fingerprinting of bacterial cluster analysis showed that treatments A and B clustered in one class (with 57. 5% similarity),
and treatments C, D, and E clustered in another class (with 55. 2% similarity) . DGGE fingerprinting of fungal cluster
analysis showed that treatments A, B, and C clustered in one class ( with 66. 0% similarity) . Treatments D and E
exhibited significant differences. Except for treatments C and E, there was little difference between the bacterial or fungal
Shannon diversity indices, or evenness between the treatments. Our results suggest that B6 survived in the soil for about one
month under these experimental conditions, and that the strain tested was environmentally friendly and interfered little with
the soil microenvironment.
Key Words: watermelon; Ceratobasidium stevensii; Fusarium oxysporum; real time PCR; DGGE
西瓜(Citrullus lanatus (Thunb) Matsum & Nakai)是一种重要的经济作物,西瓜连作后易产生的枯萎病是
世界范围内西瓜减产的重要因素。 西瓜枯萎病病原菌是尖孢镰刀菌西瓜专化型(Fusarium oxysporum f. sp.
niveum) [1],它能够穿透植物的维管组织、分泌毒素、导致西瓜的茎产生坏死斑,诱发细胞凋亡,叶片随后出现
枯萎症状、几周内死亡。 连作土壤病原菌的防治目前有化学防治,抗性品种选育、间作套作等。 化学防治虽然
效果显著但长期使用化学药品易导致土壤生物功能退化、质量下降[2鄄3];抗性品种选育是防治土壤病原菌侵
染发病的经济有效的措施,但是选育品种的抗性难以持久[4];间作套作受农作物生长习性以及当地耕作习惯
的限制;而生物菌剂作为一种较为安全、绿色的防治措施越来越受到人们的重视。
张丽萍等发现 T42 木霉与枯草芽孢杆菌 Bs鄄6对尖孢镰刀菌有明显的拮抗作用,田间实验表明,这个组合
的生物制剂能显著增加连作西瓜的茎长和茎粗,经济产量、生物产量分别增加 50. 9% 、66. 7% ,对连作障碍的
防效可达 75% [5]。 但是,由于目前生产上应用的木霉制剂多为活孢子,常受到田间的温度、湿度、雨水、土著
微生物以及化学农药的影响,大田的防治效果并不稳定[6]。 而杜黎黎等人的研究表明,在平板对峙实验中,
内生细菌的发酵液对西瓜枯萎病孢子萌发有一定的抑制作用,孢子萌发率仅为 7. 86% [7],但其缺少盆栽和大
田实验对其结果进行验证。
Ceratobasidum stevensii B6 为角担子菌属真菌,具有驱杀菜青虫[8]、降解菲[9]等功能,可作为生物菌剂使
用。 前文研究表明,连作西瓜土壤添加 B6 菌后,西瓜枯萎病的主要致病菌尖孢镰刀菌的数量减少 29. 9% ,病
情指数下降 38. 3% ,西瓜单果重和总产量分别增加 44. 8%和 103. 8% ,可溶性糖含量增加 35. 1% ,西瓜连作
障碍得到了一定程度缓解[10]。 但 B6 在土壤中存活时间、对土著微生物的影响及其缓解西瓜连作障碍的机理
尚有待进一步研究。
实时定量 PCR技术定量检测土壤中某种特定的微生物的特异性和灵敏度都很高,目前已经被作为一种
成熟的技术手段用于微生物生态学研究[11鄄13],其中引物的设计至关重要,选择合适的靶序列将决定 PCR检测
5874摇 15 期 摇 摇 摇 肖逸摇 等:内生真菌角担子菌 B6 对连作西瓜土壤尖孢镰刀菌的影响 摇
http: / / www. ecologica. cn
的特异性和灵敏度,从而保证能够快速准确测定某种特定微生物的含量[14鄄16]。 本文根据 B6 rDNA鄄ITS区序列
设计了一对特异性引物,建立快速定量检测土壤中角担子菌 B6 的实时定量 PCR方法;研究添加 B6 对土壤中
微生物,尤其是尖孢镰刀菌数量的影响;探索合适的发酵组分和施加方式,为缓解连作西瓜枯萎病提供技术
支撑。
1摇 材料与方法
1. 1摇 实验材料
土壤摇 土壤采集于湖南省永州市中国农业科学院衡阳红壤实验站孟公山示范基地的第四纪红黏土发育
的红壤(5—20 cm),连续种植西瓜 3 a(第 1 年是西瓜实生苗,第 2—3年是西瓜嫁接苗)。 有机质含量 11. 60
g / kg,pH值 4. 82(1 颐2. 5H2O),全氮 0. 89 g / kg,碱解氮 77. 32 mg / kg,全磷 0. 50 g / kg,速效磷 25. 17 mg / kg,全
钾 13. 88 g / kg,速效钾 588. 31 mg / kg。
内生真菌摇 菌种为南京师范大学江苏省微生物与功能基因组学重点实验室保藏菌株,编号 B6,为角担子
菌属真菌 Ceratobasidum stevensii[8],分离自大戟科重阳木(Bischofia polycarpa) 茎内皮。 内生真菌 B6 从葡萄糖
马铃薯固体培养基(PDA)斜面上转接至新鲜 PDA 培养基 28 益培养 7 d,倒入 5 mL无菌水,用接种铲将菌丝
轻轻刮起,转移入灭过菌的液体马铃薯葡萄糖培养基(PD),250 mL 三角瓶中装入 50 mL PD 培养基,28 益,
180 r / min 培养 6 d,备用。
固体发酵物的制备摇 在 500 mL的锥形瓶中加入 50 g 的固体培养基(麸皮颐糠颐稻壳= 6颐3颐1),然后再加入
60 mL的水,加入 0. 5 g的硫酸铵,搅拌均匀,121 益灭菌 20 min。 每瓶加入 15 mL的 B6 种子液,搅拌均匀,静
置培养 14 d备用(28 益)。
1. 2摇 实验设计
盆栽试验地点在南京师范大学植物园温室。 试验共设 5 个处理,各 6 次重复,分别为空白对照(A)、施加
灭活的 B6 发酵液 300 g(B)、施加 300 g活菌 B6 发酵液(C)(折合干菌丝 1. 5 g)、施加 100 g 灭活的 B6 固体
培养基(D)、施加 100 g活菌 B6 固体培养基(E)(折合干菌丝 1. 5 g)。 2010 年 4 月 15 日育苗:营养钵 12(直
径)cm 伊10(高)cm;营养土是轻型有机栽培基质(镇江兴农有机肥有限公司),准备装满土的营养钵 60 个。
栽种西瓜种子到营养钵,每钵一颗种子,种子品种为礼品瓜黑美人(珠海市农之友种子有限公司)。 4 月 21 日
布置试验,实验盆钵直径 28 cm,高 28 cm,每盆用风干土 15 kg,分别施用尿素 4 g,磷酸二氢钾 4 g,硼砂 0. 55
g,碱渣 60 g,有机肥 500 g。 盆钵埋入土壤,盆口距地面 2 cm,随机区组排列。 4 月 27 日,在施加各处理前 1 h
取土,记为-1 h土样,然后在盆钵中加入液体发酵液或固体发酵物与 0—10 cm 深的土壤拌匀,1 h 后再次取
土,记为 1 h土样,随即移栽营养钵中的西瓜幼苗至盆栽中,每盆 1 株,常规管理。 之后每隔 7 d 取 1 次土样,
连续取土至第 6 周(开花期)。 取土时采用 2 cm内径的土钻,取 0—15 cm的混合土样。 样品分为两部分:用
于测定土壤尖孢镰刀菌数量的样品 4 益保藏;用于 PCR 定量分析和 DGGE 分析的土壤样品冻干后-20 益
保藏。
1. 3摇 分析方法
1. 3. 1摇 DNA提取
本试验中所用的真菌使用马铃薯葡萄糖液体培养基,28 益,180 rpm培养 6 d,滤纸过滤后获得菌丝,使用
无菌的去离子水清洗 3 次后备用;大型食用真菌购买自当地市场。 菌株基因组 DNA提取方法:将菌丝加入到
提取缓冲液(0. 5 mol / L NaCl, 10mmol / L Tris鄄HCl(pH值 7. 5), 10 mmol / L EDTA, 1% SDS)中,使用球磨破碎
仪(Bio鄄Spec Products, Bartlesville, OK,USA)提取,提取方法参照 Shishido等[17]。 提取获得的 DNA使用试剂
盒纯化,纯化后的 DNA浓度使用核酸检测仪(SmartSpecTM 3000;BioRad, Oakland, CA,USA)在 260 nm下检测
DNA浓度。 每株菌的基因组 DNA样品稀释 10 倍以减少 PCR扩增的抑制物。
使用 UltraCleanTM Soil DNA Isolation Kit (Mo BIO Laboratories, Inc. , Carlsbad, CA, USA)从 0. 5 g土壤中
提取土壤总基因组 DNA,提取步骤严格按照试剂盒中的说明书进行。 最后的 DNA用 50 滋L的灭菌的 ddH2O
6874 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 32 卷摇
http: / / www. ecologica. cn
溶解用于后续的 PCR反应。
1. 3. 2摇 B6 特异性引物的设计
使用引物 ITS1 和 ITS4 扩增 B6 菌的一段 ITS 序列,测序后,上传到 NCBI 数据库,使用数据库的 Primer
designing tool 初步设计 B6 的特异性引物(http: / / www. ncbi. nlm. nih. gov / tools / primer鄄blast / ),使用 Primer 5. 0
软件检测引物的二聚体和发卡结构。 另外使用其它 10 种真菌基因组 DNA 来验证引物的特异性:1 Pleurotus
eryngii(杏鲍菇), 2 Flammulina velutipes(金针菇),3 Lentinus edodes(香菇),4 Pleurotus ostreatus(白蘑菇), 5
Auricularia auricula(黑木耳), 6 Tremella fuciformis(银耳),7 Hypsizygus marmoreus(白玉菇),8 Absidia sp. (梨
头霉),9 Aspergillus niger(黑曲霉), 10 Trichoderm aviride(绿色木霉)。 选择的引物为 Cf1(5忆鄄GCCGGCACGAC鄄
CTCCAAGTC鄄3忆) / Cr1(5忆鄄GGGCATGTGCACGCCTGTCT鄄3忆)。
1. 3. 3摇 实时定量 PCR
实时定量 PCR扩增使用 Rotor鄄Gene Q(Qiagen, Valencia, CA, USA)定量 PCR仪。 荧光定量标准曲线使
用梯度稀释的 B6 基因组 DNA(10-7 pg—104 pg)为模板。 PCR扩增反应为 20 滋L体系:1. 0 滋L DNA模板,上
下游引物各 1 滋L,10 滋L SYBR Premix Ex Taq (Bio-Rad),H2O 7 滋L。 扩增反应程序: 94 益预变性 5 min;94
益 30 s,60 益 50 s,40 个循环。 所有的荧光定量 PCR反应条件和体系完全一致。
1. 3. 4摇 尖孢镰刀菌计数
用稀释平板法分离土壤中的尖孢镰刀菌,然后计数,培养基是 PDA+硫酸链霉素 0. 3 g / L[18]。
1. 3. 5摇 PCR鄄DGGE分析
使用引物 357f鄄GC(CGC CCG CCG CGC GCG GCG GGC GGG GCG GGG GCA CGG GGG GCC TAC GGG
AGG CAG CAG)和 517r(ATT ACC GCG GCT GCT GG)扩增细菌 16S rDNA V3 区[19]。 使用引物 FF390(CGA
TAA CGA ACG AGA CCT)和 FR1鄄GC(CCC CCG CCG CGC GCG GCG GGC GGG GCG GGG GCA CGG GCC GAI
CCA TTC AAT CGG TAI T)扩增真菌 18S rDNA V7 和 V8 区[20]。 细菌 16S rDNA和真菌 18S rDNA PCR反应
都为 50 滋L体系:10伊PCR buffer 5 滋L,MgCl2 3. 5 滋L(20mmol / L),dNTP 1. 5 滋L(10 mmol / L),上下游引物各 1
滋L(10 nM),Taq DNA 聚合酶(Takara Biotechnology Co. , Ltd, Dalian, CHN)0. 3 滋L(1. 5U),DNA 模板 2 滋L
(15 ng),无菌超纯水 35. 7 滋L。 16S rDNA扩增反应使用 touch鄄down PCR程序: 94 益预变性 4 min;94 益变性
40 s,58 益退火 1. 5 min,每个循环下降 1 益(6 个循环);72 益延伸 2 min;94 益变性 40 s,52 益退火 1. 5 min,
72 益延伸 2 min(28 个循环);72 益延伸 10 min。 18S rDNA扩增条件:94 益预变性 3 min;40 个循环,94 益变
性 1 min,50 益退火 50 s,72 益延伸 1. 5 min;72 益延伸 10 min。 PCR 产物凝胶电泳检测:5 滋L PCR 产物,
1郾 5%琼脂糖,120 V, 拍照(UVP BioImaging Systems;UVP, Inc. , Upland, CA, USA)。
细菌 DGGE使用 8%丙烯酰胺(37. 5颐1)凝胶,变性梯度从 35%到 65% (100%的变性剂溶液含 7 mol / L的
尿素和 40%甲酰胺);真菌 DGGE 使用 7%丙烯酰胺凝胶,变性梯度从 25%到 60% 。 使用 CBS鄄DGGE 系统
(CBS Scientific Co. , Inc. , Del Mar, CA, USA),电泳缓冲液为 0. 5伊TAE(40 mmol / L Tris base, 40 mmol / L 冰
醋酸, 1mmol / L EDTA),PCR 产物上样量为 500 ng,60 益,100 V, 电泳 16 h,EB 染色 20 min,拍照(UVP
BioImaging Systems; UVP, Inc. , Upland, CA, USA)。
1. 4摇 数据处理
实验结果用算术平均数依标准误表示,应用 SPSS 13. 0 软件进行方差分析(One鄄Way ANOVA) 检验处理
间差异显著性,并用 Duncan 法进行多重比较,当 P臆0. 05 时,各个处理间存在显著差异。 使用 Excel 2003 进
行作图。
DGGE指纹图谱分析使用 Gelcompar域(Applied Maths, Sint鄄Martens鄄Latem, Belgium)软件。 其中聚类分
析使用 UPGMA(unweighted pair鄄group method with arithmetic averages)方法。 用于计算群落生物多样性的指标
有:(印)Shannon指数(H)H= -移(ni / N)ln(ni / N),式中 ni为单一条带的峰面积,N为所有峰的总面积;(英)
均匀度指数(e) e=H / lnS,式中 S为所在泳道的条带总数目。
7874摇 15 期 摇 摇 摇 肖逸摇 等:内生真菌角担子菌 B6 对连作西瓜土壤尖孢镰刀菌的影响 摇
http: / / www. ecologica. cn
2摇 结果与分析
2. 1摇 B6 特异性引物设计及验证
通过对 B6 的扩增效果以及特异性验证筛选了一对合适的引物 Cf1(5忆鄄GCCGGCACGACCTCCAAGTC鄄3忆) /
Cr1(5忆鄄GGGCATGTGCACGCCTGTCT鄄3忆)。从图 1 可以看出,使用引物 Cf1 / Cr1 进行常规 PCR反应,只有 B6 得
到特异性 371 bp扩增条带,其余真菌如杏鲍菇、金针菇、香菇、白蘑菇、黑木耳、银耳、白玉菇、梨头霉、黑曲霉、
绿色木霉等都无明显扩增条带。
图 1摇 使用引物 Cf1 / Cr1 扩增产物的电泳图谱
Fig. 1摇 PCR products using primer Cf1 / Cr1
摇 泳道:1 角担子菌 B6Ceratobasidum stevensii B6;2 杏鲍菇 Pleurotus
eryngii;3 金针菇 Flammulina velutipes;4 香菇 Lentinus edodes;5 白蘑
菇 Pleurotus ostreatus;6 黑木耳 Auricularia auricula;7 银耳 Tremella
fuciformis;8 白玉菇 Hypsizygus marmoreus;9 梨头霉 Absidia sp. ;10
黑曲霉 Aspergillus niger;11 绿色木霉 Trichoderm aviride
2. 2摇 B6 荧光定量标准曲线制备
荧光定量 PCR扩增反应使用梯度稀释的 B6 基因
组 DNA做模板,引物为 Cf1 / Cr1。 图 2 为 B6 荧光定量
标准曲线,横坐标(x)为模板质量,纵坐标(y)为达到荧
光阈值的循环数量(y = -3. 7237x+22. 338)。 标准曲线
的相关系数(R>0. 99), 这表明 B6 基因组 DNA质量在
100—104pg间能够进行很好地线性定量扩增。 同时,将
B6 基因组 DNA继续稀释至 10-1pg、10-2pg、10-3 pg、10-4
pg、10-5 pg、10-6 pg、10-7 pg,用 1 滋L 超纯水作对照进行
扩增,进行该方法检测限初步研究,10 fg / 滋L B6 基因组
DNA为模板及 1滋L 超纯水代替模板 DNA 作为阴性对
照均未能起始扩增,表明该体系的检测下限为 100fg /
滋L B6 基因组 DNA质量,能够满足一般检测需要。
2. 3摇 土壤中 B6 数量的定量跟踪检测
从 A、B、C、D、E 5 个处理中分别提取土壤总 DNA,
进行 qPCR。 在所有的采样时间点,A、B、D处理中都没
有检测到 B6 的存在,说明在空白对照和灭活对照中,土壤中原本存在的角担子菌 B6 的数量微乎其微,在检
测下限以下,对本实验没有影响。 而在施加活菌 B6 发酵液和发酵物的处理中,土壤中有较多的角担子菌 B6
存在;与活菌 B6 发酵液处理(C)相比,活菌 B6 固体发酵物处理(E)土壤中 B6 菌的数量更多,在 1 周后达到
7. 4 log(pg DNA / g干土),而此时 C处理土壤中 B6 数量已经开始下降(4. 4 log pg DNA / g 干土);活菌 B6 发
酵液处理(C)的土壤中的 B6 在第 4 周已经基本消失,而固体发酵物处理(E)的土壤中的 B6 在第 4 周还有
2郾 7 log(pg DNA / g干土),在第 5 周才开始低于检测限(图 3)。 这说明与发酵液相比,固体发酵物更加有利于
B6 在土壤中的定殖。
图 2摇 实时定量 PCR扩增标准曲线
摇 Fig. 2 摇 Standard curve from real鄄time PCR by plotting the
threshold cycle (Ct) vs the log10 quantity of template DNA ( in
pg) for B6 amplified with the primer Cf1 / Cr1
图 3摇 土壤中 B6 菌 DNA含量变化
摇 Fig. 3摇 Population dynamics of Ceratobasidum stevensii B6 in soil
measured by qPCR
C:施加活菌 B6 发酵液;E:施加活菌 B6 固体发酵物。 -1h, 1h, 1
周, 2 周, 3 周, 4 周, 5 周, 6 周分别表示在接菌前 1h,接菌后 1h,
1、2、3、4、5、6 周采集土样
8874 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 32 卷摇
http: / / www. ecologica. cn
2. 4摇 施加 B6 对土壤中尖孢镰刀菌数量的影响
对照和施加灭活菌处理从第 3 周开始,土壤中尖孢镰刀菌的数量就逐渐增加(图 4)。 与对照和施加灭活
菌处理相比,施加活菌 B6 的处理 C和 E的土壤中的尖孢镰刀菌的数量从第 2 周开始就显著降低,分别比对
照减少了 41. 6%和 48. 6% ,此趋势一直保持到第 4 周。 从第 5 周开始,处理 C和 E土壤中尖孢镰刀菌的数量
也开始增加,这可能是由于此时土壤中的活菌 B6 的数量大量减少,失去了对尖孢镰刀菌的生防作用。
图 4摇 土壤尖孢镰刀菌数量变化
Fig. 4摇 Population dynamics of Fusarium oxysporum in soil measured by plate counting
处理间数据比较,不同字母表示在 0. 05 水平上差异显著(P臆0. 05)
2. 5摇 开花期土壤 DGGE分析
开花期处于西瓜植株生长最旺盛的时期,西瓜生长进入关键时期,所以选择开花期研究施加内生真菌 B6
对西瓜土壤微生物群落结构的影响。 细菌的 DGGE指纹图谱聚类分析表明(图 5),5 个处理分为两类,A和 B
聚为一类,两者相似度达到 57. 5% ;C、D和 E聚为一类,三者的相似度达到 55. 2% ,这其中 D 和 E 的相似度
达到 72. 4% 。 真菌 DGGE指纹图谱聚类分析表明(图 5),A、B、C 处理聚为一类,相似度达到 66. 0% ;D 和 E
各为一支,真菌群落结构差异很大。
从表 1 可以看出,除了处理 C,其余处理细菌的香农指数与对照 A相比都有一定提高,均匀度相差不大;
处理 E的真菌的香农指数与对照 A相比提高了 11. 0% ,而均匀度相差不大。
表 1摇 开花期土壤细菌、真菌群落结构多样性指数
Table 1摇 Structure diversity index of soil bacteria and fungi in flowering stage
处理
Treatment
细菌 Bacteria
香农多样性指数
Shannon diversity index
均匀度
Evenness
真菌 Fungi
香农多样性指数
Shannon diversity index
均匀度
Evenness
A 3. 15依0. 13b 0. 90依0. 01b 3. 36依0. 20a 0. 84依0. 02ab
B 3. 35依0. 09b 0. 91依0. 01b 3. 52依0. 17ab 0. 88依0. 02b
C 2. 25依0. 21a 0. 77依0. 01a 3. 63依0. 26ab 0. 87依0. 02ab
D 3. 36依0. 08b 0. 90依0. 01b 3. 34依0. 16a 0. 83依0. 01a
E 3. 20依0. 10b 0. 90依0. 01b 3. 73依0. 14b 0. 88依0. 03b
3摇 讨论
建立了一种使用 SYBR Green I 荧光染料快速检测土壤中 B6 的数量的方法。 SYBR Green I 的特异性主
要依靠设计的 PCR引物的特异性。 根据 B6 的 ITS序列设计了一对特异性引物 Cf1 / Cr1,并且使用其他 10 种
真菌对其特异性进行验证。 将活菌 B6 固体发酵物施加到土壤中 1 周后,B6 的数量有一定的增殖,然后随着
时间推移,数量逐渐减少,在第 5 周的时候位于检测水平以下;而发酵液处理从一开始施加到土壤中后,B6 的
数量就开始逐渐减少,在第 4 周的时候位于检测水平以下。 这主要是由于固体发酵物能够作为一个有机底
物[21],为 B6 在土壤中的生长提供营养物质。 在之前的研究曾报道,Phomopsis liquidambari B3 在土壤中能够
9874摇 15 期 摇 摇 摇 肖逸摇 等:内生真菌角担子菌 B6 对连作西瓜土壤尖孢镰刀菌的影响 摇
http: / / www. ecologica. cn
图 5摇 开花期土壤细菌群落和真菌群落 DGGE指纹图谱聚类分析
Fig. 5摇 DGGE cluster analysis ( UPGMA) of 16S rDNA profiles of soil bacterial communities and 18S rDNA profiles of soil fungal
communities in flowering phase
存活 30 d[22],本实验中活菌 B6 固体发酵物处理的土壤中 B6 能够存活 4 周左右,说明 B6 和 B3 一样,至少在
30d内能够被大量的检测出,内生真菌在特定的营养条件下,可以长期存在达 1 个月之久。
西瓜枯萎病的主要致病菌是尖孢镰刀菌,施加 B6 菌后的 4 周内能够有效地控制尖孢镰刀菌的数量,随后
尖孢镰刀菌数量大量增加。 这主要是由于 4 周后土壤中 B6 菌的数量下降,解除了对病原菌的养分和生存空
间的竞争作用。 但是,西瓜苗的育苗期大概在 1 个月左右,这段时期是各种病害的高发期,B6 菌如果在育苗
期就开始使用,可以有效地降低病害的发病率,提高西瓜苗的存活率。
西瓜开花期(移栽后 6 周左右)的细菌 DGGE指纹图谱的聚类分析表明,D和 E 的细菌群落相似度极高,
但是真菌群落结构各为一支。 原因有三方面:从实验设计本身来看,300 g液体培养物含有的营养物质只达到
固体培养基的 6%左右,因此细菌 D、E聚为一支,说明 B6 菌是否存在,对细菌的扰动没有培养基自身影响大;
真菌 DGGE聚类 D和 E各为一支,说明施加固体培养基对真菌扰动大,固体培养基加入,由于营养物的改变,
直接带来土壤真菌的巨大变化,而 B6 菌的加入,进一步促进了土壤中真菌群落的改变,因此真菌聚类图显示
为 3 支。 相对液体培养基,固体培养基对土壤真菌群落的影响较大,其抑制尖孢镰刀菌效果也较好。 在施加
少量液体培养基的情况下,培养基对细菌多样性影响不大,C 处理由于 B6 菌丝直接作用于土壤,因此对细菌
产生了一定的抑制作用。 E处理的香农指数和均匀度均高于对照,说明施加的固体培养基适合真菌生长,同
时相对于 D处理,E中含有的 B6 菌在前期抑制了尖孢镰刀菌的生长,使同生态位的其他真菌得到了更多的
养分和生存空间。 由于土壤 DGGE分析采样时间有点偏晚(这时候 B6 菌影响逐渐减弱),在一定程度上影响
其与尖孢镰刀菌数据的对应分析。
0974 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 32 卷摇
http: / / www. ecologica. cn
在大田种植中,西瓜施肥是穴施的,本实验中一盆西瓜相当于一穴西瓜,每盆的接种量是 300 g 的液体或
100 g的固体,如果按照西瓜行距 2 m,株距 1 m计算,每公顷的使用量是 1500 kg液体或者 500 kg 固体,使用
量稍微偏多,其应用条件还有待于进一步优化。
研究表明,施加活菌 B6 到土壤中的效果能维持 1 个月左右,不会过度影响土著微生物区系。 这说明 B6
菌是一株环境友好型菌株,对土壤微环境的干扰较小。 B6 固体剂型效果优于液体剂型,这是由于固体发酵物
中的有机物能够提供 B6 生长所需的营养物质,利于 B6 存留在土壤中,与病原菌竞争养分和生存空间。 采用
营养缓释和内生菌菌丝固定化措施可能能够延长 B6 在土壤中的存活时间,进一步控制病原菌的数量,达到
使其长期在土壤中发挥作用的目的。
References:
[ 1 ]摇 Wu H S, Liu D Y, Ling N, Bao W, Ying R R, Shen Q R. Influence of root exudates of watermelon on Fusarium oxysporum f. sp. niveum. Soil
Science Society of America Journal, 2009, 73(4): 1150鄄1156.
[ 2 ] 摇 Huo X F, Li F C. Effects of inorganic fertilizers and pesticides on soil microbes. Journal of Microbiology, 2008, 28(2): 101鄄103.
[ 3 ] 摇 Zhao G F. Effects of chemical pesticides on environment and research progress of new pesticides. Journal of Hebei Agricultural Sciences, 2010, 14
(8): 56鄄57, 98鄄98.
[ 4 ] 摇 Zeng S M. The estimation of durability of disease resistance. Acta Phytopathologica Sinica, 1999, 26(3): 193鄄203.
[ 5 ] 摇 Zhang L P, Huang Y L, Cheng H C, Zhang G W, Dong C, Tian L S, Li S S. Study on control watermelon replant disease by mixed animalcules.
Soil and Fertilizer Sciences in China, 2006, (5): 59鄄61.
[ 6 ] 摇 Huang Y L, Zhang L P, Li S S, Zhang G W, Cheng H C, Tian L S. Study on the biocontrol of peanut replant disease by T. viride agent. Modern
Agrochemicals, 2006, 5(6): 35鄄37,39鄄39.
[ 7 ] 摇 Du L L, Ma H Y, Wang X Z, Luan F S. Antagonistic effects of endophytic bacteria strain Mg15 on Fusarium oxysporum f. sp. niveum in
watermelon. China Vegetables, 2010, (8): 56鄄60.
[ 8 ] 摇 Dai C C, Yu B Y, Wang X F, Jiang J H, Shi Y. Identification of endophytic fungi killing pieris rapae and primary determination of its chemical
matter. Journal of Anhui Agricultural Sciences, 2006, 34(4): 694鄄697.
[ 9 ] 摇 Dai C C, Tian L S, Zhao Y T, Chen Y, Xie H. Degradation of phenanthrene by the endophytic fungus Ceratobasidum stevensii found in Bischofia
polycarpa. Biodegradation, 2010, 21(2): 245鄄255.
[10] 摇 Xiao Y, Wang X X, Wang H W, Liu F Y, Dai C C. The effects of the addition of Ceratobasidum stevensii B6 and its growth on the soil microflora at
a continuously cropped watermelon (Citrullus lanatus) site in China. Acta Ecologica Sinica, 2012, 32(4): 1185鄄1192.
[11] 摇 Shishido M, Sato K, Yoshida N, Tsukui R, Usami T. PCR鄄based assays to detect and quantify Phomopsis sclerotioides in plants and soil. Journal of
General Plant Pathology, 2010, 76(1): 21鄄30.
[12] 摇 Luo Y, Gao W, Doster M, Michailides T J. Quantification of conidial density of Aspergillus flavus and A. parasiticus in soil from almond orchards
using real鄄time PCR. Journal of Applied Microbiology, 2009, 106(5): 1649鄄1660.
[13] 摇 Kuan C P, Wu M T, Huang H C, Chang H. Rapid detection of Colletotrichum lagenarium, causal agent of anthracnose of cucurbitaceous crops, by
PCR and real鄄time PCR. Journal of Phytopathology, 2011, 159(4): 276鄄282.
[14] 摇 Li M Z, Senda M, Komatsu T, Suga H, Kageyama K. Development of real鄄time PCR technique for the estimation of population density of Pythium
intermedium in forest soils. Microbiological Research, 2010, 165(8): 695鄄705.
[15] 摇 Kang Z H, Huang J L. Detection of Thielaviopsis basicola in soil with real鄄time quantitative PCR. Acta Phytopathologica Sinica, 2010, 40(2):
210鄄213.
[16] 摇 Li F L, Li X Z, Min F X, Han F, Wei Q, Feng Y Z, Guo M. Application of real鄄time quantitative PCR on detection of fungal plant disease.
Journal of Northeast Agricultural University, 2010, 41(4): 151鄄155.
[17] 摇 Shishido M, Yoshida N, Usami T, Shinozaki T, Kobayashi M, Takeuchi T. Black root rot of cucurbits caused by Phomopsis sclerotioides in Japan
and phylogenetic grouping of the pathogen. Journal of General Plant Pathology, 2006, 72(4): 220鄄227.
[18] 摇 Nishimura N. Selective media for Fusarium oxysporum. Journal of General Plant Pathology, 2007, 73(5): 342鄄348.
[19] 摇 Muyzer G, de Waal E C, Uitterlinden A G. Profiling of complex microbial populations by denaturing gradient gel electrophoresis analysis of
polymerase chain reaction鄄amplified genes coding for 16S rRNA. Applied and Environmental Microbiology, 1993, 59(3): 695鄄700.
[20] 摇 Okubo A, Sugiyama S I. Comparison of molecular fingerprinting methods for analysis of soil microbial community structure. Ecological Research,
2009, 24(6): 1399鄄1405.
1974摇 15 期 摇 摇 摇 肖逸摇 等:内生真菌角担子菌 B6 对连作西瓜土壤尖孢镰刀菌的影响 摇
http: / / www. ecologica. cn
[21]摇 Yang X M, Chen L H, Yong X Y, Shen Q R. Formulations can affect rhizosphere colonization and biocontrol efficiency of Trichoderma harzianum
SQR鄄T037 against fusarium wilt of cucumbers. Biology and Fertility of Soils, 2011, 47(3): 239鄄248.
[22] 摇 Chen Y, Dai C C, Wang X X, Zhang B, Ju Q. Effects of endophytic fungus ( phomopsis sp. ) on decomposition of plant (Atractylodes lancea
(thunb) dc) litters and activity of degrading enzymes in soil. Acta Pedologica Sinica, 2010, 47(3): 537鄄544.
参考文献:
[ 2 ]摇 霍晓非, 李凤忱. 无机化学肥料和农药对土壤微生物的影响初探. 微生物学杂志, 2008, 28(2): 101鄄103.
[ 3 ] 摇 赵国芳. 化学农药对环境的影响及其新型农药的研究进展. 河北农业科学, 2010, 14(8): 56鄄57, 98鄄98.
[ 4 ] 摇 曾士迈. 品种抗病性持久度的估测(玉). 植物病理学报, 1996, 26(3): 193鄄203.
[ 5 ] 摇 张丽萍, 黄亚丽, 程辉彩, 张根伟, 董超, 田连生, 李书生. 复合生物制剂防治西瓜连作病害的研究. 中国土壤与肥料, 2006, (5):
59鄄61.
[ 6 ] 摇 黄亚丽, 张丽萍, 李书生, 张根伟, 程辉彩, 田连生. 绿色木霉菌剂对花生重茬病害的防治效果研究. 现代农药, 2006, 5(6): 35鄄 37,
39鄄39.
[ 7 ] 摇 杜黎黎, 马鸿艳, 王学征, 栾非时. 内生细菌 Mg15 对西瓜枯萎病菌的拮抗作用. 中国蔬菜, 2010, (8): 56鄄60.
[ 8 ] 摇 戴传超, 余伯阳, 王新风, 蒋继宏, 史央. 驱杀菜青虫的内生菌鉴定与化合物研究. 安徽农业科学, 2006, 34(4): 694鄄697.
[10] 摇 肖逸, 王兴祥, 王宏伟, 刘付燕, 戴传超. 施加角担子菌 B6 对连作西瓜土壤微环境和西瓜生长的影响. 生态学报, 2012, 32 (4):
1185鄄1192.
[15] 摇 康振辉, 黄俊丽. 土壤中烟草根黑腐病菌的实时定量 PCR检测技术研究. 植物病理学报, 2010, 40(2): 210鄄213.
[16] 摇 李凤兰, 李学湛, 闵凡祥, 韩峰, 魏琪, 冯艳忠, 郭梅. 实时定量 PCR在植物真菌病原体定量检测中的应用. 东北农业大学学报, 2010,
41(4): 151鄄155.
[22] 摇 陈晏, 戴传超, 王兴祥, 张波, 鞠群. 施加内生真菌拟茎点霉 (Phomopsis sp. ) 对茅苍术凋落物降解及土壤降解酶活性的影响. 土壤学
报, 2010, 47(3): 537鄄544.
2974 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 32 卷摇
ACTA ECOLOGICA SINICA Vol. 32,No. 15 August,2012(Semimonthly)
CONTENTS
Effects of grazing on litter decomposition in two alpine meadow on the eastern Qinghai鄄Tibet Plateau
ZHANG Yanbo, LUO Peng, SUN Geng, et al (4605)
…………………………………
………………………………………………………………………………
Distribution pattern and their influcing factors of invasive alien plants in Beijing
WANG Suming,ZHANG Nan,YU Linqian, et al (4618)
………………………………………………………
……………………………………………………………………………
Simulation of CO2 and H2O fluxes over temperate mixed forest and sensitivity analysis of layered methods: stomatal conductance鄄
photosynthesis鄄energy balance coupled model SHI Tingting, GAO Yufang, YUAN Fenghui, et al (4630)………………………
Analysis on the responses of flood storage capacity of Dongting Lake to the changes of landscape patterns in Dongting Lake area
LIU Na, WANG KeLin, DUAN Yafeng (4641)
……
……………………………………………………………………………………
Integrated water risk assessment in Daliao River estuary area YU Ge, CHEN Jing, ZHANG Xueqing, et al (4651)…………………
Discussion on the standardized method of reference sites selection for establishing the Benthic鄄Index of Biotic Integrity
QU Xiaodong, LIU Zhigang, ZHANG Yuan (4661)
………………
…………………………………………………………………………………
Genetic diversity analysis of different age of a Dalian population of the Manila clam Ruditapes philippinarum by EST鄄SSR
YU Zhifei, YAN Xiwu, ZHANG Yuehuan, et al (4673)
……………
……………………………………………………………………………
Geostatistical analysis of spatial heterogeneity of yellowfin tuna (Thunnus albacares) purse seine catch in the western Indian Ocean
YANG Xiaoming, DAI Xiaojie, ZHU Guoping (4682)

………………………………………………………………………………
Seasonal differences in habitat selection of the Crocodile lizard (Shinisaurus crocodilurus) in Luokeng Nature Reserve, Guangdong
WU Zhengjun, DAI Dongliang, NIN Jiajia, et al (4691)

…………………………………………………………………………
Soil physical and chemical properties in forest succession process in Xinglong Mountain of Gansu
WEI Qiang,LING Lei,CHAI Chunshan, et al (4700)
……………………………………
………………………………………………………………………………
Dynamics of soil organic carbon and total nitrogen contents in short鄄rotation triploid Populus tomentosa plantations
ZHAO Xuemei, SUN Xiangyang, KANG Xiangyang, et al (4714)
……………………
…………………………………………………………………
Grazing effects on eco鄄stoichiometry of plant and soil in Hulunbeir, Inner Mogolia
DING Xiaohui,GONG Li,WANG Dongbo,et al (4722)
……………………………………………………
……………………………………………………………………………
Effect of elevated ultraviolet鄄B (UV鄄B) radiation on CH4 emission in herbicide resistant transgenic rice from a paddy soil
LOU Yunsheng, ZHOU Wenlin (4731)
…………
………………………………………………………………………………………………
NMR spectroscopy based metabolomic analysis of Thellungiella salsuginea under salt stress
WANG Xinyu, WANG Lihua, YU Ping, et al (4737)
……………………………………………
………………………………………………………………………………
Screening and identification of associative nitrogen fixation bacteria in rhizosphere of sugarcane in Guangxi
HU Chunjin, LIN Li, SHI Guoying, et al (4745)
…………………………
…………………………………………………………………………………
Effects of different rice鄄crab production modes on soil labile organic carbon and enzyme activities
AN Hui, LIU Mingda, WANG Yaojing, et al (4753)
……………………………………
………………………………………………………………………………
The characteristics of soil microbial communities at burned forest sites for the Great Xingan Mountains
BAI Aiqin, FU Bojie, QU Laiye, et al (4762)
………………………………
……………………………………………………………………………………
Changes of soil faunal communities during the restoration progress of Abies faxoniana Forests in Northwestern Sichuan
CUI Liwei, LIU Shirong, LIU Xingliang, et al (4772)
………………
……………………………………………………………………………
The effects of the endophytic fungus Ceratobasidum stevensii B6 on Fusarium oxysporum in a continuously cropped watermelon field
XIAO Yi, DAI Chuanchao, WANG Xingxiang, et al (4784)

………………………………………………………………………
Population ecology of Aulacoseira granulata in Xijiang River WANG Chao, LAI Zini, LI Yuefei, et al (4793)………………………
Evaluation of ecosystem sustainability for large鄄scale constructed wetlands
ZHANG Yiran, WANG Renqing, ZHANG Jian, et al (4803)
………………………………………………………………
………………………………………………………………………
MIS3b vegetation and climate changes based on pollen and charcoal on Qianxi Plateau
ZHAO Zengyou, YUAN Daoxian, SHI Shengqiang, et al (4811)
………………………………………………
…………………………………………………………………
The effects of stemflow on the formation of “Fertile Island冶 and “Salt Island冶 for Haloxylon ammodendron Bge
LI Congjuan, LEI Jiaqiang, XU Xinwen, et al (4819)
………………………
……………………………………………………………………………
Accumulation and translocation of dry matter and nutrients of wheat rotated with legumes and its relation to grain yield in a dryland
area YANG Ning, ZHAO Hubing, WANG Zhaohui, et al (4827)…………………………………………………………………
Occurrence characteristics of akashiwo sanguinea bloom caused by land source rainwater
LIU Yihao, SONG Xiukai, JIN Yang, et al (4836)
………………………………………………
…………………………………………………………………………………
Analysis on landscape pattern change and its driving forces of Yancheng National Natural Reserve
WANG Yanfang, SHEN Yongming (4844)
……………………………………
…………………………………………………………………………………………
Resource potential assessment of urban roof greening and development strategies: a case study in Futian central district, Shenzhen,
China SHAO Tianran, LI Chaosu, ZENG Hui (4852)……………………………………………………………………………
Analysis of the dynamic coupling processes and trend of regional eco鄄economic system development in the Yellow River Delta
WANG Jieyong, WU Jianzhai (4861)
………
………………………………………………………………………………………………
The diversity parameters of butterfly for ecological function divisions in Chongqing LI Aimin, DENG Heli, MA Qi (4869)…………
Review and Monograph
Responses of soil respiration to different environment factors in semi鄄arid and arid areas
WANG Xinyuan, LI Yulin, ZHAO Xueyong, et al (4890)
………………………………………………
…………………………………………………………………………
Temperature sensitivity of soil respiration: uncertainties of global warming positive or negative feedback
LUAN Junwei, LIU Shirong (4902)
………………………………
…………………………………………………………………………………………………
The primary factors controlling methane uptake from forest soils and their responses to increased atmospheric nitrogen deposition:
a review CHENG Shulan, FANG Huajun, YU Guirui, et al (4914)………………………………………………………………
The research progresses on biological oxidation and removal of nitrogen in lakes
FAN Junnan, ZHAO Jianwei, ZHU Duanwei (4924)
………………………………………………………
………………………………………………………………………………
Scientific Note
Cutting effects on growth and wastewater purification of Cyperus alternifolius in constructed wetland
L譈 Gaiyun,HE Huaidong,YANG Danjing,et al (4932)
…………………………………
……………………………………………………………………………
《生态学报》2012 年征订启事
《生态学报》是中国生态学学会主办的自然科学高级学术期刊,创刊于 1981 年。 主要报道生态学研究原
始创新性科研成果,特别欢迎能反映现代生态学发展方向的优秀综述性文章;研究简报;生态学新理论、新方
法、新技术介绍;新书评介和学术、科研动态及开放实验室介绍等。
《生态学报》为半月刊,大 16 开本,280 页,国内定价 70 元 /册,全年定价 1680 元。
国内邮发代号:82鄄7摇 国外邮发代号:M670摇 标准刊号:ISSN 1000鄄0933摇 CN 11鄄2031 / Q
全国各地邮局均可订阅,也可直接与编辑部联系购买。 欢迎广大科技工作者、科研单位、高等院校、图书
馆等订阅。
通讯地址: 100085 北京海淀区双清路 18 号摇 电摇 摇 话: (010)62941099; 62843362
E鄄mail: shengtaixuebao@ rcees. ac. cn摇 网摇 摇 址: www. ecologica. cn
摇 摇 编辑部主任摇 孔红梅摇 摇 摇 执行编辑摇 刘天星摇 段摇 靖
生摇 态摇 学摇 报
(SHENGTAI摇 XUEBAO)
(半月刊摇 1981 年 3 月创刊)
第 32 卷摇 第 15 期摇 (2012 年 8 月)
ACTA ECOLOGICA SINICA

(Semimonthly,Started in 1981)

Vol郾 32摇 No郾 15 (August, 2012)
编摇 摇 辑摇 《生态学报》编辑部
地址:北京海淀区双清路 18 号
邮政编码:100085
电话:(010)62941099
www. ecologica. cn
shengtaixuebao@ rcees. ac. cn
主摇 摇 编摇 冯宗炜
主摇 摇 管摇 中国科学技术协会
主摇 摇 办摇 中国生态学学会
中国科学院生态环境研究中心
地址:北京海淀区双清路 18 号
邮政编码:100085
出摇 摇 版摇
摇 摇 摇 摇 摇 地址:北京东黄城根北街 16 号
邮政编码:1R00717
印摇 摇 刷摇 北京北林印刷厂
发 行摇
地址:东黄城根北街 16 号
邮政编码:100717
电话:(010)64034563
E鄄mail:journal@ cspg. net
订摇 摇 购摇 全国各地邮局
国外发行摇 中国国际图书贸易总公司
地址:北京 399 信箱
邮政编码:100044
广告经营
许 可 证摇 京海工商广字第 8013 号
Edited by摇 Editorial board of
ACTA ECOLOGICA SINICA
Add:18,Shuangqing Street,Haidian,Beijing 100085,China
Tel:(010)62941099
www. ecologica. cn
Shengtaixuebao@ rcees. ac. cn
Editor鄄in鄄chief摇 FENG Zong鄄Wei
Supervised by摇 China Association for Science and Technology
Sponsored by摇 Ecological Society of China
Research Center for Eco鄄environmental Sciences, CAS
Add:18,Shuangqing Street,Haidian,Beijing 100085,China
Published by摇 Science Press
Add:16 Donghuangchenggen North Street,
Beijing摇 100717,China
Printed by摇 Beijing Bei Lin Printing House,
Beijing 100083,China
Distributed by摇 Science Press
Add:16 Donghuangchenggen North
Street,Beijing 100717,China
Tel:(010)64034563
E鄄mail:journal@ cspg. net
Domestic 摇 摇 All Local Post Offices in China
Foreign 摇 摇 China International Book Trading
Corporation
Add:P. O. Box 399 Beijing 100044,China
摇 ISSN 1000鄄0933
CN 11鄄2031 / Q
国内外公开发行 国内邮发代号 82鄄7 国外发行代号 M670 定价 70郾 00 元摇