全 文 ：
摇 摇 摇 摇 摇 生 态 学 报
摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 (SHENGTAI XUEBAO)
摇 摇 第 31 卷 第 16 期摇 摇 2011 年 8 月摇 (半月刊)
目摇 摇 次
人工和天然湿地芦苇根际土壤细菌群落结构多样性的比较 汪仲琼,王为东,祝贵兵,等 (4489)………………
不同土壤水分下山杏光合作用光响应过程及其模拟 郎摇 莹,张光灿,张征坤,等 (4499)………………………
不同颜色遮阳网遮光对丘陵茶园夏秋茶和春茶产量及主要生化成分的影响
秦志敏,付晓青,肖润林,等 (4509)
……………………………………
……………………………………………………………………………
镉胁迫对烟草叶激素水平、光合特性、荧光特性的影响 吴摇 坤,吴中红,邰付菊,等 (4517)……………………
条浒苔和缘管浒苔对镉胁迫的生理响应比较 蒋和平,郑青松,朱摇 明,等 (4525)………………………………
盐胁迫对拟南芥和盐芥莲座叶芥子油苷含量的影响 庞秋颖,陈思学,于摇 涛,等 (4534)………………………
长期双季稻绿肥轮作对水稻产量及稻田土壤有机质的影响 高菊生,曹卫东,李冬初,等 (4542)………………
基于水量平衡下灌区农田系统中氮素迁移及平衡的分析 杜摇 军,杨培岭,李云开,等 (4549)…………………
苏北海滨湿地互花米草种子特征及实生苗生长 徐伟伟,王国祥,刘金娥,等 (4560)……………………………
基于 AnnAGNPS模型的三峡库区秭归县非点源污染输出评价 田耀武,黄志霖,肖文发 (4568)………………
镉污染对不同生境拟水狼蛛氧化酶和金属硫蛋白应激的影响 张征田,庞振凌,夏摇 敏,等 (4579)……………
印度洋南赤道流区水体叶绿素 a的分布及粒级结构 周亚东,王春生,王小谷,等 (4586)………………………
长江口滩涂围垦后水鸟群落结构的变化———以南汇东滩为例 张摇 斌,袁摇 晓,裴恩乐,等 (4599)……………
应用鱼类完整性指数(FAII)评价长江口沿岸碎波带健康状况 毛成责,钟俊生,蒋日进,等 (4609)…………
基于渔业调查的南极半岛北部水域南极磷虾种群年龄结构分析 朱国平,吴摇 强,冯春雷,等 (4620)…………
水稻模型 ORYZA2000 在湖南双季稻区的验证与适应性评价 莫志鸿,冯利平,邹海平,等 (4628)……………
旱地农田不同耕作系统的能量 /碳平衡 王小彬,王摇 燕,代摇 快,等 (4638)……………………………………
宁夏黄灌区稻田冬春休闲期硝态氮淋失量 王永生,杨世琦 (4653)………………………………………………
太湖沉积物有机碳与氮的来源 倪兆奎,李跃进,王圣瑞,等 (4661)………………………………………………
日偏食对乌鲁木齐空气可培养细菌群落的影响 马摇 晶,孙摇 建,张摇 涛,等 (4671)……………………………
灰飞虱与褐飞虱种内和种间密度效应比较 吕摇 进,曹婷婷,王丽萍,等 (4680)…………………………………
圈养马来熊行为节律和时间分配的季节变化 兰存子,刘振生,王爱善,等 (4689)………………………………
塔里木荒漠河岸林干扰状况与林隙特征 韩摇 路,王海珍,陈加利,等 (4699)……………………………………
珍稀植物伯乐树一年生更新幼苗的死亡原因和保育策略 乔摇 琦,秦新生,邢福武,等 (4709)…………………
垃圾堆肥复合菌剂对干旱胁迫下草坪植物生理生态特性的影响 多立安,王晶晶,赵树兰 (4717)……………
CLM3. 0鄄DGVM中植物叶面积指数与气候因子的时空关系 邵摇 璞,曾晓东 (4725)……………………………
基于生态效率的辽宁省循环经济分析 韩瑞玲,佟连军,宋亚楠 (4732)…………………………………………
专论与综述
土壤食物网中的真菌∕细菌比率及测定方法 曹志平,李德鹏,韩雪梅 (4741)…………………………………
生态社区评价指标体系研究进展 周传斌,戴摇 欣,王如松,等 (4749)……………………………………………
问题讨论
不同胁迫条件下化感与非化感水稻 PAL多基因家族的差异表达 方长旬,王清水,余摇 彦,等 (4760)………
研究简报
钦州湾大型底栖动物生态学研究 王摇 迪,陈丕茂,马摇 媛 (4768)………………………………………………
人工恢复黄河三角洲湿地土壤碳氮含量变化特征 董凯凯,王摇 惠,杨丽原,等 (4778)………………………
基于地统计学丰林自然保护区森林生物量估测及空间格局分析 刘晓梅,布仁仓,邓华卫,等 (4783)…………
晋西黄土区辽东栎、山杨树干液流比较研究 隋旭红,张建军,文万荣 (4791)……………………………………
小兴安岭典型苔草和灌木沼泽 N2O排放及影响因子 石兰英,牟长城,田新民,等 (4799)……………………
期刊基本参数:CN 11鄄2031 / Q*1981*m*16*316*zh*P* ￥ 70郾 00*1510*35*
室室室室室室室室室室室室室室
2011鄄08
封面图说: 在长白山麓低海拔地区的晚秋季节,成片的白桦林用无数根白色的树干、树枝烘托着林冠上跳动的金黄色叶片,共
生的柞木树冠用更浓重的颜色显示了它的存在,整个山梁层林尽染,秋意浓浓。
彩图提供: 陈建伟教授摇 国家林业局摇 E鄄mail: cites. chenjw@ 163. com
第 31 卷第 16 期
2011 年 8 月
生 态 学 报
ACTA ECOLOGICA SINICA
Vol. 31,No. 16
Aug. ,2011
http: / / www. ecologica. cn
基金项目:中央高校基本科研业务费专项资金(DL10BA18); 国家自然科学基金(3067032,30528013)
收稿日期:2010鄄09鄄02; 摇 摇 修订日期:2010鄄11鄄09
*通讯作者 Corresponding author. E鄄mail: xfyan@ nefu. edu. cn
庞秋颖, 陈思学, 于涛, 王洋, 阎秀峰.盐胁迫对拟南芥和盐芥莲座叶芥子油苷含量的影响.生态学报,2011,31(16):4534鄄4541.
Pang Q Y, Chen S X, Yu T, Wang Y, Yan X F. Effects of salt stress onglucosinolate contents in Arabidopsis thaliana and Thellungiella halophila rosette
leaves. Acta Ecologica Sinica,2011,31(16):4534鄄4541.
盐胁迫对拟南芥和盐芥莲座叶芥子油苷含量的影响
庞秋颖1, 陈思学2, 于摇 涛1, 王摇 洋1, 阎秀峰1,*
(1. 东北林业大学盐碱地生物资源环境研究中心,东北油田盐碱植被恢复与重建教育部重点实验室,哈尔滨摇 150040;
2. 佛罗里达大学生物学系,盖恩斯维尔 FL摇 32611)
摘要:芥子油苷是十字花科植物中一类含氮、含硫的次生代谢产物,与其水解产物在植物防御功能中有重要意义且与环境因子
关系密切。 以模式植物拟南芥(Arabidopsis thaliana)和盐生模式植物盐芥(Thellungiella halophila)为研究对象,系统地分析了盐
胁迫下二者芥子油苷组成和含量的变化规律。 拟南芥(生长 4 周)和盐芥(生长 6 周)叶片的芥子油苷组成在盐胁迫后没有改
变。 拟南芥的芥子油苷总量、脂肪族芥子油苷总量、吲哚族芥子油苷总量受盐胁迫的影响均不显著,而盐芥的则随盐胁迫增强
先减少、后增加并高于对照水平。 拟南芥脂肪族的 3MSOP、5MSOP和吲哚族的 4OHI3M、4MOI3M 随盐胁迫增强而含量降低,而
脂肪族的 6MSOH、吲哚族的 I3M以及盐芥脂肪族的 3MSOP则随盐胁迫增强有含量增加的趋势。 拟南芥脂肪族的 8MSOO和吲
哚族的 1MOI3M,盐芥脂肪族的 3MTP、Allyl、10MSD和吲哚族的 4MOI3M,在盐胁迫下的含量变化与盐芥芥子油苷总量的变化趋
势一致。
关键词:拟南芥;盐芥;芥子油苷;盐胁迫
Effects of salt stress onglucosinolate contents in Arabidopsis thaliana and
Thellungiella halophila rosette leaves
PANG Qiuying1, CHEN Sixue2, YU Tao1, WANG Yang1, YAN Xiufeng1,*
1 Alkali Soil Natural Environmental Science Center, Northeast Forestry University / Key Laboratory of Saline鄄alkali Vegetation Ecology Restoration in Oil
Field, Ministry of Education, Harbin 150040, China
2 Department of Biology, University of Florida, Gainesville, FL 32610, USA
Abstract: Glucosinolates are a group of plant secondary metabolites comprising at least 120 anionic thioglucosides with
well鄄defined structures. Found in many members of the order Capparales, including important crops (e. g. , oilseed rape,
broccoli and cabbage), glucosinolates and their degradation products play important roles in plant defense and interactions
with the environment. In the past decades, the importance of these nitrogen鄄 and sulfur鄄containing plant secondary
metabolites has become apparent due to their function as cancer鄄prevention agents, crop鄄protection compounds, and
biofumigants in agriculture. In addition, the presence of glucosinolates in the model plant, Arabidopsis thaliana, has
stimulated vigorous research efforts into these interesting amino acid鄄derived products. Here we report glucosinolate profiles
in A. thaliana, a glycophyte, and its close relative Thellungiella halophila, a halophyte, under different salt stress
conditions. Exposure of A. thaliana seedlings to 5鄄day salt stress led to chlorosis in young leaves under 50 mmol / L and 150
mmol / L NaCl, the latter exhibited stronger chlorosis phenotype. In contrast, T. halophila did not display obvious chlorosis
under these conditions. It was clearly more tolerant to salt stress than A. thaliana. We then measured tissue water content
and relative electrolyte leakage. NaCl treatment caused a significant decrease in tissue water content in A. thaliana,
whereas it only caused a slight reduction in T. halophila. Relative conductivity, an indicator of membrane damage, was
http: / / www. ecologica. cn
used to indicate electrolyte leakage. After a 5鄄day salt treatment, relative conductivity increased in both A. thaliana and T.
halophila. However, the increase in A. thaliana was much higher than that in T. halophila. The composition of
glucosinolates was not varied in the rosette leaves of four鄄week鄄old A. thaliana and 6鄄week鄄old T. halophila, which were
irrigated with 50 mmol / L and 150 mmol / L NaCl. The contents of total, aromatic and indole glucosinolates were not varied
significantly either. However, the contents of total, aromatic and indole glucosinolates decreased after 50 mmol / L NaCl
treatment and increased after 150 mmol / L NaCl treatment. Aliphatic glucosinolates 3MSOP, 5MSOP and indole
glucosinolates 4OHI3M and 4MOI3M in A. thaliana decreased with increasing NaCl concentrations, while aliphatic
glucosinolates 6MSOH, indole glucosinolates I3M in A. thaliana and aliphatic glucosinolates 3MSOP in T. halophila
increased with increasing NaCl concentrations. The contents of 8MSOO and 1MOI3M in A. thaliana, 3MTP, Allyl, 10MSD
and 4MOI3M in T. halophila displayed a similar pattern of variation. Interestingly, only two glucosinolates were identified
to be common in both A. thaliana and T. halophila, but they exhibited significantly different patterns in response to salt
stress.
Key Words: Arabidopsis thaliana; Thellungiella halophila; glucosinolates; salt stress
芥子油苷(glucosinolates, GS)又称硫代葡萄糖苷,是一类由氨基酸衍生的含氮、含硫的植物次生代谢产
物[1鄄2],主要分布于十字花科植物。 根据氨基酸来源可以将芥子油苷分为脂肪族芥子油苷、芳香族芥子油苷
和吲哚族芥子油苷 3 个类群,芥子油苷在植物与环境之间的相互作用中具有重要意义并引起人们极大的研究
兴趣[3鄄4]。 植物的次生代谢是植物在长期进化过程中与环境相互作用的结果,芥子油苷代谢以及在体内的分
布除了受自身基因的控制外,还受到植物生存环境(生物环境和非生物环境)的影响[2,5鄄11]。 尽管人们已经了
解到非生物因子会影响植物体内芥子油苷含量,如季节、温度、光照、水分、硫营养对植物的生长产生各种各样
的影响甚至胁迫,进而影响芥子油苷的代谢,但至今为止芥子油苷在植物响应非生物逆境中的作用还不
清楚[4, 12]。
盐胁迫是植物生长发育的主要限制因子之一,植物对盐胁迫的响应成为植物研究的一个重点和热
点[13鄄16]。 根据植物对盐逆境的抗性反应程度,可以将植物分为盐生植物和淡土(甜土)植物或非盐生植物。
拟南芥是现代植物生物学研究的模式植物,但由于拟南芥属于甜土植物,对盐胁迫比较敏感,一般认为它不适
合用于耐盐性机理的研究。 人们发现十字花科的盐芥(Thellungiella halophila)非常耐盐,能够在 300 mmol / L
NaCl的生境中完成生活史,而且与模式植物拟南芥的亲缘关系非常近[17鄄18]。 克隆的 EST 分析发现盐芥大约
有 95%的 cDNA和氨基酸序列与拟南芥相同[19],因此有研究者提出将盐芥作为研究耐盐性的模式植物[17鄄18]。
盐芥植株大小、形态和发育特征与拟南芥非常相似,全生育期与拟南芥类似,但生长较缓慢。 目前,对盐芥研
究主要集中在耐盐基因和生态生理方面,如盐胁迫条件下渗透调节[20鄄21]、离子分布[17]、质膜和液泡膜的 SOS1
及 H+ 鄄ATPase活性变化[22]、耐盐基因和基因转录水平调控[23鄄25]、蛋白质组学研究[26]等,并取得了大量研究结
果。 作为一种十字花科植物,盐芥体内芥子油苷种类、含量已有报道[27],但对盐胁迫的响应尚未有报道。 本
研究以拟南芥、盐芥为实验材料,比较并分析盐胁迫条件下二者叶片中芥子油苷含量的动态变化过程。
1摇 材料和方法
1. 1摇 植物材料培养及处理
实验所用拟南芥(Arabidopsis thaliana)为哥伦比亚生态型(ecotype Col鄄0),种子购自拟南芥生物资源中心
(Arabidopsis Biological Resource Center, US),盐芥(Thellungiella halophila)为山东生态型,种子由山东师范大
学张慧教授惠赠。
种子消毒冲洗后,置于 4益黑暗环境中打破休眠,播种在土和蛭石(1 颐1)的混合培养基中,人工气候室培
养(8 / 16 h 光周期,25 / 20益,光照 150 滋mol·m-2·s-1,湿度 50%—70% ),每隔 3d 浇 1 次水。 拟南芥生长至 4
周、盐芥生长至 6 周(植株大小与生长 4 周的拟南芥基本一致)时,分别用 50、150 mmol / L NaCl溶液浇灌进行
5354摇 16 期 摇 摇 摇 庞秋颖摇 等:盐胁迫对拟南芥和盐芥莲座叶芥子油苷含量的影响 摇
http: / / www. ecologica. cn
盐胁迫处理,正常浇水的植株作为对照,连续处理 5d 后进行采样,样品直接用液氮冷冻,置于-80益冰箱保
存。 每个处理至少 3 组重复。
1. 2摇 组织含水量的测定
植物材料称单株鲜重后 105益杀青 30 min,80益烘至恒重后称干重。 组织含水量为叶片水分占叶片鲜重
的百分比:[(鲜重-干重) /鲜重]伊100%
1. 3摇 相对电导率的测定
相对电导率按照李合生等[28]的方法测定:相对电导率=(处理电导率 /煮沸后电导率)伊100%
1. 4摇 芥子油苷的测定
芥子油苷的提取、测定按照任欢等[29 ]的方法。
2摇 结果与分析
2. 1摇 盐胁迫对拟南芥、盐芥生长的影响
分析并比较盐胁迫条件下拟南芥和盐芥芥子油苷含量的动态变化过程,需要先了解二者生长受盐胁迫的
影响及差异。 生物量是体现植物生长状况的直接指标,组织含水量、表征膜透性的相对电导率则更能反映植
物在盐胁迫下隐于表观形态之下的生理水平上的变化。
从植株的整体生长情况来看,随着盐浓度的增加,拟南芥的长势减弱。 生长 4 周的拟南芥,正常浇水处理
的对照组长势旺盛,50 mmol / L NaCl处理的植株部分幼嫩叶片已经发黄,150 mmol / L NaCl处理的植株大部分
叶片褪绿,老叶出现不同程度的萎蔫。 相比之下,盐芥的长势受盐胁迫影响不明显,150 mmol / L NaCl 处理的
植株只有部分幼嫩叶片叶色变浅,但植株长势良好。
测定的几项与生长相关的指标(图 1)也证实了盐芥的抗盐能力优于拟南芥。 伴随着生长受抑,拟南芥的
叶片鲜重和干重均随盐浓度的增加而下降,而 50 mmol / L NaCl处理的盐芥,单株叶片的鲜重和干重均大于对
照植株,150 mmol / L NaCl处理的盐芥才低于对照植株。 盐芥的叶片含水量随盐浓度的增加而下降,但下降幅
度较小,50、150 mmol / L NaCl处理下含水量分别降低至 85. 36% 、83. 33% 。 相对电导率是反应质膜受损伤程
度的常用生理指标。 实验结果表明,50 mmol / L NaCl 处理下拟南芥叶片的相对电导率(36. 84% )比对照组
(25. 23% )略高,而 150 mmol / L NaCl处理下的相对电导率则高达 76. 15% (图 1),印证了 150 mmol / L NaCl处
理对拟南芥的严重伤害。 盐芥在盐处理条件下相对电导率结果与拟南芥一致,但受影响程度整体低于拟南
芥。 NaCl胁迫 5d后,对照组相对电导率为 21. 58% ,50 mmol / L NaCl 处理组相对电导率为 28. 90% ,略高于对
照组,150 mmol / L NaCl处理组相对电导率为 62. 78% ,显著高于对照组。 盐胁迫对盐芥质膜的伤害程度也是
随着 NaCl浓度的升高而逐渐增强。
2. 2摇 盐胁迫对拟南芥芥子油苷含量的影响
在生长 4 周的拟南芥莲座叶中准确鉴定出 9 种芥子油苷(图 2)。 其中 5 种为脂肪族芥子油苷(aliphatic
GS),包括 3鄄甲基亚磺酰丙基芥子油苷(3鄄methyl鄄sulfinylpropylglucosinolate, 3MSOP)、4鄄甲基亚磺酰丁基芥子
油苷(4鄄methylsulfinylbutylglucosinolate, 4MSOB)、5鄄甲基亚磺酰戊基芥子油苷(5鄄methylsulfinylpentylglucosinolate,
5MSOP)、6鄄甲基亚磺酰己基芥子油苷(6鄄methylsulfinylhexylglucosinolate, 6MSOH)和 8鄄甲基亚磺酰辛基芥子油
苷(8鄄methylsulfinyloctylglucosinolate, 8MSOO)。 另外 4 种为吲哚族芥子油苷( indole GS),包括 4鄄羟基吲哚基鄄
3鄄甲基芥子油苷(4鄄hydroxy鄄indol鄄3鄄ylmethylglucosinolate, 4OHI3M)、吲哚基鄄3鄄甲基芥子油苷( indol鄄3鄄ylmethyl鄄
glucosinolate, I3M)、4鄄甲氧吲哚基鄄3鄄甲基芥子油苷(4鄄methoxy鄄indol鄄3鄄ylmethylglucosinolate, 4MOI3M)和 1鄄甲
氧吲哚基鄄3鄄甲基芥子油苷(1鄄methoxy鄄indol鄄3鄄ylmethylglucosinolate, 1MOI3M)。
拟南芥莲座叶中脂肪族芥子油苷所占比例较大,占芥子油苷总量的 75%左右,吲哚族芥子油苷所占比例
较小。 与其他芥子油苷相比,4MSOB含量较高。
NaCl处理后,拟南芥莲座叶芥子油苷的组成没有变化,各种芥子油苷所占比例的总体趋势也没有改变。
各种芥子油苷含量的变化情况不同,从芥子油苷总量、脂肪族芥子油苷总量、吲哚族芥子油苷总量看,受盐胁
6354 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 31 卷摇
http: / / www. ecologica. cn
图 1摇 盐胁迫对拟南芥、盐芥植株重量、组织含水量和叶片相对电导率的影响
Fig. 1摇 Effect of salt stress on Arabidopsis thaliana and Thellungiella halophila plant weight, tissue water content and relative conductivity
图 2摇 拟南芥莲座叶芥子油苷的高效液相色谱图
Fig. 2摇 HPLC chromatogram of glucosinolates identified in rosette leaves of Arabidopsis thaliana
1. 3鄄甲基亚磺酰丙基芥子油苷 (3MSOP); 2. 4鄄甲基亚磺酰丁基芥子油苷 (4MSOB); 3. 5鄄甲基亚磺酰戊基芥子油苷 (5MSOP); 4. 6鄄甲基
亚磺酰己基芥子油苷 (6MSOH); 5. 4鄄羟基吲哚基鄄3鄄甲基芥子油苷 (4OHI3M); 6. 苯甲基芥子油苷 (Benzyl;内标); 7. 吲哚基鄄3鄄甲基芥子
油苷 (I3M); 8. 8鄄甲基亚磺酰辛基芥子油苷 (8MSOO); 9. 4鄄甲氧吲哚基鄄3鄄甲基芥子油苷 (4MOI3M); 10. 1鄄甲氧吲哚基鄄3鄄甲基芥子油苷
(1MOI3M)
迫的影响均不显著(图 3)。
含量变化较为明显的是脂肪族的 3MSOP、5MSOP和吲哚族的 4OHI3M、4MOI3M,它们均随着盐胁迫强度
的增强而含量降低,而脂肪族的 6MSOH、吲哚族的 I3M则随着盐胁迫强度的增强有含量增加的趋势。 脂肪族
的 8MSOO的变化趋势比较特殊,在 50 mmol / L NaCl下含量略有下降,而在 150 mmol / L NaCl下则恢复到近对
照水平。 另一变化规律比较特殊的是吲哚族的 1MOI3M,50 mmol / L NaCl下含量略有降低,而在 150 mmol / L
NaCl下则显著高于对照水平 1 倍以上(图 3)。
2. 3摇 盐胁迫对盐芥芥子油苷含量的影响
在生长 6周的盐芥莲座叶中准确鉴定出 5种芥子油苷,其中 4种为脂肪族芥子油苷,包括 3鄄甲基亚磺酰丙基芥
子油苷(3鄄methylsulphinylpropylglucosinolate, 3MSOP)、丙烯基芥子油苷(allylglucosinolate, Allyl)、3鄄甲硫丙基芥子油
7354摇 16 期 摇 摇 摇 庞秋颖摇 等:盐胁迫对拟南芥和盐芥莲座叶芥子油苷含量的影响 摇
http: / / www. ecologica. cn
图 3摇 NaCl处理拟南芥叶片芥子油苷含量的变化
Fig. 3摇 Change of glucosinolate content in leaves of Arabidopsis thaliana during NaCl treatment
苷(3鄄methylthiopropylglucosinolate, 3MTP)、10鄄甲基亚磺酰癸基芥子油苷(10鄄methylsulfinyldecylglucosinolate, 10MSD),
只有 1 种吲哚族芥子油苷,即 4鄄甲氧基鄄3鄄吲哚甲基芥子油苷 ( 4鄄methoxy鄄3鄄indolylmethylglucosinolate,
4MOI3M)。 苯甲基芥子油苷(Benzylglucosinolate, Benzyl)为内标(图 4)。
NaCl处理后,盐芥莲座叶芥子油苷的组成没有变化,仍为 3MSOP、3MTP、Allyl、10MSD 和 4MOI3M。 与其
他芥子油苷相比,盐芥莲座叶中 3MTP含量较高。
盐胁迫下盐芥莲座叶的芥子油苷总量、脂肪族和吲哚族芥子油苷含量均有一定的变化(图 5)。 总芥子油
苷含量与对照相比变化显著,不同的 NaCl浓度处理下变化趋势也不一致。 50 mmol / L NaCl 处理的总芥子油
苷含量与对照相比大幅度下降(5. 56 滋mol / g鲜重),仅为对照的 55% 。 150 mmol / L NaCl 处理的总芥子油苷
含量则高于对照,约为对照的 1. 23 倍。
4 种脂肪族芥子油苷中,3MTP、Allyl和 10MSD的变化规律与总芥子油苷基本一致,而 3MOP 的含量呈现
出随盐浓度增加而增加的趋势。 唯一的一种吲哚族芥子油苷 4MOI3M的变化规律也与总芥子油苷基本一致,
但在 50 mmol / L NaCl处理下的下降幅度较小,含量约为对照的 89% 。
3摇 讨论
芥子油苷是十字花科植物的重要次生代谢产物,当温度、光照、水分、营养等环境条件发生改变,或者植物
受到昆虫取食、病原菌侵害、机械损伤时,拟南芥、油菜和萝卜等植物会调节体内芥子油苷的含量来应答这些
不良环境[4,30]。 目前有关盐胁迫对芥子油苷含量影响的研究较少。 Qasim 等[31]对 Dunkeld 和 Cyclon 两种十
8354 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 31 卷摇
http: / / www. ecologica. cn
图 4摇 盐芥莲座叶芥子油苷的高效液相色谱图
Fig. 4摇 HPLC chromatogram of glucosinolates identified in rosette leaves of Thellungiella halophila
图 5摇 NaCl处理盐芥叶片芥子油苷含量变化
Fig. 5摇 Change of glucosinolate content in leaves of Thellungiella halophila during NaCl treatment
字花科芸薹属(Brassica)的加拿大双低卡诺拉油菜进行盐胁迫,发现随着盐浓度增加,种子中芥子油苷含量逐
渐升高。 Ashraf等[32]对包括 Dunkeld和 Cyclon在内的 8 种芸薹属油料作物进行了盐胁迫处理,也发现种子中
芥子油苷含量随着盐浓度增加逐渐升高,最多达到对照的 1. 9 倍。 L佼pez鄄Berenguer 等[33]对花椰菜(Brassica
oleracea var. Ita忆lica)进行盐胁迫处理,发现叶片中芥子油苷受盐胁迫诱导含量升高。 Yuan 等[34]对萝卜
(Raphanus sativus )幼苗进行 NaCl胁迫,50 mmol / L处理组总芥子油苷含量下降,但 100 mmol / L 处理组总芥
子油苷含量升高。 这些研究中,仅将总芥子油苷含量作为一项考察作物品质的辅助指标,并未深入分析芥子
油苷组分在盐胁迫下的变化规律。
通过 NaCl处理的方式对营养生长时期的拟南芥和盐芥进行盐胁迫处理,分析了盐胁迫下拟南芥莲座叶
中芥子油苷含量的变化,发现芥子油苷总量、脂肪族芥子油苷总量、吲哚族芥子油苷总量受盐胁迫的影响均不
显著。 不过,进一步深入分析各个种类芥子油苷的变化细节发现,尽管盐胁迫后拟南芥莲座叶芥子油苷的组
成没有改变,但各种芥子油苷含量在盐胁迫下的变化趋势并不一致。 最近的研究表明,拟南芥受到机械损伤
或干旱胁迫,叶片中各种芥子油苷的含量(芥子油苷的组合模式)也发生变化[29,35]。 由此可见,各种芥子油苷
9354摇 16 期 摇 摇 摇 庞秋颖摇 等:盐胁迫对拟南芥和盐芥莲座叶芥子油苷含量的影响 摇
http: / / www. ecologica. cn
占芥子油苷总量的比例受到非生物胁迫的影响,仅关注总芥子油苷总量在盐胁迫下的变化是不够的,不同种
类的芥子油苷对盐逆境的响应以及可能担负的生理功能是有差异的。 与拟南芥不同的是,NaCl 处理 5d 后,
盐芥莲座叶的芥子油苷总量、脂肪族芥子油苷和吲哚族芥子油苷含量均发生了显著的变化。 总体上,50
mmol / L NaCl胁迫下芥子油苷的含量大幅度下降,而在 150 mmol / L NaCl胁迫下芥子油苷含量又大幅度增加
并超过对照水平,这与 Yuan等[34]对盐胁迫萝卜幼苗中芥子油苷的研究结果基本一致,低浓度的盐胁迫导致
植物芥子油苷含量降低,高浓度的盐胁迫诱导芥子油苷含量升高。 结合盐胁迫对盐芥生长影响的分析发现,
伴随着高浓度盐胁迫下盐芥生长和初生代谢受抑,次生代谢产物芥子油苷的含量升高。 有研究推测芥子油苷
可能作为一种渗透调节物质在植物响应盐胁迫过程中提高植物的渗透调节能力[12],那么在盐芥中芥子油苷
是否具此功能以及通过何种方式参与渗透调节,有待进一步探讨。
在盐芥和拟南芥的莲座叶中,只有 2 种芥子油苷是共同含有的,即脂肪族的 3MSOP 和吲哚族的
4MOI3M。 不过,3MSOP含量对盐胁迫的响应在盐芥和拟南芥中却是截然相反的,盐芥的 3MSOP含量随盐胁
迫强度的增强而大幅度增加,而拟南芥的 3MSOP 含量则随盐胁迫强度的增强而迅速减少。 4MOI3M 对盐胁
迫的响应也不一样,盐芥中是随盐胁迫强度的增强而先减少后增加,而拟南芥中如同 3MSOP一样随盐胁迫强
度的增强而迅速减少。 由此可见,盐生植物盐芥与甜土植物拟南芥在应对盐胁迫的过程中,次生代谢的响应
也是不同的。
References:
[ 1 ]摇 Grubb C D, Abel S. Glucosinolate metabolism and its control. Trends in Plant Science, 2006, 11(2): 89鄄100.
[ 2 ] 摇 Tripathi M K, Mishra A S. Glucosinolates in animal nutrition: a review. Animal Feed Science and Technology, 2007, 132(1 / 2): 1鄄27.
[ 3 ] 摇 Halkier B A, Gershenzon J. Biology and biochemistry of glucosinolates. Annual Reviews of Plant Biology, 2006, 57: 303鄄333.
[ 4 ] 摇 Yan X F, Chen S X. Regulation of plant glucosinolate metabolism. Planta, 2007, 226(6): 1343鄄1352.
[ 5 ] 摇 Doughty K J, Kiddle G A, Pye B J, Wallsgrove R M, Pickett J A. Selective induction of glucosinolates in oilseed rape leaves by methyl jasmonate.
Phytochemistry, 1995, 38(2): 347鄄350.
[ 6 ] 摇 Maruyama鄄Nakashita A, Inoue E, Watanabe鄄Takahashi A, Yamaya T, Takahashi H. Transcriptome profiling of sulfur鄄responsive genes in
Arabidopsis reveals global effects of sulfur nutrition on multiple metabolic pathways. Plant Physiology, 2003, 132(2): 597鄄605.
[ 7 ] 摇 Mikkelsen M D, Petersen B L, Glawischnig E, Jensen A B, Andreasson E, Halkier B A. Modulation of CYP79 genes and glucosinolate profiles in
Arabidopsis by defense signaling pathways. Plant Physiology, 2003, 131(1): 298鄄308.
[ 8 ] 摇 Hirai M Y, Yano M, Goodenowe D B, Kanaya S, Kimura T, Awazuhara M, Arita M, Fujiwara T, Saito K. Integration of transcriptomics and
metabolomics for understanding of global responses to nutritional stresses in Arabidopsis thaliana. Proceedings of the National Academy of Sciences
of the United States of America, 2004, 101(27): 10205鄄10210.
[ 9 ] 摇 Hirai M Y, Klein M, Fujikawa Y, Yano M, Goodenowe D B, Yamazaki Y, Kanaya S, Nakamura Y, Kitayama M, Suzuki H, Sakurai N, Shibatai
D, Tokuhisa J, Reichelt M, Gershenzon J, Papenbrock J, Saito K. Elucidation of gene鄄to鄄gene and metabolite鄄to鄄gene networks in Arabidopsis by
integration of metabolomics and transcriptomics. The Journal of Biological Chemistry, 2005, 280(27): 25590鄄25595.
[10] 摇 Hirai M Y, Sugiyama K, Sawada Y, Tohge T, Obayashi T, Suzuki A, Araki R, Sakurai N, Suzuki H, Aoki K, Goda H, Nishizawa O I, Shibata
D, Saito K. Omics鄄based identification of Arabidopsis Myb transcription factors regulating aliphatic glucosinolate biosynthesis. Proceedings of the
National Academy of Sciences of the United States of America, 2007, 104(15): 6478鄄6483.
[11] 摇 Mewis I, Appel H M, Hom A, Raina R, Schultz J C. Major signaling pathways modulate arabidopsis glucosinolate accumulation and response to
both phloem鄄feeding and chewing insects. Plant Physiology, 2005, 138(2): 1149鄄1162.
[12] 摇 L佼pez鄄Berenguer C, Mart侏nez鄄Ballesta M C, Garc侏a鄄Viguera C, Carvajal M. Leaf water balance mediated by aquaporins under salt stress and
associated glucosinolate synthesis in broccoli. Plant Science, 2008, 174(3): 321鄄328.
[13] 摇 Zhu J K. Genetic analysis of plant salt tolerance using Arabidopsis. Plant Physiology, 2000, 124(3): 941鄄948.
[14] 摇 Zhu J K. Plant salt tolerance. Trends in Plant Science, 2001, 6(2): 66鄄71.
[15] 摇 Hussain TM, Chandrasekhar T, Hazara M, Sultan Z, Saleh B K, Gopal G R. Recent advances in salt stress biology a review. Biotechnology
and Molecular Biology Reviews, 2008, 3(1): 8鄄13.
[16] 摇 Munns R, Tester M. Mechanisms of salinity tolerance. Annual Reviews of Plant Biology, 2008, 59: 651鄄681.
[17] 摇 Volkov V, Wang B, Dominy P J, Fricke W, Amtmann A. Thellungiella halophila, a salt鄄tolerant relative of Arabidopsis thaliana, possesses
effective mechanisms to discriminate between potassium and sodium. Plant, Cell and Environment, 2004, 27: 1鄄14.
[18] 摇 Wong C E, Li Y, Labbe A, Guevara D, Nuin P, Whitty B, Diaz C, Golding G B, Gray G R, Weretilnyk E A, Griffith M, Moffatt B A.
0454 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 31 卷摇
http: / / www. ecologica. cn
Transcriptional profiling implicates novel interactions between abiotic stress and hormonal responses in Thellungiella, a close relative of Arabidopsis.
Plant Physiology, 2006, 140(4): 1437鄄1450.
[19] 摇 Wang Z L, Li P H, Fredricksen M, Gong Z Z, Kim C S, Zhang C Q, Bohnert H J, Zhu J K, Bressan R A, Hasegawa P M, Zhao Y X, Zhang H.
Expressed sequence tags from Thellungiella halophila, a new model to study plant salt鄄tolerance. Plant science, 2004, 166: 609鄄616.
[20] 摇 Liu A R, Zhao K F. Osmotica accumulation and its role in osmotic adjustment in Thellungiella halophila under salt stress. Journal of Plant
Physiology and Molecular Biology, 2005, 31(4): 389鄄395.
[21] 摇 Ghars M A, Parre E, Debez A, Bordenave M, Richard L, Leport L, Bouchereau A, Savour佴 A, Abdelly C. Comparative salt tolerance analysis
between Arabidopsis thaliana and Thellungiella halophila, with special emphasis on K+ / Na+ selectivity and proline accumulation. Journal of Plant
Physiology, 2008, 165(6): 588鄄599.
[22] 摇 Vera鄄Estrella R, Barkla B J, Garc侏a鄄Ram侏rez L, Pantoja O. Salt stress in Thellungiella halophila activates Na+ transport mechanisms required for
salinity tolerance. Plant Physiology, 2005, 139(3): 1507鄄1517.
[23] 摇 Inan G, Zhang Q, Li P H, Wang Z L, Cao Z Y, Zhang H, Zhang C Q, Quist T M, Goodwin S M, Zhu J H, Shi H Z, Damsz B, Charbaji T,
Gong Q Q, Ma S S, Fredricksen M, Galbraith D W, Jenks M A, Rhodes D, Hasegawa P M, Bohnert H J, Joly R J, Bressan R A, Zhu J K. Salt
cress. A halophyte and cryophyte arabidopsis relative model system and its applicability to molecular genetic analyses of growth and development of
extremophiles. Plant Physiology, 2004, 135(3): 1718鄄1737.
[24] 摇 Gong Q Q, Li P H, Ma S S, Rupassara1 S I, Bohnert H J. Salinity stress adaptation competence in the extremophile Thellungiella halophila in
comparison with its relative Arabidopsis thaliana. The Plant Journal, 2005, 44: 826鄄839.
[25] 摇 Zhu J Q, Zhang J T, Tang R J, Lu Q D, Wang Q Q, Yang L, Zhang H X. Molecular characterization of ThIPK2, an inositol polyphosphate kinase
gene homolog from Thellungiella halophila, and its heterologous expression to improve abiotic stress tolerance in Brassica napus. Physiologia
Plantarum, 2009, 136(4): 407鄄425.
[26] 摇 Pang Q Y, Chen S X, Dai S J, Chen Y Z, Wang Y, Yan X F. Comparative proteomics of salt tolerance in Arabidopsis thaliana and Thellungiella
halophila. Journal of Proteome Research, 2010, 9(5): 2584鄄2599.
[27] 摇 Pang Q Y, Chen S X, Li L X, Yan X F. Characterization of glucosinolate鄄myrosinase system in developing salt cress Thellungiella halophila.
Physiologia Plantarum, 2009, 136(1): 1鄄9.
[28] 摇 Li H S. Principle and Technology of Plant Physiology and Biochemistry Experiment. Beijing: Higher Education Press, 2000.
[29] 摇 Ren H, Zhong H X, Dai S J, Chen S X, Yan X F. Water stress on glucosinolate contents in Arabidopsis rosette leaves. Acta Ecologica Sinica,
2009, 29(8): 4372鄄4379. 摇
[30] 摇 Bridges M, Jones A M E, Bones A M, Hodgson C, Cole R, Bartlet E, Wallsgrove R, Karapapa V K, Watts N, Rossiter J T. Spatial organization
of the glucosinolate鄄myrosinase system in brassica specialist aphids is similar to that of the host plant. Proceedings of the Royal Society B: Biological
Sciences, 2002, 269(1487): 187鄄191.
[31] 摇 Qasim M, Ashraf M, Ashraf M Y, Rehman S U, Rha E S. Salt鄄induced changes in two canola cultivars differing in salt tolerance. Biologia
Plantarum, 2003, 46(4): 629鄄632.
[32] 摇 Ashraf M, McNeilly T. Salinity tolerance in brassica oilseeds. Critical Reviews in Plant Sciences, 2004, 23(2): 157鄄174.
[33] 摇 L佼pez鄄Berenguer C, Mart侏nez鄄Ballesta M C, Garc侏a鄄Viguera C, Carvajal M. Leaf water balance mediated by aquaporins under salt stress and
associated glucosinolate synthesis in broccoli. Plant Science, 2008, 174(3): 321鄄328.
[34] 摇 Yuan G F, Wang X P, Guo R F, Wang Q M. Effect of salt stress on phenolic compounds, glucosinolates, myrosinase and antioxidant activity in
radish sprouts. Food Chemistry, 2010, 121(4): 1014鄄1019.
[35] 摇 Tian Y X, Dai S J, Chen S X, Yan X F. Effect of mechanical wounding on glucosinolate content and composition in rosette leaves of Arabidopsis
thaliana. Acta Ecologica Sinica, 2009, 29(4): 1647鄄1654.
参考文献:
[20]摇 刘爱荣, 赵可夫. 盐胁迫下盐芥渗透调节物质的积累及其渗透调节作用. 植物生理与分子生物学学报, 2005, 31(4): 389鄄395.
[28] 摇 李合生. 植物生理生化实验原理和技术. 北京: 高等教育出版社, 2000.
[29] 摇 任欢, 钟海秀, 戴绍军, 陈思学, 阎秀峰. 拟南芥莲座叶芥子油苷含量对水分胁迫的响应. 生态学报, 2009, 29(8): 4372鄄4379.
[35] 摇 田云霞, 戴绍军, 陈思学, 阎秀峰. 机械损伤对拟南芥莲座叶芥子油苷含量和组成的影响. 生态学报, 2009, 29(4): 1647鄄1654.
1454摇 16 期 摇 摇 摇 庞秋颖摇 等:盐胁迫对拟南芥和盐芥莲座叶芥子油苷含量的影响 摇
ACTA ECOLOGICA SINICA Vol. 31,No. 16 August,2011(Semimonthly)
CONTENTS
A comparative study on the diversity of rhizospheric bacteria community structure in constructed wetland and natural wetland
with reed domination WANG Zhongqiong, WANG Weidong, ZHU Guibing, et al (4489)………………………………………
Light response of photosynthesisand its simulation in leaves of Prunus sibirica L. under different soil water conditions
LANG Ying, ZHANG Guangcan,ZHANG Zhengkun,et al (4499)
………………
…………………………………………………………………
Effects of colour shading on the yield and main biochemical components of summer鄄autumn tea and spring tea in a hilly tea field
QIN Zhimin, FU Xiaoqing, XIAO Runlin, et al (4509)
……
……………………………………………………………………………
Effects of cadmium on the contents of phytohormones, photosynthetic performance and fluorescent characteristics in tobacco leaves
WU Kun, WU Zhonghong, TAI Fuju, et al (4517)
…
…………………………………………………………………………………
Comparative physiological responses of cadmium stress on Enteromorpha clathrata and Enteromorpha linza
JIANG Heping, ZHENG Qingsong, ZHU Ming, et al (4525)
……………………………
………………………………………………………………………
Effects of salt stress onglucosinolate contents in Arabidopsis thaliana and Thellungiella halophila rosette leaves
PANG Qiuying, CHEN Sixue, YU Tao, et al (4534)
………………………
………………………………………………………………………………
Effects of long鄄term double鄄rice and green manure rotation on rice yield and soil organic matter in paddy field
GAO Jusheng, CAO Weidong, LI Dongchu, et al (4542)
………………………
…………………………………………………………………………
Nitrogen balance in the farmland system based on water balance in Hetao irrigation district,Inner Mongolia
DU Jun,YANG Peiling,LI Yunkai,et al (4549)
…………………………
……………………………………………………………………………………
Seed characteristics and seedling growth of Spartina alterniflora on coastal wetland of North Jiangsu
XU Weiwei,WANG Guoxiang,LIU Jin忆e,et al (4560)
…………………………………
………………………………………………………………………………
Assessment of non鄄point source pollution export from Zigui county in the Three Gorges Reservoir area using the AnnAGNPS model
TIAN Yaowu, HUANG Zhilin, XIAO Wenfa (4568)
……
………………………………………………………………………………
Effects of Cadmium pollution on oxidative stress and metallothionein content in Pirata subpiraticus (Araneae: Lycosidae) in
different habitats ZHANG Zhengtian,PANG Zhenling,XIA Min,et al (4579)……………………………………………………
The distribution of size鄄fractionated chlorophyll a in the Indian Ocean South Equatorial Current
ZHOU Yadong, WANG Chunsheng, WANG Xiaogu, et al (4586)
………………………………………
…………………………………………………………………
Change of waterbird community structure after the intertidal mudflat reclamation in theYangtze River Mouth: a case study of
NanHui Dongtan area ZHANG Bin, YUAN Xiao, PEI Enle, et al (4599)………………………………………………………
Application of fish assemblage integrity index(FAII)in the environment quality assessment of surf zone of Yangtze River estuary
MAO Chengze, ZHONG Junsheng, JIANG Rijin, et al (4609)
……
……………………………………………………………………
Population age structure of Antarctic krill Euphausia superba off the northern Antarctic Peninsula based on fishery survey
ZHU Guoping, WU Qiang, FENG Chunlei, et al (4620)
……………
…………………………………………………………………………
Validation and adaptability evaluation of rice growth model ORYZA2000 in double cropping rice area of Hunan Province
MO Zhihong, FENG Liping, ZOU Haiping, et al (4628)
……………
…………………………………………………………………………
Coupled energy and carbon balance analysis under dryland tillage systems
WANG Xiaobin, WANG Yan, DAI Kuai, et al (4638)
……………………………………………………………
……………………………………………………………………………
The nitrate鄄nitrogen leachingamount in paddy winter鄄spring fallow period WANG Yongsheng, YANG Shiqi (4653)…………………
The sources of organic carbon and nitrogen in sediment of Taihu Lake NI Zhaokui, LI Yuejin, WANG Shengrui, et al (4661)……
Effect of partial solar eclipse on airborneculturable bacterial community in Urumqi
MA Jing, SUN Jian, ZHANG Tao, et al (4671)
……………………………………………………
……………………………………………………………………………………
Comparative study on density related intra鄄 and inter鄄specific effects in Laodelphax striatellus (Fallen) and Nilaparvata lugens
(St覽l) L譈 Jin, CAO Tingting, WANG Liping, et al (4680)………………………………………………………………………
Behavior rhythm and seasonal variation of time budget of sun bear (Helarctos malayanus) in captivity
LAN Cunzi, LIU Zhensheng, WANG Aishan, et al (4689)
………………………………
…………………………………………………………………………
Disturbance regimes and gaps characteristics of the desert riparian forest at the middle reaches of Tarim River
HAN Lu, WANG Haizhen, CHEN Jiali, et al (4699)
………………………
………………………………………………………………………………
Death causes and conservation strategies of the annual regenerated seedlings of rare plant, Bretschneidera sinensis
QIAO Qi, QIN Xinsheng, XING Fuwu, et al (4709)
……………………
………………………………………………………………………………
Effects of municipal compost extracted complex microbial communities on physio鄄ecological characteristics of turfgrass under
drought stress DUO Lian,WANG Jingjing, ZHAO Shulan (4717)…………………………………………………………………
Spatiotemporal relationship of leaf area index simulated by CLM3. 0鄄DGVM and climatic factors
SHAO Pu, ZENG Xiaodong (4725)
………………………………………
…………………………………………………………………………………………………
Analysis of circular economy of Liaoning Province based on eco鄄efficiency HAN Ruiling, TONG Lianjun, SONG Yanan (4732)……
Review and Monograph
The fungal to bacterial ratio in soil food webs, and its measurement CAO Zhiping, LI Depeng, HAN Xuemei (4741)………………
Indicators for evaluating sustainable communities: a review ZHOU Chuanbin, DAI Xin, WANG Rusong, et al (4749)………………
Discussion
Differential expression of PAL multigene family in allelopathic rice and its counterpart exposed to stressful conditions
FANG Changxun, WANG Qingshui, YU Yan, et al (4760)
………………
………………………………………………………………………
Scientific Note
Ecology study on the benthic animals of QinZhou Bay WANG Di,CHEN Pimao,MA Yuan (4768)……………………………………
Change characteristics of soil carbon and nitrogen contents in the Yellow River Delta soil after artificial restoration
DONG Kaikai, WANG Hui,YANG Liyuan, et al (4778)
…………………
…………………………………………………………………………
Estimation and spatial pattern analysis of forest biomass in Fenglin Nature Reserve based on Geostatistics
LIU Xiaomei, BU Rencang,DENG Huawei,et al (4783)
……………………………
……………………………………………………………………………
Study on sap flow in forest of Quercus liaotungensis and Populus davidiana by using the TDP method
SUI Xuhong,ZHANG Jianjun,WEN Wanrong (4791)
…………………………………
………………………………………………………………………………
N2O Emission and its driving factors from typical marsh and shrub swamp in Xiaoxing忆an Mountains, Northeast China
SHI Lanying, MU Changcheng, TIAN Xinmin, et al (4799)
………………
………………………………………………………………………
2009 年度生物学科总被引频次和影响因子前 10 名期刊绎
(源于 2010 年版 CSTPCD数据库)
排序
Order
期刊
Journal
总被引频次
Total citation
排序
Order
期刊
Journal
影响因子
Impact factor
1 生态学报 11764
2 应用生态学报 9430
3 植物生态学报 4384
4 西北植物学报 4177
5 生态学杂志 4048
6 植物生理学通讯 3362
7
JOURNAL OF INTEGRATIVE
PLANT BIOLOGY
3327
8 MOLECULAR PLANT 1788
9 水生生物学报 1773
10 遗传学报 1667
1 生态学报 1. 812
2 植物生态学报 1. 771
3 应用生态学报 1. 733
4 生物多样性 1. 553
5 生态学杂志 1. 396
6 西北植物学报 0. 986
7 兽类学报 0. 894
8 CELL RESEARCH 0. 873
9 植物学报 0. 841
10 植物研究 0. 809
摇 绎《生态学报》 2009 年在核心版的 1964 种科技期刊排序中总被引频次 11764 次,全国排名第 1; 影响因
子 1郾 812,全国排名第 14;第 1—9 届连续 9 年入围中国百种杰出学术期刊; 中国精品科技期刊
摇 摇 编辑部主任摇 孔红梅摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 执行编辑摇 刘天星摇 段摇 靖
生摇 态摇 学摇 报
(SHENGTAI摇 XUEBAO)
(半月刊摇 1981 年 3 月创刊)
第 31 卷摇 第 16 期摇 (2011 年 8 月)
ACTA ECOLOGICA SINICA
摇
(Semimonthly,Started in 1981)
摇
Vol郾 31摇 No郾 16摇 2011
编摇 摇 辑摇 《生态学报》编辑部
地址:北京海淀区双清路 18 号
邮政编码:100085
电话:(010)62941099
www. ecologica. cn
shengtaixuebao@ rcees. ac. cn
主摇 摇 编摇 冯宗炜
主摇 摇 管摇 中国科学技术协会
主摇 摇 办摇 中国生态学学会
中国科学院生态环境研究中心
地址:北京海淀区双清路 18 号
邮政编码:100085
出摇 摇 版摇
摇 摇 摇 摇 摇 地址:北京东黄城根北街 16 号
邮政编码:100717
印摇 摇 刷摇 北京北林印刷厂
发 行摇
地址:东黄城根北街 16 号
邮政编码:100717
电话:(010)64034563
E鄄mail:journal@ cspg. net
订摇 摇 购摇 全国各地邮局
国外发行摇 中国国际图书贸易总公司
地址:北京 399 信箱
邮政编码:100044
广告经营
许 可 证摇 京海工商广字第 8013 号
Edited by摇 Editorial board of
ACTA ECOLOGICA SINICA
Add:18,Shuangqing Street,Haidian,Beijing 100085,China
Tel:(010)62941099
www. ecologica. cn
Shengtaixuebao@ rcees. ac. cn
Editor鄄in鄄chief摇 FENG Zong鄄Wei
Supervised by摇 China Association for Science and Technology
Sponsored by摇 Ecological Society of China
Research Center for Eco鄄environmental Sciences, CAS
Add:18,Shuangqing Street,Haidian,Beijing 100085,China
Published by摇 Science Press
Add:16 Donghuangchenggen North Street,
Beijing摇 100717,China
Printed by摇 Beijing Bei Lin Printing House,
Beijing 100083,China
Distributed by摇 Science Press
Add:16 Donghuangchenggen North
Street,Beijing 100717,China
Tel:(010)64034563
E鄄mail:journal@ cspg. net
Domestic 摇 摇 All Local Post Offices in China
Foreign 摇 摇 China International Book Trading
Corporation
Add:P. O. Box 399 Beijing 100044,China
摇 ISSN 1000鄄0933CN 11鄄2031 / Q 国内外公开发行 国内邮发代号 82鄄7 国外发行代号 M670 定价 70郾 00 元摇