全 文 ：植物生理学报 Plant Physiology Journal 2013, 49 (11): 1261~1266 1261
收稿 2013-07-01　　修定 2013-10-09
资助 国家高等学校本科特色专业建设点——林学 (教高函
[201015]号)。
* 通讯作者(E-mail: sunzhaohuihb03@sohu.com; Tel:
13826079867)。
‘香槟’月季的组织培养和试管开花诱导
孙朝辉*, 龙美珍, 段秀梅, 贾闯, 周德恒, 章逸哲
华南农业大学林学院, 广州510642
摘要: 本文对‘香槟’月季(Rosa chinensis ‘Xiangbin’)的组织培养技术和诱导试管开花进行了研究。结果表明: 以茎段为外植
体能诱导获得无菌苗, 适宜的启动培养基为MS+6-BA 1.0 mg·L-1+IBA 0.1 mg·L-1, 幼芽继代增殖的最佳培养基是MS+6-BA
1.0 mg·L-1+IBA 0.1~0.2 mg·L-1, 诱导生根的适宜培养基为1/2MS+NAA 0.3 mg·L-1, 生根率达80.0%。诱导试管开花的适宜培
养基为MS+6-BA 0.5 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1; 最适宜的诱导试管开花的蔗糖含量是30 g·L-1; 在三角瓶中培养, 试管花可以正
常开放, 在培养瓶中培养花芽不能正常开放; MS培养基中增加2倍磷的含量, 可以提高花芽诱导率, 为25.0%; 诱导试管开花
的最适培养条件为温度21℃, 光照强度80~100 µmol·m-2·s-1, 光照时间16 h·d-1。
关键词: ‘香槟’月季; 组织培养; 试管开花
Tissue Culture and in vitro Flowering of Rosa chinensis ‘Xiangbin’
SUN Zhao-Hui*, LONG Mei-Zhen, DUAN Xiu-Mei, JIA Chuang, ZHOU De-Heng, ZHANG Yi-Zhe
College of Forestry, South China Agricultural University, Guangzhou 510642, China
Abstract: This paper studied the technique of the tissue culture and in vitro flowering of Rosa chinensis
‘Xiangbin’. The results showed the aseptic plantlets can be obtained from stem node explants of Rosa chinensis
‘Xiangbin’. The suitable medium of initial is MS medium supplemented with 1.0 mg·L-1 6-BA and 0.1 mg·L-1
IBA. The best proliferation occurred on MS medium supplemented with 1.0 mg·L-1 6-BA and 0.1–0.2 mg·L-1
IBA. The best rooting for plantlets occurred on 1/2MS medium supplemented with 0.3 mg·L-1 NAA and the
rooting rate was 80.0%. The optimum medium of in vitro flowering occurred on MS medium supplemented
with 0.5 mg·L-1 6-BA and 0.1 mg·L-1 NAA. The most suitable sucrose concentration for in vitro flowering was
30 g·L-1. Flowers can blossom normal when plantlets were cultured in erlenmeyer flask and can’t blossom when
them were cultured in culture flask. The frequency of floral bud induction was the highest with the rate of
25.0% on the medium with the phosphorus concentration increase by 2 times. The optimum conditions of in
vitro flowering were 21℃, 80–100 µmol·m-2·s-1 illumination intensity and 16 hours light time of every day.
Key words: Rosa chinensis ‘Xiangbin’; tissue culture; in vitro flowering
‘香槟’月季为蔷薇科蔷薇属植物, 在广州温暖
的气候条件下, 一年四季均可开花, 花色大红色,
花瓣重瓣, 花可成束开放(图1-I), 散发出淡淡的清
香味, 是很好的盆栽观赏品种, 也可用于园林绿
化、摆放花坛、庭院装饰等。试管开花是利用组
织培养技术, 使植物在试管内开花, 形成小巧精致
的“迷你花卉”。月季花是我国十大名花之一, 有
“花中皇后”之美誉, 海外一般称月季为玫瑰, 市场
上最早的“迷你花卉”即是在试管中开花的“手指玫
瑰”, 将其制作成各种精美的挂件等装饰品, 可以作
为馈赠情人和亲朋好友的新型礼物。本文在研究
了‘香槟’月季组织培养技术的基础上, 研究了诱导
‘香槟’月季试管开花的培养基组成和培养条件, 为
“手指玫瑰”增添了新品种和技术支撑, 为其他品种
月季试管花诱导提供借鉴 , 为探索月季花芽分
化、开花的分子生物学机制提供理想的实验系
统。月季或玫瑰的试管开花研究国内外均有报道,
但报道较少, ‘香槟’月季的试管开花未见报道。
材料与方法
1 材料
供试‘香槟’月季由华南农业大学林学院林木
遗传育种教研室提供。
植物生理学报1262
2 方法
2.1 外植体消毒
剪取当年生健壮嫩枝作为外植体, 剪去叶片,
保留叶柄, 用洗洁精水清洗外植体表面2 min, 自来
水冲洗干净, 将外植体剪切成1~2 cm长、带1~2个
叶腋芽的顶芽或茎段, 放入空培养瓶中, 置于超净
工作台上, 根据茎段的老嫩程度分成3个处理, 加
入0.1%的升汞灭菌5、10、15 min, 期间不断摇动,
灭菌水冲洗2次, 接种于启动培养基MS+6-BA 1.0
mg·L-1+IBA 0.1 mg·L-1中, 为防止交叉污染, 每瓶接
种1个外植体茎段, 接种后20 d内随时调查污染情
况, 清除污染瓶。
图1 ‘香槟’月季的组织培养与试管开花
Fig.1 Tissue culture and in vitro flowering of Rosa chinensis ‘Xiangbin’
A: 茎段外植体20 d后的生长情况; B: 增殖培养40 d的生长情况; C: 生根培养20 d后的生长情况; D: 能正常开放的试管花芽; E、F: 正
常开放的试管花; G: 不能正常开放的试管花芽; H: 枯萎的试管花芽; I: 栽培的‘香槟’月季花。
孙朝辉等: ‘香槟’月季的组织培养和试管开花诱导 1263
2.2 培养过程及方法
将消毒过的的外植体茎段接种在启动培养基
上, 5 d时叶腋芽就会萌发, 20 d后大部分茎段可萌
发出1.0~3.0 cm高的叶腋芽, 将芽剪切接入增殖培
养基上进行继代培养。
继代增殖时, 试验选用MS为基本培养基, 附
加6-BA和IBA的不同浓度组合, 各处理接种5瓶, 每
瓶接种3个单株不定芽, 重复3次。40 d时统计高度
在0.5 cm以上的有效芽高度及增殖系数。
生根培养试验选用1/2MS为基本培养基, 附加
NAA和活性炭(AC)的不同浓度组合, 各处理接种4
瓶, 每瓶接种4个单株不定芽, 重复3次。20 d时统
计根长、根数和生根率。
诱导试管开花试验设计了4种培养基进行初
选, 在此基础上, 研究了不同蔗糖浓度、培养瓶种
类及封口模式、温度和光照培养条件以及基本培
养基中磷的变化对诱导试管开花的影响。
2.3 培养基的配置及培养条件
各培养基均附加卡拉胶9 g·L-1, pH 5.8, 外植体
芽启动培养基和继代增殖培养基附加30 g·L-1蔗糖,
生根培养基附加20 g·L-1蔗糖。配置分装后, 于
121℃灭菌20 min。培养条件为温度(25±1) ℃, 光
照强度40 µmol·m-2·s-1, 光照时间12 h·d-1。
实验结果
1 无菌材料的获得
茎段外植体用0.1%升汞消毒后, 接种于培养
基MS+6-BA 1.0 mg·L-1+IBA 0.1 mg·L-1中, 20 d时统
计结果。表1显示, 顶芽及幼嫰茎段消毒5 min有
28.6%的污染率, 较其他两种处理稍高, 分析原因
可能一是消毒时间短, 造成污染率较高, 可以适当
增加消毒时间; 二是顶芽部分结构较复杂, 消毒液
不易渗透其中。克服的方法是将较容易藏菌的顶
尖部分去掉; 中等嫩度茎段10 min的处理污染率最
低, 为18.0%, 说明此部分茎段带菌量较小, 10 min
是比较合适的灭菌时间; 较老茎段处理15 min污染
率为27.0%, 也比较高, 可以采取适当提高消毒时
间来降低污染率。试验中每一阶段均未出现褐化
茎段, 为延长消毒时间处理外植体留有空间, 是否
能通过延长消毒时间来降低外植体的污染率以及
消毒多长时间会出现褐化茎段, 仍需要进一步的
试验。三种处理时间均出现了无效萌芽茎段, 即
叶腋芽已经萌发, 但不能伸长, 只展开几片叶片, 20 d
时这些叶腋芽枯黄, 不能形成有效芽继代培养, 本
次试验只接种了一种培养基, 出现较多的无效萌
芽估计与启动培养基有关, 可以通过调整培养基
组成来降低无效萌芽率, 也需要进一步的试验。
有57.1%~63.5%的茎段萌生出有效芽(图1-A), 叶片
绿, 叶腋芽能够伸长, 可以剪切芽进行继代培养。
对于生长较高的叶腋芽(2.0 cm以上)剪切时可以留
下一片叶片, 此外植体重新接入新培养基后, 叶片
基部的叶腋芽仍可萌出 , 继续培养获得新的无
菌苗。
2 不同植物生长调节剂组合对‘香槟’月季丛生芽
增殖的影响
试验结果(表2)可知, 6-BA浓度在3.0 mg·L-1时
与IBA的3个浓度组合增殖系数较高, 与6-BA 1.0
mg·L-1+IBA 0.4 mg·L-1组合差异显著。组合6-BA
1.0 mg·L-1+IBA 0.2 mg·L-1 (2号培养基)增殖系数也
较高, 达2.70, 与3号培养基组合差异显著, 其他处
理之间差异不显著。从新增殖的不定芽的高度上
看, 6-BA的浓度在1.0 mg·L-1时, 新芽高度最高, 为
1.05~1.22 cm, 6-BA浓度提高, 新芽高度随之降低,
6-BA浓度为3.0 mg·L-1时新芽高度只有0.77~1.00
cm, 其中1号、3号培养基与9号培养基的差异达到
显著水平。从新芽的生长表现来看, 随着6-BA浓
度的增加, 新芽变细弱, 叶片变小, 叶色变浅, 低于
0.5 cm的无效芽增多, 芽的质量明显下降。综合以
上试验, 1号和2号培养基MS+6-BA 1.0 mg·L-1+IBA
0.1~0.2 mg·L-1在增殖系数和芽的质量上表现较佳
表1 不同消毒时间对‘香槟’月季茎段外植体的影响
Table 1 Effect of different disinfection periods on bud stems of Rosa chinensis ‘Xiangbin’
消毒时间/min 外植体数/个 污染率/% 无效萌芽率/% 有效萌芽率/% 备注
5 7 28.6 14.3 57.1 顶芽及幼嫩茎段
10 50 18.0 22.0 60.0 中等嫩度茎段
15 74 27.0 9.5 63.5 较老茎段
植物生理学报1264
(图1-B), 较为适宜增殖继代培养。试验中发现, 原
芽枯死或顶尖枯死现象较严重, 这可能是由于40 d
继代一次的时间过长造成的, 可以通过缩短继代
时间来改善。
3 生长素NAA与AC组合对‘香槟’月季试管苗生根
的影响
将高度达2.0 cm以上的‘香槟’月季单株试管
苗接种到1/2MS附加NAA和AC不同浓度组合的生
根培养基中, 8 d时开始有小根出现, 10 d后大量根
生成。20 d时统计生根情况(表3)。附加NAA浓度
0.3 mg·L-1、不含AC的G4培养基生根率最高, 达
80.0%, NAA浓度降低至0.1 mg·L-1和提高到0.5
mg·L -1时 , 生根率均显著降低。根数上只附加
NAA、不附加AC的3个浓度处理根数都较高, 达
3.96~4.83条, 彼此之间差异不显著, 与附加AC的处
理差异显著, 附加1 g·L-1和2 g·L-1 AC均抑制了根的
发生。根长方面, NAA浓度最低的0.1 mg·L-1处理
根长最长, 达1.25 cm, NAA浓度增加, 根长变短, 差
异达显著水平。附加AC对根长无显著影响。综合
分析, 最适宜‘香槟’月季生根的培养基为1/2MS+
NAA 0.3 mg·L-1 (图1-C), 附加AC未能促进‘香槟’月
季生根。
4 诱导‘香槟’月季试管开花研究
4.1 诱导试管开花培养基筛选
选择了4种培养基(表4)诱导‘香槟’月季试管
开花, 选取非常健壮的无菌苗接种在供试培养基
中, 每个培养瓶接种1株, 置于温度15~25 ℃,光照
强度40~100 µmol·m-2·s-1, 光照时间16 h·d-1的人工
气候箱中, 90 d时发现K1培养基中的试管苗叶色有
些黄绿, 并有根产生; K2和K3培养基中的苗木生长
正常, 但无花苞产生; K4培养基中有两株生长出花
苞, 但花苞不久后枯萎, 未能正常开放。本次试验
表明, 适宜诱导‘香槟’月季试管形成花芽的培养基
为MS+6-BA 0.5 mg·L-1 +NAA 0.1 mg·L-1。
4.2 蔗糖浓度对诱导‘香槟’月季试管开花的影响
试验选取培养基MS+6-BA 0.5 mg·L-1+NAA
0.1 mg·L-1, 分别附加蔗糖30、40和50 g·L-1 (表5),
经90 d培养, 附加30 g·L-1蔗糖的供试苗生长健壮,
表2 不同植物生长调节剂组合对‘香槟’月季丛生芽增殖的影响
Table 2 Effects of different plant growth regulators on fasciculate buds propagation of Rosa chinensis ‘Xiangbin’
培养基编号 6-BA浓度/mg·L-1 IBA浓度/mg·L-1 增殖系数 新芽高度/cm 生长情况
1 1.0 0.1 2.42ab 1.22a 新芽高且粗壮, 叶片大, 叶色浓绿, 无效芽少
2 1.0 0.2 2.70a 1.05ab 新芽较高且粗壮, 叶片大, 叶色浓绿, 无效芽少
3 1.0 0.4 1.71b 1.12a 新芽较高且粗壮, 叶片大, 叶色浓绿, 无效芽少
4 2.0 0.1 2.43ab 0.95ab 新芽叶片中等大小, 叶色绿, 无效芽较多
5 2.0 0.2 2.33ab 0.99ab 新芽叶片中等大小, 叶色绿, 无效芽较多
6 2.0 0.4 2.22ab 0.94ab 新芽叶片中等大小, 叶色绿, 无效芽较多
7 3.0 0.1 2.53a 1.00ab 新芽较细弱, 叶片较小, 叶色浅绿, 无效芽多
8 3.0 0.2 2.78a 1.00ab 新芽较细弱, 叶片较小, 叶色浅绿, 无效芽多
9 3.0 0.4 2.67a 0.77b 新芽较细弱, 叶片较小, 叶色浅绿, 无效芽多
表中不同小写字母表示差异显著(P＜0.05), 表3同此。
表3 生长素NAA与AC组合对‘香槟’月季试管苗生根的影响
Table 3 Effect of different NAA and AC concentrations on the rooting of Rosa chinensis ‘Xiangbin’
培养基编号 NAA浓度/mg·L-1 AC浓度/g·L-1 生根率/% 根数/条 根长/cm
G1 0.1 0 66.6bc 3.96ab 1.25a
G2 0.1 1 59.1cd 2.89bcd 1.01ab
G3 0.1 2 59.9cd 2.26d 0.87ab
G4 0.3 0 80.0a 4.13ab 0.70b
G5 0.3 1 75.0ab 3.63abc 0.95ab
G6 0.3 2 72.2ab 3.31bcd 1.01ab
G7 0.5 0 69.0abc 4.83a 0.68b
G8 0.5 1 52.8d 2.58cd 1.01ab
G9 0.5 2 52.4d 3.00bcd 0.84ab
孙朝辉等: ‘香槟’月季的组织培养和试管开花诱导 1265
诱导出花芽, 附加40 g·L-1和50 g·L-1蔗糖的供试苗
未诱导出花芽, 部分苗木逐渐枯萎死亡。本试验
得到的结论是蔗糖浓度的提高不利于诱导“香槟”
月季试管开花, 最适宜的诱导试管开花的蔗糖浓
度是30 g·L-1。
4.3 培养瓶种类及封口模式对‘香槟’月季试管开花
的影响
试验选择了三角瓶及普通培养瓶两种瓶, 透
气封口膜、普通塑料盖及铝箔纸三种封口模式接
种诱导试管苗开花(表6)。培养中发现, 使用透气
封口膜的普通培养瓶中的苗木在培养了60 d后培
养基水分蒸发很严重, 继续培养至90 d时培养基水
分已经全部蒸发掉, 苗木因失去水分而萎蔫, 不能
诱导出花芽。使用普通塑料瓶盖的培养瓶中的培
养基至90 d时消耗很少, 苗木生长健壮, 能诱导出
花芽, 但大部分花芽个体小, 10 d左右枯萎脱落, 不
能正常开放(图1-G、H)。使用三角瓶、铝箔纸封
口的培养基中的试管苗在90 d左右时培养基消耗
很少, 能够诱导出花芽, 且有57.1%能够正常开放,
花色为非常鲜艳的红色, 有的单瓣, 有的重瓣(图
1-E、F)。培养瓶中诱导出的花芽不能开放的原因
分析可能有两种, 一是培养瓶壁厚, 会吸收一部分
光, 使植株所获得的光照强度不够; 二是培养瓶高
度不够, 能够形成花芽的植株一般都会长高至7~8
cm, 会长到培养瓶的顶部, 造成花芽没有生长的空
间, 致使花芽不能开放。
4.4 温度和光照强度对‘香槟’月季试管开花的影响
先后共试验了5种温度和光照组合(表7), 结果
表明: 处理W1不能诱导花芽形成, 而是适合丛生
芽增殖; W2和W3处理均能诱导出花芽, 但花芽未
能正常开放, 花芽不能正常开放的原因可能是使
用培养瓶造成的, 在此培养条件下使用三角瓶培
养能否开花需进一步的试验; W4能诱导试管苗形
成花芽 , 也能正常开放 , 但诱导的时间长 , 在
90~100 d时才能形成花芽; 在W5条件下最早60 d
时就有花芽形成, 在80 d之内陆续有花芽形成, 从
表4 诱导‘香槟’月季试管开花初试培养基
Table 4 Preliminary test medium on in vitro flowering in Rosa chinensis ‘Xiangbin’
培养基编号 培养基组成
供试苗 诱导花芽 花芽诱
生长状况 数/株 数/株 导率/%
K1 1/2MS+6-BA 0.5 mg·L-1+AC 0.1 mg·L-1 15 0 0 试管苗健壮, 叶片大, 叶色有些黄绿, 根多
K2 改良MS+6-BA 1.0 mg·L-1+NAA 0.2 mg·L-1 16 0 0 试管苗健壮, 叶片大, 叶色绿, 增殖新芽多,
基部愈伤多
K3 MS+6-BA 0.1 mg·L-1+NAA 0.05 mg·L-1 18 0 0 试管苗健壮, 叶片大, 叶色绿, 基部愈伤多
K4 MS+6-BA 0.5 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1 16 2 12.5 试管苗健壮, 叶片大, 叶色绿, 基部愈伤多
改良MS: NH4NO3降低至1/3, ZnSO4·7H2O增加至6倍。
表5 蔗糖浓度对诱导‘香槟’月季试管开花的影响
Table 5 Effect of concentration of sucrose on in vitro flower-
ing in Rosa chinensis ‘Xiangbin’
培养基编号 蔗糖浓度/g·L-1 供试苗数/株 花芽诱导率/%
T1 30 22 18.2
T2 40 22 0
T3 50 22 0
表6 培养瓶种类及封口模式对诱导‘香槟’月季试管开花的影响
Table 6 Effect of types of culture bottles and sealing mode on in vitro flowering in Rosa chinensis ‘Xiangbin’
编号 培养瓶种类及封口模式 供试苗数/株 花芽诱导率/% 正常开花率/%
F1 培养瓶, 透气封口膜 15 0 0
F2 培养瓶, 塑料瓶盖 35 20.0 0
F3 三角瓶, 铝箔纸封口 41 17.1 57.1
培养基均为MS+ 6-BA 0.5 mg·L-1 + NAA 0.1 mg·L-1, 表7同此。
长出花芽到花芽开放需要大约20 d的时间, 花开放
时间在12~15 d, 之后花瓣枯萎凋谢。
4.5 磷的变化对‘香槟’月季试管开花的影响
试验设计了3种培养基(表8)。改变基本培养
基中磷的含量, 影响到花芽诱导率和花芽开放。
H1培养基的花芽诱导率为17.1%, 有57.1%的花芽
植物生理学报1266
能正常开放; H2培养基提高了磷的含量至2倍, 花
芽诱导率为25.0%, 正常开花率达50.0%; H3培养基
将磷的含量提高至3倍, 花芽诱导率有所降低, 为
13.8%, 其中有50.0%的花芽能正常开放。叶片的
颜色因强光照以及磷的含量不同而发生一些变化,
H1培养基中长有花苞的试管苗叶子背面会变红
色, 叶子正面的颜色有些黄绿色; 培养基中提高2
倍磷的含量(H2), 叶片会变成黄色, 少数变成红色,
磷的含量再提高(H3), 叶片的颜色会更黄或更红。
讨　　论
本试验结果表明, 培养基中的植物生长调节
剂及其配比是影响‘香槟’月季茎段诱导、丛生芽
增殖以及生根的重要因素, 6-BA浓度在1.0 mg·L-1
时, 既有利于茎段诱导, 又有利于丛生芽的增殖,
当6-BA浓度提高时, 增殖的无效芽增多, 新生芽高
度降低, 试管苗的质量变差, 生长素IBA也是较低
的浓度(0.1~0.2 mg·L-1)比较适宜丛生芽增殖。生
根培养基中加入AC没有促进生根, 有可能是浓度
过高吸附了过多的生长素NAA, 还可进一步研究
AC的使用浓度。
诱导试管苗开花的研究结果显示, 影响‘香槟’
月季试管花芽形成及正常开放的因素很多, 如植
物生长调节剂种类及浓度、培养瓶种类及封口模
式、蔗糖浓度、温度和光照强度的变化以及基本
培养基中磷元素含量的改变。改变磷元素的含量,
可以影响花芽诱导率, 这与前人的研究结果一致
(周俊辉等2008), 本试验中磷元素提高至2倍时, 花
芽诱导率较高, 磷元素提高至3倍时花芽诱导率又
有所降低, 仍需进一步的试验确定最适宜的磷元
素含量。本试验中, 蔗糖浓度的提高未能提高花
芽诱导率, 这与前人的研究结果不一致(周俊辉等
2008), 这可能是由于不同的月季品种具有不同的
基因型, 造成对蔗糖的浓度反应有所差异。试验
中使用不透气的塑料瓶盖好于使用透气封口膜,
这与前人的研究结果存在差异(褚剑峰等2008; 周
俊辉等2008)。在培养条件方面, ‘香槟’月季能诱
导出试管花, 较报道过的月季品种条件更高一些,
如温度要控制在较低水平, 光照强度要保持在较
高水平, 可能是‘香槟’月季是非常喜光的品种, 只
有强光照才能使其从营养生长向生殖生长转化。
‘香槟’月季试管花的观赏性是未来研究的方
向, 如何才能使‘香槟’月季试管花的叶片更绿, 花
色更红, 花芽诱导率更高, 正常开花率提高, 进一
步延长花期等等, 使其达到商品化的要求, 是需要
进一步解决的问题。
参考文献
褚剑峰, 郑琪, 孙叶芳, 赵虎, 邢海, 陆国权(2008). 玫瑰试管花技术
研究及商品化生产. 上海农业学报, 24 (1): 130~132
周俊辉, 杨寅桂, 刘义存, 陈利秋, 余奕锋(2008). 微型月季的试管开
花诱导研究. 江西农业大学学报, 30 (3): 504~508
表7 温度和光照强度对‘香槟’月季试管开花的影响
Table 7 Effect of temperature and light intensity on in vitro flowering in Rosa chinensis ‘Xiangbin’
处理 温度/℃ 光照时间/h·d-1 光照强度/µmol·m-2·s-1 供试苗数/株 花芽诱导率/% 花芽开放率/% 备注
W1 25±1 12 40 18 0 0 培养瓶培养
W2 15~25 12 40~100 16 12.5 0 培养瓶培养
W3 22±1 16 70 34 14.7 0 培养瓶培养
W4 18 16 80~100 16 18.8 66.7 三角瓶培养
W5 21 16 80~100 41 17.1 57.1 三角瓶培养
表8 磷的变化对‘香槟’月季试管开花的影响
Table 8 Effect of change of phosphorus on in vitro flowering in Rosa chinensis ‘Xiangbin’
培养基编号 培养基组成 供试苗数/株 花芽诱导率/% 正常开花率/%
H1 MS+6-BA 0.5 mg·L-1+NAA 0.1 mg·L-1 41 17.1 57.1
H2 改良MS1+6-BA 0.5 mg·L
-1+NAA 0.1 mg·L-1 40 25.0 50.0
H3 改良MS2+6-BA 0.5 mg·L
-1+NAA 0.1 mg·L-1 29 13.8 50.0
改良MS1: 磷提高至2倍; 改良MS2: 磷提高至3倍。培养条件: 温度21℃, 光照强度80~100 µmol·m
-2·s-1, 光照时间16 h·d-1。