免费文献传递   相关文献

胁迫诱导型启动子在植物抗逆基因工程中的应用



全 文 :植物生理学通讯 第 45 卷 第 11 期,2009 年 11 月 1141
收稿 2009-09-02 修定  2009-11-02
资助 国家自然科学基金(30871389)和辽宁省优秀人才资助项
目(2 00 9 R36 )。
* 通讯作者(E-mail: liqiuli@dl.cn; Tel: 0411-82158681)。
胁迫诱导型启动子在植物抗逆基因工程中的应用
于壮, 朱丽萍, 邹翠霞, 李秋莉 *
辽宁师范大学生命科学学院, 辽宁大连 116029
Application of Stress-Induced Promoter in Plant Genetic Engineering
YU Zhuang, ZHU Li-Ping, ZOU Cui-Xia, LI Qiu-Li*
School of Life Sciences, Liaoning Normal University, Dalian, Liaoning 116029, China
提要: 在抗逆基因工程中, 大多采用的是组成型表达启动子, 组成型表达启动子驱动外源抗逆基因表达虽然可以提高转基
因植物的抗逆性, 但会导致转基因植株生长迟缓或不育; 而胁迫诱导型启动子则可提高转基因植物的抗逆性, 不影响其正
常生长发育, 所以, 胁迫诱导型启动子已逐渐用于植物抗逆基因工程。本文介绍不同胁迫诱导型启动子在植物抗逆基因工
程中的应用。
关键词: 胁迫诱导型启动子; 植物抗逆性; 基因工程
非生物胁迫包括干旱、高盐及极端温度(低
温、高温)等环境因子。它们常通过影响植物叶
片气孔开度、细胞壁或细胞膜成分的生理、生化
过程对植物造成伤害, 影响作物的产量和种植区域
(Wang 等 2003)。随着环境的变化, 未来人均的淡
水可用性在逐渐减少, 大约20%的水田受到高盐的
影响(Flowers 和 Yeo 1995)。植物在干旱、高盐
及极端温度逆境条件下发生一系列生理生化及发育
方面的应答反应来减少逆境对其细胞的损伤, 并且
某些基因表达也产生相应的变化, 激活一系列逆境
应答基因的表达, 从而提高植物多方面的抗逆性, 例
如增加胁迫蛋白的产量、提高抗氧化剂基因的表
达水平、增加可溶性物质的积累等( 杨献光等
2006)。
一般来说, 大部分作物对逆境都非常敏感, 即
抗逆性较差。采用植物基因工程技术培育抗逆作
物新品种一直是这一领域研究中的热点之一。人
们已经用基因表达谱分析、比较基因组学分析和
同源克隆等方法发现了一些抗逆基因及其等位基
因, 而且通过转基因方法有效地提高了作物的抗逆
性(Bressan 等 2009)。Wang 等(2007)报道, CaMV
35S启动子驱动玉米(Zea mays)钙调磷酸酶B类蛋
白 CBLs (calcineurin B-like proteins)在拟南芥
(Arabidopsis thaliana)中表达, 在 100~175 mmol·L-1
NaCl处理后, 与非转基因植株相比, 转基因植株种
子萌发和生根状态更好, 说明转基因植株能更好地
适应高盐逆境。Zhang等(2008)用 CaMV 35S 启动
子驱动拟南芥AtCYSa (Cystatins)和AtCYSb的表达,
转基因拟南芥经过 200 mmol·L-1 甘露醇处理后, 生
根明显好于非转基因植株, 说明 AtCYSa 和 AtCYSb
在转基因植株中的过量表达可提高拟南芥的抗旱
性。Wang 等(2008)分析 CaMV 35S 启动子驱动水
稻(Oryza sativa)脱水响应元件结合蛋白转录因子
OsDREB1F (dehydration-responsive element-binding
protein transcription factor)在拟南芥中表达结果显
示, 4 ℃下 2 d 后, 转基因拟南芥生长良好, 非转基
因植株则萎蔫死亡, 说明转基因拟南芥中OsDREB1F
的过量表达可提高拟南芥的抗寒性。
以上的转基因植物大部分采用的是组成型表达
启动子(constructive promoter), 而此种启动子虽然
可以提高植物在逆境条件下的抗逆能力, 但是有研
究显示, 正常条件下, 烟草和马铃薯中组成型表达
海藻糖 -6- 磷酸合酶(trehalose-6-phosphate synthase,
TPS)基因或海藻糖-6-磷酸磷脂酶 (trehalose-6-phos-
phate phosphatase, TPP)基因对植物有负作用, 如影
响植株生长和生根等(Goddijn和Vam1999; Romero
等 1997; Pilon-Smits 等 1998)。CaMV 35S 驱动拟
南芥转录因子AtWRKY18在转基因拟南芥中的高表
达是阻碍生长的, 而且有些呈畸形发育(Chen 和
chen 2002)。正常环境下, 细胞内组成型表达抗逆
蛋白是一种能量浪费, 而且还可能导致植物的正常
植物生理学通讯 第 45 卷 第 11 期,2009 年 11 月1142
代谢受阻, 以致转基因植物的发育异常(Kasuga 等
1999)。解决此问题的方法一般采用逆境胁迫诱导
型启动子(stress-inducible promoter), 用环境胁迫诱
导型启动子与抗逆基因融合, 促使植物在逆境胁迫
下表达相应的蛋白, 于是转基因植物即可更好地适
应逆境胁迫(Kasuga 等 1999)。以下介绍胁迫诱导
型启动子及其在植物抗逆基因工程中的应用。
1 rd29A启动子
rd29A 启动子是一种干旱、盐碱、低温诱导
表达的启动子, 其序列中含有2个与逆境胁迫应答
有关的顺式作用元件 DRE (dehydration-responsive
element), 是植物抗逆基因工程中理想的逆境诱导型
启动子(Narusaka 等 2003)。Zhao 等(2007)报道,
rd29A驱动拟南芥DREB1A/CBF3 (C-repeat-binding
factor)在高羊茅(Festuca arundinacea)中表达, 干旱
下 30 d 后, 非转基因植株全部萎蔫, 而转基因植株
只有少部分萎蔫。重新补充水分后, 转基因植株可
恢复正常生长, 而非转基因植株则不能恢复。这表
明, 胁迫诱导型启动子rd29A可有效驱动DREB1A/
CBF3 的表达, 从而提高转基因植株的抗旱性。
赵恢武等(2000)研究 rd29A 驱动酿酒酵母
(Saccharomyces cerevisiae) TPS在烟草中表达的结
果表明, 植株生长到 4 个月左右后, 于干旱下处理
10 d, 非转基因植株明显萎蔫, 许多叶子枯黄, 而转
基因植株受到的影响明显轻一些。这显示, 转基因
烟草的耐旱性有所增强。
Roy 等(2008)用 rd29A 驱动芥菜(Brassica
juncea)的 gly I (Glyoxalase I)表达后, 在 150 mmol·L-1
NaCl 条件下, 转基因拟南芥的种子萌发率达到
75%, 而非转基因拟南芥的种子萌发率只有 15%。
这表明, 转基因植株耐盐性有提高。
Zhuo 等(2007)研究拟南芥 rd29A 启动子驱动
外源甜菜碱醛脱氢酶(betaine aldehyde dehydrogenase,
BADH)基因在枫香(Liquidambar formosana)中的表
达结果表明, 在 200 mmol·L-1 NaCl 胁迫条件下, 转
基因植株与非转基因植株相比, BADH表达明显上
调。这显示, rd29A启动子可驱动外源 BADH在枫
香中表达, 因而其抗盐能力增强。
Behnam等(2007)报道, rd29A启动子驱动拟南
芥DREB1在马铃薯(Solanum tuberosum)中表达后,
其抗寒性提高。Northern 杂交分析表明, 4 ℃条件
下, 前 30 min 转基因马铃薯与非转基因马铃薯
DREB1均没有表达, 30 min后转基因马铃薯DREB1
表达, 而非转基因马铃薯则没有表达。-20 ℃条
件下, 1 min 内转基因马铃薯的 DREB1 表达, 而非
转基因马铃薯没有表达。这表明, rd29A 启动子驱
动 DREB1 在植物中的表达受低温诱导。
Gao等(2005)分析拟南芥rd29A启动子与玉米
Ubi启动子驱动大豆(Glycine max)脱水响应元件结
合蛋白 GmDREB 在小麦中表达的结果表明, 10%
聚乙二醇处理 2个星期后, 94%的非转基因植株的
叶子开始卷曲, 根系不发达, 而转基因植株则很少
有此现象; 以 0.6% NaCl 处理后, 非转基因植株萎
蔫, 而转基因植株则能存活。这说明 rd29A启动子
和Ubi启动子都能有效驱动GmDREB的表达, 从而
提高转基因植株的抗盐与抗旱能力。
Kasuga等(1999)将rd29A与CaMV 35S启动子
驱动 DREB1A 在拟南芥中的表达进行对比的结果
表明, 正常生长条件下, 转基因植株的抗逆性都提
高, 但CaMV 35S启动子驱动的转基因拟南芥表现
为生长延迟; 在胁迫条件下, 转 rd29A 启动子的拟
南芥的生长受到的影响很小, 而且抗逆性更强于
CaMV 35S启动子。Kasuga 等(2004)研究 rd29A驱
动 DREB1A/CBF3 在烟草中的表达显示, 正常条件
下, rd29A转基因烟草生长发育受到的影响极微, 而
非转基因烟草则生长延迟。这些表明, 诱导型启动
子驱动抗逆基因较小影响转基因植株的生长, 且能
提高转基因植株的抗逆性。
Bhatnagar-Mathur等(2007)报道, rd29A驱动拟
南芥转录因子 DREB1A 在花生(Arachis hypogaea)
中的表达。rd29A驱动的转基因植株与CaMV 35S
驱动的转基因植株相比, 其长势良好(图1), 致死率
低。rd29A 驱动的转基因植株比非转基因植株的
蒸腾效率高, 蒸腾作用弱。这表明, 诱导型启动子
可驱动DREB1A在转基因植株中适时表达, 不影响
其生长, 且可提高其抗旱性。
2 SWPA2启动子
SWPA2 (sweetpotato peroxidase)启动子是具有
氧化特性的干旱胁迫启动子。在多种胁迫条件下,
SWPA2启动子驱动的外源基因表达比CaMV 35S启
动子更明显(Kim等2003)。Ahmad等(2008)用SWPA2
启动子驱动细菌中的胆碱氧化酶A (cholineoxidase A,
codA)基因转化马铃薯的结果表明, 干旱处理后, 转
基因马铃薯的水含量与干重比非转基因马铃薯高,
植物生理学通讯 第 45 卷 第 11 期,2009 年 11 月 1143
恢复浇水 7 d 后, 转基因植株可恢复生长, 而非转
基因植株则不能恢复。Tang 等(2006)研究 SWPA2
启动子驱动 Cu/Zn 超氧化物歧化酶(superoxide
dismuta se , SOD)基因和抗坏血酸过氧化物酶
(ascorbate peroxidase, APX)基因在马铃薯中表达的
结果显示, 42 ℃处理 10 h后, 非转基因马铃薯已经
萎蔫, 而转基因马铃薯植株仍然正常生长; 20 h后,
转基因马铃薯的光合作用活性只下降了 6%, 而非
转基因植株则下降了 29%。这些表明, SWPA2 可
驱动外源基因在转基因植株中的表达, 提高转基因
植株的抗寒性。
3 诱导型启动子IND (6xABRE+2mini CaMV 35S)
和Pabp9
陈铮等(2008)研究IND (6xABRE+2mini CaMV
35S)和Pabp9启动子分别驱动ABP9在拟南芥中表
达的结果显示, 正常生长条件下, 两种诱导型启动
子驱动ABP9表达的转基因拟南芥比组成型启动子
驱动 ABP9 表达的转基因拟南芥根系生长良好(图
2), 这表明诱导表达可在一定程度上解除组成型表
达所导致的生长延迟。
4 ABA诱导启动子
AB A 诱导启动子来源于 ABA 响应复合物
(ABA-response complex, ABRC3)。Fu 等(2007)报
道, 玉米Ubi-1启动子和ABA诱导启动子驱动大麦
(Hordeum vulgare)抗旱基因HVA1在匍匐型剪股颖
(Agrostis stolonifera var. palustris)中表达, 在干旱条
件下, ABA诱导启动子和Ubi-1启动子驱动HVA1的
转基因植株的相对含水量均高于非转基因植株, 转
图 1 试管培养和温室培养条件下的转 CaMV 35S:DREB1A 和 rd29A:DREB1A 基因植株的表型(Bhatnagar-Mathur 等 2007)。
a: 试管培养条件下转 rd29A:DREB1A 植株开始生根; b: 试管培养条件下转 CaMV 35S:DREB1A 植株不能生根, 株型矮小; c: 温室
培养条件下含有 CaMV 35S:DREB1A 的转基因植株表现株型矮小; d: 温室培养条件下含有 rd29A:DREB1A 的转基因植株生长正常。
图 2 正常条件下各转基因拟南芥株系的根系
生长比较(陈铮等 2008)
pCHF3: 转空载体植株; Pabp- ABP9: 含 ABP9 启动子植株;
IND-ABP9: 含 IND 启动子植株; 35S-ABP9: 含 CaMV35S 启动子
植 株 。
基因植株均受到较小程度的损害, 转ABA诱导启动
子植株受到的损害最小。这显示, ABA 诱导启动
子能更有效地驱动HVA1在干旱条件下表达, 从而
提高转基因植株的抗旱性。
Hsieh等(2002a, b)分析CaMV 35S启动子驱动
拟南芥CBF1在番茄(Lycopersicon esculentum)中表
达的结果表明, 组成型过量表达 CBF1 虽然可提高
番茄的抗逆性, 但却出现转基因番茄株型矮小、果
实与种子数量减少的现象。为了让转基因番茄更
优化, 其株型和产量受到的影响小, Lee等(2003)研
究大麦HAV22的ABA-响应复合物(ABRC1)启动子
驱动拟南芥 CBF1 在番茄中的表达, 结果显示, 缺
水处理4个星期后, 非转基因植株的成活率为零, 而
转基因植株的成活率为 83.3%~96.7%; 另外, 200
mmol·L-1 NaCl处理4个星期后, 非转基因植株的成
活率为零, 而转基因植株的成活率为83.3%~96.7%。
正常条件下, 转基因植株的果实和种子的数量以及
植物生理学通讯 第 45 卷 第 11 期,2009 年 11 月1144
植株鲜重均与非转基因植株基本相同; 而在冷、缺
水和盐胁迫条件下, 转基因植株果实和种子的数量
以及植株鲜重均明显高于非转基因植株。这些表
明, 胁迫诱导启动子驱动胁迫应答基因的表达可提
高转基因植株的抗逆性, 且不影响植株生长和产
量。
5 干旱诱导启动子OsLEA3-1
LEA是干旱和盐胁迫响应基因, 其全长cDNA
定义为OsLEA3-1, OsLEA3-1启动子是从旱稻(Oryza
sativa) IRAT109 中分离出来的。Xiao 等(2007)用
旱稻干旱诱导 OsLEA3-1 启动子、CaMV 35S 启动
子和水稻Actin1启动子分别驱动OsLEA3-1在水稻
中表达的结果显示, 3 种启动子驱动的转基因植株
抗旱性均强于非转基因植株, 其中 OsLEA3-1 启动
子驱动的转基因植株抗旱性稍强于CaMV35S启动
子。这表明, 采用诱导型启动子驱动干旱响应基因
表达更有利于提高转基因植株的抗旱性。
6 结语
干旱、高盐及极端温度导致全球农作物产量
的损失巨大, 采用基因工程技术改良作物的抗逆性
是最为经济, 也是最有前景的有效方法。近年来,
胁迫诱导启动子的研究日益增多, 胁迫诱导启动子
可以驱动外源抗逆基因在转基因植物中的表达, 并
且能提高转基因植物的抗逆性, 这与CaMV 35S启
动子的功能相同。胁迫诱导启动子有一个优点, 这
就是它能调节基因表达的时空性, 促使外源基因在
逆境胁迫条件下表达相应的蛋白, 既节约能量, 也
不影响植物的正常生长发育, 最终可以避免外源基
因对植物的不良效应(如转基因植株的生长延迟和
畸形发育), 于是转基因植物抵抗逆境的能力提高。
所以, 胁迫诱导启动子驱动外源基因表达可能是未
来这一领域研究的一种趋势和热点。总之, 随着更
多胁迫诱导启动子的发现, 胁迫诱导启动子将会更
广泛的用于植物抗逆基因工程的研究, 进而应用于
生产实践。
参考文献
陈铮, 邹维华, 张霞, 唐咏, 范云六, 赵军(2008). 转录因子 ABP9 基
因在不同启动子驱动下对转基因拟南芥生长发育的影响. 中
国农业科技导报, 10 (3): 58~63
杨献光, 梁卫红, 齐志广, 马闻师, 沈银柱(2006). 植物非生物胁迫
应答的分子机制. 麦类作物学报, 26 (6): 158~161
赵恢武, 陈杨坚, 胡鸢雷, 高音, 林忠平(2000). 干旱诱导性启动子
驱动的海藻糖 -6- 磷酸合酶基因载体的构建及转基因烟草的
耐旱性. 植物学报, 42 (6): 616~619
Ahmad R, Kim MD, Back KH, Kim HS, Lee HS, Kwon SY, Murata
N, Chung WI, Kwak SS (2008). Stress- induced expression of
choline oxidase in potatoplant chloroplasts confers enhanced
tolerance to oxidative, salt, and drought stresses. plant Cell
Rep, 7: 687~698
Behnam B, Kikuchi A, Celebi-Toprak F, Kasuga M, Yamaguchi-
Shinozaki K, Watanabe KN (2007). Arabidopsis rd29A::
DREB1A enhances freezing tolerance in transgenic potato.
Plant Cell Rep, 26: 1275~1282
Bhatnagar-Mathur P, Devi MJ, Reddy DS, Lavanya M, Vadez V,
Serraj R, Yamaguchi-Shinozaki K, Sharma KK (2007). Stress-
inducible expression of AtDREB1A in transgenic peanut increases
transpiration efficiency underwater-limiting conditions. Plant
Cell Rep, 26: 2071~2082
Bressana R, Bohnertb H, Zhu JK (2009). Abiotic Stress Tolerance:
From G ene D iscovery in Model O rga ni sms to Crop
Improvement. Mol Plant, 2 (1): 1~2
Chen CH, Chen ZX (2002). Potentia tion of developmentally
regulated plant defense response by AtWRKY18, a pathogen-
induced Arabidopsis transcription factor. Plant Physiol, 129:
706~716
Flowers TJ, Yeo AR (1995). Breeding for salinity resistance in crop
plants: where Next? Austra J Plant Physiol, 22: 875~884
Fu DL, Huang BR, Xiao YM, Muthukrishnan S, Liang GH (2007).
Overexpression of barley hva1 gene in creeping bentgrass for
improving drought tolerance. Plant Cell Rep, 26: 467~477
Gao SQ, Xu HJ, Cheng XG, Chen M, Xu ZS, Li LC, Ye XG, Du LP,
Hao XY, Ma YZ (2005). Improvement of wheat drought and
salt tolerance by expression of a stress inducible transcription
factor GmDREB of soybean. Chinese Sci Bul, 50 (23):
714~2723
Goddijn OJM, van DK (1999). Trehalose metabolism in plants.
Trends Plant Sci, 4: 315~319
Hsieh TH, Lee JT, Charng YY, Chan MT (2002a). Heterology
expression of the Arabidopsis C-Repeat/Dehydration Re-
sponse Element Binding Factor 1 gene confers elevated
tolerance to chilling and oxidative stresses in transgenic
tomato. Plant Physiol, 129: 1086~1094
Hsieh TH, Lee JT, Charng YY, Chan MT (2002b). Tomato plants
ectopically expressing Arabidopsis CBF1 show enhanced re-
sistance to water deficit stress. Plant Physiol, 130: 618~626
Kasuga M, Liu Q, Miura S, Yamaguchi-Shinozaki K, Shinozaki K
(1999). Improving plant drought, salt , andfreezing toler-
ance by gene transfer of asingle stress-inducible transcrip-
tion factor. Nature Biotecnol, 17 (3): 287~291
Kasuga K, Miura S, Shinozaki K, Yamaguchi-Shinozaki K (2004).
A combination of the Arabidopsis DREB1A gene and stress-
inducible rd29A promoter improved drought- and low-tem-
perature stress tolerance in tobacco by gene transfer. Plant
Cell Physiol, 45 (3): 346~350
Kim KY, Kwon SY, Lee HS, Hur YK, Bang JW, Kwak SS (2003).
A novel oxidative stress- inducible peroxidase promoter from
sweetpotato:molecular cloning and characterization in
植物生理学通讯 第 45 卷 第 11 期,2009 年 11 月 1145
transgenic tobacco plants and cultured cells. Plant Mol Biol,
51: 831~838
Lee JT, Prasad V, Yang P T, Wu JF, David HTH, Charng YY, Chan
MT (2003). Expression of Arabidopsis CBF1 regulated by an
ABA/stress inducible promoter in transgenic tomato confers
stress tolerrance without affecting yield. Plant Cell Envirom,
26: 1181~1190
Narusaka Y, Nakashima K, Shinwari ZK, Sakuma Y, Furihata T,
Abe H, Narusaka M, Shinozaki k, Yamaguchi- Shinozaki K
(2003). Interaction between two cis-acting elements, ABRE
and DRE, in ABA-dependent expression of Arabidopsis rd29A
gene in response to dehydration and high-salinity stresses.
Plant J, 34 (2): 137~148
Pilon-Smits EAH, Terry N, Sears T, Kim H, Zayed A, Hwang S, van
DK, Voogd E, Verwoerd TC, Krutwagen RW et al (1998).
Trehalose-producing transgenic tobacco plants show im-
proved growth performance under drought stress. J Plant
Physiol, 152: 525~532
Romero C, Belles JM, Vaya JL, Serrano R, Culianez-Macia FA
(1997). Expression of the yeast trehalose-6-phosphate syn-
thase gene in transgenic tobacco plants: pleiotropic pheno-
types include drought tolerance. Planta, 1: 293~297
Roy SD, Saxena M, Bhomkar PS, Pooggin I, Hohn T, Bhalla-
Sarin N (2008). Generation of marker free salt tolerant
transgenic plants of Arabidopsis thaliana using the gly I gene
and cre gene under inducible promoters. Plant Cell Tiss Organ
Cult, 95: 1~11
Tang L, Kwon SY, Kim SH, Kim JS, Choi JS, Cho KY, Sung CK,
Kwak SS, Lee HS (2006). Enhanced tolerance of transgenic
potato plants expressing both superoxide dismutase and
ascorbate peroxidase in chloroplasts against oxidative stress
and high temperature. Plant Cell Rep, 25: 1380~1386
Xiao BZ, Huang YM, Tang N, Xiong LZ (2007). Over-expression
of a LEA gene in rice improves drought resistance under the
Weld conditions. Theor Appl Genet, 115: 35~46
Wang MY, Gu D, Liu TS, Wang ZQ, Guo XY, Hou W, Bai YF,
Chen XP, Wang GY (2007). Overexpression of a putative
maize calcineurin B-like protein in Arabidopsis confers salt
tolerance. Plant Mol Biol, 65: 733~746
Wang QY, Guan YC, Wu YR, Chen HL, Chen F, Chu CC (2008).
Overexpression of a rice OsDREB1F gene increases salt,
drought,and low temperature tolerance in both Arabidopsis
and rice. Plant Mol Biol, 67: 589~602
Wang WX, Vinocur B, Altman A (2003). Plant responses to
drought, salinity and extreme temperatures: towards genetic
engineering for stress tolerance. Planta, 218: 1~14
Zhang XX, Liu SK, Takano T (2008). Two cysteine proteinase
inhibitors from Arabidopsis thaliana,AtCYSa and AtCYSb ,
increasing the salt, drought, oxidation and cold tolerance.
Plant Mol Biol, 68: 131~143
Zhao JS, Ren W, Zhi DY, Wang L, Xia GM (2007). Arabidopsis
REB1A/CBF3 bestowed transgenic tall fescue increased tol-
erance to drought stress. Plant Cell Rep, 6: 1521~1528
Zhuo RY, Qiao GR, Sun ZX (2007). Transgene expression in
Chinese sweetgum driven by the salt induced expressed
promoter. Plant Cell Tiss Organ Cult, 88: 101~107