全 文 ： 植物生理学通讯 第 40卷 第 5期，2004年 10月594
植物材料和外植体 培养条件 结 果 作者(单位)
收稿 2003-10-23
修定 2004-03-22
* E-mail: lzr1205
@163.com,Tel:
0791-8442843
罗兆荣* 胡晓文 喻晚
之 洪香娇(南昌市蔬
菜科学研究所， 南昌
330001)
青花菜(Brassica
oleracea)品种“上
海 2 号”
花枝
　　诱导和增殖培养
基：(1)MS+6-BA 1.0
m g ·L- 1(单位下同) +
NAA 0.1；(2)MS+6-
BA 1.0+NAA 0.2；
(3)MS+6-BA 1.0+
NAA 0.5；(4)MS+6-
BA 0.5+NAA 0.1。
生根培养基：( 5 )
MS+NAA 0.2；(6)
1/2MS+NAA 0.2。
上述培养基均加 3%
蔗糖、0 . 7 % 琼脂，
pH 5.8。培养温度
(20±5)℃，光照 时
间12 h·d-1，光照度
为 1 500~2 000 lx。
　　剪取幼嫩花枝，流水洗净，用 75% 酒精灭菌 30 s，再
用0.1%升汞(加入1滴吐温 -40)消毒10 min，无菌水冲洗4~5
次。在无菌条件下，取0.5 cm 左右的花枝切块作为外植体接
种于培养基(1)~(4)中。7 d后，外植体切块边缘肿大，形成
白色的愈伤组织；20 d 后，愈伤组织变绿；40 d 后，从愈
伤组织上分化出丛芽。4 种培养基中，外植体在培养基(2)上
生长最好，表现为诱导率高、丛芽多、芽较健壮；在培养
基(1)上分化的丛芽也较多，但芽很纤细；培养基(3)和(4)上产
生的丛芽较少。将丛芽切成单芽，转入培养基(3)中进行培
养。当芽长成3~4 cm 的小苗时，切成带1~2个节的茎段接入
培养基(2)~(4)中进行增殖，每个叶腋可产生1~2个小芽。增
殖培养 20 d 继代 1 次。当芽长成 3 cm 左右健壮小苗时，进
行生根培养。将小苗切下，插入生根培养基，20 d 后，可
长出根，生根率 9 8 % 以上。移栽时，打开培养瓶盖，在室
温下炼苗 1 d，洗净根部的培养基，移栽于灭过菌的珍珠岩
中，注意保湿。10 d 后，浇 1/10MS 大量元素的营养液，20
d 后，小苗可成活，成活率 9 8 % 。
甜樱桃( P r u n u s
a vi um )矮化砧木
ZY-1
休眠枝条的芽
　　(1)丛生芽诱导
培养基：MS + 6 - B A
1.0 mg·L-1(单位下同)+
GA 1.0；(2)增殖培
养基：MS+6-BA 1.5+
IAA 1.0+GA 0.5；(3)壮
苗培养基：MS+IAA
1.2。以上培养基均
附加3% 蔗糖、0.6%
琼脂，pH为5.8。培
养温度(23±2)℃，光
照13 h·d-1，光照度
2 000 lx。
　　将休眠芽外面几层鳞片剥去，在无菌条件下用0.1% 升汞
浸泡 5 min，再用无菌水清洗 5 次，最后剥去芽的内层鳞片，
切取嫩芽接种在培养基(1)中进行丛生芽诱导培养。7 d后，芽
开始萌动；10 d 后，叶片伸出；22 d，芽长成 0.6 cm 左右
的新梢，并产生3~4个丛生芽。将丛生芽转入培养基(2)中进
行增殖培养，12 d 后增殖倍数为 4.6 倍，20 d 后为 6.1 倍，
24 d后为9.4倍。将高度大于1 cm的丛生芽转入培养基(3)中
进行壮苗培养，20 d 后高度达到 2.75 cm，且茎粗壮，叶色
深绿。将壮苗连同培养瓶移入温室，2 d 后揭开瓶盖，用遮
阳网遮阴 3 d，然后取出苗木，洗净基部培养基，栽入以泥
炭和腐叶土(体积比 1∶1)为培养介质的苗床中，栽植后用15
mg·L-1 IAA 浇灌诱导生根。栽植前2 d将苗床浇透水，12 h 后
用 0.05% CuSO4 溶液消毒；栽植后用小拱棚覆盖，以保持较高
而稳定的相对湿度，再覆盖遮阳网。15 d 后，成活率达 90%。
　　本文所用材料樱桃矮化砧木ZY-1系中国农业科学院郑州果
树研究所从意大利引进。其与甜樱桃嫁接亲和力极强，成活
率高，3 年可进入结果期。
刘仁道1,* 廖明安2(1西
南科技大学生命科学
与工程学院，绵阳
621010；2 四川农业
大学林学园艺学院，
雅安 621014)
收稿 2003-11-19
修定 2004-04-13
* E-mail:mylrd@
263.net,Tel:
0816-6332233
贴 梗 海 棠
( C h a e n o m e l e s
speciosa)品种云锦
幼叶和茎段
　　愈伤组织诱导
和继代培养基：(1)
MS+6-BA 1 mg·L-1
( 单位下同) + I A A
0.2；分化培养基：
(2)MS+6-BA 1+ IAA
0.1；生根培养基：
(3)MS+NAA 0.2。以上
培养基中加 0.6% 琼
脂；生根培养基中
蔗糖为 2%，其余为
3 % 。培养温度为
23~2 5℃，光照度
1 500~2 000 lx，光
照 10 h·d-1。
　　叶片和幼茎用70% 乙醇处理 20 s，0.1% 升汞溶液处理 5
min进行表面消毒以后无菌水冲洗4~5次。剔除叶片外沿和中
脉，切成 5 mm 见方的小片，接种于培养基(1)上诱导愈伤组
织产生；幼茎则切成约5 mm 的茎段接种。6~7 d 后出现愈伤
组织，出愈率为 100%。在继代中，部分愈伤组织转化为嫩
黄色，表面和中央的质地接近，取出这种愈伤组织并转移到
培养基(2)上。10 d 内，愈伤组织生长速度降低，颜色多样
化，边缘处呈绿色或黄色等；在 20~30 d 时，分化产生芽点
或芽丛；随后的 5~10 d 内即可长成 4~5 cm 高的再生苗。源
自幼茎的愈伤组织分化频率为10%，源自幼叶的愈伤组织分化
频率仅为 2%。再生植株长到 4~5 cm 高时，剔除干净周围的
愈伤组织，转移到培养基(3)上诱导生根，约20 d左右即可长
出3~4 cm 长的根。生根率为 40%。再生苗具有 2~3 条根时，
打开瓶口，在自然光下炼苗 2 d 后，小心洗去根部的琼脂，
移入花盆(培养基质为泥炭∶蛭石∶珍珠岩＝ 2∶1∶1，加
入少量的磷肥)。移栽成活率为 90%。3~5 d 后，贴梗海棠长
势旺盛。
范义莲* 万益琴 刘志
学(上海大学生命科学
学院，上海 200436)
收稿　2004-01-07
修定　2004-06-01
* E-mail:fanyilian
@sohu.com, Tel:
021- 66133577
植物组织培养简报摘编
植物生理学通讯 第 40卷 第 5期，2004年 10月594
植物材料和外植体 培养条件 结 果 作者(单位)
收稿 2003-10-23
修定 2004-03-22
* E-mail: lzr1205
@163.com,Tel:
0791-8442843
罗兆荣* 胡晓文 喻晚
之 洪香娇(南昌市蔬
菜科学研究所， 南昌
330001)
青花菜(Brassica
oleracea)品种“上
海 2 号”
花枝
　　诱导和增殖培养
基：(1)MS+6-BA 1.0
m g ·L- 1(单位下同) +
NAA 0.1；(2)MS+6-
BA 1.0+NAA 0.2；
(3)MS+6-BA 1.0+
NAA 0.5；(4)MS+6-
BA 0.5+NAA 0.1。
生根培养基：( 5 )
MS+NAA 0.2；(6)
1/2MS+NAA 0.2。
上述培养基均加 3%
蔗糖、0 . 7 % 琼脂，
pH 5.8。培养温度
(20±5)℃，光照 时
间12 h·d-1，光照度
为 1 500~2 000 lx。
　　剪取幼嫩花枝，流水洗净，用 75% 酒精灭菌 30 s，再
用0.1%升汞(加入1滴吐温 -40)消毒10 min，无菌水冲洗4~5
次。在无菌条件下，取0.5 cm 左右的花枝切块作为外植体接
种于培养基(1)~(4)中。7 d后，外植体切块边缘肿大，形成
白色的愈伤组织；20 d 后，愈伤组织变绿；40 d 后，从愈
伤组织上分化出丛芽。4 种培养基中，外植体在培养基(2)上
生长最好，表现为诱导率高、丛芽多、芽较健壮；在培养
基(1)上分化的丛芽也较多，但芽很纤细；培养基(3)和(4)上产
生的丛芽较少。将丛芽切成单芽，转入培养基(3)中进行培
养。当芽长成3~4 cm 的小苗时，切成带1~2个节的茎段接入
培养基(2)~(4)中进行增殖，每个叶腋可产生1~2个小芽。增
殖培养 20 d 继代 1 次。当芽长成 3 cm 左右健壮小苗时，进
行生根培养。将小苗切下，插入生根培养基，20 d 后，可
长出根，生根率 9 8 % 以上。移栽时，打开培养瓶盖，在室
温下炼苗 1 d，洗净根部的培养基，移栽于灭过菌的珍珠岩
中，注意保湿。10 d 后，浇 1/10MS 大量元素的营养液，20
d 后，小苗可成活，成活率 9 8 % 。
甜樱桃( P r u n u s
a vi um )矮化砧木
ZY-1
休眠枝条的芽
　　(1)丛生芽诱导
培养基：MS + 6 - B A
1.0 mg·L-1(单位下同)+
GA 1.0；(2)增殖培
养基：MS+6-BA 1.5+
IAA 1.0+GA 0.5；(3)壮
苗培养基：MS+IAA
1.2。以上培养基均
附加3% 蔗糖、0.6%
琼脂，pH为5.8。培
养温度(23±2)℃，光
照13 h·d-1，光照度
2 000 lx。
　　将休眠芽外面几层鳞片剥去，在无菌条件下用0.1% 升汞
浸泡 5 min，再用无菌水清洗 5 次，最后剥去芽的内层鳞片，
切取嫩芽接种在培养基(1)中进行丛生芽诱导培养。7 d后，芽
开始萌动；10 d 后，叶片伸出；22 d，芽长成 0.6 cm 左右
的新梢，并产生3~4个丛生芽。将丛生芽转入培养基(2)中进
行增殖培养，12 d 后增殖倍数为 4.6 倍，20 d 后为 6.1 倍，
24 d后为9.4倍。将高度大于1 cm的丛生芽转入培养基(3)中
进行壮苗培养，20 d 后高度达到 2.75 cm，且茎粗壮，叶色
深绿。将壮苗连同培养瓶移入温室，2 d 后揭开瓶盖，用遮
阳网遮阴 3 d，然后取出苗木，洗净基部培养基，栽入以泥
炭和腐叶土(体积比 1∶1)为培养介质的苗床中，栽植后用15
mg·L-1 IAA 浇灌诱导生根。栽植前2 d将苗床浇透水，12 h 后
用 0.05% CuSO4 溶液消毒；栽植后用小拱棚覆盖，以保持较高
而稳定的相对湿度，再覆盖遮阳网。15 d 后，成活率达 90%。
　　本文所用材料樱桃矮化砧木ZY-1系中国农业科学院郑州果
树研究所从意大利引进。其与甜樱桃嫁接亲和力极强，成活
率高，3 年可进入结果期。
刘仁道1,* 廖明安2(1西
南科技大学生命科学
与工程学院，绵阳
621010；2 四川农业
大学林学园艺学院，
雅安 621014)
收稿 2003-11-19
修定 2004-04-13
* E-mail:mylrd@
263.net,Tel:
0816-6332233
贴 梗 海 棠
( C h a e n o m e l e s
speciosa)品种云锦
幼叶和茎段
　　愈伤组织诱导
和继代培养基：(1)
MS+6-BA 1 mg·L-1
( 单位下同) + I A A
0.2；分化培养基：
(2)MS+6-BA 1+ IAA
0.1；生根培养基：
(3)MS+NAA 0.2。以上
培养基中加 0.6% 琼
脂；生根培养基中
蔗糖为 2%，其余为
3 % 。培养温度为
23~2 5℃，光照度
1 500~2 000 lx，光
照 10 h·d-1。
　　叶片和幼茎用70% 乙醇处理 20 s，0.1% 升汞溶液处理 5
min进行表面消毒以后无菌水冲洗4~5次。剔除叶片外沿和中
脉，切成 5 mm 见方的小片，接种于培养基(1)上诱导愈伤组
织产生；幼茎则切成约5 mm 的茎段接种。6~7 d 后出现愈伤
组织，出愈率为 100%。在继代中，部分愈伤组织转化为嫩
黄色，表面和中央的质地接近，取出这种愈伤组织并转移到
培养基(2)上。10 d 内，愈伤组织生长速度降低，颜色多样
化，边缘处呈绿色或黄色等；在 20~30 d 时，分化产生芽点
或芽丛；随后的 5~10 d 内即可长成 4~5 cm 高的再生苗。源
自幼茎的愈伤组织分化频率为10%，源自幼叶的愈伤组织分化
频率仅为 2%。再生植株长到 4~5 cm 高时，剔除干净周围的
愈伤组织，转移到培养基(3)上诱导生根，约20 d左右即可长
出3~4 cm 长的根。生根率为 40%。再生苗具有 2~3 条根时，
打开瓶口，在自然光下炼苗 2 d 后，小心洗去根部的琼脂，
移入花盆(培养基质为泥炭∶蛭石∶珍珠岩＝ 2∶1∶1，加
入少量的磷肥)。移栽成活率为 90%。3~5 d 后，贴梗海棠长
势旺盛。
范义莲* 万益琴 刘志
学(上海大学生命科学
学院，上海 200436)
收稿　2004-01-07
修定　2004-06-01
* E-mail:fanyilian
@sohu.com, Tel:
021- 66133577
植物组织培养简报摘编
植物生理学通讯 第 40卷 第 5期，2004年 10月594
植物材料和外植体 培养条件 结 果 作者(单位)
收稿 2003-10-23
修定 2004-03-22
* E-mail: lzr1205
@163.com,Tel:
0791-8442843
罗兆荣* 胡晓文 喻晚
之 洪香娇(南昌市蔬
菜科学研究所， 南昌
330001)
青花菜(Brassica
oleracea)品种“上
海 2 号”
花枝
　　诱导和增殖培养
基：(1)MS+6-BA 1.0
m g ·L- 1(单位下同) +
NAA 0.1；(2)MS+6-
BA 1.0+NAA 0.2；
(3)MS+6-BA 1.0+
NAA 0.5；(4)MS+6-
BA 0.5+NAA 0.1。
生根培养基：( 5 )
MS+NAA 0.2；(6)
1/2MS+NAA 0.2。
上述培养基均加 3%
蔗糖、0 . 7 % 琼脂，
pH 5.8。培养温度
(20±5)℃，光照 时
间12 h·d-1，光照度
为 1 500~2 000 lx。
　　剪取幼嫩花枝，流水洗净，用 75% 酒精灭菌 30 s，再
用0.1%升汞(加入1滴吐温 -40)消毒10 min，无菌水冲洗4~5
次。在无菌条件下，取0.5 cm 左右的花枝切块作为外植体接
种于培养基(1)~(4)中。7 d后，外植体切块边缘肿大，形成
白色的愈伤组织；20 d 后，愈伤组织变绿；40 d 后，从愈
伤组织上分化出丛芽。4 种培养基中，外植体在培养基(2)上
生长最好，表现为诱导率高、丛芽多、芽较健壮；在培养
基(1)上分化的丛芽也较多，但芽很纤细；培养基(3)和(4)上产
生的丛芽较少。将丛芽切成单芽，转入培养基(3)中进行培
养。当芽长成3~4 cm 的小苗时，切成带1~2个节的茎段接入
培养基(2)~(4)中进行增殖，每个叶腋可产生1~2个小芽。增
殖培养 20 d 继代 1 次。当芽长成 3 cm 左右健壮小苗时，进
行生根培养。将小苗切下，插入生根培养基，20 d 后，可
长出根，生根率 9 8 % 以上。移栽时，打开培养瓶盖，在室
温下炼苗 1 d，洗净根部的培养基，移栽于灭过菌的珍珠岩
中，注意保湿。10 d 后，浇 1/10MS 大量元素的营养液，20
d 后，小苗可成活，成活率 9 8 % 。
甜樱桃( P r u n u s
a vi um )矮化砧木
ZY-1
休眠枝条的芽
　　(1)丛生芽诱导
培养基：MS + 6 - B A
1.0 mg·L-1(单位下同)+
GA 1.0；(2)增殖培
养基：MS+6-BA 1.5+
IAA 1.0+GA 0.5；(3)壮
苗培养基：MS+IAA
1.2。以上培养基均
附加3% 蔗糖、0.6%
琼脂，pH为5.8。培
养温度(23±2)℃，光
照13 h·d-1，光照度
2 000 lx。
　　将休眠芽外面几层鳞片剥去，在无菌条件下用0.1% 升汞
浸泡 5 min，再用无菌水清洗 5 次，最后剥去芽的内层鳞片，
切取嫩芽接种在培养基(1)中进行丛生芽诱导培养。7 d后，芽
开始萌动；10 d 后，叶片伸出；22 d，芽长成 0.6 cm 左右
的新梢，并产生3~4个丛生芽。将丛生芽转入培养基(2)中进
行增殖培养，12 d 后增殖倍数为 4.6 倍，20 d 后为 6.1 倍，
24 d后为9.4倍。将高度大于1 cm的丛生芽转入培养基(3)中
进行壮苗培养，20 d 后高度达到 2.75 cm，且茎粗壮，叶色
深绿。将壮苗连同培养瓶移入温室，2 d 后揭开瓶盖，用遮
阳网遮阴 3 d，然后取出苗木，洗净基部培养基，栽入以泥
炭和腐叶土(体积比 1∶1)为培养介质的苗床中，栽植后用15
mg·L-1 IAA 浇灌诱导生根。栽植前2 d将苗床浇透水，12 h 后
用 0.05% CuSO4 溶液消毒；栽植后用小拱棚覆盖，以保持较高
而稳定的相对湿度，再覆盖遮阳网。15 d 后，成活率达 90%。
　　本文所用材料樱桃矮化砧木ZY-1系中国农业科学院郑州果
树研究所从意大利引进。其与甜樱桃嫁接亲和力极强，成活
率高，3 年可进入结果期。
刘仁道1,* 廖明安2(1西
南科技大学生命科学
与工程学院，绵阳
621010；2 四川农业
大学林学园艺学院，
雅安 621014)
收稿 2003-11-19
修定 2004-04-13
* E-mail:mylrd@
263.net,Tel:
0816-6332233
贴 梗 海 棠
( C h a e n o m e l e s
speciosa)品种云锦
幼叶和茎段
　　愈伤组织诱导
和继代培养基：(1)
MS+6-BA 1 mg·L-1
( 单位下同) + I A A
0.2；分化培养基：
(2)MS+6-BA 1+ IAA
0.1；生根培养基：
(3)MS+NAA 0.2。以上
培养基中加 0.6% 琼
脂；生根培养基中
蔗糖为 2%，其余为
3 % 。培养温度为
23~2 5℃，光照度
1 500~2 000 lx，光
照 10 h·d-1。
　　叶片和幼茎用70% 乙醇处理 20 s，0.1% 升汞溶液处理 5
min进行表面消毒以后无菌水冲洗4~5次。剔除叶片外沿和中
脉，切成 5 mm 见方的小片，接种于培养基(1)上诱导愈伤组
织产生；幼茎则切成约5 mm 的茎段接种。6~7 d 后出现愈伤
组织，出愈率为 100%。在继代中，部分愈伤组织转化为嫩
黄色，表面和中央的质地接近，取出这种愈伤组织并转移到
培养基(2)上。10 d 内，愈伤组织生长速度降低，颜色多样
化，边缘处呈绿色或黄色等；在 20~30 d 时，分化产生芽点
或芽丛；随后的 5~10 d 内即可长成 4~5 cm 高的再生苗。源
自幼茎的愈伤组织分化频率为10%，源自幼叶的愈伤组织分化
频率仅为 2%。再生植株长到 4~5 cm 高时，剔除干净周围的
愈伤组织，转移到培养基(3)上诱导生根，约20 d左右即可长
出3~4 cm 长的根。生根率为 40%。再生苗具有 2~3 条根时，
打开瓶口，在自然光下炼苗 2 d 后，小心洗去根部的琼脂，
移入花盆(培养基质为泥炭∶蛭石∶珍珠岩＝ 2∶1∶1，加
入少量的磷肥)。移栽成活率为 90%。3~5 d 后，贴梗海棠长
势旺盛。
范义莲* 万益琴 刘志
学(上海大学生命科学
学院，上海 200436)
收稿　2004-01-07
修定　2004-06-01
* E-mail:fanyilian
@sohu.com, Tel:
021- 66133577
植物组织培养简报摘编
植物生理学通讯 第 40卷 第 5期，2004年 10月594
植物材料和外植体 培养条件 结 果 作者(单位)
收稿 2003-10-23
修定 2004-03-22
* E-mail: lzr1205
@163.com,Tel:
0791-8442843
罗兆荣* 胡晓文 喻晚
之 洪香娇(南昌市蔬
菜科学研究所， 南昌
330001)
青花菜(Brassica
oleracea)品种“上
海 2 号”
花枝
　　诱导和增殖培养
基：(1)MS+6-BA 1.0
m g ·L- 1(单位下同) +
NAA 0.1；(2)MS+6-
BA 1.0+NAA 0.2；
(3)MS+6-BA 1.0+
NAA 0.5；(4)MS+6-
BA 0.5+NAA 0.1。
生根培养基：( 5 )
MS+NAA 0.2；(6)
1/2MS+NAA 0.2。
上述培养基均加 3%
蔗糖、0 . 7 % 琼脂，
pH 5.8。培养温度
(20±5)℃，光照 时
间12 h·d-1，光照度
为 1 500~2 000 lx。
　　剪取幼嫩花枝，流水洗净，用 75% 酒精灭菌 30 s，再
用0.1%升汞(加入1滴吐温 -40)消毒10 min，无菌水冲洗4~5
次。在无菌条件下，取0.5 cm 左右的花枝切块作为外植体接
种于培养基(1)~(4)中。7 d后，外植体切块边缘肿大，形成
白色的愈伤组织；20 d 后，愈伤组织变绿；40 d 后，从愈
伤组织上分化出丛芽。4 种培养基中，外植体在培养基(2)上
生长最好，表现为诱导率高、丛芽多、芽较健壮；在培养
基(1)上分化的丛芽也较多，但芽很纤细；培养基(3)和(4)上产
生的丛芽较少。将丛芽切成单芽，转入培养基(3)中进行培
养。当芽长成3~4 cm 的小苗时，切成带1~2个节的茎段接入
培养基(2)~(4)中进行增殖，每个叶腋可产生1~2个小芽。增
殖培养 20 d 继代 1 次。当芽长成 3 cm 左右健壮小苗时，进
行生根培养。将小苗切下，插入生根培养基，20 d 后，可
长出根，生根率 9 8 % 以上。移栽时，打开培养瓶盖，在室
温下炼苗 1 d，洗净根部的培养基，移栽于灭过菌的珍珠岩
中，注意保湿。10 d 后，浇 1/10MS 大量元素的营养液，20
d 后，小苗可成活，成活率 9 8 % 。
甜樱桃( P r u n u s
a vi um )矮化砧木
ZY-1
休眠枝条的芽
　　(1)丛生芽诱导
培养基：MS + 6 - B A
1.0 mg·L-1(单位下同)+
GA 1.0；(2)增殖培
养基：MS+6-BA 1.5+
IAA 1.0+GA 0.5；(3)壮
苗培养基：MS+IAA
1.2。以上培养基均
附加3% 蔗糖、0.6%
琼脂，pH为5.8。培
养温度(23±2)℃，光
照13 h·d-1，光照度
2 000 lx。
　　将休眠芽外面几层鳞片剥去，在无菌条件下用0.1% 升汞
浸泡 5 min，再用无菌水清洗 5 次，最后剥去芽的内层鳞片，
切取嫩芽接种在培养基(1)中进行丛生芽诱导培养。7 d后，芽
开始萌动；10 d 后，叶片伸出；22 d，芽长成 0.6 cm 左右
的新梢，并产生3~4个丛生芽。将丛生芽转入培养基(2)中进
行增殖培养，12 d 后增殖倍数为 4.6 倍，20 d 后为 6.1 倍，
24 d后为9.4倍。将高度大于1 cm的丛生芽转入培养基(3)中
进行壮苗培养，20 d 后高度达到 2.75 cm，且茎粗壮，叶色
深绿。将壮苗连同培养瓶移入温室，2 d 后揭开瓶盖，用遮
阳网遮阴 3 d，然后取出苗木，洗净基部培养基，栽入以泥
炭和腐叶土(体积比 1∶1)为培养介质的苗床中，栽植后用15
mg·L-1 IAA 浇灌诱导生根。栽植前2 d将苗床浇透水，12 h 后
用 0.05% CuSO4 溶液消毒；栽植后用小拱棚覆盖，以保持较高
而稳定的相对湿度，再覆盖遮阳网。15 d 后，成活率达 90%。
　　本文所用材料樱桃矮化砧木ZY-1系中国农业科学院郑州果
树研究所从意大利引进。其与甜樱桃嫁接亲和力极强，成活
率高，3 年可进入结果期。
刘仁道1,* 廖明安2(1西
南科技大学生命科学
与工程学院，绵阳
621010；2 四川农业
大学林学园艺学院，
雅安 621014)
收稿 2003-11-19
修定 2004-04-13
* E-mail:mylrd@
263.net,Tel:
0816-6332233
贴 梗 海 棠
( C h a e n o m e l e s
speciosa)品种云锦
幼叶和茎段
　　愈伤组织诱导
和继代培养基：(1)
MS+6-BA 1 mg·L-1
( 单位下同) + I A A
0.2；分化培养基：
(2)MS+6-BA 1+ IAA
0.1；生根培养基：
(3)MS+NAA 0.2。以上
培养基中加 0.6% 琼
脂；生根培养基中
蔗糖为 2%，其余为
3 % 。培养温度为
23~2 5℃，光照度
1 500~2 000 lx，光
照 10 h·d-1。
　　叶片和幼茎用70% 乙醇处理 20 s，0.1% 升汞溶液处理 5
min进行表面消毒以后无菌水冲洗4~5次。剔除叶片外沿和中
脉，切成 5 mm 见方的小片，接种于培养基(1)上诱导愈伤组
织产生；幼茎则切成约5 mm 的茎段接种。6~7 d 后出现愈伤
组织，出愈率为 100%。在继代中，部分愈伤组织转化为嫩
黄色，表面和中央的质地接近，取出这种愈伤组织并转移到
培养基(2)上。10 d 内，愈伤组织生长速度降低，颜色多样
化，边缘处呈绿色或黄色等；在 20~30 d 时，分化产生芽点
或芽丛；随后的 5~10 d 内即可长成 4~5 cm 高的再生苗。源
自幼茎的愈伤组织分化频率为10%，源自幼叶的愈伤组织分化
频率仅为 2%。再生植株长到 4~5 cm 高时，剔除干净周围的
愈伤组织，转移到培养基(3)上诱导生根，约20 d左右即可长
出3~4 cm 长的根。生根率为 40%。再生苗具有 2~3 条根时，
打开瓶口，在自然光下炼苗 2 d 后，小心洗去根部的琼脂，
移入花盆(培养基质为泥炭∶蛭石∶珍珠岩＝ 2∶1∶1，加
入少量的磷肥)。移栽成活率为 90%。3~5 d 后，贴梗海棠长
势旺盛。
范义莲* 万益琴 刘志
学(上海大学生命科学
学院，上海 200436)
收稿　2004-01-07
修定　2004-06-01
* E-mail:fanyilian
@sohu.com, Tel:
021- 66133577
植物组织培养简报摘编