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Floral Organs Tissue Culture and Rapid Propagation Technology of Lilium longiflorum×L.asiatic Hybrid ‘Eyeliner’

LA系列百合‘Eyeliner’花器官组培快繁技术研究



全 文 :书西北植物学报!
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"
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!"#$%&#%&()$*+,""-.)/#0-/
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文章编号$
#""")$"!*
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%
.
,/001,#""")$"!*,!"#$,"&,#&$
收稿日期$
!"#$)"$)#$
&修改稿收到日期$
!"#$)"-)##
基金项目$辽宁省农业攻关项目"
!"##!#*""%
#&沈阳农业大学
!"#%
年度大学生创新创业训练计划项目
作者简介$张
!
杰"
#&-(
#!女!在读硕士研究生!主要从事观赏植物栽培生理研究
"
通信作者$孙红梅!博士!教授!主要从事观赏植物栽培生理与生物技术研究
2)34/5
$
6376
!
0/14,893
$%
系列百合(
&

()#*(+
)花器官组培快繁技术研究

!
杰!李
!
洋!孙红梅"
"沈阳农业大学 园艺学院!设施园艺省部共建教育部重点实验室!辽宁省设施园艺重点实验室!沈阳
##"#+#
#

!
要$该试验以
:;
系列百合(
2
<
=5/1=>
)花器官为外植体!通过不定芽直接诱导和愈伤组织再分化
!
种途径!建立
了花器官组培快繁技术体系结果表明$以花器官为外植体污染率接近于
"
&
$
种百合花器官诱导从易到难的顺序
为花梗*花丝*子房和花柱&花丝易诱导愈伤组织!花梗易诱导不定芽!最适诱导培养基均为
?@A#,"3
B
+
:
(#
+)
C;A",*3
B
+
:
(#
D;;
&不定芽增殖最佳培养基为
?@A!,"3
B
+
:
(#
+)C;A",!3
B
+
:
(#
D;;
!愈伤组织分化
最佳培养基为
?@A#,*3
B
+
:
(#
+)C;A",!3
B
+
:
(#
D;;
&诱导生根最佳培养基为
?@A$*
B
+
:
(#蔗糖&最佳
炼苗方式为将组培苗封口放置在自然环境中
%E
!然后开口放置在自然环境条件下
!E
&当试管苗鳞茎大小为
%,#*
83
时!移栽成活率最高&移栽最佳基质为草炭
F
蛭石
F
珍珠岩
G!F#F#

关键词$百合&花器官&组培快繁
中图分类号$
H#%,#
A
%
文献标志码$
;
,)"+-).+
/
-*01#002(32)42+(-*!5-
6
#!7+"
6
-
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4
-
5
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B
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41
B
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B
>/8S5RS>45O1/T=>0/R
<
!
J9>R/8S5RS>=U=
<
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<
9Q?/1/0R>
<
9Q2ES84R/91
!
U=
<
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>
<
9QV>9R=8R=EJ9>R/8S5RS>=9Q:/491/1
B
V>9T/18=
!
@6=1
<
41
B
##"#+#
!
P6/14
#
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$
W/R6R6=Q59>459>
B
4109Q
(
2
<
=5/1=>
)
40=X
Y
541R0
!
Z==0R475/06=E4>4
Y
/EQ59>459>
B
41
Y
>9
Y
4
B
4R/91
R=861959
B<
T/44ET=1R/R/9S07SE0/1ES8R/9141E845S0>=E/QQ=>=1R/4R/91,[6=>=0S5R0069Z=ER64R
$
R6=891)
R43/14R/91>4R=Z40"41ER6=/1ES8/1
B
47/5/R/=09QE/QQ=>=1R
Y
4>R09QQ59>459>
B
41Z=>=E/QQ=>=1R
!
R6=/>0=)
S=18=
!
Q>93=40
<
R964>E
!
Z40
Y
=E/8=5
!
Q/543=1R
!
9T4>
<
41E0R
<
5=,P45S041E4ET=1R/R/9S00
Y
>9SR0Z40=QQ/)
8/=1R5
<
/1ES8=EQ>93!"#!$%&Q/543=1R40Z=540
Y
=E/8=591?@3=E/S34
YY
=1E=EZ/R6#,"3
B
+
:
(#
+)C;
41E",*3
B
+
:
(#
D;;,[6=4
YY
>9
Y
>/4R=3=E/S3Q9>4ET=1R/R/9S07SE03S5R/
Y
5/84R/91Z40?@A!,"3
B
+
:
(#
+)C;A",!3
B
+
:
(#
D;;
!
41E?@0S
YY
5=3=1R=EZ/R6#,*3
B
+
:
(#
+)C;A",!3
B
+
:
(#
D;;Z40
R6=9
Y
R/3S33=E/S3Q9>845S0E/QQ=>=1R/4R/91,[6=4
YY
>9
Y
>/4R=3=E/S3Q9>!"#!$%&>99R41E7S57Q9>34)
R/910Z40?@A$*
B
+
:
(#
0S8>90=,[6=9
Y
R/3S3Z4
<
9Q4885/34R/]4R/9140Q959Z0
$
Y
548/1
B
R6=0=45=E
Y
541R)
5=R0/114RS>45=1T/>913=1RQ9>%E4
<
0
!
41ER6=1=X
Y
90/1
B
R6=3Q9>!E4
<
0,[6=6/
B
6=0R0S>T/T45>4R=>=486=E
Z6=1R6=7S570/]=Z40%,#*83,[6=0S/R475=R>410
Y
541R4R/9134R>/XZ40
Y
=4RFT=>3/8S5/R=F
Y
=>5/R=G
!F#F#,
>(

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$
5/5
<
&
Q59>459>
B
410
&
R/00S=8S5RS>=41E>4
Y
/E
Y
>9
Y
4
B
4R/91
!!
:;
系列百合为亚洲百合"
!(!)*+,!+$!-6
<
)
7>/E0
#与麝香百合"
.(&"
/
!
0
(&%)*
#的杂交后代!由
于综合了
!
个亲本的优良性状!具有花大色艳*花枝
坚挺*花香淡雅*抗病性强及栽培管理简单等特
点,#)!-国内外对
:;
系列百合切花的生产和消费
一直高速发展!但中国
:;
系列百合种球一直依赖
进口!品种较为单一因此建立
:;
系列百合种球
繁殖体系对于中国百合产业的发展具有重要意义
(
2
<
=5/1=>
)为
:;
系列百合中的优良品种!其花大而
优美!花朵白色具光泽!花瓣内壁有稀疏红色斑点!
外围有紫色花边!花期长!香味淡雅!叶色亮绿!植株
高且茎秆粗壮!观赏价值极高,!-"图版
"
!
#
#目前
有关于(
2
<
=5/1=>
)组培快繁的报道!均集中在鳞片
诱导上!存在污染率高!诱导率低!未能诱导出愈伤
组织等问题,%)$-以花器官作为外植体!具有污染率
低!不携带病毒!取材对鳞茎无损耗等优点,*)+-对
于百合组培快繁技术的报道!不同品种*培养基*取
材部位*取材时间和植物生长调节剂等使诱导率均
有所不同,-)##-但有关
:;
系列百合花器官组织培
养未见报道本试验通过选取不同花器官*取材时
间*激素配比等!建立(
2
<
=5/1=>
)快速高效再生技术
体系!为
:;
系列百合及其他百合组织培养技术奠
定基础!以解决百合种球繁殖问题提供依据
#
!
材料和方法
@,@
!
试验材料

!"#!

+

!%
日!沈阳农业大学科研基地
日光温室内!选取(
2
<
=5/1=>
)生长健壮*无病虫害且
刚抽出未显色的成熟花蕾!蕾长约
$83

@,A
!
试验方法
@,A,@
!
预处理
!
将花蕾用流动水冲洗
%"3/1
!然
后用
-"^
酒精浸泡
%"0
!
",#^ J
B
P5
!
浸泡
$3/1
!
无菌水冲洗
%3/1
!冲洗
*
次将花柱*花丝*花梗*
子房从花蕾上剥离并切成
*33
长的小块!待接种
@,A,A
!
花器官初代培养
!
以花梗*花丝*花柱*子房
为外植体!将花器官切块接种于添加不同浓度"
,!

",*3
B
+
:
(#
#
D;;
*不同浓度"
#,"
*
#,*

!,"
3
B
+
:
(#
#
+)C;

?@
培养基上!采用完全随机试
验设计共
+
个处理!每处理
#"
瓶!每瓶
*
个外植
体!重复
%
次以
?@
为基本培养基!并附加
%"
B
+
:
(#蔗糖!
-
B
+
:
(#琼脂!
Y
J*,

#!#_
高压灭

!"3/1
培养室温度为"
!*` #
#
_
!每天
#+6

照!
6
黑暗!光照强度为
%+
#
395
+
3
(!
+
0
(#


-E
后开始观察并统计各花器官的污染率!
$*E
后统计不定芽诱导率和愈伤组织启动率
@,A,B
!
不定芽及愈伤组织的继代培养
!
将初代培养
诱导的不定芽接种于添加不同浓度"
,!

",*3
B
+
:
(#
#
D;;
*不同浓度"
#,*
*
!,"3
B
+
:
(#
#
+)C;

?@
培养基中!采用完全试验设计单芽接!即将不定芽
丛按单芽切下!分别接种每瓶接种
$
块!每个处理
#*
瓶!
$*E
后统计不定芽的诱导率和扩繁系数将
不同外植体诱导的愈伤组织切成约
",*83
! 的小块!
接于愈伤组织最适诱导培养基中进行增殖!将诱导并
增殖后的愈伤组织约
",*83
! 切块接于含不同浓度
配比的
+)C;
"
#,"

#,*3
B
+
:
(#
#和
D;;
"
,!

",*3
B
+
:
(#
#中!采用完全试验设计!每瓶接种
$
块!每个处理
#*
瓶!
$*E
后调查愈伤组织分化情况
并统计愈伤组织分化率及分化系数
@,A,C
!
生根培养
!
将直径大于
#83
的均匀小鳞
茎分别接种在添加不同浓度"
,*

#,"3
B
+
:
(#
#
D;;

?@

#
%
!?@
培养基中!
%"E
后统计生根
数*生根率及根长将不定芽接种在添加不同浓度
"
%"
*
$*

+"
B
+
:
(#
#蔗糖的
?@
培养基上!用于小
鳞茎的膨大及生根培养!
%"E
后统计小鳞茎的周
径*生根数*生根率及根长
@,A,D
!
组培苗的炼苗移栽
!
将组培苗进行不同方
式炼苗!炼苗后进行根部清洗!基质用多菌灵消毒后
对组培苗进行移栽!注意适当遮荫并及时喷水
!
#
"炼苗最佳方式的确定
!
将组培苗进行
%

方式进行炼苗!每个处理
%"
个植株!观察组培苗的
生长及污染情况处理
#
!将封口的组培苗放置在
自然环境中
*E
进行炼苗&处理
!
!将敞口的组培苗
放置在自然环境中
*E
进行炼苗&处理
%
!将封口的
组培苗放置在自然环境中
%E
!然后敞口放置在自然
环境条件下
!E
进行炼苗
!"移栽基质对组培苗生长及成活率的影响
!
将组培苗分别放置在以下几个基质中!每个处理
%"
个植株!
%"E
后统计组培苗的成活率!观察组培苗
的长势基质一$草炭
F
珍珠岩
F
蛭石
G!F#F#
&
基质二$草炭
F
珍珠岩
G#F#
&基质三$草炭
F
蛭石
G#F#
&基质四$蛭石
F
珍珠岩
G#F#

!
%
"不同鳞茎大小对组培苗生长及成活率的影

!
将组培鳞茎分为.大/*.中/*.小/
%
个规格!
.大/鳞茎的平均周径为
%,#*83
&.中/鳞茎的平均
周径为
!,**83
&.小/鳞茎的平均周径为
#,"83

每个规格
%"
个植株!
%"E
后统计组培苗的成活率!
观察组培苗的长势
@,B
!
数据统计及分析方法
不定芽诱导率
G
产生不定芽的外植体数%接种
外植体总数
a#""^
&愈伤组织诱导率
G
产生愈伤组
织的总数%接种外植体总数
a#""^
&不定芽增殖系

G
增殖后不定芽总数%增殖前不定芽总数&愈伤组
织分化率
G
分化产生不定芽的愈伤组织数%接种愈
伤总数
a#""^
&生根率
G
生根外植体数%接种外植
*&#
&

!!!!!!!!!!!!

!
杰!等$
:;
系列百合(
2
<
=5/1=>
)花器官组培快繁技术研究
体总数
a#""^
各处理之间差异显著性均采用
@V@@@R4R/0R/80#-,"
软件分析
!
!
结果与分析
AE@
!
F%%

GHI%
对不同花器官初代培养的影响
花梗在接种
#*E
后!体积膨大为原来的
$
倍!
花梗两端的切口处开始诱导出浅绿色的不定芽"图

"
!#!部分花梗在切口处诱导出愈伤组织&花丝
在接种
!"E
后!体积膨大到原来的
$
$
*
倍!在两端
切口处开始诱导出浅绿色粒状的愈伤组织"图版
"
!
%
#!部分花丝在切口处诱导出浅绿色的不定芽&花柱
和子房所需诱导时间较长!接种
%"E
后花柱体积膨
大到原来的
+
$
-
倍!开始诱导出不定芽和愈伤组织
"图版
"
!
$
#&子房在接种
+"E
后严重褐化!变为棕
褐色!开始诱导出浅绿色不定芽和粒状愈伤组织"图

"
!
*
#
$
个花器官的污染率都很低!接近于
"
由表
#
可知!花梗的不定芽诱导率最高!
$
号处理诱导率最
高可达
&%,%#^
!与其他处理差异极显著由表
!
可知!花丝的愈伤组织诱导率最高!
$
号处理诱导率
最高可达
+,+-^
!与其他处理差异极显著由表
#

!
可知!子房的不定芽及愈伤组织诱导率均低于
*"^
!
#
号处理均达到最大值!分别为
$$,%$^

*#,!^
花柱的不定芽及愈伤组织诱导率较低!其
+
号处理最高!分别为
$$,""^

%+,""^
由此可
知!
$
种花器官初代诱导率从高到低依次为$花梗*
花丝*子房*花柱&花梗易诱导不定芽!花丝易诱导愈
伤组织!花梗和花丝初代诱导最佳培养基相同!均为
?@A#,"3
B
+
:
(#
+)C;A",*3
B
+
:
(#
D;;

AEA
!
不同浓度
F%%

GHI%
对不定芽扩繁及愈伤
组织增殖分化的影响
AEAE@
!
不定芽的扩繁
!
!"E
后接种于继代培养基
中的不定芽开始丛生出新的不定芽"图版
"
!
+
#由

%
可以看出!
%
号和
$
号处理不定芽诱导率和扩
繁系数均极显著高于
#
号和
!

%
号培养基不定
芽诱导率和扩繁系数达到最大值!分别为
&#,"-^

$,+&
因此
+)C;
%
D;;
最大为
#"
时!有利于不
定芽扩繁!
%
号培养基
?@A!,"3
B
+
:
(#
+)C;A
",!3
B
+
:
(#
D;;
为不定芽扩繁最佳培养基
A,A,A
!
愈伤组织增殖及分化
!
在继代培养后
%"E
左右!愈伤组织体积增值为原来的
%
倍"图版
"
!
-
#!
并开始分化形成不定芽"图版
"
!

#由表
$
可以看
出!
%
号培养基分化率和分化系数均达到最大值!分
别为
%,-!^

%,"
!分化系数极显著高于其他处
理因此
?@A#,*3
B
+
:
(#
+)C;A",!3
B
+
:
(#
D;;
!即
+)C;
%
D;;

-,*
时!有利于愈伤组织的
分化
A,B
!
不同处理因素对生根的影响
A,B,@
!
蔗糖浓度对百合试管苗生根的影响
!
接种
#*E
时!组培苗的鳞茎变大"图版
"
!
##
#且底部逐
渐分化形成不定根!不定根粗且长"图版
"
!
&
#如

*
所示!
!
号和
%
号处理的生根率达到
#""^
&
!

@
!
不同浓度
GHI%
*
F%%
对不同花器官不定芽诱导率的影响
[475=#
!
M1Q5S=18=9QE/QQ=>=1R8918=1R>4R/9109Q+)C;41ED;;917S575=R/1ES8=3=1R
处理编号
P9E=
D;;
%"
3
B
+
:
(#
#
+)C;
%"
3
B
+
:
(#
#
不定芽诱导率
CS575=R/1ES8=3=1R
%
^
花梗
V=E/8=5
花丝
b/543=1R
花柱
@R
<
5=
子房
cT4>
<
# ",! #," ++,%%8P ,%$8P !&,!"7C $$,%$4;
! ",* #,* -*,$!7C !*,"+7C !",""8P %!,#+7C
% ",! !," ",%+7C !,$*7C !$,+"8C !%,+8P
$ ",* #," &%,%#4; ",""Ed %!,""7C %*,&-7C
* ",! #,* -#,$!7C $!,$-4; !$,""8C !,#!8C
+ ",* !," +",%%8P %-,#*4; $$,""4; %&,%4;

A
!
不同浓度
GHI%
*
F%%
对不同花器官愈伤组织诱导率的影响
[475=!
!
M1Q5S=18=9QE/QQ=>=1R8918=1R>4R/9109Q+)C;41ED;;91845S0/1ES8=3=1R
处理编号
P9E=
D;;
%"
3
B
+
:
(#
#
+)C;
%"
3
B
+
:
(#
#
愈伤组织诱导率
P45S0/1ES8=3=1R
%
^
花梗
V=E/8=5
花丝
b/543=1R
花柱
@R
<
5=
子房
cT4>
<
# ",! #," *,$!7C -!,"!8P !",+"7C *#,!4;
! ",* #,* *,"%7C ","+7C #$,+"8P %+,!%8C
% ",! !," ",""8P *+,%-Ed ,""Ed !-,--8C
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* ",! #,* #",$!4; *,%Ed #+,""8P %!,$%8P
+ ",* !," %,$7C $-,-=2 %+,""4; $$,!&7C
+&#
西
!

!

!

!

!

!!!!!!!!!!!!!!!!!!!
%$

号处理根长最长!为
!,"+83
&
%
号处理的根数最多!

+,"-

!
号和
%
号处理的周径*生根率*根长
和生根数均极显著高于
#
号!但
!
呈与
%
号间差异
不显著综合考虑根的长势及生产成本!
?@A$*
3
B
+
:
(#蔗糖为诱导生根的最佳培养基!其具有生
根率高*根数多*根粗壮且长!移栽成活率高的优点
A,B,A
!
不同培养基及激素浓度对百合试管苗生根
的影响
!
由表
+
可知!
?@
培养基诱导生根数量多!
分别达到
##

#%
条!但其根细且长势弱!根部发生
膨大变态"图版
"
!
#"
#!移栽成活率低&不同的处理
对于生根率的影响相同!均能达到
#""^
&在添加
",*
B
+
:
(#
D;;

#
%
!?@
中!其根长为
#,&-83
!
平均根数约

条!根的长势优于其他处理
A,C
!
炼苗移栽
由图
#
可知!不同炼苗方式对成活率影响差异
很大!其中处理
%
"图版
"
!
#!
#的成活率显著高于其
他处理!处理
#
"图版
"
!
#%
#由于开口时间较长!炼
苗过程中部分组培苗出现污染且成活率低因此!
处理
%
将组培苗封口放置在自然环境中
%E
!然后开
口放置在自然环境条件下
!E
为最佳的炼苗方式
由图
#
可知!不同基质对移栽成活率的影响差
异也很大!基质
#
"图版
"
!
#$
#和基质
%
"图版
"
!
#+
#
的成活率高达
&"^
以上!极显著高于基质
!
"图版
"
!
#*
#和
$
"图版
"
!
#-
#由此可以看出基质对于
成活率影响很大!基质
#
草炭
F
珍珠岩
F
蛭石
G
!F#F#
为最佳移栽基质
由图
#
可知!鳞茎大小对鳞茎成活率有重要影
响!.大/鳞茎"图版
"
!
#
#成活率最高可达
#""^
!
而.小/鳞茎 "图版
"
!
"
#成活率仅为
+*^
!二者差
异极显著因此!随着鳞茎增大!其成活率呈上升趋
势!当鳞茎周径达到
%,#*83
时!其成活率可达
#""^


B
!
不同浓度
GHI%

F%%
对不定芽扩繁的影响
[475=%
!
M1Q5S=18=9QE/QQ=>=1R8918=1R>4R/9109Q
+)C;41ED;;917S575=R/1ES8=3=1R
处理编号
P9E=
D;;
%"
3
B
+
:
(#
#
+)C;
%"
3
B
+
:
(#
#
不定芽诱导率
M1ES8R/T/R
<
>4R=
%
^
扩繁系数
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Y
>9
Y
4
B
4R/91
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$ ",* !," $,+$7C $,#-4;

C
!
不同浓度
GHI%

F%%
对愈伤组织分化的影响
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M1Q5S=18=9QE/QQ=>=1R8918=1R>4R/9109Q+)C;41ED;;91R6=E/QQ=>=1R/4R/919Q845S0
处理编号
P9E=
D;;
%"
3
B
+
:
(#
#
+)C;
%"
3
B
+
:
(#
#
愈伤组织分化率
M1ES8R/T/R
<
>4R=
%
^
分化系数
P9=QQ/8/=1R9Q
E/QQ=>=1R/4R/91
不定芽长势
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B
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# ",! #," *&,**8P #,&*8C
少量不定芽
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! ",* #," ++,--7C !,!%7C
少量不定芽
;0345439S1R9Q7S575=R0
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不定芽多且长势好
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B
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B
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长势好
W=5
B
>9ZR6

D
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不同蔗糖浓度对生根影响
[475=*
!
M1Q5S=18=9QE/QQ=>=1R8918=1R>4R/9109Q0S8>90=91>99R/1
B
处理编号
P9E=
蔗糖浓度
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%"
B
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:
(#
#
周径
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%
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生根率
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B
>4R=
%
^
根长
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B
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%
83
根数
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! $* !,*$4; #""4; !,"+4; *,-"4;
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不同培养基及激素浓度对生根的影响
[475=+
!
M1Q5S=18=9QE/QQ=>=1R3=E/441E8918=1R>4R/9109Q0S8>90=91>99R/1
B
处理编号
P9E=
培养基及激素浓度
?=E/S341E69>391=8918=1R>4R/91
%"
B
+
:
(#
#
生根率
e99R/1
B
>4R=
%
^
平均根长
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B
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%
83
根数
e99R1S37=>
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)花器官组培快繁技术研究

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!
不同处理对组培苗移栽成活率的影响
存放自然环境不同形式$
#,
封口
*E
&
!,
敞口
*E
&
%,
先封口
%E
再开口
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珍珠岩
F
蛭石
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!,
草炭
F
珍珠岩
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草炭
F
蛭石
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珍珠岩
F
蛭石
G
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周径
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Y
=>5/R=G#F#
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"
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#
%
!

!

外植体是影响组培快繁成功与否的重要因素!
不仅要考虑外植体大小!同时还需兼顾外植体来源*
类型等
:/S
等,$-在(
2
<
=5/1=>
)组培试验中发现!以
鳞片为外植体的污染率最高可达
+^
!最低的也达

#^
(
2
<
=5/1=>
)成熟花蕾长度可达
#",!83

右!本试验选用的花蕾大小为
$83
!此时各个花器
官均已成型!且花蕾处于完全闭合状态!污染率为
"
!成功解决了组培苗生产过程中污染率高的问题
张伟等,%-以(
2
<
=5/1=>
)鳞片为外植体研究发现!大部
分鳞片诱导不定芽!只有内层鳞片在切口处能够形
成愈伤组织!而且易褐化
;E43
等,#!-以百合(
d9)
>
<
41R6=0=X8=504P9>>g4
)的芽为外植体!成功诱导
出愈伤组织!但其诱导率仅为
$+,!^
本试验选取
花器官为外植体成功诱导出不定芽和愈伤组织!诱
导率分别高达
&%^

+,+-^
!组培过程中不易褐
变!且具有利用率高和对鳞茎无损耗的极大优点
不同器官初代诱导差异很大杨威红等,*-研究
表明!花托易产生愈伤组织!且愈伤组织诱导难易顺
序为$花托*花柱*花瓣*花梗刘丽敏等,#%-在研究
花器官组织培养过程中发现不同部位的诱导率存在
差异!从易到难的排序为花丝*花托*子房*花冠*花
柱*花药钟海丰等,#$-在新铁炮百合组培中发现!
*
种花器官均能直接诱导产生不定芽!其诱导能力大
小为花托
#
花梗
#
花丝
#
花瓣*花柱本研究发现!
花器官诱导率从高到低依次为花梗*花丝*子房*花
柱&花梗易诱导不定芽!花丝易诱导愈伤组织!子房
和花柱的诱导率很低
;E/04V
等,#*-以
!(!)*
1&,"!+-)*
的鳞片和叶片为外植体!在添加
",*
3
B
+
:
(#
+)C;A",!3
B
+
:
(#
MC;

",*3
B
+
:
(#
[dIA",!3
B
+
:
(#
D;;
的培养基中均能诱
导出不定芽!而叶片仅在
+)C;AMC;
的培养基中才
能诱导出不定芽本研究在初代诱导过程中发现!
不同部位的最佳诱导培养基均为
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B
+
:
(#
+)C;A",*3
B
+
:
(#
D;;

百合组织培养往往用添加
D;;

#
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培养基进行生根张伟等,%-认为
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3
B
+
:
(#
D;;
为(
2
<
=5/1=>
)生根的最佳培养基
而通过本研究发现!(
2
<
=5/1=>
)在添加不同浓度
D;;

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#
%
!?@
培养基中诱导生根!小鳞茎
生根数量高达十几条!根部发生膨大变态!根细弱并
长出大量根毛!移栽成活率极低!因此这种培养基并
不适于生根&仅通过增加蔗糖量!即能成功在
?@

养基中生根!鳞茎不但迅速增大!且生根效果很好!
根长且粗壮!移栽成活率也很高
参考文献!
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基质中的移栽苗&
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草炭
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蛭石
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