全 文 :植物病理学报
ACTA PHYTOPATHOLOGICA SINICA 44(4): 414 ̄421(2014)
收稿日期: 2012 ̄12 ̄12ꎻ 修回日期: 2013 ̄09 ̄17
基金项目: 国家重点基础研究发展计划 (2011CB100403、2013CB127700)、“十一五”科技支撑计划 (2012BAD19B04) 和公益性行业(农
业)科研专项 (201303016)
通讯作者: 段霞瑜ꎬ研究员ꎬ博士生导师ꎬ主要从事分子植物病理学研究ꎻE ̄mail:xyduan@ ippcaas.cn
第一作者: 石琳ꎬ女ꎬ甘肃张掖人ꎬ硕士研究生ꎬ主要从事小麦白粉病群体研究ꎻE ̄mail:shilin_540689@163.comꎮ
doi:10.13926 / j.cnki.apps.2014.04.010
甘肃南部小麦白粉菌群体的毒性及多基因片段分析
石 琳1ꎬ2ꎬ 段霞瑜2∗ꎬ 高 洁1ꎬ 周益林2ꎬ 曹世勤3ꎬ 张 勃3
( 1吉林农业大学ꎬ长春 130118ꎻ 2中国农业科学院植物保护研究所ꎬ植物病虫害生物学国家重点实验室ꎬ北京 100193ꎻ
3甘肃省农业科学院植物保护研究所ꎬ兰州 730070)
摘要:为了解甘肃小麦白粉病菌的毒性变化动态及其群体遗传结构ꎬ利用毒性监测及多基因家系法ꎬ对采自甘肃省大陇南地
区陇南、天水两市的 49个小麦白粉菌的单孢子堆分离物进行群体遗传结构研究ꎮ 毒性监测结果显示:供试菌株对抗病基因
Pm12、Pm16、Pm18、Pm21的毒性频率均低于 10%ꎬ表明上述抗病基因可以在育种和生产中继续使用ꎻ近些年定名的抗病基因
Pm23、Pm25、Pm30、Pm34、Pm35的毒性频率为 35%~95%ꎬ并在陇南、天水两市间存在差异ꎬ说明这些基因的利用需要慎重ꎻ对
Pm4b的毒性频率已大幅度上升ꎻ在相似系数为 0.752时ꎬ除 11号菌株之外ꎬ其余聚为四类ꎮ 选择 AOX、EFA、PKA、PPA、TUB
五个基因片段对供试菌株的多基因家系分析表明:基因序列聚为两类ꎬ病菌在陇南、天水两市间及各县市间存在传播ꎮ 甘肃省
大陇南地区病菌毒性多态性较高ꎻ白粉菌在各地区间存在交流的同时ꎬ也存在一定的独立进化ꎮ
关键词:毒性监测ꎬ多基因家系ꎬ群体遗传结构
Virulence and multigene analyses of the wheat powdery mildew population in
Southern Gansu SHI Lin1ꎬ2ꎬ DUAN Xia ̄yu2ꎬ GAO Jie1ꎬ ZHOU Yi ̄lin2ꎬ CAO Shi ̄qin3ꎬ ZHANG Bo3
( 1Jilin Agricultural Universityꎬ Changchun 130118ꎻ2State Key Laboratory for Biology of Plant Disease and Insect Pestsꎬ Institute of
Plant Protectionꎬ CAASꎬ Beijing 100193ꎻ3Institute of Plant Protectionꎬ Gansu Academy of Agricultural Sciencesꎬ Lanzhou 730070)
Abstract: To understand the virulence dynamics and the molecular genetic structure of the wheat powdery
mildew population (Blumeria graminis f.sp. tritici) in Southern Gansuꎬ virulence and multigene genealogy of 49
powdery mildew isolates collected from Southern Gansu were analyzed. It was shown that the virulence
frequency of wheat powdery mildew to resistance genes Pm12ꎬ Pm16ꎬ Pm18 and Pm21 was less than 10%ꎬ
indicating that these genes could be used for resistance breeding. The virulence frequencies of Pm23ꎬ Pm25ꎬ
Pm30ꎬ Pm34 and Pm35 were high (35%-95%)ꎬ with difference in Longnan and Tianshuiꎬ which indicated that
we should be very cautious in using these genes. The virulence frequency of Pm4b increased sharply. The
powdery mildew isolates were divided into four groups except isolate 11ꎬ with a similarity index of 0.752. Gene
fragment from alternative oxidase (AOX)ꎬ elongation factor-1α (EFA)ꎬ protein kinase A (PKA)ꎬ protein
phosphatase type 2A (PPA) and β ̄tublin (TUB) were used for multigene genealogical analysis. The result
showed that the isolates could be grouped into two knots. The pathogen dispersal existed between the two cities.
There was independent evolution although interchanges existed between in the two cities.
Key words: virulence analysisꎻ multigene genealogyꎻ population genetic structure
中图分类号: S435.121 文献标识码: A 文章编号: 0412 ̄0914(2014)04 ̄0414 ̄08
小麦白粉病是小麦上的一种重要病害ꎬ在我国
主产麦区均有发生ꎮ 其致病菌小麦白粉菌(Blume ̄
ria giaminis f.sp. tritici)存在有性和无性世代ꎬ其无
性世代可在寄主上进行多代繁殖ꎬ产生大量的分生
孢子ꎮ 当存在大量感病寄主及环境条件适宜时ꎬ通
过气流传播的分生孢子可侵染小麦ꎬ病害发生严重
4期 石琳ꎬ等:甘肃南部小麦白粉菌群体的毒性及多基因片段分析
时可造成大流行并导致严重的经济损失[1]ꎮ 小麦白
粉病的防治主要通过应用品种抗病性和使用化学农
药ꎬ而化学农药长期使用除耗费大量人力物力及引
起病菌抗药性外ꎬ还能造成环境污染[2]ꎮ 小麦白粉
病是典型的符合 Flor“基因对基因”假说的病害体
系[3]ꎬ小麦白粉菌还存在有性重组ꎬ具有高度的变异
性ꎬ抗病品种利用的有效性就与病原菌群体的变异
形成了密切的关系ꎬ即品种抗性易受病菌群体中优
势毒性更替的影响ꎬ被新的毒性克服而“丧失”抗
性[4]ꎮ 因此ꎬ加强小麦白粉菌群体遗传结构的研究ꎬ
可为抗病育种及品种布局提供有力依据ꎮ
研究白粉菌群体结构的方法很多ꎬ传统的毒性
监测采用一套已知抗病基因的品种ꎬ根据“基因对基
因”学说ꎬ能够直观地看出各病菌对不同抗病基因的
毒性频率ꎬ以此来评价各抗病基因的有效性及其在
育种中的价值ꎬ为抗病育种提供指导ꎮ 但由于小麦
白粉菌为专性寄生菌ꎬ需要在活体上繁殖、鉴定ꎬ非
常耗时费力ꎮ 因此ꎬ随着分子生物学技术的发展ꎬ包
括 RAPD、SSR、ISSR、AFLP在内的多种分子标记技
术在白粉病菌的群体研究中得到了应用[5 ~ 9]ꎮ 本研
究利用毒性分析方法对采自甘肃南部的 49 个供试
小麦白粉菌菌株的毒性多态性进行了研究ꎬ揭示了
其毒性现状ꎬ并利用多基因家系分析ꎬ选择 alterna ̄
tive oxidase (AOX)、elongation factor - 1α (EFA)、
protein kinase A ( PKA)、 protein phosphatase type
2A(PPA)、β-tubulin(TUB)共 5 个基因片段ꎬ对
甘肃南部小麦白粉菌群体的遗传结构进行研究ꎬ
对小麦白粉菌在甘肃省部分地区之间的传播进
行了分析ꎮ
1 材料与方法
1.1 试验材料
试验采用的 49个小麦白粉菌菌株采自甘肃南
部的天水、陇南两市的9个县(市)(表1)ꎬ由中国农
Table 1 The tested wheat powdery mildew isolates in the study
Code Isolate Source Code Isolate Source
1 09-16-1-① Qinzhouꎬ Tianshui 26 Zi 09-16-5-1-② Chengxianꎬ Longnan
2 09-16-2-1-① Lixiangꎬ Longnan 27 Zi 09-16-5-2-① Chengxianꎬ Longnan
3 09-16-3-1-① Xiheꎬ Longnan 28 Zi 09-16-5-2-③ Chengxianꎬ Longnan
4 09-16-4-1-① Chengxianꎬ Longnan 29 Zi 09-16-5-2-④ Chengxianꎬ Longnan
5 09-16-4-2-① Chengxianꎬ Longnan 30 Zi 09-16-5-3-① Chengxianꎬ Longnan
6 09-16-5-1-① Chengxianꎬ Longnan 31 Zi 09-16-5-3-② Chengxianꎬ Longnan
7 09-16-5-2-① Chengxianꎬ Longnan 32 Zi 09-16-6-1-① Ganguꎬ Tianshui
8 09-16-5-3-① Chengxianꎬ Longnan 33 Zi 09-16-6-1-② Ganguꎬ Tianshui
9 09-16-6-1-① Wuduꎬ Longnan 34 Zi 09-16-6-2-① Ganguꎬ Tianshui
10 09-16-7-① Qinzhouꎬ Tianshui 35 Zi 09-16-6-2-② Ganguꎬ Tianshui
11 09-16-8-1-① Ganguꎬ Tianshui 36 Zi 09-16-6-3-① Ganguꎬ Tianshui
12 09-16-8-2-① Ganguꎬ Tianshui 37 Zi 09-16-6-3-② Ganguꎬ Tianshui
13 09-16-9-1-① Ganguꎬ Tianshui 38 Zi 09-16-8-1-① Huixianꎬ Longnan
14 09-16-9-2-① Ganguꎬ Tianshui 39 Zi 09-16-8-1-② Huixianꎬ Longnan
15 09-16-10-1-① Wushanꎬ Tianshui 40 Zi 09-16-8-2-① Huixianꎬ Longnan
16 09-16-10-2-① Wushanꎬ Tianshui 41 Zi 09-16-8-2-② Huixianꎬ Longnan
17 09-16-11-① Wushanꎬ Tianshui 42 Zi 09-16-8-3-① Huixianꎬ Longnan
18 Zi 09-16-2-① Qinzhouꎬ Tianshui 43 Zi 09-16-8-3-② Huixianꎬ Longnan
19 Zi 09-16-2-② Qinzhouꎬ Tianshui 44 Zi 09-16-8-4-① Huixianꎬ Longnan
20 Zi 09-16-3-1-① Qingshuiꎬ Tianshui 45 Zi 09-16-8-4-② Huixianꎬ Longnan
21 Zi 09-16-3-1-② Qingshuiꎬ Tianshui 46 Zi 09-16-9-1-① Wuduꎬ Longnan
22 Zi 09-16-3-2-① Qingshuiꎬ Tianshui 47 Zi 09-16-9-1-② Wuduꎬ Longnan
23 Zi 09-16-3-2-③ Qingshuiꎬ Tianshui 48 Zi 09-16-9-2-① Wuduꎬ Longnan
24 Zi 09-16-4-① Ganguꎬ Tianshui 49 Zi 09-16-9-2-③ Wuduꎬ Longnan
25 Zi 09-16-4-② Ganguꎬ Tianshui
‘Zi’ indicates that the isolate is from the purified colony obtained from discharged ascospores while the others are from purified
asexual isolates.
514
植物病理学报 44卷
科院植保所白粉病组分离、纯化和保存ꎮ 保存及繁
殖菌种所使用的感病小麦品种 Chancellor 及毒性
鉴定所用的 38个已知抗病基因品种及 2个感病对
照也由中国农科院植保所白粉病组繁殖保存(表 2)ꎮ
1.2 小麦白粉菌的繁殖
采集的小麦白粉菌标样ꎬ按照 Xiang等[ 4]、Li[6]的
方法进行子囊孢子的释放及无性分生孢子的分离、纯
化、繁殖ꎬ参照Xu[7]的方法收集小麦白粉菌分生孢子ꎮ
1.3 毒性鉴定
在 18~24℃的温室中进行小麦白粉菌毒性鉴
定试验ꎬ具体方法参照 Si等[ 10 ]ꎮ 将用做鉴别寄主
的 38个已知抗白粉病基因的品种和 2个感病品种
播种在 36 cm×25 cm×10 cm 的塑料方盒内ꎬ每个
品种播 5 ~ 7 粒种子ꎬ套上透明塑料袋(以铁架支
撑)ꎬ扎紧袋口ꎬ防止污染ꎮ 待第一片叶完全展开
后接种新鲜的小麦白粉菌分生孢子ꎬ待供试幼苗的
感病对照品种充分发病时ꎬ记载第一片叶的反应
型ꎮ 反应型的记载采用 Sheng[ 11 ]的标准ꎮ
根据鉴定结果ꎬ分析病菌对各抗病基因的毒性
频率ꎻ将有毒性的菌株记为 “1”ꎬ无毒性的记为
“0”ꎬ利用 NTsys-2.10e 统计分析软件对小麦白粉
菌毒性矩阵进行 UPGMA聚类分析ꎮ
1.4 多基因家系分析
1.4.1 小麦白粉菌基因组 DNA 的提取 本试验
采用 OMEGA Fungal DNA试剂盒提取小麦白粉菌
DNAꎮ 按照说明书所示的使用方法进行ꎮ
1.4.2 引物选择 本次实验所用 5 个基因的引
物ꎬ其中三对来自于 Parks 等[ 1 2 ]ꎬ另两对是根据
NCBI数据库( http: / / www. ncbi. nlm. nih. gov / )中
发表的基因序列ꎬ利用引物设计软件 Primer Premi ̄
er 5.0设计的引物ꎮ 具体序列如表 3所示ꎮ
Table 2 The virulence frequency(%)of wheat powdery mildew to known resistance genes
Code Variety
Resistance
gene (Pm)
Longnan Tianshui Code Variety
Resistance
gene (Pm)
Longnan Tianshui
1 Funo - 100 100 21 Timgalen 6 88 96
2 Ulka / 8Cc∗ 2 23 65 22 Coker 747 6 100 96
3 Era - 35 65 23 CI14189 7 100 100
4 Kavkaz 8 100 100 24 Wembley 12 0 0
5 Maris Huntsman 2+6 23 57 25 R4A 13 27 26
6 Baimian 3 4+8 54 57 26 Brigand 16 0 4
7 Xiaobaidong mlxbd 27 17 27 Amigo 17 73 61
8 Chancellor - 100 100 28 XX186 19 92 96
9 Axminster / 8Cc 1 88 78 29 Yang Mai 5 / Sub.6V∗∗ 21 0 0
10 Asosan / 8Cc 3a 65 78 30 Chiyachao 24 62 87
11 Chul / 8Cc 3b 81 74 31 Maris Dove 2+Mld 12 43
12 Sonora / 8Cc 3c 100 100 32 Mission 4b+Mli 50 74
13 Kolibri 3d 62 74 33 Normandie 1+2+9 100 100
14 Mich.Amber / 8Cc 3f 96 96 34 5P27 30 35 57
15 W150 3e 100 100 35 MIN 18 0 0
16 Khapli / 8Cc 4a 50 57 36 81-7241 23 42 57
17 Armada 4b 50 78 37 NCA5 25 96 87
18 Hope / 8Cc 5 100 100 38 NCD7 34 62 52
19 Aquila 5(Mli) 23 52 39 NCD3 35 54 65
20 Coker 983 5+6 85 83 40 TAM104 / THATCHER 20 38 26
∗8Cc indicates that the cultivar was backcrossed for 8 generations with the susceptible parent Chancellorꎻ ∗∗ Sub.6v indicates
that the cultivar is a substitution line between wheat and Haynaldia villosa.
614
4期 石琳ꎬ等:甘肃南部小麦白粉菌群体的毒性及多基因片段分析
Table 3 Primers used for multigene genealogy analysis
Primer Gene product Primer sequence 5′ ̄3′ Product size / bp
PPA Protein phosphatase type 2A
PPAF:TAGATGGGTGGATTGAGAAC
PPAR:ATCGTCAGGATCAGACCATA
759
PKA Protein kinase A
PKAF:TTTCGGTAGGGTTCATCTGG
PKAR:TACCGTTCCGTCTCTTCAGG
958
TUB β ̄tubulin
TUBF:CAGGGCAAACAATTTCTGGT
TUBR:GCTGAACATTTCGCATCTGA
1 099
AOX Alternative oxidase
AOXF:CGCATAGCCCTTTACTTAG
AOXR:ATGGATTTGGGTCCTCGTT
667
EFA Elongation factor ̄1α
EFAF:ACAACAGGTAATAGGGACG
EFAR:CTAATGTGAACGCAAGCAA
542
1.4.3 反应体系及程序 PCR 反应体系为:总体
积 30 μLꎬ其中 10×PCR Buffer(Mg2+ Free)3 μLꎬ
25 mM 的 MgCl2 3.6 μLꎬ2.5 μM 的 dNTP 3.75
μLꎬ2.5 μM 的 Taq酶 0.9 μLꎬ10 μM的引物各 0.6
μLꎬ10 ng.μl-1的 DNA 模板 3 μLꎬ再补 ddH2O 至
30 μLꎮ
PCR 反应条件为:95℃预变性 5 minꎻ95℃变
性 25 sꎬ61℃退火 25 sꎬ72℃延伸 45 sꎬ共 34 个循
环ꎻ72℃延伸 5 minꎮ
PCR 反应结束之后ꎬ取 3 μL 扩增产物通过
1.5%的琼脂糖凝胶检测ꎮ PCR产物送交六合华大
基因公司进行测序ꎮ
1.4.4 序列分析 首先用 Chromas(2001)软件查
看测序峰图ꎬ确定序列的可靠性ꎻ然后用 DNAStar
软件中的 Seqman 程序进行序列拼接ꎻ再用 Clust ̄
alW进行多序列比对ꎻ最后用 MEGA 4 分析软件
建立 Neighbor-joining聚类树ꎬ其中 Bootstrap 值设
置为1 000次重复ꎬ以检验各分支的置信度ꎮ
2 结果与分析
2.1 毒性监测
毒性鉴定结果(表 2)表明:供试菌株对抗病基
因 Pm12、Pm16、Pm18、Pm21 的毒性频率均低于
10%ꎬ说明这些基因仍具有良好的抗性ꎬ可以在抗
病育种中加以利用ꎻ除了阿夫和 Chancellor 两个感
病对照外ꎬ供试菌株对抗病基因 Pm8、 Pm3c、
Pm3e、Pm5、Pm7 及基因组合 Pm2+Ta、Pm1+2+9
的毒性频率均为 100%ꎬ对抗病基因 Pm1、Pm3f、
Pm6、Pm19、Pm25及基因组合 Pm5+6 的毒性频率
也达到了 80%以上ꎬ说明这些基因已失去应用价
值ꎻ而白粉菌对抗病基因 mlxbd、Pm13、Pm20 和基
因组合 Pm2+mld 的毒性频率不到 40%ꎬ说明这些
基因还具有一定的抗性ꎬ可以在抗病育种中与其他
基因进行累加利用ꎮ 小麦白粉菌对 Pm4b 基因的
毒性在陇南已攀升至 50%以上ꎮ
用 NTsys-2.10e 统计分析软件对小麦白粉菌毒
性矩阵进行 UPGMA聚类分析ꎬ结果如图 1所示ꎮ 在
相似系数为 0.752时ꎬ除 11号菌株之外ꎬ其余菌株聚
为四类ꎮ 第一类及第四类(从上往下)中以天水菌株
居多ꎬ第三类中陇南菌株占多数ꎬ第二类中两地菌株
各占一半ꎬ说明天水菌株的毒性多态性较陇南菌株更
为复杂ꎻ49个供试菌株的毒性相似系数在 0.64~0.95
之间ꎬ说明这些菌株间存在差异ꎮ
2.2 多基因片段的序列比对
将供试菌株 5 个基因的序列连接起来进行多
序列比对后ꎬ再用 MEGA 软件中的邻接法对所得
序列构建 Neighbour Jioning(N-J)树(图 2)ꎬ结果
显示:49 个菌株的序列先聚为两类ꎬ次级分成四
类ꎻ第一类和第二类支持率均为 81ꎬ第三类和第四
类支持率均为 99ꎻ第一类和第三类中陇南菌株较
多ꎬ第二类中天水菌株较多ꎬ而第四类中两市的菌
株各占一半ꎮ 此外ꎬ同地区的菌株常连续出现ꎬ说
明各市菌株存在一定的独立进化ꎻ第一类和第三类
714
植物病理学报 44卷
Fig. 1 UPGMA dendrogram of Blumeria giaminis f.sp. tritici virulence in
Gansu analyzed by NTsys-2.10e
中的天水菌株主要来自秦川、甘谷和清水 3 个县
(区)ꎬ说明这 3 个区县的小麦白粉菌与陇南市的
菌株间存在交流ꎻ第二类及第四类中的陇南菌株主
要来自礼县、成县和徽县ꎬ说明白粉菌在这三地及
天水市菌株间存在迁移ꎻ来自同一个市不同县之间
的菌株可以聚成一类ꎬ说明白粉菌在一个市内的不
同县、乡之间也存在一定交流ꎮ
3 结论与讨论
根据陇南、天水两市小麦白粉菌群体的毒性监
测结果ꎬ当地有效的已知质量性状抗病基因有
Pm12、Pm16、Pm18 和 Pm21ꎬ其中除 Pm18[13]外均
来自小麦近源植物:Pm12、Pm16、Pm21 分别来自
拟斯卑尔托山羊草(Aegilops speltoides) [1 4 ꎬ15 ]、野
生二粒小麦 ( Triticum dicoccoides) [ 16 ] 和簇毛麦
(Haynaldia villosa) [ 17 ]ꎬ来自近源植物的有效抗源
占绝大多数ꎬ说明依靠小麦本身的抗性不足以应对
病原菌的变异ꎬ需要广泛地从小麦近源植物中寻找
对白粉病有效的抗源ꎮ 此外ꎬ利用单个质量性状的
抗病基因也存在缺陷ꎬ因为即使找到或转育成功新
的抗病基因ꎬ单个使用也容易在病菌群体变异中丧
失抗性ꎬ如本试验中的白粉菌群体对 Pm4b 在陇南
市和天水市的毒性频率分别达到 50%和 78%ꎬ而
在 2008年甘肃群体对 Pm4b的毒性频率还在 40%
以下(平均 38.10%ꎬ未发表数据)ꎮ 此外ꎬ有些抗
病基因还没应用就面临着抗性“丧失”的命运ꎬ例
如 Pm25ꎮ Pm25是从 T.boeoticum转育到小麦的一
个抗病基因ꎬ在国内并没有进行过广泛的应用ꎬ但
在本试验中ꎬ表现出对陇南小麦白粉病群体高度感
病ꎮ 其他几个近年纳入毒性监测的基因如 Pm23、
Pm30、Pm34、Pm35 在陇南地区的表现也不如人
意ꎬ需要与其他基因组合使用ꎮ 毒性分析结果还可
以看出基因累加的效果: 白粉病菌对 Pm2、和 Pm6
在陇南、天水两市的平均毒性频率分别为 44%和
92%ꎬ但 2 者累加后其两市平均毒性频率降至
40%ꎻ而 Pm2与 PmMld累加后ꎬ两市平均毒性频率
则降至 28%ꎮ 通过基因累加或在大面积上布局不
同的、包括数量性状抗性在内的抗病基因势在必
行ꎮ 本研究结果表明ꎬ毒性频率低于 10%的抗病
基因如Pm12、Pm16、Pm18、Pm21为甘肃省陇南、
814
4期 石琳ꎬ等:甘肃南部小麦白粉菌群体的毒性及多基因片段分析
Fig. 2 The NJ tree based on five gene fragments of Blumeria giaminis f.sp.
tritici isolates by using MEGA 4
●: Isolates from Tianshui cityꎻ ■: Isolates from Longnan city.
天水市的有效抗病基因ꎬ最好能以基因累加ꎬ或同
时推出携带不同基因的品种的方式在生产上进行
利用ꎬ通过增加田间抗病基因的多样性来减少对病
菌的定向选择ꎬ延长抗病基因的使用寿命ꎮ 农家品
种小白冬麦在陇南地区仍然表现良好ꎬ但赤牙糙
(Pm24)在陇南地区没有应用价值ꎮ 比较表 2中的
数据还可以看出ꎬ天水市群体比陇南市群体对多个
抗病基因的毒性频率高ꎬ例如对 Pm2、Pm4b、Pm5
(Mli)、Pm24、Pm30及基因组合 Pm2+6、Pm2+Mld
等ꎬ说明天水小麦白粉菌群体的毒谱更宽ꎬ毒性更
复杂ꎮ
将图 1和图 2进行综合比较ꎬ虽然甘肃省小麦
白粉菌的毒性多态性和 DNA 遗传结构均与其地
理来源息息相关ꎬ但揭示出的相互关系却不尽相
同ꎮ 例如来自陇南成县的 8 号菌株和来自天水甘
谷县的 35号菌株具有相近的毒性(图 1)ꎬ但 2 个
菌株在地理和进化关系上(图 2)相距甚远:8 号菌
株属于第四类ꎬ而 35 号菌株则属于第二类ꎮ 表明
它们或者在早期存在迁移ꎬ不同地区的菌株具有相
近的毒性ꎬ但在异地的独立进化ꎬ使它们在进化上
产生分歧ꎻ或者ꎬ两地寄主具有相近或相同的抗性ꎬ
因此虽然两地菌株的进化关系较远ꎬ却具有相近的
毒性ꎮ 此外ꎬ24 号和 30 号菌株及 2 号和 35 号等
菌株在多基因家系分析的结果中相似程度很高ꎬ而
914
植物病理学报 44卷
在毒性分析结果中则出现在不同的类群中ꎬ说明它
们进化关系较近ꎬ可能有相同或相近的来源ꎬ或者
在早期存在迁移ꎬ但由于小麦品种抗性不同对它们
进行选择的结果ꎬ使它们具有不同的毒性ꎮ 由此看
出ꎬDuan[1 8 ]、Luo[ 5 ]、Xiao等[1 9 ]、Zhu[ 20 ]等报道的
小麦白粉菌的毒性多态性与其分子标记分析揭示
的遗传结构二者没有密切关系的结果ꎬ其实都与病
菌在进化中经历选择、迁移等因子的作用密切相
关ꎮ
用于小麦白粉菌群体遗传结构研究的分子标
记技术有很多:Duan[ 1 8 ]、 Jia 等[ 8 ]、Huo 等[ 21 ]、
Wang[9]分别用 RAPD、AFLP、ISSR 和 SSR 等几种
方法对小麦白粉菌进行过遗传结构的研究ꎮ
RAPD稳定性和重复性比较差ꎬ目前国际刊物已基
本不接受该标记研究结果的报道ꎻ ISSR 虽然较
RAPD好ꎬ但也存在一些对其稳定性、重复性的质
疑ꎻAFLP虽能揭示较高的多样性ꎬ但对操作者技
术要求较高ꎬ工作强度大ꎬ在样本量较大的群体研
究中应用具有挑战性ꎻSSR 目前报道的引物较少ꎬ
限制了其应用ꎮ 本实验中ꎬ首次应用多基因家系
法ꎬ通过小麦白粉菌群体中 AOX、EFA、PKA、PPA、
TUB等 5个基因片段 DNA序列的差异ꎬ分析其群
体遗传结构ꎬ更清楚地反映出陇南各地小麦白粉菌
之间的系统进化关系ꎬ揭示了小麦白粉菌在各地区
独立进化的同时也存在省内的传播交流ꎮ 相对于
以上几种方法来说ꎬ多基因家系法具有操作更简
单ꎬ易掌握ꎬ且多态性也很丰富ꎬ结果更直观等诸多
优点ꎬ具有广阔应用前景ꎮ 但是ꎬ多基因家系法需
要对所获得的 DNA 扩增片段进行测序ꎬ因此需要
有强大的资金支持ꎮ
致谢 作者感谢中国农科院植保所刘双女士
在毒性鉴定试验中提供的大力帮助ꎮ
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