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Advances in Flower Color Mechanism of Lilium

百合花色机理研究进展



全 文 :园艺学报,2015,42 (9):1747–1759.
Acta Horticulturae Sinica
doi:10.16420/j.issn.0513-353x.2015-0103;http://www. ahs. ac. cn 1747
收稿日期:2015–05–20;修回日期:2015–08–07
基金项目:‘十二五’国家科技支撑计划项目(2013BAD01B0706);北京市科学技术研究院创新团队计划项目(IG201404N);北京市
科学技术研究院青年骨干计划项目(201416)
* 通信作者 Author for correspondence(E-mail:bjr301@126.com)
百合花色机理研究进展
孔 滢,窦晓莹,包 放,郎利新,白锦荣*
(北京市辐射中心,北京 100875)
摘 要:百合花色主要由花青苷和类胡萝卜素形成,一般粉色和棕色花中主要成分是花青苷;黄色
和橙色花中主要成分是类胡萝卜素;红色是由花青苷和类胡萝卜素共同组成。百合花色的遗传现象比较
复杂。目前初步构建了几个群体,通过遗传连锁图谱标记了花色相关位点。百合中花青苷和类胡萝卜素
合成代谢途径中的大部分结构基因已经被克隆和研究。花青苷合成途径中的转录因子 LhMYB12 调控百合
花被片中的花青苷的有无,其转录水平调控花青苷的颜色强度和着色类型。本文总结了百合花朵的着色
机理研究,为进一步开展百合花色育种提供了理论参考。
关键词:百合;花色;育种;转录因子
中图分类号:S 682.2 文献标志码:A 文章编号:0513-353X(2015)09-1747-13

Advances in Flower Color Mechanism of Lilium
KONG Ying,DOU Xiao-ying,BAO Fang,LANG Li-xin,and BAI Jin-rong*
(Beijing Radiation Center,Beijing 100875,China)
Abstract:Lily flower colors are derived mainly from anthocyanins and carotenoids,and anthocyanins
are the major pigment in pink and chocolate brown cultivars,whilst carotenoids in yellow and orange
cultivars,and both anthocyanins and carotenoids contribute to red ones. The genetic mechanism and
biosynthetic pathway of pigments are complicated in lily. It is documented that several genetic linkage
maps of lily populations have been preliminarily constructed,and several quantitative trait locis related
with flower color were also mapped. Many structural genes involved in the biosynthesis of anthocyanin
and carotenoid have been isolated and identified. The transcription factor LhMYB12 involved in
anthocyanin pathway regulates anthocyanin biosynthesis and determines the presence or absence of
anthocyanin pigmentation in tepals,its transcript level affects the intensity and pattern of anthocyanin color.
The better understanding on pigment biosynthetic pathway is helpful for breeding to change flower color
by engineering the pathways in lily cultivars.
Key words:Lilium;flower color;breeding;transcription factor

一般认为花色是植物提供给授粉者的视觉信号,能够提高传粉和繁殖效率(汤晓辛和黄双全,
2012)。在园艺上花色是观赏植物重要的观赏性状之一,影响着花卉作物的商业价值(Behe et al.,

Kong Ying,Dou Xiao-ying,Bao Fang,Lang Li-xin,Bai Jin-rong.
Advances in flower color mechanism of Lilium.
1748 Acta Horticulturae Sinica,2015,42 (9):1747–1759.
1999;Kelley et al.,2001;Burchi et al.,2010;Yamagishi et al.,2014a)。类黄酮、类胡萝卜素和
甜菜色素是形成花色的三大主要化合物类群(Grotewold,2006;Tanaka et al.,2008;戴思兰 等,
2013)。类黄酮中的黄酮、二氢黄酮和查尔酮等化合物形成黄色,花青苷形成红色、紫色和蓝色(韩
科厅 等,2008)。类胡萝卜素形成黄色、橙色和红色等。甜菜色素形成黄色、橙色和红色,但只存
在于部分石竹科植物中且与花青苷不能共存(Nishihara & Nakatsuka,2010)。
百合是世界重要的切花和盆栽花卉,其花色是指成熟花被片(花瓣)的颜色(龙雅宜,1999)。
经过多年育种培育了很多百合新品种,有着丰富的花色变异。本文从花色表型和生化合成机理方面
对百合花色的研究进展进行阐述。
1 百合资源花色表型
百合属(Lilium)约有 100 个种,花朵颜色丰富,主要为红色、粉色、橙色、黄色和白色,以
及一些中间色系。还有一些特殊花色,如绿色的绿花百合(L. fargesii)、紫色的紫花百合等(夏婷
等,2013)。有的百合花色随着开花时间发生变化,如野百合的变种百合(L. brownii var. colchesteri)
开花一天后从黄色变为白色(Hai et al.,2012)。
通过开展百合种间杂交获得了大量的百合品种。英国皇家园艺学会(Royal Horticulture Society)
根据百合品种特征将百合品种分为 9 个杂种系。其中亚洲百合杂种系的典型特点是有着广泛的花色
变异,有黄色、橙色、粉色、红色和白色等;东方百合杂种系的主要花色是粉色和红紫色(Yamagishi,
2013);麝香百合杂种系则主要为白色。
百合在花朵着色模式上也有着很多变异,例如双色(bicolors)和斑点(spots)等(Yamagishi,
2013)。双色百合中不同种类和含量的花色素在花被片不同区域分别积累:在岷江百合(L. regale)
和一些喇叭百合中,花色素在喉部区域累积;亚洲百合有的花被片上下部颜色不一样;在东方百合
及其一些亲本中,花被片维管束区域的花色素着色呈星形,与花被片其他部分的颜色不一致。
在很多野生百合和百合品种中,花被片内表面上着生红色或深色的斑点。这些斑点一般可被分
为 3 种类型。一种是突起型斑点(raised spots):位于花被片的近轴面,表皮细胞和薄壁细胞增多使
得花被片表面隆起,花色素在表皮细胞和薄壁细胞中均有积累,细胞分裂增多可能发生在色素合成
之前(Yamagishi,2013;Yamagishi & Akagi,2013)。一种是溅泼状斑点(splatters):位于花被片下
部的很多小斑点,呈溅泼状,如亚洲百合的‘Tango’品种系列,斑点区域不隆起,表面平滑。花青
苷只在表皮细胞积累,含有色素的细胞与其他不含色素的细胞形态没有差异(Yamagishi & Akagi,
2013;Yamagishi et al.,2014b)。还有一种是刷状斑点(brushmarks):在花被片基部沿着维管束有
着栗色条纹,呈刷状,如亚洲百合的‘Centrefold’(Yamagishi,2013)。
2 百合花的呈色物质
花朵色素的种类和含量是影响花色形成最重要的因素(戴思兰,2005;韩科厅 等,2008;
Yamagishi et al.,2012)。已有的研究表明(表 1),橙红色的朝鲜百合(L. amabile)、兰州百合(L. davidii
var. willmottiae)和大花卷丹(L. leichtlinii var. maximowiczii)中,花色成分是辣椒红素、辣椒玉红
素、玉米黄素、紫黄质和花药黄质等(Valadon & Mummery,1977);山丹橙红色花被片中的主要色
素为辣椒玉红素,占总类胡萝卜素的 80%(Partali et al.,1987;Jeknić et al.,2012);卷丹花被片中
孔 滢,窦晓莹,包 放,郎利新,白锦荣.
百合花色机理研究进展.
园艺学报,2015,42 (9):1747–1759. 1749

也有辣椒红素和辣椒玉红素的积累(Märki-Fischer & Eugster,1985;Deli et al.,1998)。

表 1 百合花被片中的类胡萝卜素化合物
Table 1 Carotenoids contained in lily tepals
类型
Type
百合名称
Name
花色
Flower color
主要化合物
Major component
参考文献
Reference
朝鲜百合
L. amabile
橙红色花被片
Orange-red tepals
反式辣椒红素、顺式花药黄质、反式辣椒玉红素、反式隐黄质、
顺式花药黄质、反式紫黄质
trans-Capsanthin,cis-antheraxanthin,trans-capsorubin,
trans-cryptoxanthin,cis-antheraxanthin,trans-violaxanthin
Valadon &
Mummery,
1977
兰州百合
L. davidii var.
willmottiae
橙红色花被片
Orange-red tepals
反式辣椒红素、反式紫黄质、反式花药黄质、反式辣椒玉红素、
反式玉米黄素
trans-Capsanthin,trans-violaxanthin,trans-antheraxanthin,
trans-capsorubin,trans-zeaxanthin
Valadon &
Mummery,
1977
大花卷丹
L. leichtlinii var.
maximowiczii
橙红色花被片
Orange-red tepals
反式辣椒红素、反式花药黄质、辣椒红素–5,6–环氧化物、
顺式花药黄质、反式辣椒玉红素、反式紫黄质
trans-Capsanthin,trans-antheraxanthin,capsanthin-5,6-epoxide,
cis-antheraxanthin,trans-capsorubin,trans-violaxanthin
Valadon &
Mummery,
1977
山丹
L. pumilum
橙红色花被片
Orange-red tepals
辣椒玉红素
Capsorubin
Partali et al.,1987;
Jeknić et al.,2012
卷丹
L. tigrinum
橙红色花被片
Orange-red tepals
(9Z)–花药黄质、辣椒红素
(9Z)-antheraxanthin,capsanthin
Deli et al.,1998
野生种
Species
卷丹
L. tigrinum
‘Red Night’
橙红色花被片
Orange-red tepals
辣椒红素、辣椒玉红素、(9Z)–花药黄质、橘黄质、新黄质、
(9’Z)–辣椒红素、(13Z)–辣椒红素、β–柠乌素、(9Z)–辣椒
红素、(13’Z)–辣椒红素
Capsanthin,capsorubin,(9Z)-antheraxanthin,mutatoxanthin,
neoxanthin,(9’Z)-capsanthin,(13Z)-capsanthin,β-citraurin,
(9Z)-capsanthin,(13’Z)-capsanthin
Märki-Fischer &
Eugster,1985;
Ohmiya,2011;
Jeknić et al.,2012
亚洲百合
Asiatic
hybrid
Connecticut King 黄色花被片
Yellow tepals
花药黄质、(9Z)–紫黄质、顺–叶黄素、紫黄质、叶黄素、β–胡萝卜素
Antheraxanthin,(9Z)-violaxanthin,cis-lutein,violaxanthin,lutein,
β-carotene
Yamagishi et al.,
2010a
Montreux 粉色花被片
Pink tepals
紫黄质、叶黄素、花药黄质、β–胡萝卜素、(9Z)–紫黄质,
顺–叶黄素 Violaxanthin,lutein,antheraxanthin,β-carotene,
(9Z)-violaxanthin,cis-lutein
Yamagishi et al.,
2010a
Sajia 红色花被片
Red tepals
辣椒红素,花药黄质
Capsanthin,antheraxanthin
Yamagishi et al.,
2010a

在百合品种方面,主要对亚洲百合和东方百合的花色进行了研究。亚洲百合中粉色和棕色花中
主要花色成分为花青苷;黄色和橙色花的主要花色成分为类胡萝卜素;红色花中是花青苷和类胡萝
卜素都有(Yamagishi et al.,2010a,2012)。东方百合花色的主要物质是花青苷,只有一小部分品种
的花被片中有着类胡萝卜素的积累。白色的亚洲百合、东方百合和麝香百合中未检测到花青苷
(Nørbæk & Kondo,1999;Yamagishi,2011;Yamagishi et al.,2012)。在类胡萝卜素成分上(表 1),
黄色花被片中有花药黄质、(9Z)–紫黄质、紫黄质、叶黄素等;橙色和红色花被片中有辣椒红素
(Yamagishi et al.,2010a;Hai et al.,2012)。在类黄酮成分上(表 2),一些东方百合和亚洲百合的
红色系品种中有大部分的矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷和少部分的矢车菊素 3–O–β–芸香糖–7–O–
β–葡萄糖苷的积累(Nørbæk & Kondo,1999;Yamagishi et al.,2012)。花被片斑点处的主要成分
也是矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷(Abe et al.,2002)。
百合品种花色的差异是由于花青苷含量的差异造成的(Yamagishi et al.,2012)。在几种不同花
色,如浅粉、粉红、深红和棕色百合的花被片中都只有一种花青苷即矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷,
但含量存在差异,花青苷含量为浅粉色 < 粉红色 < 深红色 < 棕色,说明色相差异和花青苷含量
呈正相关(Yamagishi et al.,2012)。
Kong Ying,Dou Xiao-ying,Bao Fang,Lang Li-xin,Bai Jin-rong.
Advances in flower color mechanism of Lilium.
1750 Acta Horticulturae Sinica,2015,42 (9):1747–1759.
表 2 百合花被片中的类黄酮(花青苷)化合物
Table 2 Flavonoids(anthocyanins)contained in lily tepals
类型
Type
百合名称
Name
花色
Flower color
主要化合物
Major component
参考文献
Reference
Blackout 深红色花被片
Dark red tepals
矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷
Cyanidin 3-O-β-rutinoside
Yamagishi et al.,2012
Landini 巧克力棕红色花被片
Chocolate brown tepals
矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷、黄酮醇
Cyanidin 3-O-β-rutinoside,Flavonol
Lai et al.,2012;
Yamagishi et al.,2012
Holean 紫红色花被片
Lavender red tepals
矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷,矢车菊素 3–O–β–芸
香糖–7–O–β–葡萄糖苷 Cyanidin 3-O-β-rutinoside,
Cyanidin 3-O-β-rutinoside-7-O-β-glucoside
Nørbæk & Kondo,1999
Monte Negro 紫红色花被片
Lavender red tepals
矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷
Cyanidin 3-O-β-rutinoside
Nørbæk & Kondo,1999
Red Carpet 紫红色花被片
Lavender red tepals
矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷,矢车菊素 3–O–β–芸
香糖–7–O–β–葡萄糖苷 Cyanidin 3-O-β-rutinoside,
Cyanidin 3-O-β-rutinoside-7-O-β-glucoside
Nørbæk & Kondo,1999
Hollandicum 红色花被片
Red tepals
矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷,矢车菊素 3–O–β–芸
香糖–7–O–β–葡萄糖苷 Cyanidin 3-O-β-rutinoside,
Cyanidin 3-O-β-rutinoside-7-O-β-glucoside
Nørbæk & Kondo,1999
Côte d’Azur 红粉色花被片
Pink-red tepals
矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷
Cyanidin 3-O-β-rutinoside
Yamagishi et al.,2012
Montreux 粉色花被片具斑点
Pinktepals with spots
矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷
Cyanidin 3-O-β-rutinoside
Nørbæk & Kondo,
1999;Abe et al.,2002;
Yamagishi et al.,2012
Montreux ×
Connecticut King
粉色花被片 Pink tepals 矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷
Cyanidin 3-O-β-rutinoside
Abe et al.,2002
Panorama 浅粉色花被片
Light pink tepals
矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷
Cyanidin 3-O-β-rutinoside
Yamagishi et al.,2012
Vivaldi 浅粉色花被片
Light pink tepals
矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷
Cyanidin 3-O-β-rutinoside
Yamagishi et al.,2012
Renoir 浅粉色花被片
Light pink tepals
矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷
Cyanidin 3-O-β-rutinoside
Yamagishi et al.,2012
Avignon 橘红色花被片
Reddish orange tepals
矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷
Cyanidin 3-O-β-rutinoside
Nørbæk & Kondo,1999
Compas 橙色具斑点花被片
Orange tepals with spots
矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷
Cyanidin 3-O-β-rutinoside
Nørbæk & Kondo,1999
Las Vagas 黄色具斑点花被片
Yellow tepals with spots
矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷
Cyanidin 3-O-β-rutinoside
Nørbæk & Kondo,1999
Mirella 橙色花被片 Orange tepals 无花青素或黄酮醇 No anthocyanin or flavonol Lai et al.,2012
Connecticut
King
黄色花被片 Yellow tepals 无花青苷或黄酮醇 No anthocyanin or flavonol Abe et al.,2002;Lai et
al.,2012
Nanova 白色花被片 White tepals 无花青苷或黄酮醇 No anthocyanin or flavonol Yamagishi et al.,2012
亚洲百合
Asiatic hybrid
Silver Stone 白色花被片 White tepals 无花青苷或黄酮醇 No anthocyanin or flavonol Yamagishi et al.,2012
Star Gazer 粉色花被片 Pink tepals 矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷,矢车菊素 3–O–β–芸香
糖–7–O–β–葡萄糖苷 Cyanidin 3-O-β-rutinoside,
cyanidin 3-O-β-rutinoside-7-O-β-glucoside
Nørbæk & Kondo,1999东方百合
Oriental hybrid
Le Reve 粉色花被片 Pink tepals 矢车菊素 3–O–β–芸香糖苷 Cyanidin 3-O-β-rutinoside Nørbæk & Kondo,1999
麝香百合
Longiflorum hybrid
Lilium
longiflorum
白色花被片 White tepals 无花青苷 No anthocyanin Nørbæk & Kondo,1999
3 百合花色的遗传规律
子代的性状可以追溯到其亲本,亚洲百合主要来自卷瓣组的种间杂交,例如卷丹、柠檬色百合
(L. leichtlinii)、川百合(L. davidii)、毛百合(L. dauricum)、斑点百合(L. maculatum)等,这些
亲本花色多为橙色,少数黄色,并有着突起斑点,推测亚洲百合中的全橙色和全黄色性状、突起斑
点特征是来自这些亲本。卷瓣组中的垂花百合(L. cernuum)有着全粉色的花被片,推测亚洲百合
孔 滢,窦晓莹,包 放,郎利新,白锦荣.
百合花色机理研究进展.
园艺学报,2015,42 (9):1747–1759. 1751

中全粉花性状是遗传自垂花百合(McRae,1998)。最近研究发现,亚洲百合粉花品种中重要花色调
控基因 MYB12 与垂花百合中的 MYB12 基因一致或相似,说明垂花百合确实对亚洲百合中的粉色着
色有着贡献(Yamagishi et al.,2014a)。东方百合全粉花品种中的 MYB12 基因与亲本美丽百合(L.
speciosum)和乙女百合(L. rubellum)中的相似,说明花色遗传自它们;还有两个品种的 MYB12 与
天香百合(L. auratum)中的一致或相似;但日本百合(L. japonicum)的 MYB12 基因没有在东方百
合品种中检测到(Yamagishi et al.,2014a)。
植物杂交时不同花色的遗传力不同。不同花色的亲本杂交产生的后代花色上有着广泛的变异。
了解百合花色的遗传规律,可以帮助育种者选择合适的亲本,从而获得想要的目标性状(Balode,
2007)。通常有色花为显性,白色花为隐性:东方百合中深粉色相对白色是显性(Lim & van Tuyl,
2006);亚洲百合粉色‘Montreux’× 粉色‘Renoir’的 F1 群体中粉色︰白色为 27︰13;说明白色是
隐性性状。有些花色杂交表现为无显性、超显性或不完全显性(程金水,2000;赵昶灵 等,2005)。
例如亚洲百合粉色的‘Montreux’和浅橙色的‘Orange Aristo’的杂交后代 F1 代都为橙粉色,花色
表现为共显性;橙色具斑点的‘Herold’和黄色无斑点的‘Lime Ice’的杂交后代 F1 中都具有斑点,
花色都表现为双亲的中间性状,表现为不完全显性;花色为柠檬黄的‘Ekzotika’和黄色具斑点的
L. henryi var. citrinum 的杂交后代 F1 中都有斑点,花色都与父本或母本花色一致(Balode,2007)。
花被片中突起斑点的有无是质量性状,突起斑点数量是数量性状(Nakano et al.,2005;Shahin
et al.,2011)。白色无斑点麝香百合‘White Fox’与黄色无斑点亚洲百合‘Connecticut King’杂交
获得的 LA 群体中,花色都为白色,斑点分离比,无斑点∶有斑点为 29∶61,说明生成斑点是由隐
性基因控制的(Shahin et al.,2011)。日本学者对无斑点的‘Connecticut King’与具突起和溅泼斑
点的‘Lativa’的杂交 F1 群体进行遗传分析,发现 F1 群体中有突起斑点、溅泼斑点、突起斑点及溅
泼斑点和没有斑点这 4 种性状,表现出 1︰1︰1︰1 的分离比例,说明这两种类型的斑点是独立遗传
的(Yamagishi & Akagi,2013)。
4 百合遗传图谱构建和花色位点定位
育种中分子连锁图谱对性状分析很重要,但由于百合的基因组过于庞大,目前已经发表的百合
基因遗传图谱只有 4 个。由于用到的分子标记和构建的连锁群体较少,都只是初步研究(Abe et al.,
2002;van Heusden et al.,2002;Nakano et al.,2005;Shahin et al.,2011)。
通过对亚洲百合 F1 群体(粉花具斑点‘Montreux’× 黄花无斑点‘Connecticut King’)进行分
子连锁图谱分析,发现花被片中花青苷的有无分离比为 1︰1,说明其受到单一显性位点 LAP 的控制,
标记在了‘Montreux’的第一张连锁图谱上;斑点数量是数量性状,两个可能抑制斑点形成的 QTL
标记在‘Connecticut King’的连锁图谱上。说明尽管花被片和斑点中的花青苷成分一样,却是受到
独立控制的(Abe et al.,2002)。对‘Montreux’בConnecticut King’群体进行花被片类胡萝卜素
含量分析,发现类胡萝卜素含量是数量性状。在‘Montreux’图谱中定位了一个 QTL 位点 qCARmon6,
能解释总表型变异的 58.2%,该位点在类胡萝卜素积累上有着显性抑制作用(Nakano et al.,2005)。
Shahin 等(2011)通过两个杂交群体 AA 和 LA 对花色、花朵斑点等观赏性状进行了分析,定
位了花色相关位点 LFCc(Lilium flower colour carotene)和花朵斑点相关位点 lfs(Lilium flower spot)。
控制斑点有无和控制斑点数量的 QTL 定位在图谱的同样位置上,说明可能单个基因控制了这两个性
状,或者是紧密连锁的几个基因。
Kong Ying,Dou Xiao-ying,Bao Fang,Lang Li-xin,Bai Jin-rong.
Advances in flower color mechanism of Lilium.
1752 Acta Horticulturae Sinica,2015,42 (9):1747–1759.
5 百合花色合成途径及相关基因
5.1 花青苷生化合成途径
花青苷是类黄酮物质,类黄酮生化合成途径是高等植物次生代谢中研究得比较清楚的一大类,
合成途径中的结构基因已被阐明(图 1,Nishihara & Nakatsuka,2011;Tanaka & Brugliera,2013),
百合中一些花青苷合成相关基因已经被分离和鉴定(Nakatsuka et al.,2003;杨丽 等,2006;Liu et
al.,2011;陈洁 等,2012;Lai et al.,2012;王瑜 等,2013)。


图 1 植物中花青苷生化合成途径
百合中已鉴定出的相关酶加粗显示。PAL:苯丙氨酸解氨酶;C4H:肉桂酸 4–羟化酶;4CL:4 香豆酸辅酶 A 连接酶;
CHS:查尔酮合成酶;AS:金鱼草素合酶;C4′GT:查尔酮 4′-O–葡糖基转移酶;CHI:查尔酮异构酶;
GT:糖基转移酶;ANS:花青苷合酶;FNR:黄烷酮 4–还原酶;FNS:黄酮合酶;F3H:黄烷酮 3–羟化酶;
FLS:黄酮醇合酶;F3′H:类黄酮 3′ 羟化酶;F3′5′H:类黄酮 3′5′羟化酶;DFR:二氢黄酮醇 4–还原酶;
MT:甲基转移酶;AT:酰基转移酶。
Fig. 1 The biosynthesis pathway of anthocyanins and related compounds in plants
Biosynthesis enzymes isolated from lilies are written in bold. PAL:Phenylalanine ammonia-lyase;C4H:Cinnamate-4-hydroxylase;
4CL:4-coumarate:CoA ligase 4;CHS:Chalcone synthase;AS:Aureusidin synthase;C4′GT:Chalcone 4′-O-glucosyltransferase;
CHI:Chalcone isomerase;GT:Glycosyltransferase;ANS:Anthocyanidin synthase;FNR:Flavanone 4-reductase;
FNS:Flavone synthase;F3H:Flavanone 3-hydroxylase;FLS:Flavonol synthase;F3′H:Flavonoid 3′-hydroxylase;
F3′5′H:Flavonoid 3′,5′-hydroxylase;DFR:Dihydroflavonol 4-reductase;
MT:Methyltransferase;AT:Acyltransferase.
孔 滢,窦晓莹,包 放,郎利新,白锦荣.
百合花色机理研究进展.
园艺学报,2015,42 (9):1747–1759. 1753

在亚洲百合(‘Montreux’和‘Landini’)花苞刚显色的阶段,苯丙氨酸解氨酶基因 LhPAL1 和
LhPAL2 的转录水平较高,但花青苷合成相关基因转录水平很低,说明 LhPAL1 和 LhPAL2 在控制类
黄酮和肉桂酸衍生物合成的代谢通路上有着重要作用(Lai et al.,2012)。查尔酮合成酶基因(chalcone
synthase,CHS)是花青苷合成途径中的上游基因,多组成一个多基因家族,经常在花器官上空间特
异表达(Durbin et al.,2000);二氢黄酮醇 4–还原酶(dihydroflavonol 4-reductase,DFR)是花青苷
合成途径中最后一步中的酶。在亚洲百合(‘Montreux’)中克隆了 3 个 CHS 基因和 1 个 DFR 基因,
在花青苷着色部位有着 DFR 和部分或所有 CHS 的表达,说明这些基因都参与了花青苷生成。DFR 只
在花青苷积累的器官表达,而 CHS 在一些没有花青苷积累的部位也有表达,说明亚洲百合中 DFR 比
CHS 与花青苷着色更加密切相关。3 个 CHS 基因在花器官着色上作用不同,LhCHSa 和 LhCHSb 在花
被片、花丝、雌蕊中表达;LhCHSc 在花药中特异表达(Nakatsuka et al.,2003;Lai et al.,2012)。通
过对杂交后代的着色分析发现,CHS 和 DFR 独立控制花被片和斑点着色(Nakatsuka et al.,2003)。
5.2 类胡萝卜素生化合成途径
植物中的类胡萝卜素生化途径已经比较清楚(图 2),基本上参与类胡萝卜素生化合成途径的所
有基因已经被分离和鉴定(Giuliano et al.,2008;Tanaka et al.,2008;Zhu et al.,2010;Ohmiya,

图 2 植物中类胡萝卜素生化合成途径
百合中已鉴定出的相关酶加粗显示。PSY:八氢番茄红素合成酶;PDS:八氢番茄红素脱氢酶;Z-ISO:ζ–胡萝卜素异构酶;
ZDS:ζ–胡萝卜素脱氢酶;CRTISO:类胡萝卜素异构酶;LCYE:番茄红素 ε 环化酶;LCYB:番茄红素 β 环化酶;
HYB:β–环羟化酶;HYE:ε–环羟化酶;ZEP:玉米黄素环氧酶;VDE:紫黄质脱环氧化酶;NSY:新黄质合成酶;
CCS:辣椒红素–辣椒玉红素合成酶;NCED:9–顺式环氧类胡萝卜素双加氧酶。
Fig. 2 The biosynthesis pathway of carotenoid in plants
Biosynthesis enzymes isolated from lilies are written in bold. PSY:Phytoene synthase;PDS:Phytoene desaturase;Z-ISO:ζ-carotene isomerase;
ZDS:ζ-carotene desaturase;CRTISO:Carotenoid isomerase;LCYE:Lycopene ε-cyclase;LCYB:Lycopene β-cyclase;HYB:β-ring hydroxylase;
HYE:ε-ring hydroxylase;ZEP:Zeaxanthin epoxidase;VDE:Violaxanthin deepoxidase;NSY:Neoxanthin synthase;
CCS:Capsanthin-capsorubin synthase;NCED:9-cis-epoxycarotenoid dioxygenase.
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2011,2013)。一般来说,类胡萝卜素含量和组成受到类胡萝卜素生化合成酶的转录水平的调控
(Ohmiya,2013)。亚洲百合中的番茄红素合酶 PSY,番茄红素去饱和酶 PDS,胡萝卜素去饱和酶
ZDS,类胡萝卜素异构酶 CRTISO,番茄红素环化酶 LCYB 和 LCYE,β 环羟化酶 HYB,卷丹(L.
lancifolium‘Splendens’)中的辣椒红素/辣椒玉红素合酶 CCS 的基因已经被分离(Yamagishi et al.,
2010a;Jeknić et al.,2012)。
这些基因在花被片发育中的转录时间不完全相同,LhPSY、LhPDS、LhZDS、LhCRTISO、LhHYB
和 LhCCS 随着花发育转录水平升高,在花期前几天达到顶峰;但随着花被片发育,LhLCYB 的转录
水平是稳定的,LhLCYE 的转录水平下降;说明百合中存在着不同的调控系统来激活这些生化合成
酶(Yamagishi et al.,2010a)。在高水平类胡萝卜素积累的亚洲百合黄花和红花品种中,类胡萝卜
素含量与合成基因的转录水平密切相关,说明转录水平决定这些品种中的类胡萝卜素的积累。但
在类胡萝卜素含量很低的白花或粉花亚洲百合品种中,类胡萝卜素合成基因的转录水平与红花品
种接近,说明不是由于合成基因的下调导致的低含量类胡萝卜素(Yamagishi et al.,2010a)。抑制
类胡萝卜素积累的候选基因是类胡萝卜素裂解双加氧酶(carotenoid cleavage dioxygenase)基因
CCD4(Ohmiya et al.,2006)。在百合中分离了 1 个 LbCCD4 基因,开花后 LbCCD4 的转录水平升
高,并在开花后 12 h 达到最高水平,使得花被片中的黄色类胡萝卜素降解为无色的化合物,导致
花色从黄色变成白色(Hai et al.,2012)。
6 百合花色转录因子研究
随着研究的不断深入,发现还有一类调节基因通过调控结构基因的表达,在转录水平上参与花
色的形成(Hichri et al.,2011)。目前已知 R2R3-MYB、bHLH(basic helix-loop-helix,碱性螺旋–
环–螺旋)和 WDR 等 3 个转录因子参与花青苷合成途径中的基因调控(Quattrocchio et al.,2006;
史倩倩 等,2014)。这些转录因子形成一个复合体,在不同植物中激活多个不同的目标基因。转录
因子倾向于调控多个代谢步骤,是植物中调控复杂代谢途径的有力工具。在类胡萝卜素和甜菜色素
合成途径中还没发现关键转录因子。在东方百合和亚洲百合中,花青苷合成酶的活性主要受到转录
水平调控,R2R3-MYB 基因和 LhbHLH2 协调控制花青苷的合成,形成花被片的粉色系着色(表 3),
(Nakatsuka et al.,2009;Yamagishi et al.,2010b;Yamagishi,2011)。
每个物种中一般有几个 R2R3-MYB 基因来调控花色素形成,植物用不同的 R2R3-MYB 基因和
位点在不同时期对花朵不同部位进行着色。这些 R2R3-MYB 基因的时空独特转录调控花青苷的着
色,形成了花色种类和着色类型的多样性(Yamagishi et al.,2014b)。MYB 转录因子常分为两个亚
组:AN2 亚组调控双子叶中花青苷合成的下游基因;C1 亚组调控单子叶植物中花青苷合成的上游
和下游基因(Allan et al.,2008)。
亚洲百合‘Montreux’中分离了参与花青苷合成调控的两个转录因子:LhMYB12 控制花被片、
花丝和柱头的花青苷着色;LhMYB6 控制突起斑点的着色(Yamagishi et al.,2010b)。在具溅泼状斑
点的亚洲百合‘Latvia’中分离了 LhMYB12 基因的新位点 LhMYB12-Lat,决定花被片中的溅泼状斑
点的生成(Yamagishi et al.,2014b)。在东方百合‘Sorbonne’中,LhSorMYB12 调控花被片和斑点
的花青苷着色。由于转录因子在亚洲百合和东方百合斑点着色上的差异,也解释了为什么白色、黄
色和橙色的亚洲百合中有斑点;白色的东方百合中一般没有斑点,而有花青素积累的花被片上则常
有红色斑点(Yamagishi,2011)。

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百合花色机理研究进展.
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表 3 从百合花被片中克隆的花青素途径相关转录因子基因
Table 3 Cloned and identified transcription factor genes involved in anthocyanin biosynthesis of lily tepals
类型
Type
材料名称
Name
转录因子基因
Cloned transcription
factor gene
功能描述
Function description
参考文献
Reference
亚洲百合
Asiatic
hybrid
‘Montruex’ LhMonMYB6 调控突起斑点和叶子受光诱导的着色
Regulates spots anthocyanin pigmentation in tepals and light-induced
pigmentation in leaves
Yamagishi et
al.,2010b
LhMonMYB12 调控花被片、花丝和柱头的花青苷着色。LhMYB12/LhbHLH2 能直接激活
LhCHSa 和 LhDFR 的启动子,不能激活 LhF3H 的启动子
Regulates anthocyanin pigmentation in tepals,filaments and styles LhMYB12/
LhbHLH2 directly activate LhCHSa and LhDFR promoters,but not LhF3H
promoter
Yamagishi et
al.,2010b;
Lai et al.,
2012
LhbHLH1 在花被片、茎、叶中有表达,在叶片中的表达受到光诱导
Expressesin tepals,stems and leaves. The expression is induced by light only in
leaves
Nakatsuka et
al.,2009
LhbHLH2 在花被片、茎、叶、花丝和雌蕊中表达,在花被片及叶片中的表达受到光诱
导,与花青苷合成密切相关
Expresses in tepals,stems,leaves,filaments and pistils. The expression is increased
by light in leaves and tepals,strongly correlated with anthocyanin biosynhesis
Nakatsuka et
al.,2009
东方百合
Oriental
hybrid
‘Sorbonne’ LhSorMYB12 调控花青素合成,负责东方百合品种间花色差异
Regulates anthocyanin biosynthesis and is responsible for the tepal color
difference between oriental hybrid lily cultivars
Yamagishi,
2011
‘Rialto’ LhRiaMYB12 序列变异的 MYB12 导致没有花青素的着色
Mutantion of MYB12 causes no accumulation of anthocyanins in tepals
Yamagishi,
2011
‘Lativa’ LhMYB12-Lat 决定溅泼状斑点的有无,不调控花被片着色和突起斑点着色
Determines the presence or absence of splatters,not contributes to anthocyanin
pigmentation of tepals and raised spots
Yamagishi et
al.,2014

对‘Montreux’בConnecticut King’和‘Montreux’בRenoir’杂交群体中花色基因和表型
分离的研究后发现,LhMYB12 决定花被片的花青苷着色,说明 LhMYB12 在 LAP 位点中(Yamagishi
et al.,2010b,2012)。功能研究发现 LhMYB12 能直接激活 LhCHSa 和 LhDFR 的启动子,但不能激
活 LhF3H 的启动子;说明尽管 LhMYB12 是单子叶植物中目前分离出唯一属于 AN2 亚组的
R2R3-MYB 基因,但能直接调控百合中的上游基因 LhCHSa 和下游基因 LhDFR,不直接调控 LhF3H
(Lai et al.,2012)。
不同花色的百合品种中,LhMYB12 的转录水平不同。研究发现,百合中花青苷含量与 LhMYB12
基因的转录水平成正相关,花青苷含量越高的品种中 LhMYB12 的转录水平越高(Yamagishi et al.,
2012),白色品种中没有 LhMYB12 的转录(如‘Siberia’)或有着序列变异的 LhRiaMYB12,如‘Rialto’
(Yamagishi,2011)。‘Sorbonne’的花被片粉色具白边,白边处只有少量花青苷的积累;且
LhSorMYB12 转录水平也低,说明 LhSorMYB12 的转录调控导致了白边的生成(Yamagishi,2011)。
这些说明 LhMYB12 基因不仅决定花青苷的有无,其转录水平还决定花青苷的颜色强度和着色类型
(Yamagishi,2013)。通过抑制 MYB12 的转录例如高温(35 ℃),导致合成基因转录积累降低,
从而花青苷积累减少(Lai et al.,2011)。
在亚洲百合‘Montreux’花被片中分离了两个 bHLH 基因 LhbHLH1 和 LhbHLH2,都参与了花
青苷的合成,其中 LhbHLH2 的时空转录与花青苷的着色关系更为密切,说明 LhbHLH2 是调控花青
苷合成的主要 bHLH 基因。但是,LhbHLH2 在粉色和浅白色花被片中都有转录,说明有 LhbHLH2
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以外的其他因子决定百合花被片中的颜色差异。LhbHLH1 基因在百合中的作用还有待进一步研究
(Nakatsuka et al.,2009)。
7 展望
新花色的创制是观赏植物育种的重要目标之一(王小菁和杨玉萍,2013)。但在一些植物中,
传统育种已经无法获得新花色,诱变育种中诱变率又太低,只有转基因技术是花色创新育种中切实
可行的方法(Nishihara & Nakatsuka,2011)。通过基因工程首次在矮牵牛中实现了花色改造(Meyer
et al.,1987),其后越来越多的转基因技术用来对园艺植物进行花色改造,获得了蓝紫色的香石竹
(Dianthus caryophyllus)、月季(Rosa hybrida)和菊花(Chrysanthemum × morifolium)等(Fukui et
al.,2003;Chandler & Tanaka,2007;Katsumoto et al.,2007;Nishihara & Nakatsuka,2010;Brugliera
et al.,2013)。但在单子叶植物中还没有成功改造花色的案例,可能是因为其难度比双子叶植物高
(Nishihara & Nakatsuka,2010)。在过去的 10 年中,百合中的很多花青苷及类胡萝卜素的合成基
因被分离鉴定,对它们的主要合成途径有了更多理解,目前通过基因水平改造百合花色也开展了
有益的探索(Qi et al.,2013)。了解百合花色着色机理,对进一步开展百合花色育种有着重要指
导意义。

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