免费文献传递   相关文献

Cloning and Expression Analysis of Temperature-induced Lipocalin in Narcissus tazetta var. chinensis

水仙温度诱导脂质运载蛋白基因NtTIL的克隆与表达分析



全 文 :园艺学报,2016,43 (1):161–167.
Acta Horticulturae Sinica
doi:10.16420/j.issn.0513-353x.2015-0505;http://www. ahs. ac. cn 161
水仙温度诱导脂质运载蛋白基因NtTIL的克隆
与表达分析
丁安琪 1,*,冯 莹 2,*,朱里莹 1,徐世荣 1,秦 军 1,潘东明 1,**
(1 福建农林大学园艺产品贮运保鲜研究所,福州 350002;2 泉州师范学院资源与环境科学学院,福建泉州 362000)
摘 要:采用 PCR 法,从水仙(Narcissus tazetta var. chinensis)鳞茎主芽中分离克隆到 1 个温度诱导
脂质运载蛋白基因 NtTIL。该基因含有 567 bp 开放阅读框,编码 188 个氨基酸。该基因属于 lipocalin-2
superfamily 基因家族;推导的氨基酸序列含有 SCR1、SCR2 和 SCR3 3 个植物 lipocalin 的典型结构域,与
小麦、拟南芥等植物的同源性大于 75%;编码的蛋白为稳定酸性亲水蛋白,不含有信号肽,进行 N 末端
朝外由外到内的跨膜运动。qRT-PCR 结果分析表明,水仙生长发育过程中鳞茎膨大期 NtTIL 表达量较低;
休眠期表达量先升高后降低。推测 NtTIL 对水仙鳞茎主芽休眠具有一定调控作用。
关键词:水仙;温度诱导运载蛋白;克隆;表达;夏休眠
中图分类号:S 682.2+1 文献标志码:A 文章编号:0513-353X(2016)01-0161-07

Cloning and Expression Analysis of Temperature-induced Lipocalin in
Narcissus tazetta var. chinensis
DING An-qi1,*,FENG Ying2,*,ZHU Li-ying1,XU Shi-rong1,QIN Jun1,and PAN Dong-ming1,**
(1Institute of Postharvest Science and Technology of Horticultural Products,Fujian Agriculture and Forestry University,
Fuzhou,350002,China;2School of Resource and Environmental Science,Quanzhou Normal University,Quanzhou,
Fujian 362000,China)
Abstract:An encoding temperature-induced lipocalin(TIL)gene NtTIL was separated and cloning
by PCR in Narcissus tazetta var. chinensis. The open reading frame of NtTIL was 567 bp,encoding a
protein of 188 amino acids. Biological software for NtTIL protein analysis showed that:The gene belongs
to lipocalin-2 superfamily gene family;typical domains deduced from amino acid sequence contained
SCR1,SCR2 and SCR3 three of botanical lipocalin. It’s homology greater than wheat,Arabidopsis and
other plants 75%. Sequence analyses revealed that this protein was stable and hydrophilic without signal
peptides; transmembrane movement was from outside to inside in the outward N-terminus, then
transmembrane. And the relative expression of this gene was surveyed by real-time quantitative PCR
during different growth stage. The results showed that its relative expression during different growth stage
was different;the NtTIL expression was low in bulb swelling stage,expression increased and then reduced
in dormancy stage,and expression increased slightly in flower differentiation stage. In conclusion,it

收稿日期:2015–10–31;修回日期:2015–12–11
基金项目:福建省高水平大学建设项目,国家‘十一五’科技支撑计划项目(2007BAD07B00)
* 共同第一作者
** 通信作者 Author for correspondence(E-mail:pdm666@126.com)
Ding An-qi,Feng Ying,Zhu Li-ying,Xu Shi-rong,Qin Jun,Pan Dong-ming.
Cloning and expression analysis of temperature-induced lipocalin in Narcissus tazetta var. chinensis.
162 Acta Horticulturae Sinica,2016,43 (1):161–167.
suggested that NtTIL could play a role for regulation of bud dormancy in Narcissus tazetta var. chinensis.
Key words:Narcissus tazetta var. chinensis;temperature-induced lipocalin;cloning;expression;
dormancy

脂质运载蛋白(lipocalin)是一类广泛存在于动物、植物、单细胞生物和细菌中的胞外蛋白(Suzuki
et al.,2004),具有非常重要的功能,如调节细胞生长、代谢、结合细胞表面受体、响应环境变化
(Akerstrom et al.,2000;Bishop,2000;Frenette et al.,2002)。植物在生长发育过程中通过自我或
诱导形成的保护系统来抵御环境变化,如高温、低温、干旱、污染等,而植物的脂质运载蛋白参与
这一保护系统调控(Frenette et al.,2005,2008;Uemura et al.,2006;Levesque-Tremblay et al.,2009;
Kjellsen et al.,2010)。植物的脂质运载蛋白主要有 2 种类型:叶绿体脂质运载蛋白(chloroplast
lipocalin,CHL;Levesque-Tremblay et al.,2009)和温度诱导脂质运载蛋白(temperature-induced
lipocalin,TIL;Frenette et al.,2005;Grzyb et al.,2006)。TIL 在植物抵御逆境时具有重要的调节作
用和信号传递作用(Rassart et al.,2000;Brinker et al.,2010)。虽然 TIL 响应高温(Frenette et al.,
2002;Chi et al.,2009),但是 TIL 在高温诱导夏休眠中所起的作用还未见报道。水仙(Narcissus tazetta
var. chinensis)具有特定的夏休眠时期(Feng et al.,2015),经水仙转录组文库筛选获得 TIL 是具有
差异表达的温度响应因子。本研究中分离并克隆了水仙鳞茎 TIL 同源基因 NtTIL,对其进行生物信
息学分析,并利用 qRT-PCR 方法分析水仙不同生长发育阶段 NtTIL 表达量变化,探明 NtTIL 的表达
规律,初步证实 NtTIL 在夏休眠中起一定调节作用,为植物夏休眠发生的相关机制研究提供理论依
据。
1 材料与方法
1.1 材料
材料为福建省漳州市商业种植基地 3 年生水仙鳞茎。2012 年 4 月 14 日—7 月 14 日,每隔 7 d
取样 1 次,将主鳞茎从基地取出后用水冲洗泥土,再用无菌纸擦净表面水分,用干净的刀片切去叶
子和根,剥去主鳞茎鳞片获得主芽。
1.2 总RNA提取与cDNA第 1 链合成
取 0.1 g 水仙鳞茎主芽用液氮研磨后加入含有提取液(0.1 mol · L-1 Tris-HCl,0.02 mol · L-1 EDTA,
1.4 mol · L-1 NaCl,2.0% CTAB)的离心管内;37 ℃摇床充分振荡 15 ~ 20 min,加入 100 ~ 180 µL
无水 C2H5OH,冰上放置 2 min,15 000 × g 离心 5 min,取上清液;加入等体积酚∶氯仿∶异戊醇(25∶
24∶1),4 ℃12 000 r · min-1 离心 10 min,取上清液;加入 0.7 倍体积异丙醇,4 ℃12 000 r · min-1
离心 15 min,弃上清液;加入 100 µL RNase-free H2O、1.0 mL Trizol和 200 µL氯仿,4 ℃12 000 r · min-1
离心 10 min,取上清液;加入 0.7 倍体积异丙醇,4 ℃12 000 r · min-1 离心 10 min,弃上清液;沉淀
用 75% C2H5OH 洗涤 2 次,晾干,用 30 µL RNase-free H2O 溶解沉淀。
以总 RNA 为模板,按照 RevertAidTM First-Strand cDNA Synthesis Kit 试剂盒(Fermentas 公司)
说明书合成 cDNA 第 1 链。
丁安琪,冯 莹,朱里莹,徐世荣,秦 军,潘东明.
水仙温度诱导脂质运载蛋白基因 NtTIL 的克隆与表达分析.
园艺学报,2016,43 (1):161–167. 163
1.3 基因的克隆与测序
基于水仙转录组测序结果,采用 Oliger 6.0 软件分别设计上、下游引物,用于水仙 NtTIL 开放
阅读框(ORF)的 cDNA 扩增。引物 NtTIL-F:5′-AGAACCGTCCGGCAAACAAAAC-3′;NtTIL-R:
5′-TTGAACATATTTTGGATGGCGTGAT-3′。
以水仙 cDNA 为模板进行 PCR 扩增。反应体系为:1.0 µL cDNA 模板,10 mmol · L-1 上、下游
引物各 0.5 µL,2.5µL 10 × EX-Taq buffer,0.5 µL dNTP Mix(10.0 mmol · L-1),0.15 µL EX-Taq,补
H2O 至总体积为 25 µL。反应条件为:95 ℃预变性 5 min;94 ℃ 30 s,57 30 s℃ ,72 1 min℃ ,35
个循环;72 ℃延伸 10 min。
PCR 产物经 1.0%琼脂糖凝胶电泳检测后,将目的片段切割并按照 DNA 纯化回收试剂盒(Tiangen)
进行目的片段的回收。PCR 胶回收产物连接到 pMD18-T(TaKaRa)上,转化到感受态大肠杆菌 DH5α,
挑选单克隆进行扩繁后进行 PCR 验证。挑选 PCR 验证正确的阳性克隆送上海博尚生物技术有限公
司测序。
1.4 序列分析与比较
将测序结果利用 DNAMAN 软件并通过 Blast X 和 Blast P 搜索 NCBI 的核苷酸和蛋白质数据库
进行序列相似分析及氨基酸保守结构域预测;用 ProtParam 对蛋白质进行理化性质分析;用 TMpred
Server 和 SignalP 4.1 分别对蛋白序列进行跨膜和信号肽分析。
1.5 组织表达模式分析
以水仙不同时期 RNA 500 ng 为底物,按照 PrimeScriptTM RT reagent Kit(TaKaRa)说明书进行
cDNA 合成。采用 Oliger 6.0 软件,根据获得的 NtTIL 基因设计特异引物 TIL-F(5′-AACCGAGG
AACGGCGAGAAC-3′)和 TIL-R(5′-CAGGAAACAGCGGCAGGAAAG-3′),并引用冯莹等(2015)
的水仙 ACTIN 内参基因特异性引物 ACTIN-F(5′-TGCCCAGAAGTGCTATTCCAG-3′)和 ACTIN-R
(5′-GTTGACCCACCACTAAGAACAATG-3′)。将 cDNA 模板稀释 10 倍后用于 qRT-PCR 扩增。反
应体系为:cDNA 模板 1.0 µL,10 mmol · L-1 上、下游引物各 0.4 µL,2 × SYBR Green Premix Ex TaqTM
(TaKaRa)1.0 µL 补 H2O 至总体积为 20 µL。反应条件为:预变性 94 20 s℃ ;94 ℃变性 10 s,62 ℃
退火 20 s,40 个循环。
各试验设 3 个生物重复,2 次技术重复。数据分析采用 2-∆∆Ct 方法(Schmittgen & Livak,2008),
并对其进行 Duncan’s 新复极差分析差异显著性,检测水平为 P < 0.05。

2 结果与分析









图 1 水仙 NtTIL 基因 PCR 扩增产物电泳检测
Fig. 1 PCR product of NtTIL in Narcissus tazetta var. chinensis
2.1 基因克隆与结构分析
以水仙鳞茎主芽 cDNA 为模板,NtTIL-F/R
为引物,PCR 扩增:获得 780 bp 的特异条带(图
1),与预测的基因片段大小相符,初步确定为
目的基因片段。
对目的片段测序后获得的序列进行分析表
明,目的基因片段含有 1 个完整的开放阅读框,

Ding An-qi,Feng Ying,Zhu Li-ying,Xu Shi-rong,Qin Jun,Pan Dong-ming.
Cloning and expression analysis of temperature-induced lipocalin in Narcissus tazetta var. chinensis.
164 Acta Horticulturae Sinica,2016,43 (1):161–167.
大小为 564 bp,该目的基因编码 188 个氨基酸和一个终止子,命名为 Narcissus tazetta var. chinensis
temperature-induced lipocalin(NtTIL)。这是第 1 个石蒜科植物的 TIL 基因。
2.2 氨基酸序列比较与系统进化树分析
将氨基酸序列与其他植物的氨基酸序列比较(图 2),发现水仙 NtTIL 基因推导的氨基酸序列含
有 3 个植物脂质运载蛋白的特征结构域,分别为 SCR1、SCR2 和 SCR3,其中 SCR1 结构域中含有
2 个保守的氨基酸 G(甘氨酸)和 W(色氨酸);SCR2 结构域中含有 1 个 TDY(GDY)成分区域;
SCR2 结构域中含有 1 个保守的氨基酸 R(精氨酸)。



图 2 水仙 NtTIL 与其他植物的氨基酸序列比较
Fig. 2 Comparison of the amino acid sequences of NtTIL between in the N. tazetta var. chinensis and in the others

将核苷酸序列和预测的氨基酸序列与 GenBank 中其他植物 TIL 的序列进行同源性比较发现:水
仙 NtTIL 的核苷酸序列与葡萄、小麦、大麦、棉花、高粱、玉米、杨树、桃树等植物 TIL 的具有较
高同源性,达到 70%以上;其氨基酸序列与小麦、拟南芥、棉花、玉米、冰叶日中花等植物的氨基
酸序列同源性大于 75%。


丁安琪,冯 莹,朱里莹,徐世荣,秦 军,潘东明.
水仙温度诱导脂质运载蛋白基因 NtTIL 的克隆与表达分析.
园艺学报,2016,43 (1):161–167. 165
通过构建 N. tazetta var. chinensis NtTIL;Arabidopsis thaliana AtTIL(BAB10998);Zea mays
ZmTIL-1(DQ222975)、ZmTIL-2(DQ222979);Vitis vinifera VvTIL(NM_001281236);Triticum aestivum
TaTIL-1(AAL75812)、TaTIL-2(DQ222977);Oryza sativa OsTIL-1(BAG92316)、OsTIL-2(BAG90960)
蛋白系统进化树,分析水仙 NtTIL 蛋白与植物中 TIL 类似蛋白的遗传进化关系,结果表明,水仙
NtTIL 蛋白序列属于脂质运载蛋白,与水稻、玉米等植物 TIL 类似蛋白聚为同一类(图 3)。


图 3 水仙 NtTIL 系统进化树分析
Fig. 3 Phylogenetic analysis of NtTIL in N. tazetta var. chinensis

2.3 NtTIL编码蛋白理化性质与结构特征分析
基本理化性质的预测分析结果表明,该蛋白分子量为 21 777.8 D,原子组成 C999H1503N253O283S6;
理论等电点 pI 5.78,负电荷的氨基酸残基数(Asp + Glu)为 26,正电荷的氨基酸残基数(Arg + Lys)
为 24;消光系数为 2.336;脂肪系数为 70.53;总平均疏水性为–0.617;不稳定系数为 39.48。这些
均说明该蛋白为稳定的呈酸性的亲水蛋白。该蛋白共有 20 种氨基酸组成,编码的蛋白以脯氨酸和赖
氨酸含量最高,都达到 8.5%;其次是亮氨酸(8.0%),而半胱氨酸的含量最少,仅为 1.1%。
信号肽预测分析结果表明,该蛋白不含信号肽。
跨膜结构预测分析结果表明:其含有 2 个跨膜螺旋,其中一个是由 21 个氨基酸组成的、位于
89 ~ 109、方向由内到外的跨膜结构,其分值为 561;另一个是由 23 个氨基酸组成、位于 87 ~ 109、
方向由外到内的跨膜结构,其分值为 896。依据跨膜结构分值推测该蛋白跨膜模型倾向于 N 末端朝
外的由外到内进行跨膜。
2.4 水仙不同生长时期中NtTIL的表达量分析
水仙进入生长发育过程分为鳞茎膨大期、休眠期和花芽分化期 3 个时期(Feng et al.,2015),
qRT-PCR 结果表明:NtTIL 在这 3 个时期的表达量具有差异,鳞茎主芽处于鳞茎膨大期时 NtTIL 表
达量较高(4 月 14 日至 4 月 28 日);由鳞茎膨大期进入休眠期时,NtTIL 的表达量突然下降,4 月
28 日表达量显著高于 5 月 5 日的表达量;休眠前期(5 月 5 日至 6 月 9 日)NTIL 表达量逐渐增加,
并于 6 月 9 日达到最高,与其他时间段的表达量存在显著差异;休眠后期(6 月 9 日至 7 月 7 日)
NTIL 表达量逐渐降低;花芽分化期,NtTIL 表达量略升高。基于 5 月 5 日为休眠开始,其表达量降
低;7 月 7 日为休眠解除同时花芽开始分化,推测 NtTIL 在水仙鳞茎芽的休眠具有一定的调控作用
(图 4)。

Ding An-qi,Feng Ying,Zhu Li-ying,Xu Shi-rong,Qin Jun,Pan Dong-ming.
Cloning and expression analysis of temperature-induced lipocalin in Narcissus tazetta var. chinensis.
166 Acta Horticulturae Sinica,2016,43 (1):161–167.

图 4 水仙不同生长时期 NtTIL 表达量变化
Fig. 4 NtTIL expression of different growth stage in N. tazzetta var. chinensis
3 讨论
植物脂质运载蛋白同 3 类脂质运载蛋白 mammalian apolipoprotein D、bacterial lipocalin(Blc)
和 insect Lazarillo,具有非常高的同源性,主要是氨基酸序列含有脂质运载蛋白典型的 3 个 SCR 保
守结构域(Frenette et al.,2002,2005;Campanacci et al.,2006)。水仙 NtTIL 的氨基酸序列分析表
明该基因序列含有 3 个 SCR 保守结构域,因此,克隆得到的水仙 NtTIL 基因属于植物脂质运载蛋白,
属于 lipocalin-2 superfamily 家族。这是石蒜科首次获得的脂质运载蛋白。
水仙 NtTIL 蛋白为稳定的呈酸性的亲水蛋白,且是不含信号肽的膜蛋白,与小麦(Frenette et al.,
2002)、拟南芥、玉米、水稻和葡萄(Frenette et al.,2005)5 种植物 TIL 蛋白属于类似蛋白。He 等
(2015)研究发现野苜蓿 TIL 与细胞膜有关联,它扮演一个保护质膜的角色,作为质膜上的一种蛋
白,能够对高温环境产生响应,这与本研究的跨膜预测结果一致。该蛋白的脂肪系数与拟南芥、玉
米等相近,但明显低于葡萄 TIL 蛋白的脂肪系数,这可能是由于植物之间生理特性导致的。
TIL 响应高温或低温(Kawamura & Uemura,2003;Kjellsen et al.,2010;He et al.,2015),在
低温或高温胁迫处理时,小麦和拟南芥的 TIL 表达量提高(Frenette et al.,2005),小麦 TaTIL 基因
在叶片中呈特异性表达(Schleiff et al.,2001)。这可能是由于高温或低温条件下,TIL 基因提高表
达,从而保护质膜不受损伤,维持细胞膜稳定和渗透调节作用(Frenette et al.,2002;Abo-Ogiala et
al.,2014)。水仙是夏休眠植物,高温诱导并解除水仙休眠(Li et al.,2012;Feng et al.,2015)。本
研究中发现,水仙休眠前期 NtTIL 的表达量逐渐增加,休眠后期温度升高其表达量下降。这可能是
由于水仙生理特性决定的,NtTIL 可能转导细胞外内温度信号或者与细胞表面受体结合共同转导温
度信号,从而参与夏休眠调控。关于水仙 NtTIL 如何传递信号或者与细胞表面的何种配体结合共同
调控水仙休眠还需要进一步验证。

References
Abo-Ogiala A,Carsjens C,Diekmann H,Fayyaz P,Herrfurth C,Feussner L,Polle A. 2014. Temperature-induced lipocalin(TIL)is translocated
under salt stress and protects chloroplasts from ion toxicity. Journal of Plant Physiology,171 (3–4):250–259.
Akerstrom B,Flower D R,Salier J P. 2000. Lipocalins:Unity in diversity. Biochim Biophys Acta,1482 (1–2):1–8.
Bishop R E. 2000. The bacterial lipocalins. Biochim Biophys Acta,1482 (1–2):73–83.
丁安琪,冯 莹,朱里莹,徐世荣,秦 军,潘东明.
水仙温度诱导脂质运载蛋白基因 NtTIL 的克隆与表达分析.
园艺学报,2016,43 (1):161–167. 167

Brinker M,Brosche M,Vinocur B,Abo-Ogiala A,Fayyaz P,Janz D,Ottow E A,Cullmann A D,Saborowski J,Kangasjärvi J. 2010. Linking
the salt transcriptome with physiological responses of a salt-resistant Populus species as a strategy to identify genes important for stress
acclimation. Plant Physiology,154 (4):1697–1709.
Campanacci V,Bishop R E,Blangy S,Tegoni M,Cambillau C. 2006. The membrane bound bacterial lipocalin Blc is a functional dimer with binding
preference for lysophospholipids. FEBS Letters,580:4877–4883.
Chi W T,Fung R W M,Liu H C,Hsu C C,Charng Y Y. 2009. Temperature-induced lipocalin is required for basal and acquired thermotolerance in
Arabidopsis. Plant Cell and Environment,32 (7):917–927.
Feng Y,Zhu L Y,Pan T F,Guo Z X,Zhong X,Ding A Q,Pan D M. 2015. Characterization of summer dormancy in Narcissus tazetta var. chinensis
and the role of NtFTs in summer dormancy and flower differentiation. Scientia Horticulturae,183:109–117.
Frenette Charron J B,Breton G,Badawi M,Sarhan F. 2002. Molecular and structural analyses of a novel temperature stress-induced lipocalin from
wheat and Arabidopsis. Febs Letters,517 (1–3):129–132.
Frenette Charron J B,Ouellet F,Houde M,Sarhan F. 2008. The plant apolipoprotein D ortholog protects Arabidopsis against oxidative stress. BMC
Plant Biology,8:86.
Frenette Charron J B,Ouellet F,Pelletier M,Danyluk J,Chauve C,Sarhan F. 2005. Identification,expression,and evolutionary analyses of plant
lipocalins. Plant Physiol,139 (4):2017–2028.
Grzyb J,Latowski D,Strzalka K. 2006. Lipocalins-a family portrait. Journal of Plant Physiology,163 (9):895–915.
He X Y,Sambe M A N,Zhuo C,Tu Q,Guo Z. 2015. A temperature induced lipocalin gene from Medicago falcata(MfTIL1)confers tolerance to
cold and oxidative stress. Plant Molecular Biology,87 (6):645–654.
Kawamura Y,Uemura M. 2003. Mass spectrometric approach for identifying putativeplasma membrane proteins of Arabidopsis leaves associated
with cold acclimation. Plant Journal,36:141–154.
Kjellsen T D,Shiryaeva L,Schroder W P,Strimbeck G R. 2010. Proteomics of extreme freezing tolerance in Siberian spruce(Picea obovata).
Journal of Proteomics,73 (5):965–975.
Levesque-Tremblay G,Havaux M,Ouellet F. 2009. The chloroplastic lipocalin AtCHL prevents lipid peroxidation and protects Arabidopsis against
oxidative stress. Plant Journal,60 (4):691–702.
Li X F,Shao X H,Deng X J,Wang Y,Zhang X P,Jia L Y,Xu J,Zhang D M,Sun Y,Xu L. 2012. Necessity of high temperature for the dormancy
release of Narcissus tazetta var. chinensis. Journal of Plant Physiology,169:1340–1347.
Rassart E,Bedirian A,Do Carmo S,Guinard O,Sirois J,Terrisse L,Milne R. 2000. Apolipoprotein D. Biochim Biophys Acta,1482 (1–2):
185–198.
Schleiff E,Tien R,Salomon M,Soll J. 2001. Lipid composition of outer leaflet of chloroplast outer envelope determines topology of OEP7.
Molecular Biology of the Cell,12 (12):4090–4102.
Suzuki K,Lareyre J J,Sanchez D,Gutierrez G,Araki Y,Matusik R J,Orgebin-Crist M C. 2004. Molecular evolution of epididymal lipocalin genes
localized on mouse chromosome. Gene,339:49–59.
Uemura M,Tominaga Y,Nakagawara C,Shigematsu S,Minam A,Kawamura Y. 2006. Responses of the plasma membrane to low temperatures.
Physiologia Plantarum,126 (1):81–89.