全 文 ：拟南芥中磷脂酶 Ｄδ参与机械伤害诱导的磷脂酸生成∗
李爱花１ꎬ２ꎬ 凌立贞１ꎬ 李唯奇１∗∗
(１ 中国科学院昆明植物研究所中国西南野生生物种质资源库ꎬ 昆明 ６５０２０１ꎻ ２ 中国科学院大学ꎬ 北京 １０００４９)
摘要: 磷脂酶水解磷脂产生磷脂酸 (ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｉｃ ａｃｉｄꎬ ＰＡ)ꎬ Ｄα１和 δ是磷脂酶 Ｄ家族中表达丰度最高的
两个成员ꎬ 已知磷脂酶 Ｄα１参与了机械伤害诱导的磷脂酸信号ꎬ 但是磷脂酶 Ｄδ 是否以及如何参与 ＰＡ 信
号尚且未知ꎮ 本研究利用脂类组学分析方法ꎬ 比较了拟南芥野生型 (ＷＳ) 和磷脂酶 Ｄδ基因 Ｔ￣ＤＮＡ插入突
变体 (ＰＬＤδ￣ＫＯ)ꎬ 在机械伤害后的较长时间段 (６ ｈ) 的膜脂分子变化ꎮ 结果发现ꎬ 机械伤害后ꎬ 拟南芥
两种基因型的大部分膜脂均发生下降ꎬ 且机械伤害后 ３０ ｍｉｎꎬ ＰＡ 含量即快速并急剧升高ꎻ 随着时间的延
长ꎬ 其水平持续升高ꎬ 直至达到峰值后下降至 ６ ｈ达到最低值ꎮ ＷＳ 和 ＰＬＤδ￣ＫＯ 达到 ＰＡ 最高值的时间不
同ꎬ 分别为 １ ｈ和 ３ ｈꎻ 在伤害处理后 ３０ ｍｉｎ至 ３ ｈ期间ꎬ ＰＬＤδ￣ＫＯ中的 ＰＡ水平低于 ＷＳꎬ 两个基因型中
的 ＰＡ含量最大差值为 ２０％ꎬ 发生在伤害后 １ ｈꎮ 这证明缺失 ＰＬＤδ基因在一定程度抑制了机械伤害诱导的
ＰＡ生产ꎬ 表明 ＰＬＤδ参与拟南芥响应机械伤害的 ＰＡ生成ꎬ 但是其响应较 ＰＬＤα１作用慢且轻ꎮ 这是 ＰＬＤδ
响应拟南芥中机械伤害的首次报道ꎮ
关键词: 拟南芥ꎻ 机械伤害ꎻ 膜脂ꎻ 磷脂酶 Ｄδꎻ 磷脂酸
中图分类号: Ｑ ９４５ 文献标志码: Ａ 文章编号: ２０９５－０８４５(２０１５)０４－４２８－１１
Ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄδ ｉｓ Ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ Ｗｏｕｎｄｉｎｇ￣Ｉｎｄｕｃｅｄ
Ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｉｃ Ａｃｉｄ Ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ∗
Ｌｉ Ａｉ￣ｈｕａ１ꎬ２ꎬ Ｌｉｎｇ Ｌｉ￣ｚｈｅｎ１ꎬ Ｌｉ Ｗｅｉ￣ｑｉ１∗∗
( １ Ｇｅｒｍｐｌａｓｍ Ｂａｎｋ ｏｆ Ｗｉｌｄ Ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ Ｓｏｕｔｈｗｅｓｔ Ｃｈｉｎａꎬ Ｋｕｎｍｉｎｇ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ
Ｋｕｎｍｉｎｇ ６５０２０１ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ ２ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｂｅｉｊｉｎｇ １０００４９ꎬ Ｃｈｉｎａ)
Ａｂｓｔｒａｃｔ: Ｐｈｏｓｐｈａｌｉｐａｓｅ Ｄ (ＰＬＤ) ｈｙｄｒｏｌｙｚｅｓ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ ｉｎｔｏ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｉｃ ａｃｉｄ (ＰＡ). ＰＬＤα１ ａｎｄ δ ａｒｅ ｔｈｅ
ｔｗｏ ｍｏｓｔ ａｂｕｎｄａｎｔ ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ ｔｈｅ １２￣ｍｅｍｂｅｒ ＰＬＤ ｆａｍｉｌｙ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ. ＰＬＤα１ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｅｄ ｈａｖｉｎｇ ｒｏｌｅ
ｉｎ ｔｈｅ ｗｏｕｎｄｉｎｇ￣ｉｎｄｕｃｅｄ ＰＡ ｓｉｇｎａｌｌｉｎｇ. Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｗｈｅｔｈｅｒ ａｎｄ ｈｏｗ ＰＬＤδ ｉｓ ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ ｗｏｕｎｄｉｎｇ￣ｉｎｄｕｃｅｄ ＰＡ ｆｏｒ￣
ｍａｔｉｏｎ ｒｅｍａｉｎｅｄ ｕｎｃｌｅａｒ. Ｉｎ ｔｈｅ ｐｒｅｓｅｎｔ ｓｔｕｄｙꎬ ｔｈｅ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｗａｓ ｐｒｏｆｉｌｅｄ ｉｎ Ｗａｓｓｉｌ￣
ｅｗｓｋｉｊａ (ＷＳ) ａｎｄ ＰＬＤδ ｋｎｏｃｋｏｕｔ ｍｕｔａｎｔ (ＰＬＤδ￣ＫＯ) ｏｆ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ. Ｔｈｅ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｍｏｓｔ ｌｉｐｉｄｓꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｍｏ￣
ｎｏｇａｌａｃｔｏｓｙｌｄｉａｃｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌꎬ ｄｉｇａｌａｃｔｏｓｙｌｄｉａｃｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌꎬ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｃｈｏｌｉｎｅ ａｎｄ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌ ｈａｄ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ
ｒａｐｉｄｌｙ ｗｉｔｈｉｎ ３０ ｍｉｎ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｎ ｔｈｅ ｔｗｏ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ. Ｉｎ ｃｏｎｔｒａｓｔꎬ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ＰＡ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｓｈａｒｐｌｙ
ａｎｄ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ３０ ｍｉｎ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ. Ｉｔ ｃｏｎｔｉｎｕｅｄ ｔｏ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｕｎｔｉｌ ｐｅａｋｉｎｇ ａｔ １ ｈ ｐｏｓｔ￣ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｎ ＷＳ ａｎｄ ３ ｈ
ｐｏｓｔ￣ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｎ ＰＬＤδ￣ＫＯꎬ ａｎｄ ｔｈｅｎ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ. Ｔｈｅ ＰＡ ｌｅｖｅｌｓ ｗｅｒｅ ｓｉｍｉｌａｒ ｉｎ ｔｈｅ ｔｗｏ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ ｉｎ ｕｎｔｒｅａｔｅｄ ｌｅａｖ￣
ｅｓ ａｎｄ ｉｎ ｌｅａｖｅｓ ６ ｈ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ. Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅｓｅ ｌｅｖｅｌｓ ｗｅｒｅ ｌｏｗｅｒ ｉｎ ＰＬＤδ￣ＫＯ ｔｈａｎ ｉｎ ＷＳ ｆｒｏｍ ３０ ｍｉｎ ｔｏ ３ ｈ
ｐｏｓｔ￣ｗｏｕｎｄｉｎｇ. Ｔｈｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｏｆ ＰＡ ｌｅｖｅｌ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅ ｔｗｏ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ３０ ｍｉｎ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇꎬ
ｗｈｅｎ ｉｔ ｗａｓ ａｂｏｕｔ ２０％ ｌｏｗｅｒ ｉｎ ＰＬＤδ￣ＫＯ ｔｈａｎ ｉｎ ＷＳ. Ｔｈｅｓｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｈｏｗ ｔｈａｔ ＰＬＤδ ｉｓ ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ ｗｏｕｎｄｉｎｇ￣ｉｎ￣
ｄｕｃｅｄ ＰＡ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓꎬ ｂｕｔ ｉｔｓ ａｂｓｅｎｃｅ ｉｎｄｕｃｅｓ ＰＡ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｌａｔｅｒ ａｎｄ ｗｉｔｈ ｌｅｓｓ ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ ｔｈａｎ ＰＬＤα１.
植 物 分 类 与 资 源 学 报 ２０１５ꎬ ３７ (４): ４２８~４３８
Ｐｌａｎｔ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ ＤＯＩ: １０.７６７７ / ｙｎｚｗｙｊ２０１５１４０５８
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∗∗
Ｆｕｎｄｉｎｇ: Ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｈｉｎａ (ＮＳＦＣ３１３００２６１)
Ａｕｔｈｏｒ ｆｏｒ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅꎻ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｗｅｉｑｉｌｉ＠ｍａｉｌ ｋｉｂ ａｃ ｃｎ
Ｒｅｃｅｉｖｅｄ ｄａｔｅ: ２０１４－０４－０６ꎬ Ａｃｃｅｐｔｅｄ ｄａｔｅ: ２０１４－０６－１０
作者简介: 李爱花 (１９８０－) 女ꎬ 工程师ꎬ 主要从事植物抗逆生理研究ꎮ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｌｉａｉｈｕａ１９８０＠１２６ ｃｏｍ
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ: Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓꎻ Ｗｏｕｎｄｉｎｇꎻ Ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄꎻ ＰＬＤδꎻ Ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｉｃ ａｃｉｄ
Ａｂｂｒｅｖｉａｔｉｏｎｓ: ＰＬＤꎬ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄꎻ ＤＧＤＧꎬ ｄｉｇａｌａｃｔｏｓｙｌｄｉａｃｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌꎻ ＥＳＩꎬ ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙ ｉｏｎｉｓａｔｉｏｎꎻ ＭＳ / ＭＳꎬ
ｔａｎｄｅｍ ｍａｓｓ ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙꎻ ＭＧＤＧꎬ ｍｏｎｏｇａｌａｃｔｏｓｙｌｄｉａｃｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌꎻ ＰＡꎬ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｉｃ ａｃｉｄꎻ ＰＣꎬ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｃｈｏ￣
ｌｉｎｅꎻ ＰＥꎬ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｅｔｈａｎｏｌａｍｉｎｅꎻ ＰＧꎬ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌꎻ ＰＩꎬ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｉｎｏｓｉｔｏｌꎻ ＰＳꎬ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｓｅｒｉｎｅꎻ
ＡＣＬꎬ ａｃｙｌ ｃｈａｉｎ ｌｅｎｇｔｈꎻ ＤＢＩꎬ ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘ
Ｈｅｒｂｉｖｏｒｅｓ ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｅ ａ ｔｈｒｅａｔ ｔｏ ｐｌａｎｔｓ ｂｙ ｉｎｄｕ￣
ｃｉｎｇ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ａｎｄ ｒａｐｉｄｌｙ ｄｅｓｔｒｏｙｉｎｇ ｐｌａｎｔ ｔｉｓｓｕｅｓ.
Ｐｌａｎｔｓ ｃａｎ ａｌｓｏ ｓｕｆｆｅｒ ｄａｍａｇｅ ｆｒｏｍ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ
ｓｔｒｅｓｓｅｓꎬ ｓｕｃｈ ａｓ ｗｉｎｄꎬ ｓａｎｄꎬ ｈａｉｌ ａｎｄ ｒａｉｎꎬ ｗｈｉｃｈ
ａｌｓｏ ｐｒｏｄｕｃｅ ｍｅｃｈａｎｉｃａｌ ｗｏｕｎｄｉｎｇꎻ ｔｈｉｓ ｉｎｄｕｃｅｓ
ｓｉｍｉｌａｒ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｔｏ ｔｈｏｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｂｙ ｈｅｒｂｉｖｏｒｅｓ
(Ｂｕｃｈａｎａｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００４). Ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇꎬ
ｐｌａｎｔｓ ａｄｏｐｔ ｂｏｔｈ ｄｉｒｅｃｔ ａｎｄ ｉｎｄｉｒｅｃｔ ｄｅｆｅｎｓｉｖｅ ｓｔｒａｔｅ￣
ｇｉｅｓ (Ｗａｓｔｅｒｎａｃｋ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００６). Ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｃａｕｓｅｓ
ｒａｐｉｄ ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄ (ＰＬＤ)￣ｍｅｄｉａｔｅｄ
ｈｙｄｒｏｌｙｓｉｓ ａｓ ａ ｒｅｓｕｌｔ ｏｆ ａ ｒａｐｉｄ ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｃｈｏ￣
ｌｉｎｅ ａｎｄ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｉｃ ａｃｉｄ (ＰＡ) (Ｒｙｕ ａｎｄ Ｗａｎｇꎬ
１９９６)ꎻ ｔｈｅ ｌａｔｔｅｒ ｉｓ ｕｓｅｄ ｆｏｒ ｔｈｅ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ ｊａｓｍｏｎ￣
ｉｃ ａｃｉｄꎬ ａ ｍａｉｎ ｒｅｓｐｏｎｄｅｒ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ (Ｗａｎｇ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２０００). Ｔｈｅ ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ｍｅｓｓｅｎｇｅｒ ＰＡ ｓｅｒｖｅｓ ａ
ｗｉｄｅ ｒａｎｇｅ ｏｆ ｓｉｇｎａｌｌｉｎｇ ｒｏｌｅｓ ｉｎ ｐｌａｎｔ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｔｏ
ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｓｔｒｅｓｓｅｓ (Ｗａｎｇꎬ ２００４). ＰＡ ｉｎｄｕｃ￣
ｔｉｏｎ ｂｙ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｏｂｓｅｒｖｅｄ ｉｎ ｓｅｖｅｒａｌ ｐｌａｎｔ
ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｃａｓｔｏｒ ｂｅａｎ ( Ｒｙｕ ａｎｄ Ｗａｎｇꎬ
１９９６)ꎬ ｔｏｍａｔｏꎬ ｓｏｙｂｅａｎꎬ ｓｕｎｆｌｏｗｅｒꎬ ｂｒｏａｄ ｂｅａｎꎬ
ｐｅｐｐｅｒ (Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９７)ꎬ ｔｏｂａｃｃｏ (Ｄｈｏｎｄｔ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２０００)ꎬ ａｎｄ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｔｈａｌｉａｎａ (Ｌｉｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７).
Ｍｕｌｔｉｐｌｅ ＰＬＤｓ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ ｉｎ ｖａｒｉｏｕｓ
ｐｌａｎｔ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｈａｎａｈａｎ ａｎｄ Ｃｈａｉｋｏｆｆꎬ １９４７ꎻ Ｑｉｎ ｅｔ
ａｌ.ꎬ １９９７ꎻ Ｗａｎｇꎬ ２０００ꎻ Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９４ꎻ Ｘｕ ｅｔ
ａｌ.ꎬ １９９７). Ｔｈｅ １２ ＰＬＤ ｇｅｎｅｓ ｆｒｏｍ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ
ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｇｒｏｕｐｅｄ ｉｎｔｏ ｓｉｘ ｃｌａｓｓｅｓ—ＰＬＤα (３)ꎬ β
(２)ꎬ γ (３)ꎬ δꎬ ε ａｎｄ ζ (２)—ｂａｓｅｄ ｏｎ ｔｈｅｉｒ ｓｅ￣
ｑｕｅｎｃｅ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｉｅｓ ａｎｄ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ
(Ｚｈａｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５). ＰＬＤαꎬ ＰＬＤβ ａｎｄ ＰＬＤγ
ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｅｄ ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｎ
Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ( Ｐａｐｐａｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９８ꎻ Ｐａｐｐａｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ
１９９７ａꎬ ｂꎻ Ｑｉｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９７ꎻ Ｗａｎｇꎬ １９９９). ＰＬＤα１
ａｎｄ ＰＬＤδ ａｒｅ ｔｈｅ ｔｗｏ ｍｏｓｔ ａｂｕｎｄａｎｔ ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ ｔｈｅ
Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ＰＬＤ ｆａｍｉｌｙ. Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ. (２０００) ｒｅｐｏｒ￣
ｔｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ＰＡ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｗｉｔｈｉｎ ５ ｍｉｎ ａｆｔｅｒ
ｗｏｕｎｄｉｎｇꎬ ａｎｄ ｔｈｅ ｍａｘｉｍｕｍ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｉｎ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ
ｏｆ ＰＡ ｂｅｔｗｅｅｎ ＰＬＤα１￣ｄｅｆｉｃｉｅｎｔ ａｎｄ ｗｉｌｄ ｔｙｐｅ ｌｅａｖｅｓ
ｏｃｃｕｒｒｅｄ １５ ｍｉｎ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇꎬ ｗｈｅｎ ｔｈａｔ ｉｎ ｔｈｅ
ＷＴ ｗａｓ ２ ５￣ｆｏｌｄ ｈｉｇｈｅｒ ｔｈａｎ ｔｈａｔ ｉｎ ｔｈｅ ＰＬＤα１￣ｄｅ￣
ｆｉｃｉｅｎｔ ｓｔｒａｉｎ (Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０００). ＰＬＤδ ｉｓ ｉｎ￣
ｖｏｌｖｅｄ ｉｎ ｄｅｈｙｄｒａｔｉｏｎ￣ ａｎｄ ｆｒｅｅｚｉｎｇ￣ ｉｎｄｕｃｅｄ ＰＡ ｆｏｒ￣
ｍａｔｉｏｎ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ (Ｋａｔａｇｉｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００１ꎻ Ｌｉ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２００８). ＰＬＤα１ ｃａｎ ｃｏｍｐｅｎｓａｔｅ ｆｏｒ ｔｈｅ ｌｏｓｓ ｏｆ
ＰＬＤδ ｉｎ ＰＬＤδ￣ＫＯ ｍｕｔａｎｔꎬ ａｎｄ ｔｈｅｓｅ ｔｗｏ ＰＬＤ ｉｓｏ￣
ｆｏｒｍｓ ｔｏｇｅｔｈｅｒ ｗｅｒｅ ｓｈｏｗｎ ｔｏ ａｃｃｏｕｎｔ ｆｏｒ ａｌｍｏｓｔ ａｌｌ
ｔｈｅ ｄｉｓｃｅｒｎｉｂｌｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｓｅｅｎ ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗａｔｅｒ ｄｅｆ￣
ｉｃｉｔ ( Ｂａｒｇｍａｎｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｗｈｅｔｈｅｒ
ａｎｄ ｉｆ ｓｏꎬ ｈｏｗ ＰＬＤδ ｉｓ ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ ｗｏｕｎｄｉｎｇ￣ｉｎ￣
ｄｕｃｅｄ ＰＡ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｒｅｍａｉｎｅｄ ｕｎｋｎｏｗｎ.
Ｗｉｔｈ ｔｈｅ ａｉｍ ｏｆ ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｔｈｅ ｒｏｌｅ ｏｆ ＰＬＤδ ｉｎ
ｌｉｐｉｄ ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇꎬ ｌｉｐｉｄｏｍｉｃ
ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ ｗａｓ ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｆｏｒ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｌｅａｖｅｓ ｉｎ ｔｈｅ
Ｗａｓｓｉｌｅｗｓｋｉｊａ (ＷＳ) ａｎｄ ＰＬＤδ ｋｎｏｃｋｏｕｔ ( ＰＬＤδ￣
ＫＯ) ｇｅｎｏｔｙｐｅｓꎬ ｗｉｔｈ ａｎｄ ｗｉｔｈｏｕｔ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｔｒｅａｔ￣
ｍｅｎｔ. Ｗｅ ｕｓｅｄ ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ ｍｅｔｈｏｄｓꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ
ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ａｎａｌｙｓｉｓ (ＰＣＡ) ａｎｄ Ｋ￣ｍｅａｎｓ /
ｍｅｄｉａｎｓ ｃｌｕｓｔｅｒｉｎｇꎬ ｔｏ ａｎａｌｙｓｅ ｔｈｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｏｆ ＰＬＤδ
ｉｎ ｗｏｕｎｄｉｎｇ￣ｉｎｄｕｃｅｄ ｌｉｐｉｄ ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ. Ｏｕｒ ｒｅｓｕｌｔｓ
ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ａｂｏｕｔ ２０％ ｏｆ ＰＡ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｕｐｏｎ
ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｗａｓ ａｔｔｒｉｂｕｔａｂｌｅ ｔｏ ＰＬＤδ ａｔ ｔｈｅ ｔｉｍｅ ｏｆ
ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌｌｙ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｉｎ ｉｔｓ ｌｅｖｅｌ ｂｅｔｗｅｅｎ
ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ. Ｍｏｒｅｏｖｅｒꎬ ａｎ ａｂｓｅｎｃｅ ｏｆ ＰＬＤδ
ｓｌｏｗｅｄ ｔｈｅ ＰＡ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ. Ｔｈｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ
ｏｆ ｄｅｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ａｃｙｌ ｃｈａｉｎ ｌｅｎｇｔｈ ｉｎ ｍｅｍｂｒａｎｅ
ｌｉｐｉｄｓ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｗｅｒｅ ａｌｓｏ ｄｉｓｃｕｓｓｅｄ.
１ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ ａｎｄ ｍｅｔｈｏｄｓ
１ １ Ｐｌａｎｔ ｍａｔｅｒｉａｌꎬｗｏｕｎｄ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ａｎｄ ｓａｍｐｌｉｎｇ
Ｌｅａｖｅｓ ｆｒｏｍ ａｐｐｒｏｘｉｍａｔｅｌｙ ｆｉｖｅ￣ｗｅｅｋ￣ｏｌｄ Ａｒａｂｉ￣
ｄｏｐｓｉｓ ｐｌａｎｔｓ ｏｆ ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ ｉｎ ａ ＷＳ ｂａｃｋ￣
ｇｒｏｕｎｄ ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ ｆｏｒ ｔｈｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ ｋｉｎｅｔｉｃ ａ￣
９２４４期 Ｌｉ Ａｉ￣ｈｕａ ｅｔ ａｌ.: Ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄδ ｉｓ Ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ Ｗｏｕｎｄｉｎｇ￣Ｉｎｄｕｃｅｄ Ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｉｃ Ａｃｉｄ Ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｉｎ
ｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ. Ｔｈｅ ｌｏｓｓ ｏｆ ＰＬＤδ ｉｎ ｔｈｅ
ＰＬＤδ￣ＫＯ ｍｕｔａｎｔ ｏｆ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｐｒｏｖｅｄ ｂｙ
ｔｈｅ ａｂｓｅｎｃｅ ｏｆ ｉｔｓ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔꎬ ｐｒｏｔｅｉｎ ａｎｄ ａｃｔｉｖｉｔｙ
(Ｚｈａｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００３). Ｔｈｅ ｐｌａｎｔｓ ｗｅｒｅ ｃｕｌｔｉｖａｔｅｄ ｉｎ
ａ ｗａｌｋ￣ｉｎ ｃｈａｍｂｅｒ ａｔ ２０－２３ ℃ꎬ ｗｉｔｈ ａ ｌｉｇｈｔ ｉｎｔｅｎｓｉ￣
ｔｙ ｏｆ １２０ μｍｏｌ ｍ－２ｓ－１ꎬ ａ １２￣ｈ ｐｈｏｔｏｐｅｒｉｏｄ ａｎｄ ６０％
ｒｅｌａｔｉｖｅ ｈｕｍｉｄｉｔｙ. Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎꎬ ｔｈｅｙ ｗｅｒｅ ｆｕｌｌｙ ｗａ￣
ｔｅｒｅｄ ｆｏｒ ｆｉｖｅ ｗｅｅｋｓ ｕｎｔｉｌ ｔｈｅ ｂｅｇｉｎｎｉｎｇ ｏｆ ｔｈｅ ｅｘｐｅｒｉ￣
ｍｅｎｔｓ. Ｔｈｅ ｍｅｔｈｏｄ ｏｆ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｗａｓ ｔｈｅ
ｓａｍｅ ａｓ ｔｈａｔ ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ ｂｙ Ｌｉｎｇ ｅｔ ａｌ. (２００７).
１ ２ Ｌｉｐｉｄ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎꎬ ＥＳＩ￣ＭＳ/ ＭＳ ａｎｄ ｄａｔａ ｐｒｏ￣
ｃｅｓｓｉｎｇ
Ｌｉｐｉｄ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎꎬ ｓａｍｐｌｅ ａｎａｌｙｓｉｓ ａｎｄ ｄａｔａ ｐｒｏ￣
ｃｅｓｓｉｎｇ ｗｅｒｅ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ａｓ ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ ｗｉｔｈ
ｍｉｎｏｒ ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｓ (Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８ꎻ Ｗｅｌｔｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２００２). Ｂｒｉｅｆｌｙꎬ ｔｈｅ ｌｅａｖｅｓ ｗｅｒｅ ｈａｒｖｅｓｔｅｄ ａｔ ｔｈｅ
ｓａｍｐｌｉｎｇ ｔｉｍｅ ａｎｄ ｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄ ｉｍｍｅｄｉａｔｅｌｙ ｉｎｔｏ ２ ｍＬ
ｏｆ ｉｓｏｐｒｏｐａｎｏｌ ｗｉｔｈ ０ ０１％ ｂｕｔｙｌａｔｅｄ ｈｙｄｒｏｘｙｔｏｌｕｅｎｅ
ａｔ ７５ ℃ . Ｔｈｅ ｔｉｓｓｕｅ ｗａｓ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｗｉｔｈ ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ /
ｍｅｔｈａｎｏｌ (２ ∶ １) ｔｈｒｅｅ ａｄｄｉｔｉｏｎａｌ ｔｉｍｅｓ ｗｉｔｈ ２ ｈ ｏｆ
ａｇｉｔａｔｉｏｎ ｅａｃｈ ｔｉｍｅ. Ｔｈｅ ｒｅｍａｉｎｉｎｇ ｐｌａｎｔ ｔｉｓｓｕｅ ｗａｓ
ｈｅａｔｅｄ ｏｖｅｒｎｉｇｈｔ ａｔ １０５ ℃ ａｎｄ ｗｅｉｇｈｅｄ. Ｌｉｐｉｄ ｓａｍ￣
ｐｌｅｓ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｓｅｄ ｕｓｉｎｇ ａ ｔｒｉｐｌｅ ｑｕａｄｒｕｐｏｌｅ ｔａｎｄｅｍ
ｍａｓｓ ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ (ＭＳ / ＭＳ) ｅｑｕｉｐｐｅｄ ｆｏｒ ｅｌｅｃｔｒｏｓ￣
ｐｒａｙ ｉｏｎｉｓａｔｉｏｎ (ＥＳＩ). Ｔｈｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ｅａｃｈ ｃｌａｓｓ ｗｅｒｅ
ｑｕａｎｔｉｆｉｅｄ ｂｙ ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｗｉｔｈ ｔｗｏ ｉｎｔｅｒｎａｌ ｓｔａｎｄａｒｄｓ
ｆｏｒ ｔｈｅ ｃｌａｓｓ. Ｄａｔａ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ａｓ ｐｒｅ￣
ｖｉｏｕｓｌｙ ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ (Ｗｅｌｔｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２). Ｆｉｖｅ ｒｅｐｌｉ￣
ｃａｔｅｓ ｆｒｏｍ ｅａｃｈ ｓａｍｐｌｉｎｇ ｔｉｍｅ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｓｅｄ. Ａ Ｑ￣
ｔｅｓｔ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｏｎ ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ａｍｏｕｎｔ ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｉｎ
ｅａｃｈ ｈｅａｄ￣ｇｒｏｕｐ ｃｌａｓｓꎬ ａｎｄ ｄａｔａ ｆｒｏｍ ｄｉｓｃｏｒｄａｎｔ
ｓａｍｐｌｅｓ ｗｅｒｅ ｒｅｍｏｖｅｄ (Ｗｅｌｔｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２). Ｔｈｅ
ｄａｔａ ｗｅｒｅ ｓｕｂｊｅｃｔｅｄ ｔｏ ｏｎｅ￣ｗａｙ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｖａｒｉａｎｃｅ
(ＡＮＯＶＡ) ｕｓｉｎｇ ＳＰＳＳ １６ ０. Ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ
ｗａｓ ｔｅｓｔｅｄ ｂｙ Ｆｉｓｈｅｒ’ ｓ ｌｅａｓｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ
(ＬＳＤ) ｍｅｔｈｏｄ. Ｔｈｅ ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘ (ＤＢＩ) ｗａｓ
ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ｕｓｉｎｇ ｔｈｅ ｆｏｒｍｕｌａ: ＤＢＩ＝(∑[Ｎ × ｍｏｌ％
ｌｉｐｉｄ]) / １００ꎬ ｗｈｅｒｅ Ｎ ｉｓ ｔｈｅ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｄｏｕｂｌｅ ｂｏｎｄｓ
ｉｎ ｅａｃｈ ｌｉｐｉｄ ｍｏｌｅｃｕｌｅ (Ｒａｗｙｌｅｒ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９). Ａｃｙｌ
ｃｈａｉｎ ｌｅｎｇｔｈ (ＡＣＬ) ｗａｓ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ｕｓｉｎｇ ａ ｆｏｒｍｕｌａ
ｄｅｒｉｖｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ＤＢＩ ｃａｌｃｕｌａｔｉｏｎ ａｂｏｖｅ: ＡＣＬ ＝ (∑
[ＮＣ × ｍｏｌ％ ｌｉｐｉｄ]) / １００ꎬ ｗｈｅｒｅ ＮＣ ｉｓ ｔｈｅ ｎｕｍｂｅｒ
ｏｆ ｃａｒｂｏｎ ａｔｏｍｓ ｉｎ ｅａｃｈ ｌｉｐｉｄ ｍｏｌｅｃｕｌｅ.
Ｔｈｅ ｌｉｐｉｄ ｃｏｎｔｅｎｔｓ ｏｆ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｅｒｅ
ｕｓｅｄ ｆｏｒ ａｓｓｅｓｓｉｎｇ ｔｈｅ ｄｉffｅｒｅｎｃｅｓ ａｍｏｎｇ ｔｈｅ ｓａｍｐｌｅｓ
(ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ ａｎｄ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ) ｂｙ ＰＣＡ ｗｉｔｈ ＳＰＳＳ １６ ０.
Ｍｏｒｅ ｔｈａｎ １２０ ｌｉｐｉｄ ｃｏｎｔｅｎｔｓ ｏｆ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｗｅｒｅ ｔｒａｎｓｆｏｒｍｅｄ ｔｏ ａ ｎｅｗ ｓｅｔ ｏｆ ｖａｒｉａｂｌｅｓꎬ ｔｈｅ ｐｒｉｎ￣
ｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｗｅｒｅ ｏｒｄｅｒｅｄ ｓｏ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｆｅｗ
ｒｅｔａｉｎ ｍｏｓｔ ｏｆ ｔｈｅ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｐｒｅｓｅｎｔ ｉｎ ａｌｌ ｏｆ ｔｈｅ ｏｒｉｇｉ￣
ｎａｌ ｖａｒｉａｂｌｅｓ (Ｊｏｌｌｉｆｆｅꎬ ２００５).
２ Ｒｅｓｕｌｔｓ
２ １ Ａ ｔｈａｌｉａｎａ ａｌｔｅｒｅｄ ｉｔｓ ｌｉｐｉｄ ｃｏｎｔｅｎｔ ａｎｄ ｃｏｍ￣
ｐｏｓｉｔｉｏｎ ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ
Ｔｈｅ ｗｏｕｎｄｅｄ ｌｅａｖｅｓ ｏｆ ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ ｗｅｒｅ
ｓａｍｐｌｅｄ ０ ａｎｄ ３０ ｍｉｎꎬ ａｎｄ １ꎬ ３ ａｎｄ ６ ｈ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎ￣
ｄｉｎｇ. Ｌｉｐｉｄｓ ｗｅｒｅ ｐｒｏｆｉｌｅｄ ｂｙ ａ ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ ａｐｐｒｏａｃｈ
ｂａｓｅｄ ｏｎ ＥＳＩ￣ＭＳ / ＭＳ. Ｗｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅｌｙ
ｍｏｒｅ ｔｈａｎ １２０ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ ｇｌｙｃｅｒｏｌｉｐｉｄｓꎬ
ｗｈｉｃｈ ｉｎｃｌｕｄｅｄ ｓｉｘ ｈｅａｄ￣ｇｒｏｕｐ ｃｌａｓｓｅｓ ｏｆ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐ￣
ｉｄｓ: ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｃｈｏｌｉｎｅ (ＰＣ)ꎬ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｅｔｈａｎ￣
ｏｌａｍｉｎｅ ( ＰＥ)ꎬ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｉｎｏｓｉｔｏｌ ( ＰＩ)ꎬ ｐｈｏｓ￣
ｐｈａｔｉｄｙｌｓｅｒｉｎｅ ( ＰＳ)ꎬ ＰＡ ａｎｄ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌ
(ＰＧ)ꎻ ａｓ ｗｅｌｌ ａｓ ｔｗｏ ｈｅａｄ￣ｇｒｏｕｐ ｃｌａｓｓｅｓ ｏｆ ｇａｌａｃｔｏ￣
ｌｉｐｉｄｓ: ｍｏｎｏｇａｌａｃｔｏｓｙｌｄｉａｃｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌ ( ＭＧＤＧ) ａｎｄ
ｄｉｇａｌａｃｔｏｓｙｌｄｉａｃｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌ (ＤＧＤＧ). Ｅａｃｈ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｗａｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｉｎ ｔｅｒｍｓ ｏｆ ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ
ａｃｙｌ ｃａｒｂｏｎ ａｔｏｍｓ ａｎｄ ｄｏｕｂｌｅ ｂｏｎｄｓ (Ｗｅｌｔｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２００２). Ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ａｍｏｕｎｔ ｏｆ ｌｉｐｉｄ ａｎｄ ｔｈｅ ａｖｅｒａｇｅ
ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ ｅａｃｈ ｈｅａｄ￣ｇｒｏｕｐ ｃｌａｓｓ
ａｒｅ ｓｈｏｗｎ ｉｎ Ｔａｂｌｅ １ ａｎｄ Ｆｉｇ １.
Ｔｈｅ ｌｉｐｉｄ ｃｏｎｔｅｎｔ ｃｈａｎｇｅｄ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｉｎ ｔｈｅ
ｌｅａｖｅｓ ｏｆ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｏｆ ｂｏｔｈ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ ｕｐｏｎ ｗｏｕｎ￣
ｄｉｎｇ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ. Ｔｈｅ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ＤＧＤＧꎬ ＭＧＤＧꎬ ＰＣ
ａｎｄ ＰＩ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅ ｐｅｒｉｏｄ ａｆｔｅｒ
ｗｏｕｎｄｉｎｇ. Ｔｈｅ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓꎬ ＰＧꎬ ＰＣꎬ ＰＥ
ａｎｄ ＰＩꎬ ｄｅｇｒａｄｅｄ ｍｕｃｈ ｍｏｒｅ ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎ￣
ｄｉｎｇ ｉｎ ＰＬＤδ￣ＫＯ ｔｈａｎ ｔｈｏｓｅ ｉｎ ＷＳ. Ｉｔ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ
ｔｈａｔ ｔｈｅ ａｂｓｅｎｃｅ ｏｆ ＰＬＤδ ｍｉｇｈｔ ｅｎｈａｎｃｅ ｔｈｅ ｄｅｇｒａ￣
ｄａｔｉｏｎ ｏｆ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎ￣
ｄｉｎｇ. Ｔｈｅ ｌｉｐｉｄ ｃｌａｓｓ ｔｈａｔ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈｅ ｌａｒｇｅｓｔ ｃｈａｎｇｅ
ｉｎ ａｂｓｏｌｕｔｅ ａｍｏｕｎｔ ｗａｓ ＰＡꎬ ｗｈｉｃｈ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｓｈａｒｐｌｙ
ｗｉｔｈｉｎ １ ｈ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｔｒｅａｔｍｅｎｔꎬ ａｎｄ ｔｈｅｎ ｇｒａｄｕ￣
０３４ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３７卷
ａｌｌｙ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｉｎ ｂｏｔｈ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ. Ｉｔｓ ｌｅｖｅｌ ｗａｓ ｈｉｇｈｅｒ
ｉｎ ＷＳ ｔｈａｎ ｉｎ ＰＬＤδ￣ＫＯ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｌｅａｖｅｓ ａｔ ３０ ｍｉｎꎬ
１ ｈ ａｎｄ ３ ｈ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ (Ｔａｂｌｅ １). Ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ
ＰＡ ｒｏｓｅ ｓｈａｒｐｌｙ ｂｙ ｎｉｎｅ￣ ｏｒ ｔｈｉｒｔｅｅｎ￣ｆｏｌｄ ａｔ １ ｈ ｉｎ
ＷＳ ａｎｄ ａｔ ３ ｈ ｉｎ ＰＬＤδ￣ＫＯ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇꎬ ｒｅｓｐｅｃ￣
ｔｉｖｅｌｙ (Ｔａｂｌｅ １). Ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ ｍｏｒｅ ｔｈａｎ １２０ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ｔｈｅ ｌｅａｖｅｓ ｏｆ ｂｏｔｈ ＷＳ
ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓꎬ ｉｎ ｔｅｒｍｓ ｏｆ ｔｈｅｉｒ ａｂｓｏｌｕｔｅ
ｃｏｎｔｅｎｔｓ (Ｆｉｇ １)ꎬ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｍｏｌｅｃｕ￣
ｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ３４∶６￣ＭＧＤＧ ａｎｄ ３６∶６￣ＤＧＤＧꎬ ａｓ ｗｅｌｌ ａｓ
ａｌｌ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ ＰＣꎬ ＰＧ ａｎｄ ＰＩꎬ
ｄｅｃｌｉｎｅｄ ｔｈｒｏｕｇｈｏｕｔ ｔｈｅ ｔｅｓｔｅｄ ｐｅｒｉｏｄ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ.
Ｍｅａｎｗｈｉｌｅꎬ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ａｌｌ ＰＡ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ￣
ｃｒｅａｓｅｄ ｉｎ ｂｏｔｈ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ. Ｇｉｖｅｎ ｔｈａｔ ３４ ∶ ４￣ＰＧ ｗａｓ
ｔｈｅ ｏｎｌｙ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｗｉｔｈ ３４ ∶ ４ ａｃｙｌｓ
(Ｆｉｇ １)ꎬ ｉｔ ｗａｓ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｗｏｕｎｄ￣
ｉｎｄｕｃｅｄ ３４ ∶ ４￣ＰＡ ｗａｓ ｄｅｒｉｖｅｄ ｆｒｏｍ ＰＬＤ￣ｍｅｄｉａｔｅｄ
ｃｏｎｖｅｒｓｉｏｎ ｆｒｏｍ ＰＧ. Ｉｎ ｆａｃｔꎬ ａｌｌ ｏｆ ｔｈｅ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅ￣
ｃｉｅｓ ｏｆ ＰＡ ｔｈａｔ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｍｉｇｈｔ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｄｅｒｉｖｅｄ
ｆｒｏｍ ＰＬＤ￣ｍｅｄｉａｔｅｄ ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ＰＣꎬ ＰＥꎬ ＰＧꎬ ＰＩ
ａｎｄ ＰＳ (Ｗａｎｇꎬ ２００５). Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ＰＡ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅ￣
ｃｉｅｓ ａｐｐｅａｒｅｄ ｔｏ ｒｅｆｌｅｃｔ ｔｈｅ ｒａｐｉｄ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｏｆ ｐｈｏｓｐｈｏ￣
ｌｉｐｉｄｓ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｄａｍａｇｅ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｌｅａｖｅｓ.
２ ２ Ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ａｎａｌｙｓｉｓ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｄｉｆ￣
ｆｅｒｅｎｔ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ｔｏ ｗｏｕｎ￣
ｄｉｎｇ
Ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ａｍｏｎｇ ｔｈｅ ｓａｍｐｌｅｓ ( ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ ａｎｄ
ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ) ｗｅｒｅ ａｓｓｅｓｓｅｄ ｕｓｉｎｇ ＰＣＡ ｗｉｔｈ ＳＰＳＳ １６ ０
Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ ｔｈｉｓ ａｎａｌｙｓｉｓ ｈｉｇｈｌｉｇｈｔｅｄ ｍａｊｏｒ ｓｔａｔｉｓｔｉ￣
ｃａｌｌｙ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉffｅｒｅｎｃｅｓ ａｍｏｎｇ ｔｈｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｐｅｒｉ￣
ｏｄｓ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ. Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｔｈｅ ｄａｔａｓｅｔ ａｌｌｏｗｅｄ
ｔｈｅ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｏｆ ｎｉｎｅ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｔｈａｔ ｅｘ￣
ｐｌａｉｎｅｄ １００％ ｏｆ ｔｈｅ ｖａｒｉａｎｃｅ ｉｎ ｔｈｅ ｓｙｓｔｅｍ (Ｔａｂｌｅ
２). Ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｔｈｒｅｅ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓꎬ ｗｈｉｃｈ ａｒｅ ｕｓｅｄ ｆｏｒ
ｐｌｏｔｔｉｎｇ ｔｈｅ ｓｃｏｒｅｓ ａｎｄ ｌｏａｄｉｎｇｓꎬ ｅｘｐｌａｉｎｅｄ ７５％ ｏｆ
ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ｖａｒｉａｎｃｅ (Ｔａｂｌｅ ２). Ｆｉｇ ２ ｄｅｐｉｃｔｓ ｔｗｏ ｓｃｏｒｅ
ｐｌｏｔｓ.
Ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ １ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｓ ｔｈｅ ｌｉｐｉｄ ｓｐｅ￣
ｃｉｅｓ ｏｆ ＰＡ ｗｈｉｃｈ ａｒｅ ｔｈｅ ｃｌａｓｓ ｅｘｈｉｂｉｔｅｄ ｔｈｅ ｌａｒｇｅｓｔ
ｃｈａｎｇｅｓ ａｎｄ ｔｈｅ ｌｉｐｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ ＰＣ ｗｈｉｃｈ ａｒｅ ｍｏｓｔ
ａｂｕｎｄａｎｔ ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄ
ｃｌａｓｓｅｓ (Ｔａｂｌｅ ３)ꎻ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ２ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｓ
Ｔａｂｌｅ １ Ａｍｏｕｎｔ ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｉｎ ｅａｃｈ ｈｅａｄ￣ｇｒｏｕｐ ｃｌａｓｓ ｉｎ ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｌｅａｖｅｓ ａｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｔｉｍｅｓ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ. Ｔｈｅ ｐｅｒｃｅｎｔａｇｅ
ｏｆ ｍａｘｉｍｕｍ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｃｈａｎｇｅ ｉｎ ｌｉｐｉｄｓ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ (Ｍａｘ ＲＣ) ｉｓ ｔｈｅ ｖａｌｕｅ ｆｏｒ ｔｈｅ ｍａｘｉｍｕｍ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅ ｖａｌｕｅｓ ｏｆ Ｃｏｎｔｒｏｌ
ａｎｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｐｅｒｉｏｄ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇꎬ ｄｉｖｉｄｅｄ ｂｙ ｔｈｅ ｖａｌｕｅ ｏｆ Ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｎｅ. Ｖａｌｕｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｒｏｗ ｗｉｔｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ
ａｒｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ (Ｐ < ０ ０５) . Ｖａｌｕｅｓ ａｒｅ ｍｅａｎｓ ± ｓｔａｎｄａｒｄ ｄｅｖｉａｔｉｏｎ (ｎ＝ ４ ｏｒ ５)
Ｌｉｐｉｄ
ｃｌａｓｓ Ｇｅｎｏｔｙｐｅ
Ｌｉｐｉｄ / ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔ (ｎｍｏｌ / ｍｇ)
０ ３０ ｍｉｎ １ ｈ ３ ｈ ６ ｈ
Ｍａｘ ＲＣ
/ ％
ＤＧＤＧ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
３５ ９８ ± １ ２４ａ
３１ ２４ ± １ １４ａ
３０ ９ ± ２ ９２ｂ
２８ ３ ± ３ ４６ａｂ
３０ ４２ ± ２ ２１ｂｃ
２６ ６２ ± ２ ３９ｂ
２７ ５２ ± ０ ７３ｃ
２６ ８ ± ４ ４４ｂ
２８ ０６ ± ２ ０９ｃ
２８ ７７ ± １ ７ａｂ
－２３ ５
－１４ ８
ＭＧＤＧ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
１５９ ３７ ± ３ ５３ａ
１４９ ４９ ± １０ ３ａ
１３３ ４１ ± １５ ３ｂ
１２５ ４７ ± １３ ２４ｂ
１２１ ６１ ± ２８ ３９ｂ
１１５ ６１ ± １１ ４８ｂ
１２１ ４２ ± １１ ７５ｂ
１１８ １ ± １４ ８５ｂ
１１８ ７７ ± ８ ７１ｂ
１１７ ５７ ± １１ ４１ｂ
－２３ ８
－２２ ７
ＰＧ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
１１ ２ ± １ ４４ａ
１１ ５ ± ０ ２９ａ
１０ ５１ ± １ ４７ａ
９ ４９ ± １ １ｂ
１０ ６１ ± ０ ７１ａ
７ ７ ± ０ ３４ｃ
９ ９８ ± ２ １５ａ
８ ６４ ± ０ ９８ｂｃ
９ １６ ± １ ６４ａ
７ ５４ ± １ ８７ｃ
—
－３４ ４
ＰＣ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
１３ ９４ ± １ ６２ａ
１４ ５ ± １ ７２ａ
１２ ７９ ± １ ９４ａｂ
１２ １９ ± １ ３ｂ
１２ ０３ ± ２ ０５ａｂ
１０ ２６ ± ０ １４ｂ
１１ １２ ± ３ ７２ｂ
１０ ５７ ± ０ ４３ｂ
１０ ４３ ± ０ ８ｂ
１１ ４９ ± １ ２５ｂ
－２５ ２
－２９ ２
ＰＥ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
４ ３７ ± １ ０５ａ
５ ５３ ± １ ２６ａ
５ １１ ± １ ５２ａ
５ ３７ ± ０ ９７ａｂ
４ ７４ ± １ ２１ａ
３ ７１ ± ０ ４４ｂ
４ ６２ ± １ ５１ａ
４ １３ ± ０ ７８ａｂ
４ ４ ± ０ ６４ａ
４ ５７ ± ２ ４５ａｂ
—
－３２ ９
ＰＩ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
２ ２８ ± ０ ２８ａｂ
２ ３５ ± ０ １ａ
２ ４７ ± ０ １２ａｂ
２ １５ ± ０ ３１ａ
２ ５６ ± ０ ４８ａ
１ ７２ ± ０ ２８ｂ
２ ２４ ± ０ ０６ａｂ
２ ０４ ± ０ ２７ａｂ
２ １７ ± ０ １６ｂ
２ ３４ ± ０ ２３ａ
－４ ８
－２６ ８
ＰＳ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
０ ２７ ± ０ ０６ａ
０ ２９ ± ０ ０５ａｂ
０ ３３ ± ０ ０９ａ
０ ３３ ± ０ ０５ａ
０ ２９ ± ０ ０６ａ
０ ２４ ± ０ ０５ａｂ
０ ２９ ± ０ ０９ａ
０ ２３ ± ０ ０４ｂ
０ ２４ ± ０ ０３ａ
０ ２５ ± ０ １６ａｂ
—
—
ＰＡ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
０ ４ ± ０ ０６ｃ
０ ２３ ± ０ ２ｄ
２ ９８ ± ０ ３６ｂ
２ ３１ ± ０ ２４ｃ
４ １７ ± １ ３２ａ
２ ８５ ± ０ ０６ｂ
４ １１ ± １ ２１ａ
３ ３１ ± ０ ４５ａ
２ ６８ ± ０ ７８ｂ
２ ９４ ± ０ ３５ａｂ
９４２ ５
１３３９ １
１３４４期 Ｌｉ Ａｉ￣ｈｕａ ｅｔ ａｌ.: Ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄδ ｉｓ Ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ Ｗｏｕｎｄｉｎｇ￣Ｉｎｄｕｃｅｄ Ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｉｃ Ａｃｉｄ Ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｉｎ
Ｆｉｇ １ Ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ＷＳ (Ａ) ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ (Ｂ)ꎬ
ｉｎ ｔｅｒｍｓ ｏｆ ａｂｓｏｌｕｔｅ ｃｏｎｔｅｎｔｓ. Ｖａｌｕｅｓ ａｒｅ ｍｅａｎｓ ± ｓｔａｎｄａｒｄ ｄｅｖｉａｔｉｏｎ (ｎ＝ ４ ｏｒ ５)
２３４ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３７卷
Ｔａｂｌｅ ２ Ｔｈｅ ｎｉｎｅ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｂｙ
ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ａｎａｌｙｓｉｓ
Ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ
Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ｓｕｍｓ ｏｆ ｓｑｕａｒｅｄ ｌｏａｄｉｎｇｓ
Ｔｏｔａｌ ％ ｏｆ Ｖａｒｉａｎｃｅ Ｃｕｍｕｌａｔｉｖｅ ％
１ ５１ ８３７ ４２ １４４ ４２ １４４
２ ２４ ７０２ ２０ ０８３ ６２ ２２７
３ １５ ７８９ １２ ８３６ ７５ ０６４
４ ８ ８８４ ７ ２２３ ８２ ２８６
５ ６ ７２１ ５ ４６４ ８７ ７５０
６ ５ １５５ ４ １９１ ９１ ９４２
７ ４ ２３７ ３ ４４５ ９５ ３８７
８ ３ ５１７ ２ ８５９ ９８ ２４６
９ ２ １５８ １ ７５４ １００ ０００
ｔｈｅ ｍａｉｎ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ｌｉｐｉｄｓꎬ ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧ￣
ＤＧ (Ｆｉｇ ２)ꎻ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ３ ｂａｓｉｃａｌｌｙ ｒｅｐｒｅ￣
ｓｅｎｔｓ ｌｉｐｉｄｓ ＰＥ ａｎｄ ＰＳꎬ ｗｈｉｃｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｅ ｔｈｅ ｔｗｏ
ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ (Ｆｉｇ ２). Ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ａｎｄ ｌｏｗｅｓｔ ｌｏａｄｉｎｇ
ｖａｌｕｅｓ (Ｔａｂｌｅ ３) ａｒｅ ｔｈｅ ｌｉｐｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ｔｈａｔ ａｒｅ ｍｏｓｔ
ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｉｎ ｔｈｅ ａｓｓｉｇｎｍｅｎｔ ｏｆ ｅａｃｈ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏ￣
ｎｅｎｔ. Ｅｘａｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｌｏａｄｉｎｇｓ (Ｔａｂｌｅ ３) ｃｌｅａｒｌｙ ｒｅ￣
ｖｅａｌｓ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｓｅｐａｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｐｏｉｎｔｓ ｆｏｒ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ
ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ａｎｄ ｆｏｒ ｔｈｅ ｔｉｍｉｎｇ ｏｆ ３０ ｍｉｎ ｆｒｏｍ ｔｈｏｓｅ ｆｏｒ
１ꎬ ３ ａｎｄ ６ ｈ ａｌｏｎｇ ｔｈｅ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ １ ｒｅｓｕｌｔｓ
ｐｒｉｍａｒｉｌｙ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ＰＡ ａｎｄ ＰＣ. Ｔｈｅｒｅ ｗｅｒｅ
ｌｏｗｅｒ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ＰＡ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｎｄ ｈｉｇｈｅｒ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ＰＣ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ ｆｒｅｓｈ ａｎｄ ３０ ｍｉｎ ｐｏｓｔ￣ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｌｅａｖｅｓ
ｔｈａｎ ｔｈｏｓｅ ｉｎ ｌｅａｖｅｓ ｏｆ ｂｏｔｈ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ ｆｒｏｍ ｏｔｈｅｒ ｐｅ￣
ｒｉｏｄｓ ｐｏｓｔ￣ｗｏｕｎｄｉｎｇ. Ｔｈｉｓ ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｔｈａｔ ｔｈｅｓｅ ａｒｅ ｔｈｅ
ｍｏｓｔ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｌｉｐｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ｆｏｒ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｂｅ￣
ｔｗｅｅｎ ｔｈｅ ｄｉｓｔｉｎｃｔ ｐｅｒｉｏｄｓ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ. Ｐｒｉｎｃｉｐａｌ
ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ３ ｃｌｅａｒｌｙ ｄｅｓｃｒｉｂｅｓ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｂｅｔｗｅｅｎ
ｔｈｅ ｔｗｏ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓꎬ ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ ( Ｆｉｇ ２Ｂ).
Ｅｘａｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｌｏａｄｉｎｇｓ (Ｔａｂｌｅ ３) ｒｅｖｅａｌｓ ｔｈａｔ ｔｈｅ
ｓｅｐａｒａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ ａｌｏｎｇ ｔｈｅ
ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ３ ａｘｉｓ ｒｅｓｕｌｔｓ ｐｒｉｍａｒｉｌｙ ｆｒｏｍ ｔｈｅ
ｈｉｇｈｅｒ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ＰＳ ａｎｄ ＰＥ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ ＰＬＤδ￣ＫＯ ａｎｄ
ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｒ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ３２∶１￣ ａｎｄ ３４ ∶ １￣ＰＧꎬ ａｎｄ ３４ ∶ ２￣
ＤＧＤＧ ｉｎ ＷＳ (Ｆｉｇ ２)ꎬ ｗｈｉｃｈ ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｔｈａｔ ｔｈｅｓｅ
ｓｐｅｃｉｅｓ ａｒｅ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｉｎ ｔｈｅ ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ ｄｉffｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ
ｏｆ ＷＳ ｆｒｏｍ ＰＬＤδ￣ＫＯ.
Ｐｌｏｔ ｏｆ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ １ ａｇａｉｎｓｔ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ
ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ２ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ａｎｄ ｄｉｓｔａｎｃｅｓ
ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅ ｔｗｏ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ ａｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｔｉｍｅｓ ａｆｔｅｒ
ｗｏｕｎｄｉｎｇ (Ｆｉｇ ２Ａ). Ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣
ＫＯ ｃｌｕｓｔｅｒ ｔｏｇｅｔｈｅｒꎬ ａｎｄ ｔｈｅ ｐｏｉｎｔｓ ｆｏｒ ３０ ｍｉｎ ｐｏｓｔ￣
ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｏｆ ｔｈｅ ｔｗｏ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ ａｌｓｏ ｃｌｕｓｔｅｒ ｔｏｇｅｔｈｅｒ.
Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅ ｐｏｉｎｔｓ ｆｏｒ ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ ａｔ １ ｈ
ａｎｄ ３ ｈ ａｒｅ ｓｃａｔｔｅｒｅｄ ｕｎｔｉｌ ａｔ ６ ｈ ｗｈｅｎ ｔｈｅｙ ｃｌｕｓｔｅｒ
ｔｏｇｅｔｈｅｒ ａｇａｉｎ (Ｆｉｇ ２Ａ). Ｔｈｅｓｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｏｆ ｓｅｐａｒａ￣
ｔｉｏｎ ａｎｄ ｃｌｕｓｔｅｒｉｎｇ ｂａｓｉｃａｌｌｙ ｏｃｃｕｒ ａｌｏｎｇ ｔｈｅ ｐｒｉｎｃｉ￣
ｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ １ꎬ ｗｈｉｃｈ ｓｕｇｇｅｓｔｓ ｔｈａｔ ＰＡ ａｎｄ ＰＣ
ｍａｉｎｌｙ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅ ｔｈｅｓｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｏｆ ｖａｒｉａｔｉｏｎ. Ａｌｏｎｇ
ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ３ ( Ｆｉｇ ２Ｂ)ꎬ ｔｈｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ
ｂｅｔｗｅｅｎ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ ｉｎ ｓａｍｅ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｗｅｒｅ ｌａｒｇｅｒ
ｔｈａｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ ｉｎ ｓａｍｅ ｇｅｎｏｔｙｐｅ. Ｔｈｉｓ ｓｕｇ￣
ｇｅｓｔｓ ｔｈａｔ ＰＥ ａｎｄ ＰＳ ｄｏ ｎｏｔｈｉｎｇ ｗｉｔｈ ｗｏｕｎｄｉｎｇꎬ ｂｕｔ
ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅ ｔｏ ｔｈｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｏｆ ｔｗｏ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ.
Ｆｉｇ ２ Ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ａｎａｌｙｓｉｓ (ＰＣＡ) ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｉｎ ｆｉｖｅ ｔｉｍｅ ｐｏｉｎｔｓ ｐｏｓｔ￣ｗｏｕｎｄｉｎｇ ( ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ ｃａｌｌｅｄ ｈｅｒｅ) ａｍｏｎｇ ＷＳ
ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ. Ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｔｈｒｅｅ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓꎬ ｗｈｉｃｈ ａｃｃｏｕｎ￣
ｔｅｄ ｆｏｒ ７５％ ｏｆ ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ｄａｔａ ｖａｒｉａｎｃｅꎬ ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ ｆｏｒ ｐｌｏｔｔｉｎｇ ｔｈｅ ｓｃｏｒｅｓ.
Ｅａｃｈ ｐｏｉｎｔꎬ ａ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ａｎｄ ｇｅｎｏｔｙｐｅ ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ ｉｓ ｔｈｅ ｍｅａｎ ｏｆ ｔｈｅ
ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｉｎｇ ｒｅｐｌｉｃａｔｅｓ’ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ｓｃｏｒｅｓ. (Ａ) Ｔｈｅ ｓｃｏｒｅ
ｐｌｏｔ ｏｆ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ １ (４２％ ｏｆ ｔｈｅ ｖａｒｉａｎｃｅ) ｖｓ. ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍ￣
ｐｏｎｅｎｔ ２ (２０％). (Ｂ) Ｔｈｅ ｓｃｏｒｅ ｐｌｏｔ ｏｆ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ １ (４２％
ｏｆ ｔｈｅ ｖａｒｉａｎｃｅ) ｖｓ. ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ３ (１３％). ＷＳꎬ Ｗａｓｓｉｌｅｗｓｋｉ￣
ｊａꎻ δꎬ ＰＬＤδ￣ＫＯꎻ ０ꎬ ｃｏｎｔｒｏｌꎻ ３０’ꎬ ３０ ｍｉｎｕｔｅｓ ｐｏｓｔ￣ｗｏｕｎｄｉｎｇꎻ １ ｈꎬ １ ｈ
ｐｏｓｔ￣ｗｏｕｎｄｉｎｇꎻ ３ ｈꎬ ３ ｈ ｐｏｓｔ￣ｗｏｕｎｄｉｎｇꎻ ６ ｈꎬ ６ ｈ ｐｏｓｔ￣ｗｏｕｎｄｉｎｇ
３３４４期 Ｌｉ Ａｉ￣ｈｕａ ｅｔ ａｌ.: Ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄδ ｉｓ Ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ Ｗｏｕｎｄｉｎｇ￣Ｉｎｄｕｃｅｄ Ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｉｃ Ａｃｉｄ Ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｉｎ
Ｔａｂｌｅ ３ Ｌｏａｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｔｈｒｅｅ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ. Ｔｈｅ ｔｗｅｌｖｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ａｎｄ ｔｗｅｌｖｅ ｌｏｗｅｓｔ ｌｏａｄｉｎｇ ｖａｌｕｅｓ ａｒｅ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ
Ｌｉｐｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ Ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ １ｌｏａｄｉｎｇｓ Ｌｉｐｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ
Ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ２
ｌｏａｄｉｎｇｓ Ｌｉｐｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ
Ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ３
ｌｏａｄｉｎｇｓ
Ｔｗｅｌｖｅ ｌｏｗｅｓｔ ｌｏａｄｉｎｇ ｖａｌｕｅｓ
３４ ∶ ６ ＰＡ －０ ６８８ ３４ ∶ ５ ＭＧＤＧ －０ ６３２ ３８ ∶ ５ ＰＳ －０ ７５５
３４ ∶ ０ ＰＧ －０ ６８７ ３８ ∶ ５ ＭＧＤＧ －０ ６１５ ３６ ∶ ６ ＰＥ －０ ５９７
３４ ∶ ４ ＰＡ －０ ６７３ ３６ ∶ ５ ＤＧＤＧ －０ ５９５ ３４ ∶ １ ＰＳ －０ ５５６
３６ ∶ １ ＤＧＤＧ －０ ６３４ ３８ ∶ ４ ＰＳ －０ ５９４ ３６ ∶ ４ ＰＳ －０ ５２
３６ ∶ ２ ＰＡ －０ ６３１ ３４ ∶ ６ ＤＧＤＧ －０ ５５９ ３６ ∶ ５ ＰＳ －０ ４８９
３４ ∶ ３ ＰＡ －０ ５９５ ３６ ∶ ５ ＭＧＤＧ －０ ５３３ ３６ ∶ １ ＰＥ －０ ４７６
３６ ∶ ３ ＰＡ －０ ５６３ ４０ ∶ ３ ＰＣ －０ ５３２ ４２ ∶ ２ ＰＥ －０ ４５７
３６ ∶ ５ ＰＡ －０ ５５２ ３６ ∶ ６ ＤＧＤＧ －０ ４７６ ３６ ∶ ２ ＰＥ －０ ４１２
３４ ∶ ２ ＰＡ －０ ５３５ ３４ ∶ ４ ＤＧＤＧ －０ ４２２ ４２ ∶ ４ ＰＥ －０ ４１
３６ ∶ ６ ＰＡ －０ ５３２ ３４ ∶ ４ ＭＧＤＧ －０ ４０８ ３６ ∶ ５ ＰＥ －０ ４０６
３８ ∶ ６ ＤＧＤＧ －０ ５３２ ３４ ∶ ６ ＭＧＤＧ －０ ４ ３４ ∶ １ ＰＥ －０ ３９５
３８ ∶ ６ ＭＧＤＧ －０ ５２４ ４４ ∶ ２ ＰＳ －０ ３９７ ３８ ∶ ２ ＰＥ －０ ３９
Ｔｗｅｌｖｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｌｏａｄｉｎｇ ｖａｌｕｅｓ
３６ ∶ ５ ＰＣ ０ ８９４ ３６ ∶ ２ ＤＧＤＧ ０ ６９ ３４ ∶ ６ ＰＡ ０ ５４７
３８ ∶ ２ ＰＣ ０ ８９５ ３６ ∶ ４ ＰＡ ０ ７０３ ３４ ∶ ３ ＭＧＤＧ ０ ５６５
３４ ∶ ５ ＤＧＤＧ ０ ９０２ ３６ ∶ １ ＭＧＤＧ ０ ７１９ ３４ ∶ １ ＭＧＤＧ ０ ６０３
３６ ∶ ４ ＤＧＤＧ ０ ９０４ ３６ ∶ ５ ＰＡ ０ ７２２ ３４ ∶ ４ ＰＩ ０ ６０９
３４ ∶ ４ ＰＣ ０ ９０９ ３６ ∶ ６ ＰＡ ０ ７２６ ３２ ∶ ０ ＰＧ ０ ６１３
３６ ∶ ３ ＰＣ ０ ９１４ ４２ ∶ ３ ＰＥ ０ ７３９ ３８ ∶ ２ ＰＳ ０ ６３１
３６ ∶ ６ ＭＧＤＧ ０ ９１６ ３８ ∶ ６ ＭＧＤＧ ０ ７４７ ３４ ∶ ３ ＰＩ ０ ６３３
３４ ∶ ３ ＤＧＤＧ ０ ９３１ ４０ ∶ ３ ＰＳ ０ ７４７ ４０ ∶ ２ ＰＳ ０ ６４
３６ ∶ ４ ＰＣ ０ ９３３ ３８ ∶ ３ ＭＧＤＧ ０ ７６ ３６ ∶ ６ ＰＩ ０ ６５１
３６ ∶ ２ ＰＣ ０ ９４３ ３６ ∶ ２ ＭＧＤＧ ０ ７６６ ３４ ∶ １ ＰＧ ０ ７２６
３４ ∶ ３ ＰＣ ０ ９４３ ３８ ∶ ４ ＭＧＤＧ ０ ７７１ ３２ ∶ １ ＰＧ ０ ７６２
３４ ∶ ２ ＰＣ ０ ９４７ ３８ ∶ ６ ＰＥ ０ ８４８ ３４ ∶ ２ ＭＧＤＧ ０ ７９９
２ ３ ＰＡ ｔｒａｎｓｉｅｎｔｌｙ ｉｎｃｒｅａｓｅｓ ａｎｄ ｒｅａｃｔｓ ｄｉｆｆｅｒ￣
ｅｎｔｌｙ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｎ ｔｈｅ ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ Ａｒａ￣
ｂｉｄｏｐｓｉｓ
Ｔｈｅ ＰＣＡ ｒｅｓｕｌｔ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ ＰＡ ｗａｓ ｏｎｅ ｏｆ ｔｈｅ
ｍａｉｎ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ ｆａｃｔｏｒｓ ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ｒｅ￣
ｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｎ ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ.
Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｗｅ ｆｕｒｔｈｅｒ ｕｓｅｄ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｐａｔｔｅｒｎ ａｎａｌｙｓｉｓ
ｗｉｔｈ Ｍｅｖ ４ ９ ０ ｔｏ ａｎａｌｙｓｅ ｉｎ ｄｅｔａｉｌｓ ｔｈｅ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｏｆ
ＰＡ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｎ ｔｈｅ ｔｗｏ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ.
Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｈｏｗ ｔｈａｔ ｔｈｅ ＰＡ ｌｅｖｅｌ ｔｒａｎｓｉｅｎｔｌｙ
ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｕｐｏｎ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｎ ｔｈｅ ｂｏｔｈ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ
(Ｆｉｇ ３Ａ－Ｋ). ｔｈｅ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ＰＡ ａｎｄ ｓｅｖｅｒａｌ ｏｆ ｉｔｓ
ｍａｉｎ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ ｃｏｎｔｒｏｌ ｌｅａｖｅｓ ｉｎ ＰＬＤδ￣ＫＯ ｗｅｒｅ
ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｔｈｏｓｅ ｏｆ ＷＳ (Ｆｉｇ ３Ａ－Ｉ). Ｔｈｉｓ ｓｕｇｇｅｓｔｓ
ｔｈａｔ ａｎ ａｂｓｅｎｃｅ ｏｆ ＰＬＤδ ｄｏｅｓ ｎｏｔ ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ
ｏｆ ＰＡ ｉｎ ｃｏｎｔｒｏｌ ｌｅａｖｅｓ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ. Ａｔ ３０ ｍｉｎ ａｆ￣
ｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇꎬ ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ＰＡ ａｎｄ ｓｅｖｅｒａｌ ｏｆ ｉｔｓ
ｍａｉｎ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｓｈａｒｐｌｙꎻ ｐａｒｔｉｃｕｌａｒｌｙ ｌａｒｇｅ
ｉｎｃｒｅａｓｅｓ ｗｅｒｅ ｆｏｕｎｄ ｆｏｒ ３６∶４￣ ａｎｄ ３６∶５￣ＰＡꎬ ｗｈｉｃｈ
ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ３０￣ ａｎｄ １７￣ｆｏｌｄ ｉｎ ＰＬＤδ￣ＫＯꎬ ａｎｄ ２７￣ ａｎｄ
１７￣ｆｏｌｄ ｉｎ ＷＳꎬ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ ( Ｆｉｇ １Ａꎬ Ｂ)ꎻ ｓｕｂｓｅ￣
ｑｕｅｎｔｌｙꎬ ｍｏｓｔ ｏｆ ｔｈｅｍ ｃｏｎｔｉｎｕｅｄ ｔｏ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｔｏ ｔｈｅ
ｈｉｇｈｅｓｔ ｌｅｖｅｌ ａｔ １ ｈ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇꎬ ａｎｄ ｔｈｅｎ ｄｅ￣
ｃｒｅａｓｅｄ ｕｎｔｉｌ ６ ｈ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ (Ｆｉｇ ３Ａ－Ｉ). Ｈｏｗ￣
ｅｖｅｒꎬ ｔｈｅｒｅ ｗｅｒｅ ｓｔｉｌｌ ｓｅｖｅｒａｌ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｏｆ ＰＡ ｖａｒｉａ￣
ｔｉｏｎ ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅ ｔｗｏ ｇｅｎｏ￣
ｔｙｐｅｓ. Ｆｉｒｓｔｌｙꎬ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ＰＡ ａｎｄ ｎｅａｒｌｙ ａｌｌ ｏｆ ｉｔｓ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ ＰＬＤδ￣ＫＯ ｗｅｒｅ ｌｏｗｅｒ ｔｈａｎ ｔｈｏｓｅ ｉｎ ＷＳ
(Ｆｉｇ ３Ａ－Ｄꎬ Ｆ－Ｉ) ｆｒｏｍ ３０ ｍｉｎ ｔｏ ３ ｈ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎ￣
ｄｉｎｇ. Ｉｎ ＷＳꎬ ｔｈｅ ＰＡ ｌｅｖｅｌ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ
ｌｅｖｅｌ ｏｆ ４ １７ ｎｍｏｌｍｇ－１ꎬ ｂｕｔ ｔｈａｔ ｉｎ ＰＬＤδ￣ＫＯ ｗａｓ
３ ３１ ｎｍｏｌｍｇ－１ꎬ ｔｈｉｓ ｓｕｇｇｅｓｔｓ ｔｈａｔ ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ
ＰＬＤδ ｃａｕｓｅｄ ａ ２０％ ｄｅｃｒｅａｓｅ ｏｆ ｔｈｅ ＰＡ ｌｅｖｅｌ ｉｎ Ａｒａ￣
ｂｉｄｏｐｓｉｓ. Ｓｅｃｏｎｄｌｙꎬ ｔｈｅ ｐｅａｋ ＰＡ ｌｅｖｅｌｓ ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅ
ｐｏｓｔ￣ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｐｅｒｉｏｄ ｄｉｆｆｅｒｅｄ: ｎａｍｅｌｙꎬ ｔｈｅ ｐｅａｋ
ｏｃｃｕｒｒｅｄ ａｔ １ ｈ ｉｎ ＷＳꎬ ｂｕｔ ａｔ ３ ｈ ｉｎ ＰＬＤδ￣ＫＯ
４３４ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３７卷
(Ｆｉｇ ３Ｊꎬ Ｋ). Ｔｈｉｓ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ ａ ｌａｃｋ ｏｆ ＰＬＤδ
ｓｌｏｗｓ ｔｈｅ ｅａｒｌｙ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｏｆ ＰＡ. Ｆｉｎａｌｌｙꎬ ｔｈｅ ｄｉｆｆｅｒ￣
ｅｎｃｅ ｏｆ ＰＡ ｌｅｖｅｌｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅ ｔｗｏ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ ｔｏ
ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｏｖｅｒ ｔｉｍｅ. Ｔｈｉｓ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ
ＰＬＤδ ｈａｄ ａ ｒａｐｉｄ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ.
２ ４ Ｔｈｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ａｃｙｌ
ｃｈａｉｎ ｌｅｎｇｔｈ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｎ ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ
Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ
Ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｌｅｖｅｌ ( Ｑｕａｒｔａｃｃｉ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２００２) ａｎｄ ａｃｙｌ ｃｈａｉｎ ｌｅｎｇｔｈ (Ｄｅｎｉｃｈ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２００３) ｏｆ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ ａｎｄ ｇｌｙｃｏｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ｍｅｍ￣
ｂｒａｎｅｓ ｃｏｕｌｄ ａｆｆｅｃｔ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｆｌｕｉｄｉｔｙ . Ｔｈｅ ＤＢＩ ｗａｓ
ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ｂｙ ｔｈｅ ｄｏｕｂｌｅ ｂｏｎｄ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓ ａｎｄ ＡＣＬｓ
ｗａｓ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ｂｙ ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ａｃｙｌ ｃａｒｂｏｎ ａｔ￣
ｏｍｓ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓ. Ｗｅ ａｎａｌｙｓｅｄ ｔｈｅ ＤＢＩ ａｎｄ ＡＣＬ ｏｆ ｌｉｐｉｄ
ｃｌａｓｓｅｓ ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ (ＷＳ
ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ). Ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇꎬ ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ
ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ＰＧ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｉｎ ｂｏｔｈ
Ｆｉｇ ３ Ｃｈａｎｇｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ＰＡ ａｎｄ ｉｔｓ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｎ ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｌｅａｖｅｓ. Ａ－Ｉ. Ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ
ＰＡ ａｎｄ ｉｔｓ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ａꎬ ＰＡꎻ Ｂꎬ ３４ ∶ ２￣ＰＡꎻ Ｃꎬ ３４ ∶ ３￣ＰＡꎻ Ｄꎬ ３４ ∶ ４￣ＰＡꎻ Ｅꎬ ３６ ∶ ２￣ＰＡꎻ Ｆꎬ ３６ ∶ ３￣ＰＡꎻ Ｇꎬ ３６ ∶ ４￣ＰＡꎻ Ｈꎬ ３６ ∶ ５￣ＰＡꎻ
Ｉꎬ ３６ ∶ ６￣ＰＡ). Ｊ－Ｋ. Ｔｈｅ ｃｕｒｖｅ ｕｐｏｎ ｃｏｍｂｉｎｉｎｇ ｅｉｇｈｔ ＰＡ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ ＷＳ (Ｊ) ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ (Ｋ). “∗” ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｖａｌｕｅ ｉｓ
ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｆｒｏｍ ｔｈａｔ ｆｏｒ ＷＳ ｕｎｄｅｒ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎ (Ｐ < ０ ０５) . Ｖａｌｕｅｓ ａｒｅ ｍｅａｎｓ ± ｓｔａｎｄａｒｄ ｄｅｖｉａｔｉｏｎ (ｎ＝ ４ ｏｒ ５)
５３４４期 Ｌｉ Ａｉ￣ｈｕａ ｅｔ ａｌ.: Ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄδ ｉｓ Ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ Ｗｏｕｎｄｉｎｇ￣Ｉｎｄｕｃｅｄ Ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｉｃ Ａｃｉｄ Ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｉｎ
ｇｅｎｏｔｙｐｅｓꎬ ｗｈｅｒｅａｓ ｔｈｏｓｅ ｏｆ ｅｘｔｒａ￣ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍ￣
ｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ—ＰＥꎬ ＰＩꎬ ＰＳ ａｎｄ ＰＡ— ａｌｍｏｓｔ ｉｎ￣
ｃｒｅａｓｅｄ (Ｔａｂｌｅ ４). Ｔｈｅ ｍａｘｉｍｕｍ ｃｈａｎｇｉｎｇ ｏｆ ＤＢＩ
ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｗａｓ ｔｈａｔ ｏｆ ＰＧꎬ ｗｈｉｃｈ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ
０ ０８ꎬ ａｎｄ ０ １１ ｉｎ ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ ｓｅｐａｒａｔｅｌｙ.
Ｔｈｅ ＡＣＬ ｏｆ ｍｏｓｔ ｌｉｐｉｄ ｃｌａｓｓｅｓ ｒｅｍａｉｎｅｄ ｕｎｃｈａｎｇｅｄ
ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ. Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈａｔ ｏｆ ｔｈｅ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄ
(ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ＭＧＤＧꎬ ＤＧＤＧꎬ ａｎｄ ＰＧ) ｃｈａｎｇｅｄ ｓｉｇ￣
ｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ (Ｔａｂｌｅ ５). Ｂａｓｉｃａｌｌｙꎬ ＤＢＩ
ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｃｌａｓｓｅｓ ｒｅｓｐｏｎｄ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇꎬ ｂｕｔ ｏｎｌｙ ＡＣＬ
ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｒｅｓｐｏｎｄ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ
(ｂｏｔｈ ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ).
３ Ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ
Ａｆｔｅｒ ｔｈｅ ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ ａｎｄ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓ ｆｏｒ ａ
ｒｅｌａｔｉｖｅｌｙ ｌｏｎｇ ｐｅｒｉｏｄ ｏｆ ６ ｈ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｎ ＷＳ
ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓꎬ ｗｅ ｆｏｕｎｄ ｔｈａｔ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ
ｔｈｅ ｍａｊｏｒｉｔｙ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓ ｗｅｒｅ ｒｅｄｕｃｅｄ ｒａｐｉｄｌｙ ｉｎ ｂｏｔｈ
ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ ｌｅａｖｅｓ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ. Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ
ｏｎｌｙ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ＰＡ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ
ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ. ＰＬＤδ ａｌｓｏ ｉｎｆｌｕｅｎｃｅｄ ｔｈｅ ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ
ｏｆ ｓｏｍｅ ｌｉｐｉｄｓꎬ ｓｕｃｈ ａｓ ｌｉｐｉｄｓ ＰＥꎬ ＰＩ ａｎｄ ＰＧꎬ
ｗｈｉｃｈ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｔｈｅｉｒ ａｍｏｕｎｔｓ ｓｈａｒｐｌｙ ｉｎ ＰＬＤδ￣ＫＯ
ｌｅａｖｅｓꎬ ｂｕｔ ｗｅｒｅ ｕｎｃｈａｎｇｅｄ ａｔ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｔｉｍｅ ｐｏｉｎｔｓ
ｉｎ ＷＳ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｆｏｒ ｌａｔｅｒ ｔｈａｎ １ ｈ. ＰＬＤδ ｐａｒｔｌｙ
ｒｅｇｕｌａｔｅｓ ＰＡ ｌｅｖｅｌｓ ｉｎｄｕｃｅｄ ｂｙ ｗｏｕｎｄｉｎｇ. Ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅ
ｗｈｏｌｅ ｐｅｒｉｏｄ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇꎬ ｔｈｅ ｍｏｓｔ ｄｒａｍａｔｉｃ
ｃｈａｎｇｅｓ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ３０ ｍｉｎ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ.
Ｔｈｉｒｔｙ ｍｉｎｕｔｅｓ ｉｓ ａ ｌｉｍｉｔ ｔｉｍｅꎬ ｂｕｔ ａｐｐｅａｒｓ ｔｏ ｂｅ ｓｕｆ￣
ｆｉｃｉｅｎｔ ｆｏｒ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｔｏ ｒｅｓｐｏｎｄ ｔｏ ｗｏｕｎｄ
ｄａｍａｇｅꎬ ｅｓｐｅｃｉａｌｌｙ ｉｎ ｔｈｅ ｃａｓｅ ｏｆ ｔｈｅ ｌｉｐｉｄ ＰＡ. Ｔｈｉｓ
ｒａｐｉｄ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｓｕｇｇｅｓｔｓ ｔｈａｔ ＰＡ ｍｉｇｈｔ ａｃｔ ａｓ ａ ｓｉｇ￣
ｎａｌｌｉｎｇ ｍｏｌｅｃｕｌｅ ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ. Ｔｈｅ ｒａｐｉｄ
ｌｉｐｉｄ ｈｙｄｒｏｌｙｓｉｓ ｗａｓ ｔｈｅ ｓａｍｅ ａｓ ｔｈａｔ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｐｒｅｖｉ￣
ｏｕｓｌｙ ｉｎ ｗｏｕｎｄｅｄ ｔｉｓｓｕｅｓ ｏｆ ｖａｒｉｏｕｓ ｐｌａｎｔｓ ( Ｌｅｅ ｅｔ
ａｌ.ꎬ １９９７ꎻ Ｌｉｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７ꎻ Ｌｏｊｋｏｗｓｋａꎬ １９８８ꎻ
Ｚｉｅｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００１). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅ ｔｒｅｎｄ ｏｆ ｖａｒｉａｔｉｏｎ
ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｉｐｉｄ ｃｌａｓｓｅｓ ａｔ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｔｉｍｅ ｐｏｉｎｔｓ ｄｉｆ￣
ｆｅｒｅｄꎻ ｆｏｒ ｅｘａｍｐｌｅꎬ ｉｎ ｏｕｒ ｗｏｒｋ ｏｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓꎬ ｌｉｐ￣
ｉｄ ＰＥ ｄｉｄ ｎｏｔ ｃｈａｎｇｅ ａｍｏｎｇ ｔｈｅ ｔｉｍｅ ｐｏｉｎｔｓ ａｆｔｅｒ
ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｎ ＷＳꎬ ｂｕｔ ｉｔ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｒｅ￣
ｐｏｒｔｅｄ ｉｎ Ｚｉｅｎ ｅｔ ａｌ. (２００１).
Ｔａｂｌｅ ４ ＤＢＩ ｖａｌｕｅｓ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｌｅａｖｅｓ ａｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｔｉｍｅｓ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ. Ｔｈｅ ｖａｌｕｅｓ
ｏｆ ｍａｘｉｍｕｍ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｃｈａｎｇｅ (Ｍａｘ ＲＣ) ｉｓ ｔｈｅ ｍａｘｉｍｕｍ ｖａｌｕｅｓ ｆｏｒ ｔｈｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅ ＤＢＩ ｖａｌｕｅｓ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ
ａｎｄ ｃｏｎｔｒｏｌ. Ｖａｌｕｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｒｏｗ ｗｉｔｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ａｒｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ (Ｐ < ０ ０５) .
Ｖａｌｕｅｓ ａｒｅ ｍｅａｎｓ ± ｓｔａｎｄａｒｄ ｄｅｖｉａｔｉｏｎ (ｎ＝ ４ ｏｒ ５)
Ｌｉｐｉｄ
ｃｌａｓｓ Ｇｅｎｏｔｙｐｅ
Ｄｏｕｂｌｅ Ｂｏｎｄ Ｉｎｄｅｘ (ＤＢＩ)
０ ３０ ｍｉｎ １ ｈ ３ ｈ ６ ｈ
Ｍａｘ ＲＣ
/ ％
ＤＧＤＧ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
５ ４３ ± ０ ０７ａ
５ ３７ ± ０ ０２ａ
５ ３５ ± ０ ０４ｂ
５ ３７ ± ０ ０８ａ
５ ３９ ± ０ ０５ａ
５ ４ ± ０ ０１ａ
５ ３８ ± ０ ０４ａ
５ ４ ± ０ ０４ａ
５ ３９ ± ０ ０４ａ
５ ３４ ± ０ ０４ａ
－０ ０８
—
ＭＧＤＧ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
５ ９４ ± ０ ０２ａ
５ ９５ ± ０ ０１ｂ
５ ９５ ± ０ ０１ａ
５ ９６ ± ０ ０１ａ
５ ９５ ± ０ ０１ａ
５ ９６ ± ０ ０１ａ
５ ９４ ± ０ ０１ａ
５ ９５ ± ０ ０１ａｂ
５ ９５ ± ０ａ
５ ９４ ± ０ ０１ｂ
—
０ ０１
ＰＧ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
３ ４３ ± ０ ０６ａ
３ ４５ ± ０ ０４ａ
３ ３７ ± ０ ０１ａ
３ ３８ ± ０ ０６ｂ
３ ３６ ± ０ ０５ａ
３ ３４ ± ０ ０２ｂ
３ ３５ ± ０ ０６ｂ
３ ３５ ± ０ ０７ｂ
３ ３５ ± ０ ０７ｂ
３ ４１ ± ０ ０４ａｂ
－０ ０８
－０ １１
ＰＣ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
２ ９９ ± ０ ０４ａ
３ ０３ ± ０ ０６ａ
２ ９７ ± ０ ０２ａ
３ ０３ ± ０ ０２ａ
３ ± ０ ０６ａ
３ ０２ ± ０ ０２ａ
３ ０２ ± ０ ０４ａ
３ ０６ ± ０ ０８ａ
３ ０３ ± ０ ０２ａ
３ ０２ ± ０ ０７ａ
—
—
ＰＥ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
３ ４６ ± ０ ０１ｂ
３ ５２ ± ０ ０７ａ
３ ４８ ± ０ ０３ａｂ
３ ５１ ± ０ ０５ａ
３ ４８ ± ０ ０２ａｂ
３ ５３ ± ０ ０３ａ
３ ５ ± ０ ０１ａ
３ ５３ ± ０ ０３ａ
３ ４８ ± ０ ０３ａｂ
３ ５５ ± ０ ０５ａ
０ ０４
—
ＰＩ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
２ ７８ ± ０ ０２ｂ
２ ７７ ± ０ ０３ｂ
２ ７４ ± ０ ０３ｂ
２ ７６ ± ０ ０４ｂ
２ ７６ ± ０ ０３ｂ
２ ７６ ± ０ ０２ｂ
２ ８３ ± ０ ０２ａ
２ ８４ ± ０ ０５ａ
２ ８２ ± ０ ０４ａ
２ ８１ ± ０ ０７ａｂ
０ ０５
０ ０７
ＰＳ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
２ ６７ ± ０ ０２ｂ
２ ７１ ± ０ ０５ｂ
２ ６８ ± ０ ０５ｂ
２ ７６ ± ０ ０３ａ
２ ６８ ± ０ ０５ｂ
２ ７ ± ０ ０２ｂ
２ ６６ ± ０ ０２ｂ
２ ７１ ± ０ ０４ｂ
２ ７３ ± ０ ０２ａ
２ ７２ ± ０ ０２ａｂ
０ ０６
０ ０５
ＰＡ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
３ ５６ ± ０ ３８ａ
３ ６４ ± ０ ０８ｂ
３ ６４ ± ０ ０５ａ
３ ７５ ± ０ ０６ａ
３ ６３ ± ０ １５ａ
３ ６５ ± ０ ０５ａｂ
３ ６７ ± ０ ０５ａ
３ ６６ ± ０ ０８ａｂ
３ ６３ ± ０ ０６ａ
３ ５８ ± ０ １２ｂ
—
０ １１
６３４ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３７卷
Ｔａｂｌｅ ５ ＡＣＬ ｖａｌｕｅｓ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ＷＳ ａｎｄ ＰＬＤδ￣ＫＯ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｌｅａｖｅｓ ａｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｔｉｍｅｓ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ. Ｔｈｅ ｖａｌｕｅｓ
ｏｆ ｍａｘｉｍｕｍ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｃｈａｎｇｅ (Ｍａｘ ＲＣ) ｉｓ ｔｈｅ ｍａｘｉｍｕｍ ｖａｌｕｅｓ ｆｏｒ ｔｈｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅ ＡＣＬ ｖａｌｕｅｓ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ
ａｎｄ ｃｏｎｔｒｏｌ. Ｖａｌｕｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｒｏｗ ｗｉｔｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ａｒｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ (Ｐ < ０ ０５) .
Ｖａｌｕｅｓ ａｒｅ ｍｅａｎｓ ± ｓｔａｎｄａｒｄ ｄｅｖｉａｔｉｏｎ (ｎ＝ ４ ｏｒ ５)
Ｌｉｐｉｄ
ｃｌａｓｓ Ｇｅｎｏｔｙｐｅ
Ａｃｙｌ ｃｈａｉｎ ｌｅｎｇｔｈ
０ ３０ ｍｉｎ １ ｈ ３ ｈ ６ ｈ
Ｍａｘ ＲＣ
/ ％
ＤＧＤＧ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
３５ ５１ ± ０ ０４ａ
３５ ４６ ± ０ ０２ａ
３５ ４８ ± ０ ０３ｂ
３５ ４６ ± ０ ０２ａ
３５ ５１ ± ０ ０４ａ
３５ ５ ± ０ ０４ａ
３５ ４９ ± ０ ０２ａ
３５ ４８ ± ０ ０４ａ
３５ ４９ ± ０ ０３ａ
３５ ４６ ± ０ ０３ａ
－０ ０３
—
ＭＧＤＧ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
３４ ３７ ± ０ ０１ｂ
３４ ３７ ± ０ ０３ａ
３４ ４ ± ０ ０２ａ
３４ ４ ± ０ ０２ａ
３４ ４ ± ０ ０２ａ
３４ ４ ± ０ ０３ａ
３４ ３９ ± ０ ０３ａｂ
３４ ３７ ± ０ ０３ａ
３４ ３９ ± ０ ０２ａｂ
３４ ３９ ± ０ ０５ａ
０ ０３
ＰＧ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
３３ ８９ ± ０ ０１ａ
３３ ９２ ± ０ａ
３３ ８７ ± ０ ０１ｂ
３３ ８７ ± ０ ０１ｂ
３３ ８６ ± ０ ０２ｂ
３３ ８７ ± ０ｂ
３３ ８６ ± ０ ０１ｂ
３３ ８６ ± ０ ０２ｂ
３３ ８５ ± ０ ０１ｂ
３３ ８９ ± ０ ０４ａｂ
－０ ０４
－０ ０６
ＰＣ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
３５ ２９ ± ０ ０５ａ
３５ ３３ ± ０ ０３ａ
３５ ２９ ± ０ ０３ａ
３５ ２８ ± ０ ０２ｂ
３５ ２９ ± ０ ０４ａ
３５ ３１ ± ０ ０３ａｂ
３５ ３ ± ０ ０４ａ
３５ ３ ± ０ ０６ａｂ
３５ ３ ± ０ ０２ａ
３５ ２９ ± ０ ０４ａｂ
—
０ ０５
ＰＥ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
３５ ２５ ± ０ ０５ａ
３５ ２９ ± ０ ０２ａ
３５ ２９ ± ０ ０２ａ
３５ ３３ ± ０ ０６ａ
３５ ２９ ± ０ ０ａ
３５ ３ ± ０ ０４ａ
３５ ２５ ± ０ ０４ａ
３５ ２８ ± ０ ０５ａ
３５ ２６ ± ０ ０４ａ
３５ ３３ ± ０ ０７ａ
—
—
ＰＩ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
３４ ２５ ± ０ ０６ａ
３４ ３ ± ０ ０３ａ
３４ ２８ ± ０ ０２ａ
３４ ２４ ± ０ ０８ａ
３４ ２４ ± ０ ０４ａ
３４ ２７ ± ０ ０３ａ
３４ ２９ ± ０ ０４ａ
３４ ２８ ± ０ ０３ａ
３４ ２８ ± ０ ０５ａ
３４ ２８ ± ０ ０２ａ
—
—
ＰＳ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
３８ ２９ ± ０ ３ａ
３８ ３２ ± ０ １６ａ
３８ ０８ ± ０ ２ａ
３８ １３ ± ０ ３５ａ
３８ ３８ ± ０ ２１ａ
３８ ３９ ± ０ ４７ａ
３８ ３４ ± ０ ２５ａ
３８ ４ ± ０ ３５ａ
３８ ３６ ± ０ ４４ａ
３７ ７６ ± １ １ａ
—
—
ＰＡ ＷＳＰＬＤδ￣ＫＯ
３４ ７６ ± ０ １２ａ
３４ ７６ ± ０ ２３ａ
３４ ９３ ± ０ ０４ａ
３４ ９４ ± ０ １１ａ
３４ ８９ ± ０ ０６ａ
３４ ９１ ± ０ ０８ａ
３４ ８２ ± ０ ０４ａ
３４ ８５ ± ０ ０３ａ
３４ ８３ ± ０ ０７ａ
３４ ８２ ± ０ ０７ａ
—
—
Ａｍｏｎｇ ａｌｌ ｔｈｅ ｔｅｓｔｅｄ ｌｉｐｉｄ ｃｌａｓｓｅｓꎬ ＰＡ ｅｘｈｉｂｉ￣
ｔｅｄ ｔｈｅ ｇｒｅａｔｅｓｔ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ.
Ｓｐｅｃｉｆｉｃａｌｌｙꎬ ｉｔｓ ｌｅｖｅｌ ｖａｒｉｅｄ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇꎬ ａｎｄ ｔｈｅ
ｐａｔｔｅｒｎｓ ｏｆ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｗｅｒｅ ｂａｓｉｃａｌｌｙ ｓｉｍｉｌａｒ ｂｅｔｗｅｅｎ
ｔｈｅ ｔｗｏ ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ: ａ ｔｒｅｎｄ ｏｆ ａ ｒｉｓｅ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ ａ
ｆａｌｌ. ＰＬＤα１ ｗａｓ ａｎｏｔｈｅｒ ｍａｉｎ ｍｅｍｂｅｒ ｏｆ ｔｈｅ ＰＬＤ
ｆａｍｉｌｙ ｔｈａｔ ｒｅｓｐｏｎｄｅｄ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ (Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２０００). Ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ＰＡ ｓｔｉｌｌ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｒａｐｉｄｌｙ ｉｎ
ＰＬＤδ￣ＫＯꎬ ｗｈｉｃｈ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｌａｃｋ ｏｆ ＰＬＤδ
ｄｉｄ ｎｏｔ ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ ｔｈｅ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｏｆ ＰＬＤα１ ｔｏ ｗｏｕｎ￣
ｄｉｎｇ. Ｔｈｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｏｆ ＰＬＤδ ｍａｉｎｌｙ ｅｘｈｉｂｉｔｅｄ ｄｕｒｉｎｇ
ｔｈｅ ｐｅｒｉｏｄ ｏｆ ３０ ｍｉｎ ｔｏ ３ ｈ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ (Ｆｉｇ ３Ａꎬ
Ｔａｂｌｅ １). Ｉｔ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ＰＡ ｂｙ ａｂｏｕｔ ２０％
ａｔ ３０ ｍｉｎ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ( Ｆｉｇ ３Ａꎬ
Ｔａｂｌｅ １)ꎬ ｗｈｉｃｈ ｓｕｇｇｅｓｔｓ ｔｈａｔ ａｂｏｕｔ ２０％ ｏｆ ＰＡ ｐｒｏ￣
ｄｕｃｔｉｏｎ ａｔ ｔｈｉｓ ｔｉｍｅ ｐｏｉｎｔ ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｉｓ
ａｔｔｒｉｂｕｔａｂｌｅ ｔｏ ＰＬＤδ. Ｍｅａｎｗｈｉｌｅꎬ Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ. (２０００)
ｍｅｎｔｉｏｎｅｄ ａｂｏｕｔ ６０％ ｏｆ ｗｏｕｎｄ￣ｉｎｄｕｃｅｄ ＰＡ ｗａｓ ａｔ￣
ｔｒｉｂｕｔａｂｌｅ ｔｏ ＰＬＤα１ꎬ ａｎｏｔｈｅｒ ｍｅｍｂｅｒ ｏｆ ｔｈｅ ＰＬＤ
ｆａｍｉｌｙꎬ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓꎻ ｉｎ ｔｈａｔ ｃａｓｅꎬ ＰＡ ｒｅｓｐｏｎｄｅｄ
ｔｏ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｆｉｖｅ ｍｉｎｕｔｅｓ ａｆｔｅｒ ｗｏｕｎｄｉｎｇ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ.
Ｉｎ ｓｕｍｍａｒｙꎬ ＰＬＤδ ｈａｓ ａ ｒｏｌｅ ｉｎ ｗｏｕｎｄｉｎｇ￣ｉｎｄｕｃｅｄ
ＰＡ ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓꎬ ｂｕｔ ｉｔ ｒｅａｃｔｓ ｌａｔｅｒ ａｎｄ
ｗｉｔｈ ｌｅｓｓ ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ ｔｈａｎ ＰＬＤα１.
Ａｃｋｎｏｗｌｅｄｇｅｍｅｎｔ: Ｔｈｅ ａｕｔｈｏｒｓ ｗｏｕｌｄ ｌｉｋｅ ｔｏ ｔｈａｎｋ Ｍａｒｙ Ｒｏｔｈ
ｆｏｒ ｔｈｅ ａｃｑｕｉｓｉｔｉｏｎ ａｎｄ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ ｏｆ ｔｈｅ ＥＳＩ￣ＭＳ / ＭＳ ｄａｔａ.
Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ:
Ｂａｒｇｍａｎｎ ＢＯꎬ Ｌａｘａｌｔ ＡＭꎬ ｔｅｒ Ｒｉｅｔ Ｂ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９. Ｍｕｌｔｉｐｌｅ ＰＬＤｓ ｒｅ￣
ｑｕｉｒｅｄ ｆｏｒ ｈｉｇｈ ｓａｌｉｎｉｔｙ ａｎｄ ｗａｔｅｒ ｄｅｆｉｃｉｔ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｉｎ ｐｌａｎｔｓ [Ｊ] .
Ｐｌａｎｔ ａｎｄ Ｃｅｌｌ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙꎬ ５０ (１): ７８—８９
Ｄｅｎｉｃｈ Ｔꎬ Ｂｅａｕｄｅｔｔｅ Ｌꎬ Ｌｅｅ Ｈ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００３. Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｓｅｌｅｃｔｅｄ ｅｎｖｉ￣
ｒｏｎｍｅｎｔａｌ ａｎｄ ｐｈｙｓｉｃｏ￣ｃｈｅｍｉｃａｌ ｆａｃｔｏｒｓ ｏｎ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｙｔｏｐｌａｓｍｉｃ
ｍｅｍｂｒａｎｅｓ [Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｍｅｔｈｏｄｓꎬ ５２ ( ２):
１４９—１８２
Ｄｈｏｎｄｔ Ｓꎬ Ｇｅｏｆｆｒｏｙ Ｐꎬ Ｓｔｅｌｍａｃｈ ＢＡ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０００. Ｓｏｌｕｂｌｅ ｐｈｏｓｐｈｏ￣
ｌｉｐａｓｅ Ａ２ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｉｓ ｉｎｄｕｃｅｄ ｂｅｆｏｒｅ ｏｘｙｌｉｐｉｎ ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ ｉｎ ｔｏ￣
ｂａｃｃｏ ｍｏｓａｉｃ ｖｉｒｕｓ￣ｉｎｆｅｃｔｅｄ ｔｏｂａｃｃｏ ｌｅａｖｅｓ ａｎｄ ｉｓ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅｄ ｂｙ
ｐａｔａｔｉｎ￣ｌｉｋｅ ｅｎｚｙｍｅｓ [ Ｊ] . Ｔｈｅ Ｐｌａｎｔ Ｊｏｕｒｎａｌꎬ ２３ (４): ４３１—
４４０
Ｈａｎａｈａｎ ＤＪꎬ Ｃｈａｉｋｏｆｆ Ｉꎬ １９４７. Ａ ｎｅｗ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｅ￣ｓｐｌｉｔｔｉｎｇ ｅｎｚｙｍｅ
ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｆｏｒ ｔｈｅ ｅｓｔｅｒ ｌｉｎｋａｇｅ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅ ｎｉｔｒｏｇｅｎｏｕｓ ｂａｓｅ ａｎｄ
ｔｈｅ ｐｈｏｓｐｈｏｒｉｃ ａｃｉｄ ｇｒｏｕｐｉｎｇ [Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓ￣
ｔｒｙꎬ １６９ (３): ６９９—７０５
７３４４期 Ｌｉ Ａｉ￣ｈｕａ ｅｔ ａｌ.: Ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄδ ｉｓ Ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ Ｗｏｕｎｄｉｎｇ￣Ｉｎｄｕｃｅｄ Ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｉｃ Ａｃｉｄ Ｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｉｎ
Ｊｏｌｌｉｆｆｅ ＩＴꎬ ２００５. Ｐｒｉｃｉｐａｌ Ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ Ａｎａｌｙｓｉｓꎬ ２ｎｄ ｅｄｉｔｉｏｎ [ Ｍ].
Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ: Ｓｐｒｉｎｇｅｒ
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ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｉｃ ａｃｉｄ ｉｎ ｓｔｒｅｓｓ ｓｉｇｎａｌｌｉｎｇ [ Ｊ] . Ｔｈｅ
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ｔｉｄｉｃ ａｃｉｄ ａｎｄ ｌｙｓｏｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄ ｌｅｖｅｌｓ ｉｎ ｗｏｕｎｄｅｄ ｐｌａｎｔｓ [ Ｊ] .
Ｔｈｅ Ｐｌａｎｔ Ｊｏｕｒｎａｌꎬ １２ (３): ５４７—５５６
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ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｄｕｒｉｎｇ ｆｒｅｅｚｉｎｇ ａｎｄ ｐｏｓｔ￣ｆｒｅｅｚｉｎｇ ｒｅ￣
ｃｏｖｅｒｙ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｔｈａｌｉａｎａ [Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍ￣
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ａｎｄ￣γ [Ｊ] . Ａｒｃｈｉｖｅｓ ｏｆ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃｓꎬ ３５３ (１):
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ｌｉｐａｓｅ Ｄꎬ ＰＬＤβꎬ ｆｒｏｍ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ [ Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ
Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ ２７２ (１１): ７０５５—７０６１
Ｐａｐｐａｎ Ｋꎬ Ｚｈｅｎｇ Ｓꎬ Ｗａｎｇ Ｘꎬ １９９７ｂ. Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａ￣
ｔｉｏｎ ｏｆ ａ ｎｏｖｅｌ ｐｌａｎｔ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄ ｔｈａｔ ｒｅｑｕｉｒｅｓ ｐｏｌｙｐｈｏｓ￣
ｐｈｏｉｎｏｓｉｔｉｄｅｓ ａｎｄ ｓｕｂｍｉｃｒｏｍｏｌａｒ ｃａｌｃｉｕｍ ｆｏｒ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ
[Ｊ]. Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ ２７２ (１１): ７０４８—７０５４
Ｑｉｎ Ｗꎬ Ｐａｐｐａｎ Ｋꎬ Ｗａｎｇ Ｘꎬ １９９７. Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｈｅｔｅｒｏｇｅｎｅｉｔｙ ｏｆ ｐｈｏｓ￣
ｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄ ( ＰＬＤ) ｃｌｏｎｉｎｇ ｏｆ ＰＬＤγ ａｎｄ ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｌａｎｔ
ＰＬＤγꎬ ￣βꎬ ａｎｄ￣α ｂｙ ｐｏｌｙｐｈｏｓｐｈｏｉｎｏｓｉｔｉｄｅｓ ａｎｄ ｃａｌｃｉｕｍ [ Ｊ] .
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ ２７２ (４５): ２８２６７—２８２７３
Ｑｕａｒｔａｃｃｉ ＭＦꎬ Ｇｌｉšｉｃ Ｏꎬ Ｓｔｅｖａｎｏｖｉｃ Ｂ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２. Ｐｌａｓｍａ ｍｅｍｂｒａｎｅ
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ｄｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ｒｅｈｙｄｒａｔｉｏｎ [Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｂｏｔａｎｙꎬ ５３
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Ｑｕ ＬＪ (瞿礼嘉)ꎬ Ｇｕ ＨＹ (顾红雅)ꎬ Ｂａｉ ＳＮ (白书农)ꎬ ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎ
( ｏｒｉｇｉｎａｌ ａｕｔｈｏｒ: Ｂｕｃｈａｎａｎ ＢＢꎬ Ｇｒｕｉｓｓｅｍ Ｗꎬ Ｊｏｎｅｓ ＲＬ)ꎬ
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ｃｕｌｔｕｒｅｓ ｓｕｂｍｉｔｔｅｄ ｔｏ ａｎｏｘｉａ [ Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙꎬ １２０ (１):
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Ｒｙｕ ＳＢꎬ Ｗａｎｇ ＸＭꎬ １９９６. Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄ ａｎｄ ｔｈｅ ｐｏｓ￣
ｓｉｂｌｅ ｍｅｃｈａｎｉｓｍ ｏｆ ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｉｎ ｗｏｕｎｄ￣ｉｎｄｕｃｅｄ ｌｉｐｉｄ ｈｙｄｒｏｌｙｓｉｓ
ｉｎ ｃａｓｔｏｒ ｂｅａｎ ｌｅａｖｅｓ [ Ｊ ] . Ｂｉｏｃｈｉｍｉｃａ ｅｔ Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａ Ａｃｔａ
(ＢＢＡ) ￣Ｌｉｐｉｄｓ ａｎｄ Ｌｉｐｉｄ Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍꎬ １３０３ (３): ２４３—２５０
Ｗａｎｇ Ｃꎬ Ｚｉｅｎ ＣＡꎬ Ａｆｉｔｌｈｉｌｅ Ｍ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０００. Ｉｎｖｏｌｖｅｍｅｎｔ ｏｆ ｐｈｏｓｐｈｏ￣
ｌｉｐａｓｅ Ｄ ｉｎ ｗｏｕｎｄ￣ｉｎｄｕｃｅｄ ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｊａｓｍｏｎｉｃ ａｃｉｄ ｉｎ Ａｒ￣
ａｂｉｄｏｐｓｉｓ [Ｊ] . Ｔｈｅ Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌꎬ １２ (１１): ２２３７—２２４６
Ｗａｎｇ Ｘꎬ １９９９. Ｔｈｅ ｒｏｌｅ ｏｆ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄ ｉｎ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ ｃａｓｃａｄｅｓ
[Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙꎬ １２０ (３): ６４５—６５２
Ｗａｎｇ Ｘꎬ ２０００. Ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｆｏｒｍｓ ｏｆ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄ ｉｎ ｐｌａｎｔｓ: ｔｈｅ ｇｅｎｅ
ｆａｍｉｌｙꎬ ｃａｔａｌｙｔｉｃ ａｎｄ ｒｅｇｕｌａｔｏｒｙ ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓꎬ ａｎｄ ｃｅｌｌｕｌａｒ ｆｕｎｃ￣
ｔｉｏｎｓ [Ｊ] . Ｐｒｏｇｒｅｓｓ ｉｎ Ｌｉｐｉｄ Ｒｅｓｅａｒｃｈꎬ ３９ (２): １０９—１４９
Ｗａｎｇ Ｘꎬ ２００４. Ｌｉｐｉｄ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ [Ｊ] . Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｏｐｉｎｉｏｎ ｉｎ Ｐｌａｎｔ Ｂｉｏｌｏ￣
ｇｙꎬ ７ (３): ３２９—３３６
Ｗａｎｇ Ｘꎬ ２００５. Ｒｅｇｕｌａｔｏｒｙ ｆｕｎｃｔｉｏｎｓ ｏｆ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄ ａｎｄ ｐｈｏｓｐｈａ￣
ｔｉｄｉｃ ａｃｉｄ ｉｎ ｐｌａｎｔ ｇｒｏｗｔｈꎬ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔꎬ ａｎｄ ｓｔｒｅｓｓ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ
[Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙꎬ １３９ (２): ５６６—５７３
Ｗａｎｇ Ｘꎬ Ｘｕ Ｌꎬ Ｚｈｅｎｇ Ｌꎬ １９９４. Ｃｌｏｎｉｎｇ ａｎｄ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｐｈｏｓｐｈａｔｉ￣
ｄｙｌｃｈｏｌｉｎｅ￣ｈｙｄｒｏｌｙｚｉｎｇ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄ ｆｒｏｍ Ｒｉｃｉｎｕｓ ｃｏｍｍｕｎｉｓ
Ｌ [Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ ２６９ (３２): ２０３１２—
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Ｗａｓｔｅｒｎａｃｋ Ｃꎬ Ｓｔｅｎｚｅｌ Ｉꎬ Ｈａｕｓｅ Ｂ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００６. Ｔｈｅ ｗｏｕｎｄ ｒｅｓｐｏｎｓｅ
ｉｎ ｔｏｍａｔｏ￣ｒｏｌｅ ｏｆ ｊａｓｍｏｎｉｃ ａｃｉｄ [ Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏ￣
ｇｙꎬ １６３ (３): ２９７—３０６
Ｗｅｌｔｉ Ｒꎬ Ｌｉ Ｗꎬ Ｌｉ Ｍ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２. Ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ｐｌａｎｔ
ｓｔｒｅｓｓ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ￣Ｒｏｌｅ ｏｆ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄα ｉｎ ｆｒｅｅｚｉｎｇ￣ｉｎｄｕｃｅｄ
ｌｉｐｉｄ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ [ Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓ￣
ｔｒｙꎬ ２７７ (３５): ３１９９４—３２００２
Ｘｕ Ｌꎬ Ｚｈｅｎｇ Ｓꎬ Ｚｈｅｎｇ Ｌ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９７. Ｐｒｏｍｏｔｅｒ ａｎａｌｙｓｉｓ ａｎｄ ｅｘｐｒｅｓ￣
ｓｉｏｎ ｏｆ ａ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄ ｇｅｎｅ ｆｒｏｍ ｃａｓｔｏｒ ｂｅａｎ [ Ｊ] . Ｐｌａｎｔ
Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙꎬ １１５ (２): ３８７—３９５
Ｚｈａｎｇ Ｗꎬ Ｗａｎｇ Ｃꎬ Ｑｉｎ Ｃ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００３. Ｔｈｅ ｏｌｅａｔｅ￣ｓｔｉｍｕｌａｔｅｄ ｐｈｏｓ￣
ｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄꎬ ＰＬＤδꎬ ａｎｄ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｉｃ ａｃｉｄ ｄｅｃｒｅａｓｅ Ｈ２ Ｏ２ ￣ｉｎ￣
ｄｕｃｅｄ ｃｅｌｌ ｄｅａｔｈ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ [Ｊ] . Ｔｈｅ Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ Ｏｎｌｉｎｅꎬ １５
(１０): ２２８５—２２９５
Ｚｈａｎｇ Ｗꎬ Ｙｕ Ｌꎬ Ｚｈａｎｇ Ｙ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５. Ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄ ｉｎ ｔｈｅ ｓｉｇｎａ￣
ｌｉｎｇ ｎｅｔｗｏｒｋｓ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ａｂｓｃｉｓｉｃ ａｃｉｄ ａｎｄ ｒｅａｃｔｉｖｅ ｏｘｙ￣
ｇｅｎ ｓｐｅｃｉｅｓ [Ｊ] . Ｂｉｏｃｈｉｍｉｃａ ｅｔ Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａ Ａｃｔａ (ＢＢＡ) ￣Ｍｏｌｅｃｕ￣
ｌａｒ ａｎｄ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｌｉｐｉｄｓꎬ １７３６ (１): １—９
Ｚｉｅｎ ＣＡꎬ Ｗａｎｇ Ｃꎬ Ｗａｎｇ Ｘ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００１. Ｉｎ ｖｉｖｏ ｓｕｂｓｔｒａｔｅｓ ａｎｄ ｔｈｅ
ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｃｏｍｍｏｎ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅ Ｄꎬ ＰＬＤαꎬ ｔｏ ｗｏｕｎｄ￣
ｉｎｄｕｃｅｄ ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ [ Ｊ] . Ｂｉｏｃｈｉｍｉｃａ ｅｔ
Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａ Ａｃｔａ ( ＢＢＡ) ￣Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ａｎｄ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｌｉｐｉｄｓꎬ
１５３０ (２￣３): ２３６—２４８
８３４ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３７卷