全 文 ：中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 44 卷 第 17 期 2013 年 9 月

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离子交换树脂分离纯化加纳籽中 5-羟基色氨酸
冯建光
深圳职业技术学院 科研处，广东 深圳 518055
摘 要：目的 研究离子交换树脂对加纳籽提取液中 5-羟基色氨酸的吸附分离性能，筛选出具有较高选择吸附性的离子交
换树脂。方法 考察 8 种阴阳离子交换树脂的静态吸附性能，以树脂的吸附量、解吸率、吸附速率、吸附温度作为考察指标，
选出最优的离子交换树脂，并考察不同 pH 值、上样速度、上样液质量浓度、洗脱剂浓度、洗脱速度对树脂吸附性能的影响。
结果 001×7 阳离子交换树脂吸附分离效果最佳，001×7 树脂吸附分离的条件为：在常温下，上样液 5-羟基色氨酸质量浓
度为 10.8 mg/mL，调 pH 为 3.5，以 4.0 mL/min 的上样速度上样，以 3 倍树脂体积的 7.0%氨水以 3.0 mL/min 的洗脱速度进
行洗脱，洗脱液浓缩结晶后获得的产品中 5-羟基色氨酸质量分数大于 99.0%，灰分小于 1.0%，产品的平均得率为 7.95%，
产品质量符合要求。结论 001×7 阳离子交换树脂吸附分离 5-羟基色氨酸综合性能最好，是较为理想的介质，适合于 99%
规格 5-羟基色氨酸的规模化生产。
关键词：加纳籽；5-羟基色氨酸；离子交换树脂；氨水；静态吸附
中图分类号：R284.2 文献标志码：A 文章编号：0253 - 2670(2013)17 - 2410 - 06
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2013.17.013
Isolation and purification of 5-hydroxytryptophan in extract from seeds
of Griffonia simplicifolia by ion-exchange resin
FENG Jian-guang
Department of Research & Development, Shenzhen Polytechnic College, Shenzhen 518055, China
Abstract: Objective To research the adsortpion and separation function of ion-exchange resin on 5-hydroxytryptophan (5-HTP) in
extract from the seeds of Griffonia simplicifolia and to screen the ion-exchange resin with high selective adsorption. Methods The
static adsorptive properties of eight different types of ion-exchange resins were evaluated using adsorptive content, desorption rate,
adsorption rate, and adsorption temperature as indexes in order to optimize the resin. And the effects of different pH values, injection
rates, injection concentration, eluent concentration, and elution rates on adsorptive properties of resins were investigated. Results
The 001 × 7 cation exchange resin showed the best comprehensive adsorption property. The loading solution concentration was 10.8
mg/mL, the pH value was 3.5, the flow rate of loading solution was 4.0 mL/min, and 3BV 7.0% ammonia water solution in 3.0 mL/min
velocity was used to elute. In this process, the product was obtained with the 5-HTP purity of greater than 99.0% and the ash content of
less than 1.0%, product average yield was 7.95% and the product quality could meet the market demand. Conclusion The 001×7
cation exchange resin shows a better comprehensive adsorption property. It could be used to isolate and purify the 5-HTP for scale
production.
Key words: seeds of Griffonia simplicifolia; 5-hydroxytryptophan; ion-exchange resin; ammonia water; static adsorption

5-羟基色氨酸（5-hydroxytryptophan，5-HTP），
化学名 5-羟基-3-吲哚基-A-氨基丙酸[1]，是从非洲加
纳籽中提取的 1 种天然氨基酸，相比合成的 5-羟基
色氨酸，其使用更加安全。加纳籽为豆科灌木植物
Griffonia simplicifolia (Vahl ex DC.) Baill. 的种子，
主要生长在加纳、象牙海岸和多哥等西非国家。该
植物种子中富含 5-HTP，最高可达 20%，是提取
5-HTP 的天然原料[2]。
5-HTP 是合成 5-羟色胺（5-hydroxytryptamine，
5-HT）的前体，而 5-HT 与多巴胺和去甲肾上腺素

收稿日期：2013-04-03
基金项目：深圳市南山区科技创新局科技项目（南科企 2008110）
作者简介：冯建光（1973—），男，高级工程师，硕士研究生，研究方向为天然产物化学。
Tel: (0755)26731413 E-mail: jianguangfeng@yahoo.com.cn
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一样，是中枢神经系统中重要的神经递质和自身调
节物质，5-HTP在色氨酸脱羧酶作用下转化为5-HT，
增加中枢神经系统中 5-HT 的浓度，同时提高脑部
褪黑素的浓度，从而发生功效作用[3-4]。目前已知
5-HTP 除具有传统医用功能和抗忧郁症外，还具有
减肥、戒瘾、改善睡眠、缓和经前综合症（PMS）、
治疗偏头痛等功能[5-6]，其 5-HTP 相关产品已经在
欧美等国家上市销售。
关于 5-HTP 的分离纯化，目前有任洁等[7]探讨
用大孔吸附树脂对 5-HTP 进行分离纯化研究，发现
AB-8 树脂对加纳籽 5-HTP 具有较好的吸附效果。
刘岱琳等[8]研究不同类型的树脂对加纳籽中 5-HTP
的吸附性能，发现 G6104 型树脂对 5-HTP 具有较强
的吸附选择性；李玉山[9]研究了树脂吸附法和脱脂
结晶法分离、纯化 5-HTP。但 5-HTP 作为一种氨基
酸，具有与色氨酸相似的特性，因此很有必要探讨
专门用离子交换树脂吸附分离 5-HTP。本实验以非
洲特产的加纳籽为原料，探讨利用离子交换树脂对
5-HTP 的吸附分离性能，寻找适合 5-HTP 吸附分离
的离子交换树脂，并研究其吸附和洗脱条件，旨在
建立离子交换树脂吸附分离 5-HTP 的工艺，获得质
量分数在 99%以上，灰分量在 1%以下的 5-HTP 产
品，为规模化生产提供参考。
1 仪器与材料
Waters 1525 高效液相色谱仪、2487 双波长紫
外检测器（上海魁元科学仪器有限公司），BS110S
电子天平（北京赛多利斯天平有限公司），pHSJ—5
pH 计（上海仪电科学仪器股份有限公司）。
5-HTP 对照品（质量分数为 99.0%，美国 Sigma
公司），001×1、001×7、D072、NKC-9、D061、
D151 阳离子交换树脂（南开大学化工厂），201×7、
D201 阴离子交换树脂（安徽三星树脂科技有限公
司）。甲醇为 HPLC 级，超纯水（Millipore 公司），
纯化水（自制），其他试剂均为分析纯。
加纳籽购自加纳 Freshfam Co Ltd.，经香港大学
植物系王明福博士鉴定为豆科灌木植物 Griffonia
simplicifolia (Vahl ex DC.) Baill. 的种子。
2 方法与结果
2.1 提取液的制备
称取 100 g 已脱皮的加纳籽进行粉碎，装填到
40 cm×2.5 cm 的玻璃色谱柱中，装完原料后，上面
盖上纱布，并压上一层洗净的石子，以免加入纯化
水后使原料浮起。缓慢加入纯化水，使液面的高度
高出原料 2～3 cm，加入纯化水后，浸泡 4 h，使加
纳籽原料吸水充分膨胀，然后打开色谱柱下口的开
关，使渗漉液缓缓流出，保持渗漏液体流出的体积
流量和纯化水流入色谱柱的体积流量一致，渗漏液
流出的体积流量为 1 mL/min，保持此速度收集渗漏
液，最后收集的料液体积为 1 000 mL，滤过渗漏液
得加纳籽提取液，备用。
2.2 5-HTP 的 HPLC 法测定[10]
2.2.1 色谱条件 色谱柱为 Waters Symmetry C18
（150 mm×4.6 mm，5 μm），流动相为甲醇-0.1%乙
酸水溶液（10∶90），体积流量 1.0 mL/min，检测波
长 254 nm，柱温 25 ℃，进样量 10 μL。
2.2.2 线性关系考察 精密称取 5-HTP对照品 10.0
mg，置 25 mL 量瓶中，加甲醇溶解并超声 10 min，
甲醇定容，得 396 μg/mL 5-HTP 对照品储备液。准
确吸取此溶液 1.0、2.0、3.0、4.0、5.0 mL 于 10 mL
量瓶中，加入甲醇稀释至刻度摇匀后作为对照品稀
释液。
取对照品稀释液用 0.45 μm 微孔滤膜滤过后，
分别准确吸取 10 μL，按上述色谱条件测定，色谱
图见图 1。以峰面积为横坐标（X），对照品 5-HTP
质量浓度为纵坐标（Y），进行线性回归，得回归方
程 Y＝310 000 X－3.381 1，r＝0.999 2，表明 5-HTP
在 39.6～198 μg/mL 线性关系良好。
2.2.3 样品测定 取加纳籽提取液稀释 100 倍后，
用 0.45 μm 微孔滤膜滤过，吸取 10 μL 进样测定。
色谱图见图 1-b。按色谱条件测得稀释后的加纳籽
提取液中 5-HTP 的质量浓度为 108 μg/mL，换算得
加纳籽原料中 5-HTP 的质量分数为 10.8%。
2.3 树脂的预处理
树脂的预处理按照 GB/T 5476-1996 的方法进
行[11]。阳离子交换树脂先用纯化水浸泡 24 h，使其
充分膨胀，再反复用水冲洗至洗出液不带褐色，泡
沫很少时为止。然后用 4 倍树脂体积的 1 mol/mL
HCl 溶液浸泡 2 h，搅拌，用纯化水冲洗至 pH 值为
5 左右。再用 4 倍树脂体积的 1 mol/L NaOH 溶液浸
泡 2 h，搅拌，用纯化水冲洗至 pH 值为 8 左右。最
后用 4 倍树脂体积的 1 mol/mL HCl 溶液浸泡 2 h，
将树脂转成 H 型，倾去酸液，用纯化水洗至 pH 值
5～6 即可装柱使用。
对于阴离子交换树脂水洗后的酸、碱处理顺序，
采用碱→酸→碱顺序，其他操作方式同阳离子交换
树脂。
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图 1 5-HTP 对照品 (a)、样品 (b) 和纯化后样品 (c) 的 HPLC 色谱图
Fig. 1 HPLC chromatograms of 5-HTP reference substance (a), sample (b), and sample after purification (c)

2.4 静态试验
2.4.1 静态吸附与解吸试验 取经过预处理的 001×
1、001×7、D072、NKC-9、D061、D151、201×7、
D201 树脂各 3 g 置 150 mL 具塞三角瓶中，加入
5-HTP 质量浓度为 10.8 mg/mL 加纳籽提取液 50
mL，在 25 ℃恒温水浴中，以 100 r/min 振摇，取
样分析，当溶液中 5-HTP 质量浓度不变时为吸附平
衡。测定吸附平衡时溶液中 5-HTP 的质量浓度，计
算 5-HTP 的吸附量和吸附率[12]。
吸附量＝(C0－Ce) V / m
吸附率＝(C0－Ce) / C0
C0为溶液中 5-HTP 的初始质量浓度（mg/mL），Ce为吸附平
衡后溶液中 5-HTP 的质量浓度（mg/mL），V 为加纳籽提取
液体积（mL），m 为树脂湿质量（g）
树脂吸附平衡后，滤去提取液用纯化水洗涤树
脂 2 次，放入 150 mL 具塞三角瓶中，阳离子交换
树脂加入 50 mL 质量浓度为 7.0%的氨水溶液，阴离
子交换树脂加入 50 mL 质量浓度为 5.0%的 NaCl 溶
液，于摇床上以 100 r/min 25 ℃恒温水浴中振荡，
取样分析，当溶液中 5-HTP 质量浓度不变时为洗脱
平衡，测定解吸液中 5-HTP的质量浓度，计算 5-HTP
的解吸率。
解吸率＝解吸液中 5-HTP 的质量 / 树脂吸附的 5-HTP
质量
不同离子交换树脂对 5-HTP 的吸附量、吸附率
和解吸率结果见表 1。从表 1 可以看出 001×1、
001×7、D072、NKC-9、D061 5 种树脂具有较高的
吸附率，8 种树脂中 NKC-9 树脂的解吸率最低，综
合考虑树脂的吸附量和解吸率，选用 001×1、001×7、
D072、D061 4 种树脂进行静态吸附动力学考察。以
t 时刻树脂的吸附量 Qt 对时间 t 作图即得树脂的静
态吸附动力学曲线[13]（图 2）。从图 2 可知 001×1、
001×7 离子交换树脂对 5-HTP 的吸附为快速平衡
表 1 不同离子交换树脂对 5-HTP 的静态吸附
Table 1 Static adsorption property of different
ion-exchange resins on 5-HTP
树脂型号 树脂类型
平衡吸附
量 / (mg·g−1)
吸附
率 / %
解吸
率 / %
001×1 强酸性阳离子 44.9 24.9 93.8
001×7 强酸性阳离子 56.5 31.4 92.6
D072 大孔强酸性阳离子 47.8 26.5 83.1
NKC-9 大孔强酸性阳离子 57.3 31.8 74.3
D061 大孔强酸性阳离子 50.2 27.8 84.2
D151 大孔弱酸性阳离子 40.7 22.6 91.8
201×7 强碱性阴离子 32.1 17.8 92.6
D201 大孔强碱性阴离子 38.2 21.2 83.1




图 2 5-HTP 的静态吸附动力学曲线
Fig. 2 Static adsorption kinetics curves of 5-HTP
型，起始阶段吸附量较大，吸附 1 h 后基本可以达
到平衡，D072、D061 为吸附平衡较慢的树脂，要 4
h 才接近吸附平衡。001×1、001×7 凝胶型树脂为
快速吸附平衡型；D072、D061 大孔型树脂为慢速
吸附平衡型，其所表现出来的吸附速率的快慢可能
由 2 类树脂的分子结构差异引起的。综合考虑吸附
量、解吸率、吸附速率，认为 001×7 强酸性苯乙烯
系阳离子交换树脂对 5-HTP 吸附较好，其静态吸附
量为 56.5 mg/g，解吸率为 92.6%，以此树脂进一步
a b 5-HTP5-HTP
0 1 2 3 4 5 0 1 2 3 4 5 0 1 2 3 4 5
t / min
001×1
001×7
D072
D061
60
50
40
30
20
10
0
吸
附
量
/
(m
g·
g−
1 )

20 40 60 80 120 160 200 240 300
t / min
5-HTPc
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进行吸附试验，确定最佳分离纯化工艺。
2.4.2 温度对树脂平衡吸附量的影响 取经过预处
理的 4 份 001×7 树脂，每份树脂 3 g，置 150 mL
具塞三角瓶中，加入 5-HTP 质量浓度为 10.8 mg/mL
的加纳籽提取液 50 mL，分别于 20、30、40、50 ℃
恒温水浴中，以 100 r/min 振摇 3 h，取样分析，测
定树脂在不同温度下的平衡吸附量，结果分别为
56.03、56.31、54.83、52.90 mg/g。可知，温度对树
脂的平衡吸附量影响不大，在 20、30 ℃温度下，
平衡吸附量没有差异，当料液温度升高到 40、50 ℃
时，平衡吸附量略有下降，因此在实际生产中提取
液温度采用常温下进行上柱吸附。
2.5 动态试验
离子交换反应一般是在动态条件下进行的，离
于交换的效果如何，除了受到离子浓度和选择系数
的影响外；还受到离子从溶液进入到树脂表面和在
树脂内部的扩散过程，即离子交换速度的影响[12]，
因此有必要进行动态吸附分离试验，优化树脂的吸
附分离性能。
2.5.1 上样液 pH 值对 5-HTP 吸附的影响 将预处
理好的 001×7 离子交换树脂装入 40 cm×2.5 cm玻
璃色谱柱中，树脂装填体积为 100 mL，加纳籽提取
液中 5-HTP 的质量浓度为 10.8 mg/mL，调 pH 值分
别为 3.0、3.5、4.0、4.5、5.0 的上样液以 3.0 mL/min
的体积流量分别进行上柱吸附，当流出液 5-HTP 质
量浓度达到上样液质量浓度的1/10时为5-HTP的穿
透点[14]，停止上样，收集上样流出液。上样后用 300
mL 纯化水洗涤树脂，收集水洗流出液，合并水洗
流出液和上样流出液，测量其体积以及其中 5-HTP
的质量浓度，计算在不同的 pH 值条件下离子交换
树脂对 5-HTP 的吸附量。结果表明 pH 值对树脂的
吸附性能影响较大，在 pH 值 3.0、3.5 的条件下，
其吸附量较高，但在 pH 值 3.0、3.5 时其吸附量差
异不明显。在 pH 值 4.0 及以上时，其吸附量明显降
低，综合考虑其吸附量以及酸的实际使用量，在生
产中提取液调成 pH 值 3.5 进行上样吸附。
2.5.2 上样体积流量对5-HTP吸附的影响 树脂装
填同“2.5.1”项，加纳籽提取液中 5-HTP 的质量浓
度为 10.8 mg/mL，调 pH 值为 3.5，以 2.0、3.0、4.0、
5.0、6.0 mL/min 上样体积流量进行动态吸附，以上
样液体积的量为横坐标，流出液的质量浓度（C0）
与上样液的质量浓度（Ce）的比值为纵坐标绘制穿
透曲线，比较不同上样体积流量对穿透曲线的影响。
当流出液 5-HTP 质量浓度达到上样液质量浓度的
1/10 时为 5-HTP 的穿透点，停止上样。
从图 3 可以看出，当上样体积流量为 2.0、3.0、
4.0 mL/min 时，其上样量基本没有明显差异，即每
100 mL 柱床体积的树脂可以吸附 450 mL 的上样
液，超过此上样体积时达到 5-HTP 的穿透点。当上
样体积流量增加到 5.0 mL/min 及以上时，5-HTP 的
穿透点明显提前，其上样量逐渐减少。在生产中，
为缩短生产时间，选用 4.0 mL/min 上样体积流量进
行上样。


图 3 001×7 离子交换树脂的穿透曲线
Fig. 3 Breakthrough curves of 001 × 7 ion-exchange resin

2.5.3 上样质量浓度对 5-HTP 吸附的影响 配置
5-HTP 质量浓度分别为 5.4、7.2、10.8、16.2、21.6
mg/mL 的加纳籽提取液（pH 值为 3.5），以 4.0
mL/min 的体积流量进行上样吸附，当流出液 5-HTP
质量浓度达到上样液质量浓度的 1/10 时为 5-HTP
的穿透点，停止上样。上样吸附完毕后，用 300 mL
的纯化水洗涤树脂，收集上样流出液和水洗液，测
量其体积以及其中 5-HTP 的质量浓度，计算树脂的
吸附量，考察提取液在不同上样质量浓度下树脂对
5-HTP的吸附效果，结果吸附量分别为41.61、42.10、
42.00、35.11、34.72 mg/g，吸附率分别为 93.4%、
92.8%、93.1%、91.2%、90.6%。结果表明，上样液
中 5-HTP 在低质量浓度时，其吸附量较大，但不同
低质量浓度的提取液其吸附量差异不明显，当质量
浓度达到 16.2 mg/mL 及以上时，其吸附量反而降
低。因此考虑上样料液的体积量和质量浓度，选用
5-HTP 质量浓度为 10.8 mg/mL 的加纳籽提取液进
行上样吸附。
2.5.4 洗脱剂质量分数的确定 离子交换树脂常用
的洗脱剂有氨水、盐酸、氯化钠等[15]，但考虑到洗
脱液中残留的离子对后续结晶工艺有比较大的影
响，而采用氨水作为洗脱剂，在真空浓缩工序段，
0.4
0.3
0.2
0.1
0
C 0
/
C e

2.0 mL·min−1
3.0 mL·min−1
4.0 mL·min−1
5.0 mL·min−1
6.0 mL·min−1
50 150 250 350 450 550
V / mL
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洗脱液中残留的氨水容易挥发掉，因此选用氨水作
为洗脱剂进行洗脱，配制质量分数分别为 3.0%、
5.0%、7.0%、10.0%氨水进行洗脱试验。
配制 5-HTP 质量浓度为 10.8 mg/mL 的加纳籽
提取液（pH 调为 3.5），以 4.0 mL/min 的体积流量
进行上样吸附，上样完毕后，用 300 mL 去离子水
洗涤树脂，再用 300 mL 的氨水进行解吸，收集洗
脱液，测量洗脱液体积和其中 5-HTP 的质量浓度，
计算 5-HTP 的洗脱率。重复上述操作，在其他条件
相同的情况下，比较不同质量分数的氨水获得的洗
脱率，从而确定最佳的氨水浓度，结果 5-HTP 洗脱
率分别为 70.5%、84.2%、93.9%、94.3%。结果表
明，随着氨水质量分数的提高，其洗脱效果明显提
高，当达到 7.0%时，其洗脱率增加到 93.9%，而
10.0%的洗脱效果与 7.0%的洗脱效果差异不明显，
从成本控制与后续结晶处理工序的便利性综合考
虑，选用质量分数为 7.0%的氨水进行洗脱。
2.5.5 洗脱体积流量对洗脱效果的影响 树脂吸附
饱和后，先用 300 mL 去离子水进行洗涤，然后用
质量分数为 7.0%的氨水进行洗脱，收集洗脱液，测
量洗脱液体积和其中 5-HTP 的质量浓度，以洗脱剂
体积用量为横坐标，洗脱液中 5-HTP 的质量浓度为
纵坐标绘制洗脱曲线。重复上述操作，在其他条件
相同的情况下，比较不同的洗脱体积流量获得的洗
脱效果，从而确定最佳的洗脱体积流量。结果见图
4。结果表明，洗脱体积流量为 2.0、3.0 mL/min 时，
二者的洗脱效果比较接近，洗脱峰的峰形和峰高变
化不大，峰形集中，5-HTP 的洗脱率达到 95%以上。
当洗脱体积流量增加到 4.0、5.0 mL/min 时，洗脱峰
的峰高变矮，峰形变宽，拖尾现象比较严重，在此
洗脱体积流量条件下要达到 95%以上的洗脱率，则
氨水的洗脱体积明显增加，增加了生产成本。综合
考虑生产时间以及氨水消耗量的情况下，确定以 3.0
mL/min 的洗脱体积流量进行洗脱，氨水的洗脱体积
为 3 BV（树脂体积），洗脱液的收集量为 4 BV。
2.6 最佳工艺的确定及验证试验
通过对001×1等8种不同类型的离子交换树脂
对 5-HTP 的吸附洗脱性能比较，确定 001×7 阳离
子交换树脂为吸附分离加纳籽提取液中5-HTP的树
脂，最佳工艺为以4.0 mL/min的上样体积流量上样，
洗脱溶剂为质量分数为 7.0%的氨水，洗脱体积流量
为 3.0 mL/min，洗脱体积为 3 BV，洗脱液收集体积
为4 BV，上样液中5-HTP的质量浓度为10.8 mg/mL，



图 4 不同洗脱体积流量下的洗脱曲线
Fig. 4 Elution curves of different elution flow rates

用稀盐酸调节上样液 pH 值为 3.5。按照上述所确定
的条件进行吸附和洗脱验证试验，取样品液进行上
柱、吸附、洗脱，洗脱液浓缩结晶后获得的样品进
行 5-HTP 的量及灰分[16]质量指标的检测分析，其样
品的色谱图见图 1-c，结果 5-HTP 质量分数分别为
99.3%、99.1%、99.2%，灰分分别为 0.06%、0.11%、
0.07%，得率分别为 7.86%、8.01%、7.98%。可以
看出，获得的样品中 5-HTP 质量分数在 99.0%以上，
其灰分质量分数低于 1.0%，产品平均得率为 7.95%，
该产品质量符合市场要求，工艺适合规模化生产。
得率＝提取物质量×提取物中 5-HTP 的质量分数 / 原
料质量
3 讨论
用离子交换树脂吸附分离 5-HTP 对上样液的
pH 值比较敏感，由于不同批次的加纳籽原料经水提
取获得的提取液因其 5-HTP 的量存在差异，所以获
得的提取液其原始 pH 值就存在差异，用盐酸调节
提取液的 pH 值时，添加酸的用量也会不同，因此
每批上样液需要严格用 pH 计测量其 pH 值，确保每
批上样液的 pH 值大致相近。
洗脱液中氨水的残留量对结晶有影响，因此
洗脱液浓缩时应该尽量去除其中的氨水。为了消
除氨水的影响，可以在浓缩到一定程度后再加适
量的纯化水稀释进行浓缩，尽量把结晶液中的氨
水减至最少。
结晶液滤过获得产品后的母液中仍存在大量的
5-HTP，但是母液中的 5-HTP 是否仍可以用此同样
的工艺进行分离吸附仍需进一步实验。
通过静态吸附和动态吸附试验，采用 001×7
阳离子交换树脂吸附分离 5-HTP，其加纳籽提取液
经该树脂吸附分离、结晶纯化后获得的产品其
5-
H
TP
/
(m
g·
m
L−
1 )

35
30
25
20
15
10
5
0
2.0 mL·min−1
3.0 mL·min−1
4.0 mL·min−1
5.0 mL·min−1
50 100 150 200 250 300 400
V / mL
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 44 卷 第 17 期 2013 年 9 月

·2415·
5-HTP 的质量分数由原来的 10.8%提高到 99.0%以
上，且活性物质 5-HTP 的回收率达到了 73.0%（回
收率＝提取物质量×提取物中 5-HTP 质量分数 /
原料中活性物质的质量）。同时用离子交换树脂吸附
分离氨基酸广泛应用于工业化生产中，有非常成熟
的应用案列，因此用 001×7 吸附分离 5-HTP 工艺
可靠，能有效降低生产成本，应用前景广阔。
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