目的:研究牡丹皮炮制过程中黄酮类成分的动态变化,探讨丹皮炭的炮制机制。方法:取生丹皮及经不同炒炭工艺制得的丹皮炭,加乙醇50 mL超声30 min 2次,再经聚酰胺柱纯化后采用HPLC,在360 nm波长处,流动相甲醇-0.5‰三氟乙酸水溶液梯度条件下,测定槲皮素、山柰素、异鼠李素等黄酮类成分的含量。结果:丹皮炭中3种黄酮类成分含量随炒制时间的延长而降低,随炒制温度的升高而降低。结论:不同炮制条件对丹皮炭中黄酮类成分的含量影响较大,总体变化趋势是高温长时间导致黄酮类成分含量降低,为进一步研究丹皮炭的止血机制和质量控制提供了依据。
Objective: Study on the of content variety of flavonoids in the course of processing Cortex Moutan,and discuss the preparation mechanism of Cortex Moutan Carbonisatum (CMC). Method: HPLC method was developed for the determination of flavonoids in various extent of CMC, the sample was extracted by ultrasound 30 min twice along with ethanol 50 mL. Chromatographic conditions were as follows: wavelength 360 nm, gradient eluant of methanol-0.5‰ trifluoroacetic acid. Result: The content of the three flavonoids cuts down along with the processing time and the rising temperature. Conclusion: The impact of various extent of processing on flavonoids‘ content of the CMC is very great. The overall trend is that high temperature and long time lead to the lower of the content of flavonoids. This provides a basis data for the further study on the hemostatic mechanism and quality control of CMC.
全 文 :不同炮制工艺丹皮炭中黄酮类成分的动态变化
丁安伟,张 丽,赵学龙,李 娴
(南京中医药大学 江苏省方剂研究重点实验室,江苏 南京 210046)
[摘要] 目的:研究牡丹皮炮制过程中黄酮类成分的动态变化,探讨丹皮炭的炮制机制。方法:取生丹皮及经不同炒炭
工艺制得的丹皮炭,加乙醇50mL超声30min2次,再经聚酰胺柱纯化后采用HPLC,在360nm波长处,流动相甲醇05‰三
氟乙酸水溶液梯度条件下,测定槲皮素、山柰素、异鼠李素等黄酮类成分的含量。结果:丹皮炭中3种黄酮类成分含量随炒制
时间的延长而降低,随炒制温度的升高而降低。结论:不同炮制条件对丹皮炭中黄酮类成分的含量影响较大,总体变化趋势
是高温长时间导致黄酮类成分含量降低,为进一步研究丹皮炭的止血机制和质量控制提供了依据。
[关键词] 丹皮炭;炮制;黄酮;槲皮素;山柰素;异鼠李素;HPLC
[收稿日期] 20080927
[基金项目] 国家“十一五”科技支撑计划项目(2006BAI09B0602)
[通信作者] 丁安伟,教授,博士生导师,研究方向为中药炮制与
复方研究,现任南京中医药大学药学院院长,Tel:(025)85811523,E
mail:awding105@163.com
牡丹皮为毛茛科植物牡丹 Paeoniasufruticosa
Andr.的干燥根皮。具有清热凉血、活血化瘀作用,
用于温毒发斑,吐血,夜热早凉,无汗骨蒸,经闭痛
经,痈肿疮毒,跌扑伤痛[1]。炒炭后专攻止血,用以
治疗各种出血性疾病,使用历史悠久[2]。目前对丹
皮的研究主要集中在生品[35],对炭品的炮制工艺及
炮制机制都没有深入的研究。有研究表明,槲皮素
具有一定的止血作用[6],因此本研究对不同炮制工
艺所得牡丹炭中槲皮素、山柰素、异鼠李素的动态变
化进行了研究,以期为揭示丹皮炭炮制机制及丹皮
炭饮片的质量标准研究提供依据。
1 仪器与试药
1.1 仪器 Waters515高效液相色谱仪(配 waters
2996全波长紫外检测器,waters717plus自动进样
器,Empower工作站);YXJⅡ高速离心机(江苏金
坛市金城国胜实验仪器厂);FA1104N电子天平
(1/万,上海精密科学仪器有限公司);BP211D电子
天平(1/10万,德国赛多利斯);AZ8868红外线温
度测量仪(上海壹琦仪器仪表有限公司);高速万能
粉碎机(天津泰斯特仪器有限公司)。
1.2 试药 实验用生牡丹皮为安徽铜陵产,经南京
中医药大学吴启南教授鉴定为毛茛科植物牡丹皮
Psufruticosa,丹皮炭为实验室自制。槲皮素、山柰
素、异鼠李素(中国药品生物制品检定所,批号分别
为 00081200406,110861200303,110860200406),
甲醇和三氟乙酸为色谱纯,水为超纯水,其他试剂均
为分析纯。
2 方法
2.1 样品制备 称取生丹皮适量,共12份,分别经
过220,250,280,320℃炒制10,20,30min,得不同
炒制程度的丹皮炭品,粉碎,过60目筛,即得。生品
粉碎过60目筛,即得。各丹皮炭样品性状见表1。
2.2 色谱条件 PlatisilODS(46mm×150mm,5
μm),流动相为甲醇05‰三氟乙酸水溶液,采用梯
度洗脱,其梯度流程见表2,柱温30℃,流速为1mL
·min-1,检测波长360nm,理论塔板数以槲皮素峰
计不得少于3000。色谱图见图1。
2.3 供试品溶液制备 取供试品粉末约5g,精密
称定,置100mL具塞锥形瓶中,加乙醇50mL,超声
(500W,40kHz)提取30min,滤过,滤渣连同滤纸
依法提取第2次,滤过,合并2次滤液,蒸干,残渣趁
热加30%乙醇30mL溶解,放冷,通过聚酰胺柱(内
径1cm,长15cm,聚酰胺湿体积12mL),以水100
mL洗脱,弃去洗脱液,再用甲醇100mL洗脱,收集
洗脱液,蒸干,用甲醇溶解并转移至5mL量瓶中,加
甲醇至刻度,摇匀,即得。
2.4 对照品溶液制备 分别精密称取槲皮素、山柰
素与异鼠李素对照品适量,置3个棕色量瓶中,加甲
醇溶解并稀释制成每1mL含槲皮素01006mg、山
柰素01000mg、异鼠李素01050mg的各对照品
储备液,即得。分别精密量取上述槲皮素对照品储
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表1 不同炮制程度丹皮炭性状
No. 温度/℃ 时间/min 性状
A1 220 10 不规则片状,外部浅黄色,内部浅黄色
A2 20 不规则片状,外部黄色,内部浅黄色
A3 30 不规则片状,外部深黄色,内部浅黄色
B1 250 10 不规则片状,外部深黄色,内部浅黄色
B2 20 不规则片状,外部深黄色,内部浅黄色
B3 30 不规则片状,外部黄褐色,内部深黄色
C1 280 10 不规则片状,外部黑褐色,内部深黄色
C2 20 不规则片状,外部黑褐色,内部黄褐色
C3 30 不规则片状,少量炭化成粉末,外部黑褐色,内部黄褐色
D1 320 10 不规则片状,外部焦黑色,内部黑褐色,少量炭化
D2 20 不规则片状,外部焦黑色,内部黑褐色,少量炭化
D3 30 不规则片状,外部焦黑色,内部焦黑色,炭化较多
表2 流动相梯度洗脱
时间/min 甲醇/% 水/%
00 450 550
250 450 550
300 550 450
450 550 450
470 450 550
500 450 550
备液4mL,山柰素对照品储备液2mL,异鼠李素对
照品储备液2mL,置10mL量瓶中,加甲醇至刻度,
即得1号混合对照品溶液。
2.5 线性关系考察 精密量取1号混合对照品溶液
5mL,置10mL量瓶中,得每1mL含槲皮素002012
mg、山柰素001000mg、异鼠李素001050mg的2
号混合对照品溶液,再采用逐级稀释法,得到质量浓
A.对照品;B.生丹皮;C.丹皮炭;1.槲皮素;2.山奈素;3.异鼠李素。
图1 丹皮不同炮制品中槲皮素、山奈素、异鼠李素HPLC图
度分别为1号混合对照品溶液1/4,1/8,1/16的系
列混合对照品溶液,即 3,4,5号混合对照品溶液。
分别精密吸取上述5份溶液各10μL,注入高效液
相色谱仪(n=2)。以各对照品质量浓度 X(g·
L-1)为横坐标,平均峰面积 Y为纵坐标,绘制标准
曲线,得各成分回归方程为槲皮素 Y=41383322
X-3870708(r=09995);山柰素 Y=44383174
X-191656(r=09995); 异 鼠 李 素 Y =
35845071X-179445(r=09995)。结果表明槲
皮素、山柰素、异鼠李素 3种成分的进样量分别在
0025~04,00125~02,00125~02μg呈良好
的线性关系。
2.6 精密度试验 在上述色谱条件下,以2号混合
对照品溶液为考察对象,依法测定,连续进样6针,
得槲皮素、山柰素与异鼠李素 3种成分峰面积的
RSD分别为14%,14%,13%,表明本法精密度
良好。
2.7 重复性试验 取生牡丹皮供试品依法处理6
份,依法测定,重复性试验结果表明供试品中槲皮素
的平均含量002564mg·g-1,RSD17%、山柰素
的平均含量0008230mg·g-1,RSD18%与异鼠
李素的平均含量 0007700mg·g-1,RSD25%。
结果表明该方法的重复性良好。
2.8 稳定性试验 取生牡丹皮的同1份供试品溶
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液,在10h内每隔2h测定1次,共测定6次,得槲
皮素、山柰素、异鼠李素峰面积的 RSD分别为
20%,24%,21%。结果表明该方法在10h内的
稳定性良好。
2.9 加样回收率试验 取生牡丹皮粉末6份,每份
约25g,精密称定,分别加入槲皮素对照品储备液
06mL、山柰素对照品储备液02mL和异鼠李素对
照品储备液018mL。依法测定,得槲皮素平均回
收率 9360%,RSD20%,山柰素平均回收率
978%,RSD17%,异鼠李素平均回收率9974%,
RSD20%。表明该测定方法测定结果准确,见
表3~5。
表3 槲皮素加样回收率
称样量
/g
样品含量
/mg
测得量
/mg
回收率
/%
平均值
/%
RSD
/%
2501 006503 01208 9304
2503 006508 01227 9611
2503 006508 01194 9047 9360 20
2505 006513 01220 9477
2504 006511 01208 9282
2505 006513 01224 9539
注:加入量均为006036mg。
表4 山柰素加样回收率
称样量
/g
样品含量
/mg
测得量
/mg
回收率
/%
平均值
/%
RSD
/%
2501 002057 003999 9710
2503 002059 004018 9796
2503 002059 003968 9542 9783 17
2505 002060 004077 10080
2504 002060 004000 9698
2505 002060 004024 9819
注:加入量均为00206mg(表5同)。
表5 异鼠李素加样回收率
称样量
/g
样品含量
/mg
测得量
/mg
回收率
/%
平均值
/%
RSD
/%
2501 001926 003715 9940
2503 001927 003759 10180
2503 001928 003654 9593 9974 20
2505 001929 003762 10190
2504 001928 003700 9844
2505 001929 003720 9950
2.10 样品含量测定 按2.3项下供试品溶液的制
备,分别对丹皮生品与各炭品进行测定,见表6。
表6 供试品中3种黄酮类成分(n=2)
mg·g-1
样品 槲皮素 山柰素 异鼠李素
生品 002564 0008226 0007690
A1(220℃,10min) 001441 0005392 0004297
A2(220℃,20min) 001141 0004304 0003541
A3(220℃,30min) 001150 0004166 0003594
B1(250℃,10min) 001655 0005962 0004545
B2(250℃,20min) 0007373 0002717 0002343
B3(250℃,30min) 0006715 0002598 0002228
C1(280℃,10min) 0008265 0003204 0002509
C2(280℃,20min) 0002959 0001337 0001051
C3(280℃,30min) 0002977 0001137 00009150
D1(320℃,10min) 0002287 00009940 00008380
D2(320℃,20min) 0003742 00014680 0001358
D3(320℃,30min) 0002689 0001128 00008080
3 讨论
本实验结果表明,丹皮各炮制品饮片中槲皮素、
山柰素与异鼠李素的含量随炒制程度的变化而变
化,总体而言,随着炮制温度的升高含量随之降低,
同一温度下随着炒制时间的增加其含量均随之降
低。文献表明槲皮素是侧柏炭止血的指标性成
分[7],但由本实验结果可知,生丹皮中槲皮素等黄
酮类成分含量较丹皮炭中的稍高,初步推测可能在
丹皮炒炭过程中槲皮素等黄酮类成分有所损失。因
此槲皮素等黄酮类成分是否是丹皮炭止血的指标性
成分,其炒炭前后含量的变化是否有助于丹皮炭炮
制机制的揭示还有待进一步深入研究。
经过紫外扫描得知槲皮素、山柰素与异鼠李素
在360nm有最大吸收,故检测波长选择为360nm。
前期的实验结果表明,超声、回流、索氏3种提
取方式均可将槲皮素等黄酮类成分提取完全,考虑
到超声提取操作简便,因此提取方式选择超声提取。
对超声提取次数的考察结果表明,超声提取2次已
可将槲皮素等黄酮类成分基本提取完全,因此提取
次数选择2次。对每次提取时间的比较结果表明,
每次提取30min即可将槲皮素等黄酮类成分提取。
完全。对提取溶剂的比较结果表明,甲醇和乙醇提
取效率相当,故选择低毒价廉的乙醇。
对供试品溶液是否经聚酰胺柱纯化的考察结果
表明,因丹皮炭中成分复杂,且槲皮素等黄酮类成分
含量较低,若不经聚酰胺柱纯化则干扰过大,因此供
试品溶液制备采用聚酰胺柱纯化的方法。对聚酰胺
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柱纯化条件进行了考察,供试品分别经湿体积为6,
8,10,12,15mL的聚酰胺柱纯化,结果表明当聚酰
胺湿体积为12mL时,3个待测成分含量最高。因
此聚酰胺装柱湿体积选定为12mL。对水洗脱的考
察结果表明,以100mL水为初洗脱液即可将杂质基
本洗脱完全且不影响槲皮素等黄酮类成分的含量,
故水洗脱量选定为100mL。对甲醇洗脱量的考察
结果表明,样品经甲醇100mL洗脱,3种待测成分
已基本洗脱完全,故甲醇洗脱量确定为100mL。
[参考文献]
[1] 中国药典.一部[S].2005:119.
[2] 许济群.方剂学[M].上海:上海科学技术出版社,1985:155.
[3] 胡红宇,杨 郁,于能江.牡丹皮化学成分研究[J].中国中药
杂志,2006,21(31):21.
[4] 李方军.牡丹皮化学成分及药理作用研究进展[J].安徽医药,
2004,8(1):75.
[5] 王玉文,虞 科,程翼宇.RPHPLC测定牡丹皮饮片中3种活
性成分的含量[J].中国中药杂志,2006,31(20):20.
[6] 李 惠,原桂东,金亚宏,等.槐花饮片及其提取物止血作用的
实验研究[J].中国中西医结合杂志,2004,24(11):1007.
[7] 孙立立,杨书斌,江 波,等.炮制对侧柏叶化学成分的影响
[J].中成药,2006,28(6):821.
Dynamicchangeofflavonoids'contentinvariousextentofcortex
moutancarbonisatum
DINGAnwei,ZHANGLi,ZHAOXuelong,LIXian
(KeyLaboratoryforModernResearchofTraditionalChineseMedicalFormulaeofJiangsu,
NanjingUniversityofChineseMedicine,Nanjing210046,China)
[Abstract] Objective:StudyontheofcontentvarietyofflavonoidsinthecourseofprocessingCortexMoutan,anddiscussthe
preparationmechanismofCortexMoutanCarbonisatum(CMC).Method:HPLCmethodwasdevelopedforthedeterminationoffla
vonoidsinvariousextentofCMC,thesamplewasextractedbyultrasound30mintwicealongwithethanol50mL.Chromatographic
conditionswereasfolows:wavelength360nm,gradienteluantofmethanol05‰ trifluoroaceticacid.Result:Thecontentofthe
threeflavonoidscutsdownalongwiththeprocessingtimeandtherisingtemperature.Conclusion:Theimpactofvariousextentofpro
cessingonflavonoids'contentoftheCMCisverygreat.Theoveraltrendisthathightemperatureandlongtimeleadtothelowerofthe
contentofflavonoids.ThisprovidesabasisdataforthefurtherstudyonthehemostaticmechanismandqualitycontrolofCMC.
[Keywords] cortexmoutancarbonisatum;processingcrudedrugs;flavonoids;quercetin;kaempfero;isorhamnetin;HPLC
[责任编辑 周 驰]
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