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HPLC法从瘤果紫玉盘叶中分离制备紫玉盘醇和大花紫玉盘醇G



全 文 :·1654· 中革焉ChineseTraditionalndHerbalDrugs第38卷第11期2007年11月
经皮给药系统中的体外释放度测定,是基质释
放性能的主要参数。药物首先要从骨架材料中释放
出来,达到皮肤表面,进而经皮渗透进入体内发挥作
用。本实验采用透皮吸收的方法进行体外释放试验,
只是将经皮渗透变成药物直接释放,结果表明正交
试验优选出的巴布剂基质配方具有良好的俸外释放
性能,对黄芩苷药物持续释放可达12h以上。
体外透皮吸收试验结果表明正交试验优选出的
基质配方可稳定持续释放黄芩苷并促进其经过皮肤
吸收,且随着时问的延长黄芩苷的透皮速率略有增
大。经皮给药系统中,药物透过皮肤的主要屏障是角
质层o]。角质层厚约i0~15pm,其中角质细胞的胞
浆、胞膜及细胞间隙的脂质分子都对药物有屏障作
用。形成了主要屏障区,限制了药物透皮的传输,所
以12h体外透皮累积透过量比体外释放累积释放
量要小的多。
综上所述,本实验通过正交试验优选出一个生
物相容性良好的黄芩苷巴布剂的基质配方,其黏接
性能良好且载药量大、释放性好,是具有较好前景的
新型巴布剂基质。
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HPLC法从瘤果紫玉盘叶中分离制备紫玉盘醇和大花紫玉盘醇G
许琼明“。,剜午邑丽1,赵葆华2,徐丽珍。,杨世辣2。’,王少军3
(1.苏州大学药学院.江苏苏州215123}2.中国医学科学院中国协和医科大学药用植物研究所,北京100094
3.国家中药固体材剂工程技术研究中心。江西南昌 330006)
瘤果紫玉盘为番荔枝辩紫玉盘属植物。该属植
物主要分布于我国的西南地区,在民间广泛应用于
癌症、贫血和炎症的治疗“。]。紫玉盘属植物中主要
含有多氧取代环己烯、番荔枝内酯、黄酮、生物碱等
类成分o]。本课题组研究表明多氧取代环己烯类化
合物具有较强的抗肿瘤活性,如能抑制核苷的转移,
对胸腺嘧啶脱氧核苷和尿嘧啶核苷抑制作用强,能
显著抑制人结肠癌细胞、乳腺癌、肝癌细胞等的增
殖,同时对多药耐药瘤株同样有效“]。为合理利用植
物资源,创制新型癌症治疗药物,笔者对瘤果紫玉盘
叶进行了化学成分研究,发现紫玉盘醇和大花紫玉
盘醇G的量共约0.5%,且具有较强的抗肿瘤活
性E“。目前,市场上无紫玉盘醇和大花紫玉盘醇G
对照品出售。因此为了控制紫玉盘属植物药材质量,
开发该属植物资源,本实验采用常规色谱和高效液
相结合的方法制备这两种多氧取代环己烯对照品紫
玉盘醇和大花紫玉盘醇G。结构见图1。该法简便易
行,产品质量分数可达98%以上,满足了常规定量
分析检测的需求。
l仪器、材料与试剂
Waters2690分析型高教液相色谱仪,996PDA
检测器(美国Waters公司)。R200型旋转蒸发器。
Fisher—Johns熔点测定仪。Peikin—Elmer983G红外
仪(美国PE公司)fVarianInova600spectrometer
核磁共振仪(美国Varian公司);MieromassZabspec
spectrometer质谱测定仪(美国Micromass公司)}
JAscO一715CDspectrometer(日本Jaseo公司)。
瘤果紫玉盘叶采集于贵州省黔西南地区。由中
国医学科学院药用植物研究所李国强副教授鉴定为
瘤果紫玉盘UvaHakweichowensisP.T.Li。分析所
用正已烷和异丙醇均为HPLC级,其他试剂均为分
析纯,水为双蒸水。SephadexLH一20(英国Pharma—
eia公司),色谱用(100t200目与200300目,柱
色谱用)购于青岛海洋化工厂。
2条件与方法
2.1色谱条件:半制备色谱柱:Zorbax苯基柱(250
鏊銎是昔:留紧省蒙喜学基金资助项目。。。。,。。8。)。
作者简介:许琼明(1975--).男,湖北蕲春人,讲师.博士.主要从事天然药物活性成分研究及中药新药开发。
.通讯作者T虬杨:(0世5林12M5T8。810:3(0。1l。)E6-2m8a9i9h7xou591鼍粥穷掣嚣;盘。鬯基毗”。g曲jlj。97。5@h毗。。mcom
万方数据
中草菊ChineseTraditionalandHerbalDrugs第38卷第11期2007年11月·1655·
猡杼
圈1囊果紫玉盘中紫玉盘醇(I)和大花紫玉盘醇
G(I)的结构
Fig-1Structuresofz ylenol(I)anduvarigranol
G(I)fromU.kweichowensi$
mm×9.4mm,7pm);柱温:室温;检测波长:230
nm;流动相:甲醇一水(70:30);体积流量:2.0mL/
min。
分析色谱柱:Altech正相硅胶柱(250mmX9.4
mm,5pm)}柱温;室温;DAD检测器,检测波长:
230nin;流动相:正己烷一异丙醇(98,2);体积流量:
2.0mL/min。
2.2样品预处理:瘤果紫玉盘叶5kg,粉碎,90%
乙醇回流提取3次,每次2h,台并提取液,减压浓缩
挥去乙醇,以氯仿萃取5次,萃取液浓缩,得提取物
150g,拌硅胶上100~200目,石油醚(30~60℃)一
醋酸乙酯梯度洗脱,收集石油醚一醋酸乙酯(8:2)
洗脱部分,得到黑色胶状物35g。将此黑色胶状物再
经过200~300目硅胶柱色谱分离,收集石油醚一醋
酸乙酯(8:z)洗脱部分,经第二次硅胶柱色谱分离
得到的产品上SphadexLH一20柱,以氯仿一甲醇(1t
1)洗脱除去色素得白色胶状物28g。
2.3半制备色谱分离:取1g白色胶状物溶于乙腈
溶液,配制成lg/mL的溶液,超声30min,用半制
备高效液相色谱法纯化,进样量为50止,分别收集
保留时间为46.2和53.4min的两个组分,见图2。
将其减压浓缩(100℃以下)后置恒温干燥箱内干燥
24h(40℃),最后得到两个白色针状结晶,各600
和320mg。
2.4单体质量分数分析:由于至今国内尚无多氧取
代环己烯类成分的法定对照品,本实验采用半制备
型高效液相色谱分离出紫玉盘醇和大花紫玉盘醇
G,依照上述正相分析条件,经HPLC归一化法检测
2个单体质量分数均达到98.0%以上(图3),符台
要求。
3鉴定
紫玉盘醇:白色针晶,mp126~127℃,
■]舫=一99.39,(c一0.07,CHCl3),uVx~”“
nm:230,274,280;IR(KBr)cm~:3480,1709,1
605,1455,1280,120,712lFAB—MSm/z:385.2
(EM+H3+);1H—NMR(CDCl3,600MHz)d:4.22
0 10 20 30 柏 50 60 70
t/mitt
l一荤玉盘醇2一大花紫玉盘醇G
1一托ylenol2-uvarigranolG
图2瘤果紫玉盘中多氧取代环己烯类化学成分的
制备液相色谱围
Fig·2preparativechromatogramofpolyoxygenated
cyclohexenesfromU.1【1laeichowensis
矿——百——1F飞i一。一。l石1’ 矗 南
t/nfin
1一紫玉盘醇2一大花紫玉盘醇G
1-zeylenol2-uvafigranolG
圈3觜玉盘醇和大花紫玉盘醇G的裔效液相色谱圈
Fig·3HPLCchromatogramsfzeylenol
anduvarigranolG
(1H,d,J一6.6Hz,H一2),5.69(1H,ddt,J=6.6,
2.6,1.8Hz,H一3),5.81(1H,ddd,J=11.2,2.6,
0.6Hz,H-4),5.94(1H,ddd,J—11.2,3.6,1.8
Hz,H一5),4.36(1H,d,J一3.6Hz,H一6),4.60和
4.68(各1H,d,J一12.0Hz,H一7).7.30~8.10
(10H,m,H—Ar),3.05(3H,s,一OH)。”C—NMR(CD—
C13,150MHz)a:76.0(C一1),70.9(C—Z),74.4(C.
3).127.0(C一4),128.5(C一5),68.6(C-6).66.8(C一
7)。以上数据与文献报道啪基本一致。
大花紫玉盘醇G:白色针晶,mp68~69℃,
[q]口=--44.0。,(c=0.05,CHCI3),UVX_。⋯“Flm:
230。274,280;IR(KBr)cm一1:3480,1709。1605,l
455,l280,120,712;FAB—MSm/z:385.2(rM+
H3+);1H—NMR(CDCl3,600MHz)d:3.98(1H,d,
J=7.8Hz,H一2),5.82(1H,m,H一3),5.82(1H,m,
H一4),5.77(1H,ddd,J一10.8,1.8,2.4Hz,H一5),
4.39(1H,d,t,一2.4Hz,H一6),4.56和4.63(各1H,
d,J=12.0Hz,H一7),d:7.30~8.10(10H,m,H—
Ar),3.25(3H,s,一OH),”C—NMR(CDCl,,150
MHz)d:76.5(C一1),71.4(C一2),75.0(C一3),126.2
万方数据
·1656· 中草菊c帖Ⅱ馏eTraditionalandHerl衄lDrags第38卷第11期2007年11月
(C一4),128.1(C一5),67.0(C一6),65.8(c一7)。以上数
据与文献报道01基本一致。
4讨论
色谱分离方法的选择:紫玉盘醇和大花紫玉盘
醇G为一对同分异构体,仅C一6的绝对构型不同,
极性十分相近,普通方法很难将它们分离开。由于紫
玉盘醇和大花紫玉盘醇G的极性较小,适合用正相
HPLC分离.但正相色谱试剂要求较高,价格昂贵,
故采用反相HPLC分离制备单体,正相HPLC鉴定
质量分数。
制备条件的选择:紫玉盘醇和大花紫玉盘醇G
的极性小,性质相近,实验起初采用ODS柱,甲醇一
水(75l 25)为流动相,流量2mL/min,120rain出
峰,未分离开。根据它们的性质,考虑改用苯基柱分
离制备单体,经摸索采用甲醇一水(70t 30)为流动
相,可将它们基本分开,时间虽J然稍长,但每次制备
量较大,基本达到半制备目的。
致谢:感谢贵州省林业研究所邓朝义研究员采集植
物材料,军事医学科学院陈舍兵和薛燕等同志代洲
NMR和MS谱。
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象皮与拟替代品黄牛皮、水牛皮中蛋白的研究
李蓥1,李秀兰3,张燕玲1。石森2,王昊1,李惠芬”
(1.天津医科大学,天津300070;2.天津市天津医院。天津300210;3.天津市安定医院,天津300052)
象皮屑象科动物亚洲象Elephasm acimusLin-
naeus.的皮,具有止血敛疮、祛腐生肌作用。其主要
成分为蛋白质、氨基酸及微量元素“]。以象皮为君药
的生肌象皮膏可以促进表皮细胞的增生、分化,对巨
噬细胞膜Fc及C。b受体有明显的增强作用,还可以
使伤口的pH值变化过程加快,促进伤口愈合o]。但
是《中华人民共和国野生动物保护法》已将大象列为
国家一级保护动物。为寻找替代品,本实验选择与象
皮具有相似药效作用的黄牛皮和水牛皮作为比较对
象,将3种样品提取液中蛋白质的量及组成进行对
比分析。
1仪器与材料
日本日立U一3310分光光度计,DYY—I型电
泳仪(北京六一仪器厂)。
象皮由天津医院骨研所组织工程室李秀兰研究
员提供,经天津医科大学药学院周晔副教授鉴定。黄
牛皮、水牛皮采自河北省承德市郊区,属于壮年期4
岁的牛,该年龄的牛其后背皮中的蛋白质的量较高,
宰杀放血直至放尽后取该部位的皮。对照品人胎盘
血蛋白由天津医科大学检验系生化教研室张燕玲教
授提供。丙烯酰胺(Act,电泳级)、甲叉丙烯酰胺
(Bis)、葡聚糖凝胶树脂(中国医药集团上海化学试
剂公司),其余试剂均为分析纯。
2方法与结果
2.1双缩脲法口“3测定蛋白质
2.1.1供试品溶液的提取[..5]:精密称取象皮、黄牛
皮、水牛皮粉末各1g,加聚山梨酯80与少许石英砂
于研钵中冰浴研磨10min,加0.01tool/LTris—HCI
缓冲液300mL,于冰浴条件下超声混匀2h,0~4
℃冰箱中放置过夜使之充分溶胀。次日冰浴超声提
取6h后,4000r/min离心15min,转移上清液,下
层沉淀加缓冲液300mL,重复操作4次,弃去沉淀,
合并上清液,加固体(NH。)。SO.至100%饱和度,
4000r/min离心15rain,沉淀以Tris—Hcl缓冲液
溶解定容50mL量瓶,得初提液,0~4℃冰箱中短
期保存。
警銎是首:笑鼙等1畜;科学基金蕈点资助项目(。338。2911)
*通讯作者李亳芬Tell(022)23529243E—maillihuiien@tijmu.edu.c11
万方数据
HPLC法从瘤果紫玉盘叶中分离制备紫玉盘醇和大花紫玉盘醇G
作者: 许琼明, 刘艳丽, 赵葆华, 徐丽珍, 杨世林, 王少军
作者单位: 许琼明(苏州大学药学院,江苏,苏州,215123;中国医学科学院,中国协和医科大学药用植物研
究所,北京,100094), 刘艳丽(苏州大学药学院,江苏,苏州,215123), 赵葆华,徐丽珍(中国
医学科学院,中国协和医科大学药用植物研究所,北京,100094), 杨世林(中国医学科学院
,中国协和医科大学药用植物研究所,北京,100094;国家中药固体制剂工程技术研究中心,江
西,南昌,330006), 王少军(国家中药固体制剂工程技术研究中心,江西,南昌,330006)
刊名: 中草药
英文刊名: CHINESE TRADITIONAL AND HERBAL DRUGS
年,卷(期): 2007,38(11)
被引用次数: 1次

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1.杨向楠.陈海生 紫玉盘属植物的化学成分和药理研究进展[期刊论文]-药学实践杂志 2009(2)


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