全 文 :virus 35S promoter, Nature, 313: 810~812
Odell J.T., Knowlton S., Lin W., and Mauvais C.J., 1988,
Properties of an isolated transcription stimulating sequence
derived from the cauliflower mosaic virus 35S promoter,
Plant Molecular Biology, 10: 263~272
Shao K.Q., Yang S.H., Yu L., and Wan J.M., 2008, Function
verifying of darkness inducing motif YTCANTYY in pib
promoter via rice transformation, Zuowu Xuebao (Acta
Agronomica Sinica), 34 (9): 1667~1672 (邵克强, 杨世湖,
余丽, 万建民, 2008, Pib 基因启动子内 YTCANTYY 暗诱
导分子元件功能的转基因验证 , 作物学报 , 34 (9):
1667~1672)
Sambrook J., Fritsch E.F., and Maniatis T., eds., 1989, Molecular
Cloning-A Laboratory Manual (second edition), New York:
Cold Spring Harbor Laboratory Press, pp.496~499
Wang Z.X., Yano M., Yamanouchi U., Iwamoto M., Monna L.,
Hayasaka H., Katayose Y., and Sasaki T., 1999, The Pib
gene for rice blast resistance belongs to the nucleotide
binding and leucine-rich repeat class of plant disease
resistance genes, The Plant Journal., 19(1): 55~64
Wang Z.X., Yamanouchi U., Katayose Y., Sasaki T., and Yano
M., 2001, Expression of the Pib rice-blast-resistance gene
family is up-regulated by environmental conditions
favouring infection and by chemical signals that trigger
secondary plant defences, Plant Molecular Biology, 47:
653~661
Wang Y., Mai W.J., Liang C.Y., and Zhang M.Y., 2003,
Advances on studies of plant promoters, Xibei Zhiwu
Xuebao (Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica), 23
(11): 2040~2048 (王颖, 麦维军, 梁承邺, 张明永, 2003, 高
等植物启动子的研究进展 , 西北植物学报 , 23 (11):
2040~2048)
Zhou M., Yang S.H., Lan Y., Jin Y.K., and Wan J.M., 2008,
Initial functional analysis of the promoter region and coding
region of Pib gene in transgenic rice, Yichuan(Hereditas), 30
(3): 367~372 (周明, 杨世湖, 兰莹, 晋玉宽, 万建民, 2008,
35S驱动 Pib 基因启动区和编码区的转基因初步分析, 遗
传, 30(3): 367~372)
DNA甲基化和类 Dicer蛋白是拟南芥继代胁迫适应过程中所必需的
Transgeneration Adaptation of Arabidopsis to Stress Requires DNA
Methylation and the Function of Dicer-like Proteins
植物在其生活史中会受到各种各样的生物和非生物胁迫,为适应这些胁迫,植物通过基因组水平以及生理状态的改变使自
身具有更强的抵御胁迫的能力。 前人研究发现,植物整个基因组的稳定性和 DNA 甲基化水平都会发生相应的变化,并且这些
变化和植物抗胁迫能力密切相关。 随着抗逆生物学研究的深入,人们更多的开始关注另外一个科学问题:植物自身的这些抵抗
胁迫的能力是否能够传递到下一代呢? 如果植物确实具有这种能力,其具体的分子机理又是如何调控这一生物学过程的呢? 研
究人员通过 UV-C 和多肽激素 flg22 对模式植物拟南芥的胁迫处理发现, 被胁迫的植物子代中具有更高的同源重组率(HRF),
这种基因组水平上的变化和其子代适用胁迫过程具有密切的关系(Jean Molinier, 2006)。
基于 Jean Molinier 等(2006)的研究,比利时和加拿大等国科学家进行了合作研究。 研究人员对模式植物拟南芥进行高盐、
冷害、热击以及涝害胁迫等处理,然后对其子代群体进行研究。 研究发现,正常条件下,受过胁迫处理的子代植物具有更高水平
的同源重组率 HRF和 DNA 甲基化;胁迫处理条件下,受过胁迫的子代植物比正常条件下生长植物的子代具有更强的抵抗胁
迫的能力。另外,研究人员通过对 smRNA 介导的基因沉默过程中的突变体研究发现,smRNA 介导的基因沉默过程对于受胁迫
子代植物中表现出的这种更强的抗胁迫能力也起着重要作用(Alex Boyko, 2010)。受胁迫的植物将抵御胁迫的能力传递给下一
代的这种现象被形象的比喻为“胁迫记忆”现象(stress memory)。 对于这一现象的机理研究仍处于起步阶段,今后应该会有更多
的研究工作聚焦在这一现象上面。
编者: 金京波(中国科学院植物研究所),本刊通讯员
本文引用格式:金京波, 2010, DNA甲基化和类 Dicer蛋白在拟南芥继代胁迫适应过程中所必需的,农业生物技术学报, 18(4): 637
信息来源: http://www.nature.com/nature/journal/v442/n7106/full/nature05022.html
http://www.plosone.org/article/info%3Adoi%2F10.1371%2Fjournal.pone.0009514
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pib 基因启动子 3端缺失体的暗诱导特性分析
Analysis for Darkness Inducing Property of 3 end deleted pib promoters 637