全 文 ：北方园艺２０１１（１３）：１２１～１２４ ·生物技术·
第一作者简介：刘芳伊（１９８７－），女，在读硕士，现主要从事观赏植
物遗传育种研究工作。
责任作者：尚爱芹（１９６９－），女，博士，副教授，现主要从事观赏植物
遗传育种及基因工程育种研究工作。Ｅ－ｍａｉｌ：ｓｈａｎｇａｉｑｉｎ＠
１２６．ｃｏｍ。
基金项目：保定市科技支撑计划资助项目（１０２Ｃ００１）；河北农业大
学大学生科技创新活动基金资助项目。
收稿日期：２０１１－０４－１４
百子莲组培快繁与植株再生
刘 芳 伊，高 永 鹤，尚 爱 芹
（河北农业大学 园艺学院，河北 保定０７１００１）
　　摘　要：以百子莲为试材，研究了百子莲的无菌播种、组培快繁及植株再生。结果表明：百子
莲成熟种子最佳的消毒方法：７０％酒精消毒１ｍｉｎ，然后用０．１％ ＨｇＣｌ２灭菌３ｍｉｎ。将种子接种
在不添加植物调节剂的ＭＳ培养基上，发芽状况良好；切取幼苗基部进行增殖培养，增殖的最佳培
养基为ＭＳ＋６－ＢＡ　４．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．１ｍｇ／Ｌ。最佳外植体为去根的无菌苗，最佳不定芽分化培
养基为 ＭＳ＋６－ＢＡ　４．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．１ｍｇ／Ｌ，其不定芽分化率达９２％。在１／２ＭＳ＋ＩＡＡ
０．５ｍｇ／Ｌ培养基上，生根率达８０％。驯化移栽后，其成活率达９０％。
关键词：百子莲；无菌播种；组培培养；植株再生
中图分类号：Ｓ　６８１．９　文献标识码：Ａ　文章编号：１００１－０００９（２０１１）１３－０１２１－０４
　　百子莲属（Ａｇａｐａｎｔｈｕｓ）植物是一种非常优秀的园
林花卉，原产南非，于１６９２年从好望角传入英国。
１６７９年在欧洲第一次发布的百子莲的名字叫非洲水
仙。之后Ｌｉｎｎａｅｕｓ开始提出非洲百合（又叫爱情花）叫
法，直到现在欧美仍沿用此名［１］。它的种类丰富，叶形
秀丽，花朵姿态优美，花期持续时间长。百子莲的抗性
较强，各种土壤类型均可生长，喜湿润土壤，也较耐旱。
目前，人工培育出很多品种，广泛地应用于切花生产、
园林美化、药用成分提取等方面［２－３］。Ｓａｋａｅ　Ｓ．等［４－５］建
立了百子莲遗传转化体系，并试图通过基因工程手段
培育新品种。但我国对百子莲引种栽培较晚，各方面
的研究尚在起步阶段，卓丽环［６］、孙颖［７］等对百子莲的
繁育系统进行了系统研究，但组织培养研究方面的资
料较少，其组培快繁及植株再生尚未见报道。
该研究通过种子在无菌条件下萌发而获得无菌植
株，进一步开展组织培养工作。通过组培快繁，可以周
年生产，在比常规育苗节省大量空间的基础上获得大
量的商品苗，从而满足都市园林绿化的需要，推动此花
卉在我国的广泛应用，增加北方园林绿化苗木种类。
该研究建立了百子莲无性快繁技术体系，为百子莲规
模化育苗、利用基因工程技术实现对百子莲遗传转化
以及改良百子莲种质奠定了技术基础。
１　材料与方法
１．１　试验材料
百子莲品种Ａ．ｐｒａｅｃｏｘｓｓｐ．ｐｒａｅｃｏｘ ‘Ｆｌｏｒｉｂｕｎｄａ
种植在河北农业大学花卉温室，该研究以其饱满种子
为试验材料。
１．２　试验方法
１．２．１　无菌种子的制备与接种　将百子莲种子从成
熟果实中剥出，自然风干。将种子浸入７０％酒精消毒
１ｍｉｎ，然后用无菌水冲洗３～４次，随后用０．１％ＨｇＣｌ２
溶液处理（１、３、５、８ｍｉｎ），期间不断用玻璃棒搅拌，最
后用无菌水冲洗５～６次，将种子直接接种在以下培养
基上：（１）不含任何激素的 ＭＳ培养基；（２）ＭＳ＋６－ＢＡ
０．５ｍｇ／Ｌ。观察其生长状态，并记录数据。待试管苗
生长至３．０～４．０ｃｍ时自基部切下，移至生根培养基，
接种在培养基上在光照条件下进行预培养，待无菌苗
长至４片真叶以上时，切去根部，以上部作为外植体。
１．２．２　接种种子培养基及培养方法　采用 ＭＳ培养
基和 ＭＳ＋６－ＢＡ　０．５ｍｇ／Ｌ，蔗糖３０ｇ／Ｌ，琼脂７ｇ／Ｌ，
ｐＨ调整为５．８～６．０。每个三角瓶中接入百子莲种子
１０～１５个，从接种之日起，接种２周后统计污染率，４
周后统计死亡率、存活率。
１．２．３　试管苗的增殖培养　将无菌幼苗去除根部，接
种到增殖培养基上，以 ＭＳ为基本培养基，附加不同浓
度的６－ＢＡ、ＮＡＡ。３０ｄ后统计结果。
１．２．４　不定芽的再生　将切掉根系的小苗及叶段（长
１ｃｍ），接种到含不同植物激素浓度及组合的 ＭＳ培养
基上（激素配比见表２）。每个处理最少接种５０个外植
体，３次重复。接种６周后统计不定芽分化率及外植
体平均不定芽个数。
１．２．５　叶片愈伤组织诱导　将叶片切成长约１ｃｍ的
小段接种在 ＭＳ附加不同浓度２，４－Ｄ（１、２、４、８ｍｇ／Ｌ）
的培养基上，以诱导愈伤组织。
１２１
·生物技术· 北方园艺２０１１（１３）：１２１～１２４
１．２．６　再生苗的生根培养　当不定芽长到３ｃｍ左右
时，从基部切割下来，转接到附加不同浓度的生根培养
基中进行生根培养。统计其生根率并观察其根系的生
长状况。
１．２．７　培养条件　所有培养均在以下条件下进行：
（２５±２）℃，光照强度：１　５００～２　０００ｌｘ，光照时间：１４ｈ
光照，１０ｈ黑暗。
１．２．８　组培苗训化与移栽　当组培苗生根后，于组培
室中去掉三角瓶的瓶塞，晾瓶７ｄ后，用自来水洗去幼
苗根部的琼脂，移栽于泥炭与蛭石等量混合的营养土
中，先在人工气候箱中缓苗７ｄ，然后置于温室中进行
训化锻练，１５ｄ后正常管理。统计成活植株数量，计算
成活率。
２　结果与分析
２．１　不同消毒处理的消毒效果
对于有果实外皮严密包裹的未成熟种子，经过消
毒处理污染率为０，比成熟种子更易获得无菌材料。
而对于成熟的种子，由于果实已经开裂，种子缺乏外界
保护层，部分暴露于空气中，受污染的几率大大增高，
因而消毒处理需要重视。为降低百子莲成熟种子的污
染率，同时又不伤害或杀死种子，设计了以下成熟种子
消毒处理方案，即单纯用酒精消毒和用酒精表面杀毒
后再用升汞进行不同时间的消毒２种不同的消毒处
理。从而选择适宜的灭菌剂，确定该灭菌剂最佳的处
理时间。
由表１可知，方法１中只用酒精做消毒处理
３ｍｉｎ，污染率很高，说明只用酒精消毒不能够达到消
毒的效果。方法２中的７０％酒精１ｍｉｎ＋０．１％ ＨｇＣｌ２
溶液振荡３ｍｉｎ处理使种子污染率较低而萌发率较高
（９３．３％），有助于提高初次接种的数量和质量。其余
的处理方法有的由于消毒处理时间过短，导致消毒不
彻底，污染率高；有的由于消毒处理时间过长，导致消
毒过度，污染率虽然为０，但是萌发率偏低，致使种子死
亡。
　　表１ 不同消毒处理方法对种子污染率及萌发率的影响
消毒处理方法 接种数 污染数 污染率／％ 萌发数 萌发率／％
７０％酒精３ｍｉｎ　 ３０　 ２１　 ７０ － －
７０％酒精１ｍｉｎ＋ＨｇＣｌ２ ＨｇＣｌ２／％ 处理时间／ｍｉｎ
０．１　 １　 ８１　 ３０　 ３７　 ４５　 ５５．６
０．１　 ３　 ９０　 ３　 ３　 ８４　 ９３．３
０．１　 ５　 ８１　 ０　 ０　 ９　 １１．１
０．１　 ８　 ８０　 ０　 ０　 ０　 ０
２．２　不同的接种培养基对种子萌发的影响
将百子莲的种子消毒后无菌条件下接入２种培养
基中，观察其生长情况，记录种子的生长情况（表２）。
从表２可看出，不加任何激素的 ＭＳ基本培养基较
ＭＳ＋６－ＢＡ　０．５ｍｇ／Ｌ的培养基更有利于幼胚的生长
成苗。在不含任何激素的 ＭＳ培养基上，该品种的发
芽率比较高，但发芽不整齐，接种的第７天，只有少量
的种子萌发（图１），随着发芽时间的延长，发芽率逐渐
提高，当接种３周左右时，其发芽率达到最高，为８８％
（图２）。出现此种情况可能和种子的饱满度有一定的
关系，在以后的试验中还需加强对种子整齐度的进一
步筛选。
表２　２种激素组成对未成熟种子幼胚生长的影响
天数 幼胚生长情况
／ｄ　 ＭＳ　 ＭＳ＋６－ＢＡ　０．５ｍｇ／Ｌ
１ 接种 接种
５ 种子开始膨大 种子开始膨大
７ 部分种子开始萌芽 种子膨大而畸形
２１
幼苗发芽率达８８％，幼苗生长
正常
少数种子萌发，但其幼苗不能正常
生长
２．３　激素及其配比对芽增殖的影响
当幼苗达２０～３０ｄ时，将幼苗的根系切除，将以
上部分外植体接种于 ＭＳ培养基上，附加６－ＢＡ、ＮＡＡ，
图１　接种后７ｄ种子萌发情况（ＭＳ）
图２　接种３周后种子的萌发情况（ＭＳ）
激素浓度配比及结果见表３。由表３可知，６－ＢＡ对百
子莲增殖有重要影响，当６－ＢＡ浓度为１．０ｍｇ／Ｌ，
ＮＡＡ为０．０５、０．１ｍｇ／Ｌ时，其增殖系数分别为２．２和
３．４，二者差异不明显。但随着６－ＢＡ浓度的上升，其增
殖系数逐渐增大，当６－ＢＡ浓度为４ｍｇ／Ｌ，其增殖系数
最大，分别为１０和１２（图３）。但当６－ＢＡ浓度再升高
时，其增殖系数又开始下降。可见６－ＢＡ对百子莲的增
２２１
北方园艺２０１１（１３）：１２１～１２４ ·生物技术·
殖起着重要作用，而ＮＡＡ的影响不太显著，但各组合
中０．１ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ的增殖效果略好于０．０５ｍｇ／Ｌ。因
此百子莲的最佳增殖体系为 ＭＳ＋６－ＢＡ　４ｍｇ／Ｌ＋
ＮＡＡ　０．１ｍｇ／Ｌ。
表３　植物生长调节剂组合对芽增殖率的影响
处理
生长调节剂
／ｍｇ·Ｌ－１
芽增殖的情况
６－ＢＡ　 ＮＡＡ 接种数／个 增殖苗总数／个 增殖系数
１　 １．０　 ０．０５　 ３０　 ３６　 ２．２
２　 １．０　 ０．１　 ３０　 １０２　 ３．４
３　 ２．０　 ０．０５　 ３０　 ３０　 ５．０
４　 ２．０　 ０．１　 ３０　 ７８　 ６．６
５　 ４．０　 ０．０５　 ３０　 ３０　 １０
６　 ４．０　 ０．１　 ３０　 １３５　 １２
７　 ６．０　 ０．０５　 ３０　 ３０　 ３．０
８　 ６．０　 ０．１　 ３０　 ４５　 ４．５
图３　接种６周后百子莲的增殖
２．４　不同外植体、不同激素及浓度配比对不定芽形成
的影响
将百子莲根颈和叶片接种于附加不同植物生长调
节物质的培养基上进行愈伤组织和不定芽的诱导。由
表４可知，不同外植体的不定芽再生能力有很大差异，
在相同的培养条件下，以叶片为外植体均没有愈伤组
织及不定芽的形成。以根茎为外植体，不同细胞分裂
素对愈伤组织及不定芽的形成也有很大区别。当根茎
外植体接种２周后，其基部开始膨大，接种３周时有大
量白色愈伤组织形成，接种４周时，有少量不定芽开始
出现（图４），继续培养至６周时，有大量不定芽开始形
成（图５）。该研究中不同浓度的ＫＴ和ＮＡＡ组合均
没有不定芽的形成。不同浓度的６－ＢＡ与０．１ｍｇ／Ｌ
ＮＡＡ结合，均有愈伤组织及不定芽的形成，当６－ＢＡ浓
度为１．０ｍｇ／Ｌ时，其不定芽再生率仅为４０％，外植体
　　表４ 不同外植体、不同浓度及组合的植
物激素对百子莲不定芽再生的影响
处理／ｍｇ·Ｌ－１ 再生率／％
外植体平均
不定芽数目／个
细胞分裂素 生长素 根颈 叶片 根茎 叶片
６－ＢＡ　 ＮＡＡ
１　 ０．１　 ４０　 ０　 ３　 ０
２　 ０．１　 ７２　 ０　 ５　 ０
４　 ０．１　 ９５　 ０　 １２　 ０
６　 ０．１　 ８０　 ０　 ６　 ０
ＫＴ　 ＮＡＡ
１　 ０．１　 ０　 ０　 ０　 ０
２　 ０．１　 ０　 ０　 ０　 ０
４　 ０．１　 ０　 ０　 ０　 ０
６　 ０．１　 ０　 ０　 ０　 ０
平均不定芽数只有３个，随着６－ＢＡ浓度的提高，其不
定芽再生率快速上升，当６－ＢＡ浓度为４．０ｍｇ／Ｌ时，
其不定芽再生率达到最高，为９５％，外植体平均不定芽
数目也达到最多，大多在１２个以上，当６－ＢＡ浓度再增
加时，其不定芽再生率及外植体平均不定芽数目均有
所下降，因此４．０ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ＋０．１ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ是百
子莲不定芽最佳的诱导体系。
图４　接种３周时不定芽的形成
图５　接种６周时大量不定芽形成
２．５　叶片愈伤组织诱导
不同的外植体对不定芽的再生有很大的影响。以
百子莲的叶片为外植体接种在含有不同浓度的细胞分
裂素和生长素的培养基上，没有不定芽的形成，也没有
出现愈伤组织。为了建立以叶片为外植体的再生体
系，试验中再次以２，４－Ｄ作为主要生长调节剂来诱导
愈伤组织的形成。２，４－Ｄ通常是用来诱导愈伤组织的
生长素，为了得到愈伤组织，该研究将细嫩的叶片切成
约１ｃｍ长的小段，接种到含不同浓度２，４－Ｄ（１、２、４、
８ｍｇ／Ｌ）的培养基中，但是各处理均没有任何反应（数
据略），可见百子莲的叶片对植物激素的反应极不敏
感，因此，还有必要进一步研究以叶片为外植体，其愈
伤组织和不定芽再生所需的最佳条件。
２．６　不定芽生根诱导（见表５）
　　表５ 不同培养基对生根诱导的影响
编号 培养基 激素 生根率 均根数 均根长／ｃｍ
ＩＢＡ／ｍｇ·Ｌ－１　ＩＡＡ／ｍｇ·Ｌ－１ ／％
ｒ１ ＭＳ　 ０．１　 ０　 ５４　 ２　 ８．２
ｒ２ ＭＳ　 ０　 ０．１　 ３６　 １　 ５
ｒ３ ＭＳ　 ０．１　 ０．１　 ２８　 ２　 ５．５
Ｒ１ ＭＳ　 ０．５　 ０　 ３３　 １　 １．５
Ｒ２ ＭＳ　 ０　 ０．５　 ０　 ０　 ０
ｒ４　 １／２ＭＳ　 ０．１　 ０　 ６２　 ２　 ３．７
ｒ５　 １／２ＭＳ　 ０　 ０．１　 ６０　 ２　 ６．７
ｒ６　 １／２ＭＳ　 ０．１　 ０．１　 ６０　 ２　 ３．５
Ｒ４　 １／２ＭＳ　 ０．５　 ０　 ７０　 ２　 ５．４
Ｒ５　 １／２ＭＳ　 ０　 ０．５　 ８０　 ２　 ５．７
３２１
·生物技术· 北方园艺２０１１（１３）：１２１～１２４
图６　６０ｄ后不定芽在培养基上生根状况
２．７　组培苗训化与移栽
当组培苗形成完整根系以后，于组培室中去掉瓶
塞，敞口晾瓶７ｄ，向培养瓶中倒入自来水，摇晃至琼脂
散块。倒入大烧杯，用玻璃棒轻轻搅拌，使再生苗根系
周围的琼脂全部脱落。最后用镊子轻夹小植株，涮洗
苗根部残留的琼脂，移栽到泥炭与蛭石等量混合的营
养土中（图７）中缓苗７ｄ，然后移入温室中锻炼。控制
空气相对湿度从８５％左右逐渐降低，开始时注意中遮
荫。移栽后２～３ｄ不见光，以后逐渐增加光照强度和
时间。温度控制在２４℃左右。移植后１５ｄ调查，再生
苗的平均成活率为９０％。１５ｄ后移栽于土壤中，进行
正常管理。
图７　移栽成活的幼苗
３　讨论与结论
外植体的类型对组培快繁成功起着重要作用，选
择合适的外植体是成功建立快繁体系的重要前提［８］。
因此，选择带菌少、容易获得的外植体就显得尤为重
要。叶片是组织培养及植株再生常用的外植体，该研
究以叶片为外植体未能得到愈伤组织，分析原因认为
百子莲为单子叶植物，需要生长素浓度较高，其最佳的
诱导体系有待于进一步研究。但以百子莲成熟种子为
试材，能够快速地得到无菌苗。将无菌苗的根系切除，
以上部分作为外植体，获得了较高增殖率。激素是影
响植株再生的一个关键因素。激素的种类和比例对器
官发生起决定作用。该研究中采用了６－ＢＡ和 ＮＡＡ
结合的方法，结果表明，６－ＢＡ对百子莲增殖有着显著
的促进作用，而当细胞分裂素采用ＫＴ时未能得到再
生植株，至于其它的细胞分裂素和生长素对百子莲增
殖效果如何还有待于进一步研究。
该研究首次建立了百子莲组织培养快繁及植株再
生体系，不仅丰富了自身的基础理论，为基因工程育种
研究提供快速而有效的平台，并且在实际生产中具有
繁殖系数大、繁殖速度快、苗木整齐一致的特点，从而
大大提高了生产效率和经济效益。
参考文献
［１］　张伟艳．百子莲属种子生物学和幼苗生长特性研究［Ｄ］．哈尔滨：
东北林业大学，２００７．
［２］　Ｖｅａｌｅ　Ｄ　Ｊ　Ｈ，Ｈａｖｌｉｋ　Ｉ，Ｏｌｉｖｅｒ　Ｄ　Ｗ，ｅｔ　ａｌ．Ｐｈａｒｍａｃｈｏｌｇｉｃａｌ　ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ
Ａｇａｐａｎｔｈｕｓ　Ａｆｒｉｃａｎｕｓ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｉｓｏｌａｔｅｄ　ｒａｔ　ｕｔｅｒｕｓ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ
Ｅｔｈｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ，１９９９，３（６６）：２５７－２６２．
［３］　Ｋａｍａｒａ　Ｂ　Ｉ，Ｍａｎｏｎｇ　Ｄ　Ｔ　Ｌ，Ｂｒａｎｄｔ　Ｅ　Ｖ．Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ　ｏｆ　ａ
ｄｉｍｍｅｒｉｃ　ｄｉｈｙｄｒｏｃｈａｌｃｏｎｅ　ｆｒｏｍ　Ａｇａｐａｎｔｈｕｓ　Ａｆｒｉｃａｎｕｓ ［Ｊ］．Ｐｈｙｔｏｃ－
ｈｅｍｉｓｔｒｙ，２００５，１０（６６）：１１２６－１１３２．
［４］　Ｓｕｚｕｋｉ　Ｓ，Ｓｕｐａｉｂｕｌｗａｔａｎａ　Ｋ，Ｍｉ　Ｍ，ｅｔ　ａｌ．Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｒａｎｓｇｅｎｉｃ
ｐｌａｎｔｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｌｉｌｉａｃｅｏｕｓ　ｏｒｎａｍｅｎｔａｌ　ｐｌａｎｔ　Ａｇａｐａｎｔｈｕｓ　ｐｒａｅｃｏｘ　ｓｓｐ．
Ｏｒｉｅｎｔａｌｉｓ（Ｌｅｉｇｈｔｏｎ）Ｌｅｉｇｈｔｏｎ　ｖｉａ　Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ－ｍｅｄｉａｔｅｄ　ｔｒａｎｓｆｏｒｍａｔｉｏｎ
ｏｆ　ｅｍｂｒｙｏｇｅｎｉｃ　ｃａｌｉ［Ｊ］．Ｐｌａｎｔ　ｓｃｉｅｎｃｅ，２００１，１（１６１）：８９－９７．
［５］　Ｓｕｚｕｋｉ　Ｓ，Ｏｏｔａ　Ｍ，Ｎａｋａｎｏ　Ｍ．Ｅｍｂｒｙｏｇｅｎｉｃ　ｃａｌｕｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｆｒｏｍ　ｌｅａｆ
ｅｘｐｌａｎｔｓｏｆ　ｔｈｅ　Ｌｉｌｉａｃｅｏｕｓ　ｏｒｎａｍｅｎｔａｌ　ｐｌａｎｔ，Ａｇａｐａｎｔｈｕｓ　ｐｒａｅｃｏｘ　ｓｓｐ．
ｏｒｉｅｎｔａｌｉｓ（Ｌｅｉｇｈｔｏｎ）Ｌｅｉｇｈｔｏｎ　Ｈｉｓｔｌｏｇｉｃａｌ　ｓｔｕｄｙ　ａｎｄ　ｒｅｓｐｏｎｓｅ　ｔｏ　ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ
ａｇｅｎｔｓ［Ｊ］．Ｓｃｉｅｎｔｉａ　Ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｅ，２００２，９５：１２３－１３２．
［６］　卓丽环，孙颖．百子莲的花部特征与繁育系统观察［Ｊ］．园艺学报，
２００９，３６（１１）：１６９７－１７００．
［７］　孙颖，卓丽环．百子莲的传粉昆虫及其访花行为研究［Ｊ］．上海农业
学报，２００９，２５（１）：８７－９１．
［８］　李浚明．植物组织培养教程［Ｍ］．北京：中国农业大学出版
社，２００２．
Ｔｉｓｓｕｅ　Ｃｕｌｔｕｒｅ　ａｎｄ　Ｐｌａｎｔ　Ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ａ．ｐｒａｅｃｏｘｓｓｐ．ｐｒａｅｃｏｘ‘Ｆｌｏｒｉｂｕｎｄａ
ＬＩＵ　Ｆａｎｇ－ｙｉ，ＧＡＯ　Ｙｏｎｇ－ｈｅ，ＳＨＡＮＧ　Ａｉ－ｑｉｎ
（Ｃｏｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒｅ，Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｏｆ　Ｈｅｂｅｉ，Ｂａｏｄｉｎｇ，Ｈｅｂｅｉ　０７１００１）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｈｅ　ｐａｐｅｒ　ｒｅｐｏｒｔｅｄ　ａｓｅｐｓｉｓ　ｓｏｗｉｎｇ，ｔｉｓｓｕｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ，ａｎｄ　ａｄｖｅｎｔｉｔｉｏｕｓ　ｂｕｄ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ａ．ｐｒａｅｃｏｘｓｓｐ．
ｐｒａｅｃｏｘ‘Ｆｌｏｒｉｂｕｎｄａ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｍａｔｕｒｅ　ｓｅｅｄｓ　ｏｆ　ａｇａｐａｎｔｈｕｓ　ｔｒｅａｔｅｄ　ｂｙ　７０％ｅｔｈａｎｏｌ　ｆｏｒ　１ｍｉｎ　ａｎｄ
ｔｈｅｎ　ｔｒｅａｔｅｄ　ｂｙ　０．１％ ＨｇＣｌ２ｆｏｒ　３ｍｉｎ．Ｔｈｅ　ｍｅｄｉｕｍ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｓｅｅｄ　ｗａｓ　ＭＳ　ｗｉｔｈｏｕｔ　ａｎｙ　ｐｌａｎｔ　ｇｒｏｗｔｈ
ｒｅｇｕｌａｔｏｒｓ．Ｔｈｅ　ｏｐｔｉｍｕｍ　ｍｅｄｉｕｍ　ｗａｓ　ＭＳ　ｍｅｄｉｕｍ　ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ　６－ＢＡ　４．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．１ｍｇ／Ｌ．Ｔｈｅ　ｓｈｏｏｔ
ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｍｅｄｉｕｍ　ｗａｓ　ＭＳ＋６－ＢＡ　４．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．１ｍｇ／Ｌ．Ｏｎ　ｔｈｅ　ｍｅｄｉｕｍ　１／２ＭＳ＋ＩＡＡ　０．５ｍｇ／Ｌ，ｔｈｅ
ｅｌｏｎｇａｔｅｄ　ｓｈｏｏｔｓ　ｒｏｏｔｅｄ　ａｔ　ｔｈｅ　ｒａｔｅ　ｏｆ　８０％ａｎｄ　ｔｈｅ　ｓｕｒｖｉｖａｌ　ｒａｔｅ　ｗａｓ　９０％ａｆｔｅｒ　ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ　ａｃｃｌｉｍａｔｉｚａｔｉｏｎ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：Ａ．ｐｒａｅｃｏｘｓｓｐ．ｐｒａｅｃｏｘ‘Ｆｌｏｒｉｂｕｎｄａ；ａｓｅｐｓｉｓ　ｓｏｗｉｎｇ；ｔｉｓｓｕｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ；ｐｌａｎｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ
４２１