全 文 ：微生物学通报 Mar. 20, 2016, 43(3): 495−503
Microbiology China http://journals.im.ac.cn/wswxtbcn
tongbao@im.ac.cn DOI: 10.13344/j.microbiol.china.150498


Foundation item: Natural Science Foundation of Shandong Province (No. ZR2014EMM005); Human Resources and
Social Security Hall Support (No. 20101008)
*Corresponding author: E-mail: hslu628@163.com
Received: July 01, 2015; Accepted: September 02, 2015; Published online (www.cnki.net): November 05, 2015
基金项目：山东省自然科学基金面上项目(No. ZR2014EMM005)；山东省人力资源与社会保障厅资助项目(No.
20101008)
*通讯作者：E-mail：hslu628@163.com
收稿日期：2015-07-01；接受日期：2015-09-02；优先数字出版日期(www.cnki.net)：2015-11-05
研究报告
溶藻菌 R1的分离鉴定以及对栅藻共处代谢的影响
陆洪省* 刘文君 张瑶 王建燕 张庆莹 于梦梦
(山东科技大学化学与环境工程学院 山东 青岛 266590)


摘 要：【目的】分离并鉴定溶藻菌和栅藻，并对溶藻菌抑制栅藻的机理进行分析。【方法】溶
藻菌分离采用高氏一号培养基，经多次划线纯化而得；溶藻菌鉴定采用生理生化性质判定；栅藻
分离和鉴定主要采用镜检和《中国常见淡水浮游藻类图谱》完成；溶藻菌对栅藻的影响分析测定
包括：测定栅藻叶绿素 a变化、水体中溶解氧变化、藻细胞数目变化、藻蛋白表达变化、抑藻特
殊物质测定等。【结果】共分离出 4株溶藻菌(R1−R4)，通过对其理化性质测定初步判定均属于
芽孢杆菌属(Bacillus sp.)，其中溶藻菌 R1对栅藻生长的影响最明显，其对栅藻叶绿素 a的抑制率
为 65%、溶解氧最低达 6.5 mg/L，远低于栅藻单独培养下的 10.4 mg/L；栅藻单独培养条件下的
蛋白质表达为 0.845 7 mg/L，与溶藻菌 R1共培养时栅藻蛋白表达仅有 0.192 6 mg/L；傅里叶红外
光谱(FTIR)测定表明溶藻菌对栅藻细胞结构产生影响；相差显微镜对溶藻菌 R1-栅藻共培养动态
观察图可以看出，溶藻菌 R1对栅藻的生长具有明显的抑制作用。【结论】从影响栅藻细胞结构、
栅藻蛋白表达、栅藻光合作用等方面进行了分析，为揭示溶藻菌对栅藻抑制的机理提供了一定的
理论基础。
关键词：溶藻菌，栅藻，叶绿素 a，栅藻蛋白，溶解氧
Identification of algicidal bacterium R1 and its influence on the
metabolism of scenedesmus in a co-culture
LU Hong-Sheng* LIU Wen-Jun ZHANG Yao WANG Jian-Yan
ZHANG Qing-Ying YU Meng-Meng
(College of Chemical and Environmental Engineering, Shandong University of Science and Technology,
Qingdao, Shandong 266590, China)
Abstract: [Objective] Objectives of this study were to isolate and identify algicidal bacteria and
scenedesmus, then analyze the inhibition mechanism on scenedesmus by algicidal bacteria. [Methods]
Streak culture and physio-chemical properties were used to purify and identify algicidal bacteria
respectively. The methods in “Microscopy and Chinese common freshwater planktonic algae” were
used to isolate and characterize scenedesmus. The items including chlorophyll a, DO, scenedesmus
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cells, alga protein expression, special matter of algal inhibition were analyzed to clarify the influences
of algicidal bacteria on scenedesmus. [Results] Four algicidal bacteria (R1−R4) were isolated and
identified their genus of Bacillus sp. based on their physi-chemical properties. Algicidal bacteria R1
was proved for its most inhibition effects on scenedesmus. The inhibition of chlorophyll a was 65%;
DO was 6.5 mg/L, far below to 10.4 mg/L obtained by the sole-culture of scenedesmus; The
alga protein was only 0.192 6 mg/L and also far below to 0.845 7 mg/L of the normal alga protein
expression without the inhibition of algicidal bacteria R1. FTIR results showed algicidal bacteria R1
could influence scenedesmus cell structure. The obvious inhibition of algicidal bacteria R1 on
scenedesmus was also proved through phase contrast microscope during their co-culture process.
[Conclusion] The inhibition mechanism of algicidal bacteria on scenedesmus including scenedesmus
cell structure changes, scenedesmus protein and scenedesmus photosynthesis so on have been analyzed.
Keywords: Algicidal bacteria, Scenedesmus, Chlorophyll a, Scenedesmus protein, Dissolved oxygen (DO)
部分细菌具有溶解藻细胞、降解藻毒素的作
用，被统称为溶藻细菌[1]。20 世纪 70 年代，Daft
等研究发现[2]，富营养化水体中藻类叶绿素的含量
与溶藻菌的数量之间存在着较好的相关性。在之后
的几十年中，很多能溶解藻的细菌被分离出来[3]，
国外报道的主要溶藻菌有假单胞菌属 Alteromonas
sp.[4]、粘细菌属 Myxobacter sp.[5]、芽孢杆菌属、黄
杆菌属等。国内学者彭超等[6]分离获得 3 株溶藻细
菌，生理生化鉴定为葡萄球菌属 (Staphylococcus
sp.)、芽 孢杆 菌属 (Bacillus sp.)和节 杆菌属
(Arthrobacter sp.)。近些年来，国内外溶藻细菌大多
分离自发生水华或赤潮的海洋及湖泊[4-5,7]，大多为
革兰氏阴性菌[1]。
生物除藻技术，尤其是利用溶藻菌来控制水华
和赤潮的研究，越来越引起人们的关注[8-9]。李云晖
等研究了氧化铁纳米固定对溶藻菌除藻的影响[10]，
郭吉等对太湖中分离到的溶藻菌的降解藻毒素的
效果进行了分析[11]。但到目前为止，溶藻菌除藻能
力低、细菌有效抑制藻的生物量很低等仍然是制约
生物除藻的关键因素[12]。另外，对溶藻菌抑制藻类
生长机理的研究仍然非常有限，所作研究侧重于溶
藻现象和溶藻方式，对溶藻细菌与藻共处培养过程
中溶藻物质的鉴定、对藻类蛋白质表达以及光合作
用的影响等涉及甚少。
本研究从微富营养化水体中分离到几株溶藻
菌，并对其溶藻能力、溶藻机理进行初步分析，所
用藻为微富营养化水样中的优势藻(栅藻)，研究内
容包括：抑藻物质的分离和鉴定(HPLC 方法)；溶
藻菌对藻代谢(如光合作用)的影响；溶藻菌对藻蛋
白表达的影响等。不仅对溶藻菌与藻共处培养中的
动态变化进行分析，还从分子生物学水平上对溶藻
菌抑制藻生长的机理进行初步分析，为溶藻菌抑制
藻类的研究提供一定的理论和实践基础。
1 材料与方法
1.1 溶藻菌分离与培养
溶藻菌富集：采用高氏一号培养基，培养基组
成(g/L)：可溶性淀粉 20.0，NaCl 0.5，KNO3 1.0，
K2HPO4·3H2O 0.5，MgSO4·7H2O 0.5，FeSO4·7H2O
0.01，pH调整至 7.4−7.6，1×105 Pa灭菌 20 min，
待用。将 10 mL微富营养化水样接种到含有 150 mL
高氏一号液体培养基的三角瓶中，30 °C、150 r/min
培养 7 d。
溶藻菌的分离：采用牛肉膏蛋白胨固体培养基
(g/L)：牛肉膏 3.0，蛋白胨 10.0，NaCl 5.0，琼脂 20.0，
pH调整为 7.2。将上述富集培养液划线培养到牛肉
膏蛋白胨固体平板培养基上，30 °C 静置培养，待
长出菌落后，选取不同生长特征的单个菌落，经过
多次划线分离纯化得到的多株纯种菌保存 4 °C，
待用[13-14]。
溶藻细菌的筛选：分别将上述分离到的溶藻菌
接种到藻液中进行共培养，培养条件 28 °C，光照
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4.8±0.2 klx (日光灯源)。用肉眼观察藻的绿色深浅，
从藻颜色由绿色变黄最快，共选出 4株溶藻菌，暂
命名为 R1、R2、R3和 R4，并保存在 4 °C，待用。
1.2 栅藻的分离和筛选
藻分离培养基组成(g/L)：硝酸钾 1.25，磷酸二
氢钾 1.25，硫酸镁 0.49，乙二胺四乙酸二钠 0.5，
硼酸 0.1，微量元素 0.21 mL，3% (质量体积比)的三
氯化铁溶液，固体平板培养基配制时加入 15 g/L的
琼脂，pH调整为 7.1，1×105 Pa灭菌 20 min备用。
藻的分离采用平板法，具体过程为：将含有藻的水
样装入消毒过的小型喷雾器中，打开培养皿盖，把
藻液喷射到固体平板培养基上，盖好盖，培养温度
为 28 °C，光照 4.8±0.2 klx (日光灯源)条件下培养，
待长出藻菌落后，借助镜检用消毒过的接种环挑选
栅藻，作为实验藻。水样取自山东科技大学砚湖，
为轻度富营养化水体，栅藻形态观察依据《中国常
见淡水浮游藻类图谱》[15]。
1.3 溶藻菌发酵上清液对栅藻生长的影响测定
将分离纯化的溶藻菌在高氏一号液体培养基
中 28 °C (150 r/min)培养 4 d，取发酵液 4 °C离心
15 min (1 000 r/min)，上清液用 0.22 µm的无菌纤维
素酯微孔滤膜过滤除菌，无菌滤液对栅藻培养液按
体积比 0、5%、10%和 15%添加进行抑藻实验，培
养温度为 28 °C，光照 4.8±0.2 klx (日光灯源)，每隔
24 h取培养液，用作叶绿素 a测定。在培养过程中，
每隔 12 h用溶氧仪(DO-6800，上海诺博环保科技有
限公司)测定栅藻单独培养液以及溶藻菌抑菌物质
条件下培养液中溶解氧含量。叶绿素 a测定方法采
用丙酮提取法，叶绿素 a以及溶解氧测定时均采用
3个平行实验。
1.4 溶藻菌生理生化性质测定
溶藻菌生理生化性质测定按照《常见细菌系统
鉴定手册》方法进行。溶藻菌生长曲线制作：将溶
藻菌培养到牛肉膏蛋白胨液体培养基中，30 °C、
150 r/min培养。每隔 24 h取样一次，在 600 nm处
测定吸光度，制作生长曲线。
1.5 溶藻菌对藻细胞生长影响测定
藻细胞计数：将藻培养液用力振荡混匀，然后
于无菌操作台取 1 mL加入到 2.5 mL EP管中，再加
入 1滴 KI-I2溶液，染色 15 min。每个样品设 3个
平行，将染色后液体滴入藻细胞计数板，于光学显
微镜(100×)观察并计数，每样计数 10次，计算平均
数。
将生长对数期的溶藻菌(菌细胞浓度大约为
4×106 cells/mL)培养液，按体积比 1:4加入到藻培养
液中进行共培养，溶藻菌及藻所用培养基分别同 1.1
和 1.2 中所述。菌藻共培养条件为 28 °C，光照
4.8±0.2 klx (日光灯源)，每隔 24 h取藻菌培养液，
对细胞进行计数，计数方法同上。以藻单独培养液
做对照(未加溶藻菌培养)，培养条件及计数方法同
上，分别对藻细胞数目做生长曲线。
1.6 HPLC法测定溶藻菌活性物质
每隔 12 h取 5 mL藻单独培养液以及藻菌共培
养液(1.5)，离心后取上清液，放入液氮中彻底冷却
10 min，然后放入−80 °C保存，等样品收集齐全后
一起用高效液相色谱仪(Agilent1200，安捷伦科技
公司)测定代谢产物甲酸或乙酸。高效液相色谱
HPLC 选用交换柱(HPX-87C，Bio-Rad)，流动相为
0.05 mmol/L H2SO4，柱温 50 °C，流速 0.6 mL/min，
每次进样量为 20 μL，所用检测器为紫外检测器。
1.7 溶藻菌对藻蛋白表达影响测定
将藻单独培养以及溶藻菌与藻类共培养两组
实验进行对照，分析溶藻菌对藻蛋白表达的影响。
培养条件同 1.5，培养 4 d 后，分别取培养液
2 000 r/min离心 10 min，用无菌水进行洗涤，重复
上述操作 8次，最终获得藻泥，然后用细胞破碎仪
对藻泥进行细胞破碎，破碎液在 4 °C下 10 000 r/min
离心 15 min，收集上清液，采用紫外线测定其中蛋
白质浓度，测定波长为 280 nm和 260 nm，蛋白质
含量(g/L)计算公式：
蛋白质含量(g/L)=1.55×OD280− 0.76×OD260。
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1.8 相差显微镜观察溶藻菌-藻共培养
在藻单独培养和溶藻菌-藻共培养过程中，分别
定时取培养液在相差显微镜(BM-PH，上海光学仪
器厂)下观察，放大倍数为 400×，分析溶藻菌对藻生
长的动态影响。
1.9 溶藻菌对藻细胞结构的影响测定
溶藻菌培养液 10 000 r/min离心 15 min，再用
0.22 μm微孔滤膜对离心上清液过滤除菌得 20 mL
溶藻菌发酵液，将此发酵液与藻进行共培养作为实
验组，对照组中以 20 mL藻液体培养基代替溶藻菌
发酵液，两者培养条件同 1.5 所述，分别培养 7 d
后 10 000 r/min离心 15 min收集藻，利用低温冷冻
干燥机制得藻干粉，取藻干燥粉用 KBr固定后于傅
里叶红外光谱仪(FTIR-8900，天津市拓普仪器有限
公司)测定。
2 结果与分析
2.1 溶藻菌的分离及生理生化测定结果
根据溶藻菌与栅藻共处培养时栅藻颜色变化
情况，挑选 4株抑藻能力强的溶藻菌进行生理生化
等性质测定，并把这 4株溶藻菌暂分别命名为 R1、
R2、R3和 R4。按照《常见细菌系统鉴定手册》判
断溶藻菌 R1、R2、R3 和 R4 均为革兰氏阴性，且
在固体平板培养基上形成的菌落均为白色、圆形。
氧化酶、尿素反应、蔗糖利用、葡萄糖利用均为阳
性(表 1)，因此，溶藻菌 R1、R2、R3和 R4可初步
判定属于芽孢杆菌属 Bacillus sp.。


表 1 溶藻菌的生理生化性质
Table 1 Physiological and biochemical properties of
algicidal bacteria
Items R1 R2 R3 R4
Shape
Gram staining
Long rod
−
Long rod
−
Long rod
−
Long rod
−
Nitrate
reduction + + + +
Nitrite
reduction + + + +
Catalase − − + +
Oxidase + + + +
Arginine − − − −
Ornithine − + − +
Lysine + − − −
Urea + + + +
Sucrose + + + +
Maltose + − − +
Glucose + + + +
Xylose − − − −
Peptone + + − −
Note: +: Positive; −: Negative.

2.2 溶藻菌对栅藻释放氧的影响测定
藻类能够利用光进行光合作用，产生氧气。从
表 2可以看出，分离得到的 4株溶藻菌对栅藻的光
合作用都具有一定的抑制作用，其中溶藻菌 R1 对
栅藻的抑制效果最明显。另外，将上述分离到的
4 株溶藻菌分别与栅藻共处培养，培养 4 d 后，发
现藻类均有不同程度的变白或颜色变浅变黄的现
表 2 溶藻菌对栅藻光合作用产氧的抑制效果
Table 2 The inhibition on oxygen production from algae photosynthesis by algicidal bacteria
时间
Time (d)
清水
Rinsing
藻液
Solution of algae
R1+藻
R1+Solution of algae
R2+藻
R2+Solution of algae
R3+藻
R3+Solution of algae
R4+藻
R4+Solution of algae
1 8.3 10.3 9.9 10.8 11.1 10.4
2 8.4 11.7 9.4 10.1 10.7 9.6
3 8.4 12.7 7.4 8.5 7.3 9.1
4 8.6 13.1 7.1 8.2 7.1 8.7
5 8.4 12.1 6.6 7.1 6.7 7.3
6 8.5 10.4 6.5 6.8 6.7 7.4

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象，其中与溶藻菌 R1共处培养的栅藻变化最明显，
由此初步判定溶藻菌 R1对栅藻的抑制能力最强。
2.3 溶藻菌对栅藻叶绿素 a的去除
将 4株溶藻细菌(R1、R2、R3和 R4)在 30 °C、
150 r/min 振荡培养至菌悬液 OD600值为 0.4，然后
离心，再对上清液过滤除菌，分别取无菌滤液 50 mL
加入到 200 mL栅藻培养液中，同时设空白对照，
培养 1 d后分别测定叶绿素 a浓度，计算溶藻菌对
叶绿素 a的抑制率，结果如图 1所示。从图 1可以
看出，R1 对藻叶绿素 a 的抑制效果最明显，高达
65%，R3对叶绿素 a的去除率最低，为 21%。结合
上述溶藻菌对藻类释放氧的抑制结果，选择溶藻菌
R1作为代表菌株来研究其生长曲线，以及对栅藻蛋
白等的抑制机理。
2.4 溶藻菌 R1单独培养时的生长曲线
将溶藻菌 R1 单独在高氏一号液体培养基中培
养，每隔 1 d 取培养液测定其 600 nm 处吸光度
(OD600)，做成如图 2所示生长曲线。从图 2可以看
出，溶藻菌 R1 迟缓期较短，而对数增长期较长，
在培养 5 d左右时，溶藻菌 R1生长量达到最大，以
后随培养时间延长生物量减小。
2.5 溶藻菌 R1对栅藻细胞数目的影响
利用染色方法对藻细胞数目进行计数，分别做
溶藻菌 R1 与栅藻共培养以及栅藻单独培养两种情
况下的栅藻细胞数目随时间变化曲线(图 3)。从图

图 1 各溶藻菌对藻叶绿素 a的去除率
Figure 1 The removal of chlorophyll a by algicidal
bacteria


图 2 溶藻菌 R1的生长曲线
Figure 2 The growth curve of algicidal bacteria R1



图 3 溶藻菌对藻细胞生长的抑制
Figure 3 The inhibition of algicidal bacteria on the growth
of algae

3可以看出，溶藻菌 R1与栅藻共处培养过程中，随
培养时间的延长，栅藻细胞数目持续减少，经过 6 d
的培养，栅藻从最初的 1.6×106 cells/mL 下降到
0.1×106 cells/mL。而栅藻单独培养条件下，藻
细胞数目随培养时间延长而增加，从最初的
1.6×106 cells/mL增加到 8.7×106 cells/mL。
2.6 溶藻菌 R1对栅藻生长动态影响观察
图 4A为溶藻菌 R1与栅藻共培养 5 d，栅藻颜
色明显变黄，而栅藻单独培养 5 d后(图 4B)，栅藻
颜色仍然深绿色。分别取溶藻菌 R1与栅藻共培养
3 d和 5 d，栅藻单独培养 7 d时的培养液在相差显
微镜下观察，结果分别如图 5A、B 和 C 所示。从
图 5A和图 5B可以看出，藻类经过 5 d培养后死亡
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图 4 藻在不同培养条件下的生长
Figure 4 The growth of algae under different culture
conditions
注：A：藻与菌共培养 5 d；B：藻单独培养 5 d.
Note: A: The coculture of algae with algicidal bacteria for 5 days;
B: Singleculture of algae for 5 days.

或者是溶解的细胞数量远远高于培养 3 d时藻类，
原因可能是溶藻菌 R1 在与藻培养过程中代谢产生
的某些物质抑制了或者溶解了藻类细胞，使藻类细
胞生长变慢或是直接细胞破裂而死亡。另外，图 5A、
B 与图 5C 比较，藻单独培养时，藻的颜色明显比
与溶藻菌 R1共培养时绿，因此，溶藻菌 R1对藻的
生长抑制作用非常明显。
2.7 傅里叶红外光谱(FTIR)测定溶藻菌R1对藻
的影响结果
用傅里叶红外光谱对正常藻类(对照组，无溶藻
菌加入)细胞及溶藻菌发酵液(实验组)处理后的产
物进行分析，结果如图 6A和 6B所示。由图 6可见，
对照组和处理组中，藻类产物红外吸收光谱中主要
的吸收峰位置大致一致，峰形非常相近，但各吸收
峰的相对强度有所差异。从峰的归属来看，对照组
3 379 cm−1和实验组 3 381 cm−1处为 O-H伸缩振动
区，其振动变弱可能是藻细胞内多糖和蛋白质组分
中 O-H键遭到破坏；对照组在 1 244 cm−1出现吸收
峰，而实验组在 1 262 cm−1出现较强的吸收峰，这
可能是 C–C键伸缩振动区受到影响所致，表明藻类
细胞结构受到破坏。
2.8 藻细胞中蛋白质测定结果
分别对藻单独培养液以及溶藻菌与藻共培养
液进行离心，分离到藻类，再用细胞破碎仪破碎藻
细胞，并用紫外方法测定处理液中藻蛋白的浓度，
结果如表 3所示。从表 3可以看出，藻单独培养时
藻蛋白浓度最高，为 0.845 7 g/L，与溶藻菌 R4共
培养下的藻蛋白最低，只有 0.192 6 g/L，因此，溶
藻菌 R1体现除了很强的抑藻效果。
2.9 HPLC测定溶藻菌特性物质
许丽丽[16]报道了甲酸、乙酸是菌藻共处中产生
的能够影响藻类光合作用的特性物质。本研究中，
通过高效液相色谱HPLC对溶藻菌与栅藻共处培养
中甲酸和乙酸的产生进行了测定，结果如图 7所示。
图 7中，1号峰代表甲酸，出峰时间大概为 2.38 min，



图 5 不同培养条件下藻生长的相差显微镜图
Figure 5 Phase contrast microscope observation for algae under different culture conditions
注：A：藻与溶藻菌共培养 3 d；B：藻与溶藻菌共培养 5 d；C：藻单独培养 7 d.
Note: A: The 3 days coculture of algicidal bacteria with algae after; B: The 5 days coculture of algicidal bacteria with algae; C: The 7 days
culture of algae alone.

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0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
Tr
an
sm
itt
an
ce
(%
)
1 000 2 000 3 000 4 000
Wave numbers (cm 1)
3 379.8
2 853.2
2 923.5
3 009.4
2 361.6
1 743.7
1 653.0
1 544.1
1 457.9
1 244.1
1 152.2
1 029.6
874.5
670.0
578.4
465.5
532.4
A

0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
1 000 2 000 3 000 4 000
Wave numbers (cm 1)
3 381.7
2 361.3
2 853.1
3 008.4
2 923.2
1 743.8
1 652.9
1 543.2
1 026.7
1 154.3
1 262.11 459.5
1 379.1
577.0
717.5
670.3
B
Tr
an
sm
itt
an
ce
(%
)


图 6 藻在不同培养条件下的红外光谱图
Figure 6 Infra-red spectrogram of algae under different
culture conditions
注：A：藻单独培养；B：藻与溶藻菌共培养.
Note: A: Algae cultured alone; B: The coculture of algae with
algicidal bacteria.

2 号峰代表乙酸，出峰时间大概为 3.68 min，从图
7A 可以看出，在菌藻共处培养液中只有乙酸被检
测出，从图 7B 可以看出，在藻单独培养液中，甲
酸、乙酸均被检测到，可能原因是溶藻菌 R1 与栅
藻共培养过程中溶藻菌对栅藻的代谢产生了影响，
抑制了藻类对乙酸的产生代谢。
3 讨论
关于溶藻机理，一般认为溶藻菌分泌杀藻物质
通过作用于藻的生理过程，来达到抑制或杀死藻细
胞的结果。Daft 等[2]研究发现，细菌可以通过分泌
能溶解藻细胞壁的酶来逐渐溶解整个藻细胞。在本
研究中，通过 HPLC 测得溶藻菌 R1与栅藻共培养
液中只有乙酸没有甲酸，而在栅藻单独培养时甲酸
和乙酸均被检测出，可能的原因是溶藻菌与栅藻共
培养过程中，溶藻菌 R1 抑制了栅藻对甲酸的产生
代谢。另外，溶藻菌对栅藻蛋白表达量以及细胞结
构上的影响在本研究也被证明(表 3和图 6)，这可能
原因是溶藻菌能分泌溶解栅藻细胞壁的物质。另
外，溶藻菌与栅藻共培养体系中溶解氧的浓度明显
低于栅藻单独培养 (表 2)， Banin 等 [17]和
Subashchandrabose 等[18]认为溶藻作用是通过抑制
或影响藻细胞的光合作用来实验的。据赵鹏[19]研究
表明，细菌与藻共培养过程中，由于细菌能消耗藻
类光合作用产生的氧气而使共培养体系中溶解氧
浓度降低。
本研究中溶藻菌与栅藻共培养体系中溶解氧
低的原因，极有可能是溶藻菌对栅藻光合作用的抑
制导致，因为溶藻菌对栅藻叶绿素 a、栅藻蛋白的
表达、代谢过程等都产生了明显的抑制效果，但是
溶藻菌抑制栅藻光合作用的机理还需要进一步研
究来阐释。


表 3 溶藻菌对藻蛋白表达的抑制效果
Table 3 The inhibition of protein production from algae by algicidal bacteria (g/L)
Alage cultured Only R1 R2 R3 R4
Protein concentration 0.845 7 0.192 6 0.200 1 0.194 5 0.556 1

502 微生物学通报 Microbiol. China 2016, Vol.43, No.3

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图 7 溶藻特性物质的液相色谱测定
Figure 7 Algae-lysing substance determination with HPLC
注：A：藻与溶藻菌共培养；B：藻单独培养.
Note: A: Algicidal bacteria cocultured with algae; B: Algae cultured alone.

参 考 文 献
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
2016年中国微生物学会及各专业委员会学术活动计划表(2-2)
序号 会议名称 主办/协办单位 时间 人数 地点 联系方式
13
第七届中国微生物学大会暨生物
学与免疫学论坛
中国微生物学会临床
微生物学专业委员会 9月 400 待定
王苗苗
18758810661
14
2016年全国青年病毒学者学术年
会
中国微生物学会病毒
学专业委员会 9月 200 待定
吴莹
010-64807688
15
首届临床微生物学与医院感染论
坛
中国微生物学会临床
微生物学专业委员会 9月 350 待定
王苗苗
18758810661
16
2016年微生物与人类健康学术研
讨会
中国微生物学会医学
微生物学与免疫学专
业委员会
9月 200 上海
胡福泉
13594616136
17
第十一届中国微生物学会兽医微
生物学专业委员会委员会议
中国微生物学会兽医
微生物学专业委员会
10月 400 待定
丁家波
13683505108
18
第十三届国际工业微生物遗传学
大会
中国微生物学会 10月
16−20日 400 湖北武汉
孙雪
027-68756642
19 2016年中国微生物学会学术年会 中国微生物学会 10月 600 陕西西安
杨海花
010-64807200
20
食品酿造技术与产业发展学术报
告会
中国微生物学会酿造
分会
10月 200 广东汕头
张秀梅
13503213265
21
第 14届中日韩国际酶工程学术会
议
中国微生物学会酶工
程专业委员会
11月 200 广西南宁
欧阳浩淼
010-64807420
22
第十九次全国环境微生物学学术
研讨会
中国微生物学会环境
微生物学专业委员会
11月 500 重庆
蒋建东
13915976780
23
中国微生物与白酒酿造技术研讨
会
中国微生物学会工业
微生物学专业委员会
12月 200 待定 010-53218310
24
第六届全国微生物基因组学学术
研讨会
中国微生物学会农业
微生物学专业委员会
12月 200 海南乐东
吴悦
027-87287254