全 文 ：收稿日期：２０１２－１２－２０
基金项目：国家自然科学基金项目（３０８００７６４）
作者简介：张毅华（１９９０－），男，山西太原人，在读本科生，研究方向：植物生物学。Ｅ－ｍａｉｌ：５６９１９５２５７＠ｑｑ．ｃｏｍ
＊通讯作者：崔　瑾（１９７４－），女，江苏镇江人，副教授，博士，主要从事植物发育生物学研究。
Ｅ－ｍａｉｌ：ｃｕｉｊｉｎ＠ｎｊａｕ．ｅｄｕ．ｃｎ
硝酸铵和植物生长调节剂对花烛愈伤诱导
和植株再生的影响
张毅华，唐　丽，谷艾素，崔　瑾＊
（南京农业大学 生命科学学院，江苏 南京２１００９５）
摘要：以花烛（Ａｎｔｈｕｒｉｕｍ　ａｎｄｒａｅａｎｕｍＬｉｎｄ．）品种阿拉巴马和塞拉叶片为外植体，研究硝酸铵和
植物生长调节剂对花烛愈伤组织诱导及植株再生的影响。结果表明，将硝酸铵用量减少至 ＭＳ配
方量的１／４时，阿拉巴马和塞拉叶片愈伤诱导率分别显著提高２８５．９％和４５８．５％；叶片愈伤组织
诱导的最适培养基为改良 ＭＳ（１／４ＮＨ４ＮＯ３）＋ＴＤＺ　０．４ｍｇ／Ｌ＋２，４－Ｄ　１．０ｍｇ／Ｌ；不定芽分化和
试管苗增殖的最适培养基为１／２ＭＳ＋６－ＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ　０．５ｍｇ／Ｌ，添加适量生长素（ＩＢＡ　０．２
ｍｇ／Ｌ）有利于试管苗生长。
关键词：植物生长物质；花烛；愈伤组织；植株再生
中图分类号：Ｓ６８２　　文献标志码：Ａ　　文章编号：１００４－３２６８（２０１３）０４－０１２５－０５
Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ＮＨ４ＮＯ３ａｎｄ　Ｐｌａｎｔ　Ｇｒｏｗｔｈ　Ｒｅｇｕｌａｔｏｒ　ｏｎ
Ｃａｌｕｓ　Ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　Ｐｌａｎｔ　Ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｆｒｏｍ
Ａｎｔｈｕｒｉｕｍ　ａｎｄｒａｅａｎｕｍＬｉｎｄ．
ＺＨＡＮＧ　Ｙｉ－ｈｕａ，ＴＡＮＧ　Ｌｉ，ＧＵ　Ａｉ－Ｓｕ，ＣＵＩ　Ｊｉｎ＊
（Ｃｏｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｌｉｆｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｎａｎｊｉｎｇ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｎａｎｊｉｎｇ　２１００９５，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ＮＨ４ＮＯ３ａｎｄ　ｐｌａｎｔ　ｇｒｏｗｔｈ　ｒｅｇｕｌａｔｏｒ　ｏｎ　ｃａｌｕｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｐｌａｎｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａ－
ｔｉｏｎ　ｆｒｏｍＡｎｔｈｕｒｉｕｍ　ａｎｄｒａｅａｎｕｍＬｉｎｄ．ｗｅｒｅ　ｓｔｕｄｉｅｄ，ｗｉｔｈ　ｔｈｅ　ｌｅａｖｅｓ　ｏｆ　Ａｎｔｈｕｒｉｕｍ　ａｎｄｒｅａｅｎｕｍ
ｃｕｌｔｉｖａｒｓ　Ａｌａｂａｍａ　ａｎｄ　Ｓｉｅｒｒａ　ａｓ　ｅｘｐｌａｎｔｓ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ，ｗｈｅｎ　ｔｈｅ　ａｍｏｕｎｔ　ｏｆ　ＮＨ４ＮＯ３
ｗａｓ　ｒｅｄｕｃｅｄ　ｔｏ　１／４ｉｎ　ｔｈｅ　ＭＳ　ｍｅｄｉｕｍ，ｔｈｅ　ｆｒｅｑｕｅｎｃｉｅｓ　ｏｆ　ｃａｌｕｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｂｏｔｈ　ｃｕｌｔｉｖａｒｓ　ｗｅｒｅ
ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ　ｉｎｃｒｅａｓｅｄ　ｂｙ　２８５．９％ａｎｄ　４５８．５％ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．Ｔｈｅ　ｏｐｔｉｍｕｍ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｍｅｄｉｕｍ　ｆｏｒ　ｌｅａｆ
ｃａｌｕｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｗａｓ　ｍｏｄｉｆｉｅｄ　ＭＳ　ｍｅｄｉｕｍ（１／４ＮＨ４ＮＯ３）ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔｅｄ　ｗｉｔｈ　０．４ｍｇ／Ｌ　ＴＤＺ　ａｎｄ
１．０ｍｇ／Ｌ　２，４－Ｄ．Ｔｈｅ　ｏｐｔｉｍｕｍ　ｍｅｄｉｕｍ　ｆｏｒ　ａｄｖｅｎｔｉｔｉｏｕｓ　ｂｕｄ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｐｌａｎｔｌｅｔ　ｍｕｌｔｉｐｌｉｃａｔｉｏｎ
ｗａｓ　１／２ＭＳ＋０．２ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ＋０．５ｍｇ／Ｌ　ＫＴ．Ａｄｄｉｔｉｏｎ　ｏｆ　０．２ｍｇ／Ｌ　ＩＢＡ　ｗａｓ　ｂｅｎｅｆｉｃｉａｌ　ｔｏ　ｐｌａｎｔ－
ｌｅｔ　ｇｒｏｗｔｈ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：ｐｌａｎｔ　ｇｒｏｗｔｈ　ｒｅｇｕｌａｔｏｒ；Ａｎｔｈｕｒｉｕｍ　ａｎｄｒａｅａｎｕｍ；ｃａｌｕｓ；ｐｌａｎｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ
　　花烛（Ａｎｔｈｕｒｉｕｍ　ａｎｄｒａｅａｎｕｍ　Ｌｉｎｄ．）又名红
掌、安祖花，为天南星科花烛属多年生草本植物，具
有较高的观赏价值，现已经成为仅次于热带兰的第
二大热带花卉商品［１］。最早花烛繁殖主要利用实生
繁殖和分株繁殖，但存在种子不易获得、繁殖速度缓
慢等问题。自１９７４年Ｐｉｅｒｉｋ等［２］成功建立花烛离
体培养技术以来，利用组织培养技术进行花烛种苗
生产已成为一种快速有效的繁殖方式［３－５］。
植物生长物质在植物组织培养中起着重要的调
节作用。愈伤组织诱导一般需要细胞分裂素与生长
　河南农业科学，２０１３，４２（４）：１２５－１２９
　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｈｅｎａｎ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ
DOI:10.15933/j.cnki.1004-3268.2013.04.038
素结合使用［６－１０］，但也有单独使用细胞分裂素诱导
愈伤组织的报道［６］。目前，在花烛的组织培养中发
现，使用６－ＢＡ和ＫＴ［１１－１２］以及２，４－Ｄ［１０］具有显著效
应。而采用具有细胞分裂素活性的新型植物生长调
节剂噻二唑苯基脲（ＴＤＺ）对花烛进行离体培养的报
道还较少，且结果不完全相符。黄群声［１３］研究表
明，ＴＤＺ与６－ＢＡ适当配比有利于花烛外植体的脱
分化。而徐彬［１４］研究表明，单独使用ＴＤＺ或ＴＤＺ
结合 ＫＴ导致外植体褐化，不能诱导出愈伤组织。
赵云鹏等［１５］发现，ＴＤＺ诱导花烛愈伤组织分化芽的
效果显著高于６－ＢＡ。徐彬［１４］研究发现，添加ＴＤＺ
导致花烛腋芽发生畸形，叶黄化，且不利于腋芽的发
生。花烛不同品种间基因型差异大，有关硝酸铵含
量及植物生长物质对不同品种花烛离体发育影响的
研究报道较为鲜见。以花烛２个重要栽培品种阿拉
巴马和塞拉为材料，着重研究硝酸铵含量和ＴＤＺ质
量浓度对花烛愈伤组织诱导以及不同生长调节剂配
比对其不定芽分化、试管苗增殖生长的影响，以改善
花烛组织培养条件，优化快繁体系，提高花烛种苗的
生产效率。
１　材料和方法
１．１　材料
花烛品种阿拉巴马和塞拉购买于南京市仙林花
卉物流中心。取完全展开的幼嫩叶片（保留中脉），
置于７５％乙醇中３０ｓ，无菌水洗５次，再置于５％次
氯酸钠中灭菌１５ｍｉｎ，无菌水洗５次，用无菌吸水纸
吸干后备用。试验所用培养基均添加蔗糖３０ｇ／Ｌ、琼
脂６ｇ／Ｌ，高压灭菌前调节ｐＨ值至５．８，植物生长调
节剂采用过滤灭菌。培养温度为（２５±２）℃。
１．２　方法
１．２．１　硝酸铵含量对花烛愈伤组织诱导的影响　
取２个花烛品种灭菌后的叶片，切割成１ｃｍ２ 方
块，分别接种于含有全量 ＮＨ４ＮＯ３（１　６５０ｍｇ／Ｌ）、
１／２ＮＨ４ＮＯ３、１／４ＮＨ４ＮＯ３、１／６ＮＨ４ＮＯ３、１／８ＮＨ４ＮＯ３
的愈伤组织诱导培养基 ＭＳ＋６－ＢＡ　１．０ｍｇ／Ｌ＋
２，４－Ｄ　０．１ｍｇ／Ｌ中，置于黑暗培养，２个月后观察
并统计愈伤组织发生情况。
１．２．２　ＴＤＺ质量浓度对花烛愈伤组织诱导的影响
　以改良 ＭＳ（将 ＭＳ基本培养基中ＮＨ４ＮＯ３ 含量
减少至原用量的１／４）为基本培养基，取２个花烛品
种灭菌后的叶片，切割成１ｃｍ２ 方块，接种于含有不
同质量浓度ＴＤＺ（０．０５、０．２、０．４、０．６ｍｇ／Ｌ）的愈伤
组织诱导培养基中，置于黑暗培养，２个月后观察并
统计愈伤组织发生情况。
１．２．３　植物生长调节剂配比对花烛愈伤组织诱导的
影响　以改良 ＭＳ为基本培养基，取２个花烛品种灭
菌后的叶片，切割成１ｃｍ２ 方块，接种于含有不同生
长调节剂的愈伤诱导培养基中：（１）ＴＤＺ　０．４ｍｇ／Ｌ＋
２，４－Ｄ　１．０ｍｇ／Ｌ；（２）ＴＤＺ　０．４ｍｇ／Ｌ＋２，４－Ｄ　１．０ｍｇ／
Ｌ＋ＫＴ　０．５ｍｇ／Ｌ；（３）ＴＤＺ　０．４ｍｇ／Ｌ＋２，４－Ｄ　１．０
ｍｇ／Ｌ＋６－ＢＡ　０．５ｍｇ／Ｌ；（４）６－ＢＡ　０．５ｍｇ／Ｌ＋２，４－Ｄ
１．０ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ　０．５ｍｇ／Ｌ，置于黑暗培养，２个月后
观察并统计愈伤组织发生情况，计算愈伤组织诱导
率，愈伤组织诱导率＝（出愈外植体数／接种外植体总
数）×１００％。
１．２．４　植物生长调节剂配比对花烛不定芽分化的影
响　以１／２ＭＳ（ＭＳ大量元素减半，微量元素、铁盐和
有机成分同 ＭＳ）为基本培养基，将诱导出的愈伤接种
于含有不同植物生长调节剂的不定芽分化培养基中：
（１）６－ＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ ＫＴ　０．５ｍｇ／Ｌ；（２）６－ＢＡ　０．２
ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ；（３）６－ＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ
０．２ｍｇ／Ｌ；（４）ＫＴ　０．２ ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．２ ｍｇ／Ｌ；
（５）ＫＴ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ；（６）６－ＢＡ　０．２ｍｇ／
Ｌ＋ＩＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ　０．５ｍｇ／Ｌ；（７）６－ＢＡ　０．２ｍｇ／
Ｌ＋ＮＡＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ　０．５ｍｇ／Ｌ，置于４０μｍｏｌ／
（ｍ２·ｓ）光下培养，光照时间１２ｈ／ｄ，１个月后统计不
定芽的发生情况，计算不定芽分化率，不定芽分化率
＝（分化出不定芽的愈伤数／接种愈伤总数）×１００％。
１．２．５　植物生长调节剂配比对花烛试管苗增殖的影
响　以１／２ＭＳ为基本培养基，将花烛阿拉巴马试管
苗接种于含有不同植物生长调节剂的培养基中：
（１）６－ＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ　０．５ｍｇ／Ｌ；（２）６－ＢＡ　０．２
ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ；（３）６－ＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ　０．２
ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ　０．１ｍｇ／Ｌ；（４）６－ＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ　０．２
ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ　０．５ｍｇ／Ｌ；（５）ＫＴ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．１
ｍｇ／Ｌ；（６）ＫＴ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ　０．１ｍｇ／Ｌ，置于４０
μｍｏｌ／（ｍ
２·ｓ）光下培养，光照时间１２ｈ／ｄ，１个月后
统计试管苗增殖情况。增殖系数＝（结束培养时的苗
数－接种时的苗数）／接种时的苗数。
１．３　数据处理
采用Ｅｘｃｅｌ　２００３进行数据处理，ＳＰＳＳ　１６．０进行
方差分析，邓肯氏新复极差法［１６］检验差异显著性。
２　结果与分析
２．１　硝酸铵含量对花烛愈伤组织诱导的影响
由表１看出，当ＮＨ４ＮＯ３含量减至原来的１／４时，
阿拉巴马、塞拉２个花烛品种的愈伤组织诱导率均达
到最高，分别为９１．００％和８８．９２％，比全量ＮＨ４ＮＯ３
处理显著提高２８５．９％和４５８．５％。全量ＮＨ４ＮＯ３ 处
６２１ 河南农业科学 第４２卷　
理下愈伤组织诱导率均显著低于其他处理。
　 表１　不同硝酸铵含量对花烛愈伤组织诱导率的影响　％
ＮＨ４ＮＯ３含量 阿拉巴马 塞拉
全量ＮＨ４ＮＯ３ ２３．５８±６．１５ｄ １５．９２±４．１４ｄ
１／２ＮＨ４ＮＯ３ ４９．３３±１１．８１ｃ ４３．０８±１０．５６ｃ
１／４ＮＨ４ＮＯ３ ９１．００±３．８８ａ ８８．９２±４．００ａ
１／６ＮＨ４ＮＯ３ ８６．１７±４．２５ａｂ　 ８２．６７±５．７５ａｂ
１／８ＮＨ４ＮＯ３ ６３．９２±１２．８３ｂｃ　 ６１．８３±１１．２６ｂｃ
　注：同列数据后不同小写字母表示差异显著（Ｐ＜０．０５），下同。
２．２　ＴＤＺ质量浓度对花烛愈伤组织诱导的影响
叶片外植体培养３周后体积开始增大，叶片明
显变绿，外植体呈卷曲状。１个月后叶片切口处开
始长出黄绿色愈伤组织，随后愈伤组织不断增殖。
从表２可以发现，当 ＴＤＺ质量浓度为０．４ｍｇ／Ｌ
时，２个花烛品种外植体的愈伤诱导率最高，且生长
迅速，增殖明显（图１－２）。ＴＤＺ质量浓度较高时
（０．６ｍｇ／Ｌ），外植体出现褐化现象。
表２　不同质量浓度ＴＤＺ对花烛愈伤
组织诱导率的影响 ％　　
ＴＤＺ质量浓度／（ｍｇ／Ｌ） 阿拉巴马 塞拉
０．０５　 ４１．６７±４．１７ｃ ３３．３３±３．８６ｃ
０．２　 ５８．３３±６．３０ｂｃ　 ５０．００±６．６８ｂｃ
０．４　 ８３．３３±４．９８ａ ７７．７８±７．０３ａ
０．６　 ６６．６７±７．３９ａｂ　 ５８．３３±６．３０ｂ
Ａ．叶片边缘脱分化出浅黄色愈伤组织；Ｂ．愈伤组织增殖；Ｃ．愈伤组织再分化出红色不定芽；
Ｄ．不定芽形成丛生苗；Ｅ．丛生苗增殖；Ｆ．再生植株
图１　花烛阿拉巴马离体形态建成
ａ．叶片边缘脱分化出浅黄色愈伤组织；ｂ．愈伤组织增殖；ｃ．愈伤组织再分化出绿色不定芽；
ｄ．不定芽形成丛生苗；ｅ．丛生苗增殖；ｆ．再生植株
图２　花烛塞拉离体形态建成
７２１　第４期 张毅华等：硝酸铵和植物生长调节剂对花烛愈伤诱导和植株再生的影响
２．３　植物生长调节剂配比对花烛愈伤诱导组织的
影响
从表３可以看出，０．４ｍｇ／Ｌ　ＴＤＺ＋１．０ｍｇ／Ｌ
２，４－Ｄ对花烛愈伤组织诱导效果较好，愈伤组织诱导率
最高，其中阿拉巴马的愈伤组织诱导率高达９３．７５％。
其他植物生长调节剂处理也能诱导出愈伤组织，但是
愈伤组织诱导率低于上述培养基。在相同培养条件
下，阿拉巴马的愈伤组织诱导率高于塞拉。
表３　不同植物生长调节剂对花烛愈伤组织诱导率的影响 ％　　
植物生长调节剂及其质量浓度／（ｍｇ／Ｌ） 阿拉巴马 塞拉
ＴＤＺ　０．４＋２，４－Ｄ　１．０　 ９３．７５±４．０９ａ ５０．００±６．６８ａ
ＴＤＺ　０．４＋２，４－Ｄ　１．０＋ＫＴ　０．５　 ７７．０８±５．１６ｃ ２８．５７±６．５２ｂ
ＴＤＺ　０．４＋２，４－Ｄ　１．０＋６－ＢＡ　０．５　 ７５．００±６．６８ｃ ３１．２５±６．２５ａｂ
６－ＢＡ　０．５＋２，４－Ｄ　１．０＋ＫＴ　０．５　 ８５．４２±５．６２ａｂ　 ２８．５７±６．５２ｂ
２．４　植物生长调节剂配比对花烛不定芽分化的影响
培养４周后，愈伤组织体积逐渐增大，形成紧密
的愈伤块。２周后阿拉巴马愈伤组织中再分化出红
色不定芽，塞拉愈伤中再分化出绿色不定芽（图１－
２）。由表４可见，在所有植物生长调节剂处理中，２
个品种花烛不定芽分化率均为１００％。愈伤分化芽
数以处理６－ＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ　０．５ｍｇ／Ｌ和６－ＢＡ
０．２ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ　０．５ｍｇ／Ｌ较高，
其次为处理６－ＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋
ＫＴ　０．５ｍｇ／Ｌ。
表４　不同植物生长调节剂对花烛不定芽分化的影响
植物生长调节剂及其
质量浓度／（ｍｇ／Ｌ）
阿拉巴马
不定芽
分化率／％
愈伤组织分化
芽数／（个／块）
塞拉
不定芽
分化率／％
愈伤组织分化
芽数／（个／块）
６－ＢＡ　０．２＋ＫＴ　０．５　 １００　 ２４．９±２．３ａ １００　 ２４．７±１．９ａ
６－ＢＡ　０．２＋ＩＢＡ　０．２　 １００　 １５．８±１．８ｂｃ　 １００　 １２．７±１．１ｃ
６－ＢＡ　０．２＋ＮＡＡ　０．２　 １００　 １３．２±１．５ｃｄ　 １００　 １１．２±１．３ｃｄ
ＫＴ　０．２＋ＮＡＡ　０．２　 １００　 １０．６±１．１ｄ １００　 ９．０±１．２ｄ
ＫＴ　０．２＋ＩＢＡ　０．２　 １００　 １０．１±１．２ｄ １００　 ８．５±１．５ｃｄ
６－ＢＡ　０．２＋ＩＢＡ　０．２＋ＫＴ　０．５　 １００　 ２２．３±２．１ａ １００　 ２１．５±１．５ａｂ
６－ＢＡ　０．２＋ＮＡＡ　０．２＋ＫＴ　０．５　 １００　 １９．９±１．８ａｂ　 １００　 １９．６±１．６ｂ
２．５　植物生长调节剂配比对花烛试管苗增殖的
影响
由表５可知，６－ＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ　０．５ｍｇ／Ｌ处
理试管苗的增殖系数最高，为５．２３，显著高于其他处
理，其次是６－ＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ　０．５
ｍｇ／Ｌ。在６－ＢＡ存在的条件下，ＫＴ能够提高试管苗
的增殖系数；６－ＢＡ不存在时，ＫＴ对试管苗的增殖效
果不明显。可见，６－ＢＡ和ＫＴ同时存在时花烛试管
苗的增殖系数较高。６－ＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ　０．２ｍｇ／
Ｌ＋ＫＴ　０．１ｍｇ／Ｌ和６－ＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＩＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ
＋ＫＴ　０．５ｍｇ／Ｌ处理下试管苗的株高和叶面积较
大且显著高于其他处理，可见培养基中添加适量
的生长素（ＩＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ）有利于试管苗的生长。
表５　植物生长调节剂配比对花烛试管苗增殖、生长的影响
植物生长调节剂
及其质量浓度／（ｍｇ／Ｌ）
增殖系数 株高／ｃｍ 叶面积／ｃｍ２ 根数／个
６－ＢＡ　０．２＋ＫＴ　０．５　 ５．２３±０．２７ａ ４．７３ｃ ４．５６ｂ ８ａ
６－ＢＡ　０．２＋ＩＢＡ　０．２　 ３．９０±０．４５ｂ ５．１４ｂ ４．３６ｃ ７ａ
６－ＢＡ　０．２＋ＩＢＡ　０．２＋ＫＴ　０．５　 ４．６６±０．２６ａｂ　 ６．４５ａ ５．１０ａ ６ａｂ
６－ＢＡ　０．２＋ＩＢＡ　０．２＋ＫＴ　０．１　 ４．１１±０．３８ｂ ６．３５ａ ４．９９ａ　 ５ｂ
ＫＴ０．２＋ＮＡＡ　０．２　 １．４６±０．１８ｃ ４．１４ｅ ２．８５ｄ ７ａ
ＫＴ０．２＋ＩＢＡ　０．２　 １．６２±０．２５ｃ ４．３１ｄ ２．８０ｄ ４ｃ
３　结论与讨论
本试验结果表明，培养基组分中的ＮＨ４ＮＯ３ 含
量影响愈伤组织诱导率的高低。当ＮＨ４ＮＯ３ 含量降
至原来的１／４或１／６时，愈伤诱导率明显高于其他处
理。有研究结果表明，低质量浓度的氨盐对很多红掌
愈伤组织诱导有利，２０６～８２５ｍｇ／Ｌ较为合适，大于
８２５ｍｇ／Ｌ或小于２０６ｍｇ／Ｌ将不利于愈伤组织的诱
导［１７］。本试验结果与此报道相符，这可能是由于高
浓度的ＮＨ４ＮＯ３ 容易引起叶片的褐化，从而导致愈
伤诱导率低［１８］。
ＴＤＺ是具有细胞分裂素活性的苯基脲衍生物，比
８２１ 河南农业科学 第４２卷　
细胞分裂素活性高。有研究表明，ＴＤＺ对愈伤组织诱
导具有很高的活性［１３，１９－２１］。本试验结果表明，单独使用
ＴＤＺ能够诱导２个品种花烛叶片产生愈伤，且当ＴＤＺ
为０．４ｍｇ／Ｌ时，愈伤组织诱导率均最高。不同生长调
节剂配比试验结果表明：ＴＤＺ　０．４ｍｇ／Ｌ＋２，４－Ｄ　１．０
ｍｇ／Ｌ对２个花烛品种愈伤组织诱导效果较好，这与
Ｙｕ等［２２］认为ＴＤＺ既不适合单独使用，也不适合与
２，４－Ｄ配合使用进行花烛愈伤组织诱导的结论不相符，
可能是不同花烛品种对生长调节剂的反应不同所致。
此外，相同培养条件下阿拉巴马愈伤组织诱导率高于
塞拉，外植体更容易脱分化。试验中还发现，ＴＤＺ质量
浓度较高时（０．６ｍｇ／Ｌ）２个花烛品种的外植体均出现
褐化现象，可见ＴＤＺ质量浓度是外植体脱分化的关
键。
芽分化是影响花烛快繁效率的主要因素之一。
Ｌｉｇｈｔｂｏｕｒｎ等［２３］研究发现，６－ＢＡ是影响愈伤组织芽分
化最重要的植物生长调节剂。也有研究表明，不定芽
分化往往是多种植物生长调节剂相互平衡及协同作用
的结果，生长调节剂的比例尤为重要［１８，２４－２５］。本研究发
现，试验所有处理均能诱导出不定芽，但是不同的生长
调节剂配比对不定芽的诱导效果不同。其中，同时添
加６－ＢＡ和ＫＴ的处理诱导效果最好，每块愈伤所形成
的不定芽数目最多，显著高于单独添加６－ＢＡ或ＫＴ的
处理，这与前人的研究结果一致［２６－２７］。可见，６－ＢＡ和
ＫＴ配合使用有利于促进花烛不定芽的形成。
试管苗增殖和生长效率是优化花烛快繁体系的重
要环节。６－ＢＡ比ＫＴ更有利于阿拉巴马试管苗的增
殖生长，培养基中同时添加６－ＢＡ和ＫＴ显著促进试管
苗的增殖生长。此外，在培养基中添加适量ＩＢＡ能够
显著促进试管苗茎、叶的生长，有利于培育壮苗，提高
快繁效率。
参考文献：
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ｎｔｌｅｔ　ｆｏｒｍａｔｉｏｎ　ｉｎ　ｃａｌｕｓ　ｔｉｓｓｕｅｓ　ｏｆ　Ａｎｔｈｕｒｉｕｍ　ａｎｄｒａｅａｎｕｍ
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９２１　第４期 张毅华等：硝酸铵和植物生长调节剂对花烛愈伤诱导和植株再生的影响