全 文 ：盐胁迫对玫瑰生长和生理特性的影响*
杨志莹1 摇 赵兰勇1**摇 徐宗大1
(山东农业大学林学院, 山东泰安 271018)
摘摇 要摇 以野生玫瑰和 3 个玫瑰栽培品种一年生扦插苗为试材,对不同浓度 NaCl 胁迫下玫
瑰的生物量、光合作用、渗透调节物质含量、根活力和离子含量进行了研究.结果表明:盐胁迫
抑制了玫瑰的生长,与地上部相比,根系对盐胁迫更加敏感;盐胁迫下,野生玫瑰的游离脯氨
酸和可溶性糖含量显著高于栽培玫瑰;品种‘紫雁爷高于‘紫枝爷和‘中科二号爷;盐胁迫对野生
玫瑰光合性能和根活力的影响明显小于栽培玫瑰.野生玫瑰的耐盐性优于栽培玫瑰;而栽培
玫瑰中‘紫雁爷优于‘紫枝爷和‘中科二号爷 .上述生理指标可作为玫瑰耐盐性评价的参考指标.
关键词摇 盐胁迫摇 玫瑰摇 生理特性
文章编号摇 1001-9332(2011)08-1993-06摇 中图分类号摇 S685. 12摇 文献标识码摇 A
Impacts of salt stress on the growth and physiological characteristics of Rosa rugosa. YANG
Zhi鄄ying1, ZHAO Lan鄄yong1, XU Zong鄄da1 (College of Forestry, Shandong Agricultural University,
Tai爷an 271018, Shandong, China) . 鄄Chin. J. Appl. Ecol. ,2011,22(8): 1993-1998.
Abstract: Taking 1鄄year old cuttings of a wild type and three cultivars of Rosa rugosa as test mate鄄
rials, this paper studied their biomass, photosynthesis, osmotic adjustment substance contents, root
activity, and ion contents under the stress of different concentration NaCl. Salt stress inhibited the
growth of the cuttings, and root was more sensitive than shoot. Under salt stress, wild rose had sig鄄
nificantly higher contents of free proline and soluble sugar than the cultivars, and the contents of
free proline and soluble sugar in cultivar ‘Ziyan爷 were higher than those in cultivars ‘Zhongke 2爷
and ‘Purple Branch爷. Compared with rose cultivars, the wild rose under salt stress had smaller
changes in its photosynthetic characteristics and root activity. It was suggested that wild rose had a
higher resistance to salt stress than the cultivars, and cultivar ‘Ziyan爷 had a higher resistance than
‘Purple Branch爷 and ‘Zhongke 2爷. All the test indices could be used as the indicators of R. rugo鄄
sa salt鄄tolerance.
Key words: salt stress; Rosa rugosa; physiological characteristics.
*山东省良种产业化项目[鲁科字(2002)228 号]资助.
**通讯作者. E鄄mail: sdzly369@ 163. com
2011鄄01鄄24 收稿,2011鄄05鄄02 接受.
摇 摇 土壤盐碱化是影响农业生产和破坏生态环境的
重要因素之一. 据估计,全球的盐碱地正以每年
1伊106 ~ 1郾 5伊106 hm2的速度增加[1] . 开发和利用盐
碱地成为当前急需解决的一大问题. 选育和推广耐
盐植物是改良和利用盐碱地的有效措施,因此,研究
植物的耐盐性及其机理具有重要的意义.
玫瑰(Rosa rugosa)属蔷薇科蔷薇属落叶灌木,
原产于中国北部、朝鲜、日本及俄罗斯的远东地区.
在我国,玫瑰天然分布于渤海湾沿海的沙地、山坡及
图们江下游沿江漫滩沙丘地上,但其能否在盐碱地
上生长还是未知.目前,国内外对玫瑰的研究主要集
中在野生玫瑰种质资源的调查、栽培品种分类、精油
的化学成分以及自交亲和性等方面[2-6],在抗盐碱
研究方面尚未见报道. 本文以野生玫瑰和 3 个玫瑰
品种为试材,研究盐胁迫下玫瑰的生理特性及其耐
盐性,以期为玫瑰抗盐品种的选育及推广应用提供
理论参考.
1摇 材料与方法
1郾 1摇 试验材料
试验在山东农业大学花卉研究所玫瑰种质资源
苗圃进行. 以野生玫瑰和 3 个玫瑰栽培品种 ‘紫
雁爷、‘紫枝爷、‘中科二号爷为试材,选取生长相对一
应 用 生 态 学 报摇 2011 年 8 月摇 第 22 卷摇 第 8 期摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇
Chinese Journal of Applied Ecology, Aug. 2011,22(8): 1993-1998
致的一年生扦插苗,栽种于上口径为 25 cm 的泥盆
中,基质为腐殖土和园土 1 颐 2 的混合基质,正常栽
培管理,于 2009 年 8 月开始进行盐胁迫试验.
1郾 2摇 试验处理
试验采用完全随机区组试验设计,共设 4 个
NaCl浓度处理:0(CK)、0郾 2% 、0郾 4% 、0郾 6% ,每个
处理重复 3 次.试验开始后,用相应浓度 NaCl 溶液
浇灌盆土,每隔 7 d浇灌一次,每次每盆浇 2 L,盆下
垫塑料托盘,防止盐分流失. 4 周后测定各项指标.
1郾 3摇 测定项目及方法
游离脯氨酸含量采用磺基水杨酸法测定[7];可
溶性糖含量采用蒽铜鄄硫酸法测定[8];根活力采用
TTC还原法测定[8] .
生物量测定:试验结束时,取整株鲜样,分别测
定地上部和地下部的鲜质量,然后放入烘箱105 益
杀青 15 min,70 益烘干至恒量,分别测定二者的干
质量,并计算总生物量和根冠比.
离子测定:将烘干的叶片磨碎,用硫酸鄄高氯酸
消煮法消煮,用火焰光度计测定 K+、Na+含量[9] .
光合作用测定:采用 CIRAS鄄2 型便携式光合测
定系统(英国 PP_Systems公司),设定光量子通量密
度为 800 滋mol·m-2 ·s-1,温度 25 益,CO2 浓度
390 滋L·L-1,于 10:00—11:00 测定净光合速率
(Pn)、气孔导度(Gs)、胞间 CO2 浓度(C i)和蒸腾速
率(Tr),每个处理测定 3 株, 每株选 3 ~ 4 个叶片为
待测叶,测定时随机选取其中 1 片叶进行测定.
1郾 4摇 数据处理
采用 Excel 软件进行数据处理和作图,采用
DPS软件进行单因素方差分析和相关性分析,并用
Duncan的新复极差法对差异显著性进行多重比较
(P<0郾 05).
2摇 结果与分析
2郾 1摇 NaCl胁迫下玫瑰叶片中可溶性渗透调节物含
量的变化
由表 1 可以看出,盐胁迫下,所有参试材料的脯
氨酸和可溶性糖含量均呈上升趋势,且不同处理之
间差异显著. 在盐浓度为 0郾 6%时,野生玫瑰、‘紫
雁爷、‘紫枝爷和‘中科二号爷的脯氨酸含量分别比对
照增加 87郾 3% 、74郾 0% 、43郾 1%和 15郾 5% ;可溶性糖
含量分别比对照增加 79郾 9% 、75郾 7% 、69郾 2% 和
73郾 5% .
2郾 2 摇 NaCl 胁迫下玫瑰叶片中 Na+、 K+ 含量及
K+ / Na+的变化
由表 2 可以看出,随着盐浓度的增加,玫瑰叶片
中 Na+含量显著升高,而 K+含量和 K+ / Na+显著降
低.这可能与 Na+的大量进入降低了植株对 K+的选
择吸收有关,同时也说明离子平衡被破坏,对植株产
生毒害作用. 与对照相比,盐浓度为 0郾 6%时,野生
玫瑰、‘紫雁爷、‘紫枝爷和‘中科二号爷的 Na+含量分
别增加了 29郾 7% 、37郾 6% 、89郾 3%和 50郾 9% ;K+含量
分别降低了 29郾 5% 、35郾 6% 、30郾 9%和 41郾 8% ;K+ /
Na+分别降低了 42郾 2% 、53郾 2% 、63郾 5%和 61郾 4% .
2郾 3摇 NaCl胁迫下玫瑰光合作用的变化
由图 1 可以看出,随着盐浓度的增加,4 种参试
材料的净光合速率(Pn)、气孔导度(Gs)和蒸腾速率
(Tr)均呈下降趋势,但胞间 CO2 浓度(C i)的变化并
不明显.另外,当盐浓度为 0郾 4%时,栽培玫瑰的 Pn、
Gs 和 Tr 均急剧下降,可能是该盐浓度超过了栽培
玫瑰的忍耐限度;而盐浓度在 0郾 6%时,与对照相
比,各项指标均达到最低值,野生玫瑰、 ‘紫雁爷、
‘紫枝爷和‘中科二号爷的Pn分别降低了14郾 8% 、
表 1摇 NaCl胁迫对玫瑰叶片中游离脯氨酸和可溶性糖含量的影响
Table 1摇 Effects of salt stress on the contents of free proline and soluble sugar in rose leaves
指标
Index
盐浓度
NaCl
concentration (% )
紫 雁
Ziyan
紫 枝
Purple Branch
中科二号
Zhongke 2
野生玫瑰
Wild rose
游离脯氨酸含量 0 67郾 6依0郾 6c 79郾 7依0郾 4c 52郾 8依0郾 5c 67郾 5依2郾 1d
Free proline 0郾 2 71郾 3依2郾 5c 82郾 6依0郾 3c 56郾 8依0郾 5b 79郾 4依1郾 1c
(mg·g-1FM) 0郾 4 95郾 9依1郾 6b 91郾 6依3郾 2b 58郾 0依0郾 9b 107郾 3依0郾 6b
0郾 6 117郾 7依0郾 1a 115郾 3依2郾 0a 61郾 0依0郾 4a 126郾 5依1郾 5a
可溶性糖含量 0 17郾 07依0郾 19d 14郾 94依0郾 18d 16郾 00依0郾 02d 17郾 44依0郾 03d
Soluble sugar 0郾 2 19郾 56依0郾 08c 16郾 67依0郾 11c 20郾 00依0郾 13c 19郾 44依0郾 26c
(mg·g-1FM) 0郾 4 21郾 74依0郾 40b 21郾 71依0郾 39b 22郾 09依0郾 08b 24郾 28依0郾 54b
0郾 6 30郾 00依0郾 12a 25郾 28依0郾 14a 27郾 76依0郾 52a 31郾 38依0郾 34a
同列不同字母表示差异显著(P<0郾 05) Different letters within the same column indicated significant difference at 0郾 05 level. 下同 The same below.
4991 应摇 用摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 22 卷
表 2摇 NaCl胁迫对玫瑰叶片中 Na+、K+浓度及 Na+ / K+的影响
Table 2摇 Effects of salt stress on the contents of Na+ and K+, and K+ / Na+ in rose leaves
离子
Ion
盐浓度 NaCl
concentration (% )
紫雁
Ziyan
紫 枝
Purple Branch
中科二号
Zhongke 2
野生玫瑰
Wild rose
Na+ 0 0郾 241依0郾 002d 0郾 261依0郾 003d 0郾 250依0郾 002c 0郾 267依0郾 002d
(mg·g-1) 0郾 2 0郾 249依0郾 002c 0郾 319依0郾 001c 0郾 257依0郾 003bc 0郾 294依0郾 003c
0郾 4 0郾 275依0郾 000b 0郾 342依0郾 001b 0郾 265依0郾 000b 0郾 325依0郾 004b
0郾 6 0郾 331依0郾 003a 0郾 494依0郾 004a 0郾 378依0郾 006a 0郾 346依0郾 001a
K+ 0 1郾 018依0郾 000a 1郾 249依0郾 000a 1郾 745依0郾 005a 0郾 907依0郾 015a
(mg·g-1) 0郾 2 0郾 837依0郾 001b 1郾 021依0郾 001b 1郾 190依0郾 010b 0郾 854依0郾 002b
0郾 4 0郾 725依0郾 003c 0郾 960依0郾 003c 1郾 041依0郾 004c 0郾 807依0郾 015c
0郾 6 0郾 656依0郾 006d 0郾 862依0郾 005d 1郾 027依0郾 009c 0郾 639依0郾 000d
K+ / Na+ 0 4郾 2依0郾 0a 4郾 8依0郾 1a 7郾 0依0郾 0a 3郾 4依0郾 0a
0郾 2 3郾 4依0郾 0b 3郾 2依0郾 0b 4郾 6依0郾 1b 3郾 0依0郾 0b
0郾 4 2郾 6依0郾 0c 2郾 8依0郾 0c 3郾 9依0郾 0c 2郾 4依0郾 0c
0郾 6 2郾 0依0郾 0d 1郾 7依0郾 0d 2郾 7依0郾 1d 2郾 5依0郾 0c
图 1摇 NaCl胁迫对玫瑰叶片净光合速率、气孔导度、胞间 CO2 浓度和蒸腾速率的影响
Fig. 1摇 Effects of NaCl on Pn, Gs, Ci and Tr in rose leaves.
玉:野生玫瑰 Wild rose;域:紫枝 Purple Branch;芋:中科二号 Zhongke 2;郁:紫雁 Ziyan.
43郾 6% 、45郾 5% 、 65郾 5% , Gs 分别降低了 24郾 4% 、
55郾 9% 、60郾 7% 、 56郾 9% , Tr 分别降低了 13郾 9% 、
50郾 8% 、68郾 6% 、54郾 5% .以上数据表明,盐胁迫下野
生玫瑰光合作用受抑制程度最轻,‘紫雁爷次之,‘中
科二号爷和‘紫枝爷最重.
2郾 4摇 NaCl胁迫下玫瑰根活力的变化
由表 3 可以看出,随着盐浓度的增加,野生玫瑰
和栽培玫瑰的根活力均呈下降趋势. 在盐浓度为
0郾 6%时,野生玫瑰、‘紫雁爷、‘紫枝爷、‘中科二号爷分
别比对照降低了 29郾 0% 、40郾 7% 、43郾 9% 、64郾 6% .
由此可见,野生玫瑰受盐胁迫影响最轻,‘紫雁爷次
之,‘紫枝爷和‘中科二号爷最重.
2郾 5摇 NaCl胁迫下玫瑰生物量的变化
由表 4 可以看出,随着盐浓度的增加,不同玫瑰
种质的地上部和地下部鲜质量、干质量及总生物量
均呈下降趋势,说明盐胁迫抑制了玫瑰的生长.与对
照相比,盐浓度为 0郾 6%时, 野生玫瑰生物量下降的
幅度最少(41郾 4%),受抑制程度最轻,其次是‘紫
雁爷、‘紫枝爷,分别下降了 45郾 5%、59郾 7% ,而‘中科二
号爷最重,下降了 61郾 9%;野生玫瑰、‘紫雁爷、‘紫枝爷、
59918 期摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 杨志莹等: 盐胁迫对玫瑰生长和生理特性的影响摇 摇 摇 摇 摇 摇
‘中科二号爷根系干质量分别下降 47郾 2%、51郾 8%、
65郾 9%、72郾 5%;地上部分别下降了 37郾 9%、39郾 3%、
55郾 6%、52郾 1%,说明根对盐胁迫更加敏感.
2郾 6摇 NaCl胁迫下玫瑰生理指标与生物量的相关性
由表 5 可以看出,玫瑰各项生理指标均与生物
量显著相关,可溶性糖、脯氨酸、K+和 Na+含量及根
活力均可作为评价玫瑰耐盐能力的参考指标.另外,
不同种质玫瑰的各项生理指标之间也存在着一定的
相关关系 郾 其中,‘紫雁爷除可溶性糖与根活力、K+
与根活力之间无相关性之外,其他各项指标之间均
呈显著或极显著相关;‘紫枝爷中根活力与脯氨酸、
K+和可溶性糖、脯氨酸与 K+之间不相关;‘中科二
号爷中 K+与根活力之间不相关;野生玫瑰中可溶性
糖与根活力之间不相关.
表 3摇 NaCl胁迫对玫瑰根活力的影响
Table 3摇 Effects of salt stress on the root activity of Rose rugosa (滋g·g-1·h-1)
盐浓度
NaCl concentration
(% )
紫雁
Ziyan
紫 枝
Purple Branch
中科二号
Zhongke 2
野生玫瑰
Wild rose
0 34郾 92依0郾 17a 50郾 81依0郾 56a 45郾 07依0郾 44a 33郾 50依0郾 73a
0郾 2 29郾 10依0郾 42b 36郾 61依0郾 14b 26郾 00依0郾 43b 27郾 96依0郾 55b
0郾 4 26郾 43依0郾 22c 32郾 88依0郾 50c 20郾 12依0郾 41c 24郾 85依0郾 30bc
0郾 6 20郾 71依0郾 17d 28郾 49依0郾 26d 15郾 96依0郾 43c 23郾 80依0郾 55c
表 4摇 NaCl胁迫对玫瑰生长的影响
Table 4摇 Effects of salt stress on the growth of Rosa rugosa
品种或类型
Cultivar or
type
盐浓度
NaCl
concentration
(% )
地上部鲜质量
Shoot fresh
mass
(g·plant-1)
地上部干质量
Shoot dry
mass
(g·plant-1)
地下部鲜质量
Underground fresh
mass
(g·plant-1)
地下部干质量
Underground dry
mass
生物量
Biomass
(g·plant-1)
根冠比
Root shoot
ratio
紫雁 0 20郾 07依0郾 25a 11郾 65依0郾 67a 18郾 70依0郾 81a 11郾 40依0郾 52a 23郾 05依0郾 65a 0郾 98依0郾 03a
Ziyan 0郾 2 18郾 03依0郾 73b 10郾 88依0郾 30a 15郾 57依1郾 11b 9郾 50依0郾 68b 20郾 38依0郾 74a 0郾 87依0郾 06ab
0郾 4 16郾 19依0郾 64c 8郾 97依0郾 48b 12郾 78依0郾 30c 7郾 10依0郾 40c 16郾 07依0郾 89b 0郾 79依0郾 00b
0郾 6 14郾 33依0郾 39d 7郾 07依0郾 54c 9郾 78依0郾 70d 5郾 50依0郾 17d 12郾 57依0郾 71c 0郾 78依0郾 04b
紫枝 0 37郾 52依0郾 88a 19郾 90依0郾 70a 24郾 02依0郾 96a 13郾 18依0郾 55a 33郾 08依1郾 25a 0郾 66依0郾 00a
Purple Branch 0郾 2 27郾 36依0郾 72b 16郾 99依0郾 31b 18郾 80依0郾 77b 10郾 10依0郾 83b 27郾 08依1郾 15b 0郾 59依0郾 04b
0郾 4 20郾 65依0郾 99c 12郾 87依0郾 44c 13郾 80依0郾 89c 7郾 50依0郾 36c 20郾 37依0郾 80c 0郾 58依0郾 01b
0郾 6 15郾 80依1郾 73d 8郾 84依1郾 54d 10郾 10依0郾 81d 4郾 50依0郾 87d 13郾 34依2郾 41d 0郾 51依0郾 01c
中科二号 0 28郾 25依1郾 01a 14郾 89依0郾 64a 25郾 28依1郾 30a 13郾 77依0郾 83a 28郾 66依1郾 47a 0郾 92依0郾 02a
Zhongke 2 0郾 2 23郾 17依0郾 99b 11郾 71依0郾 61b 17郾 50依0郾 99b 9郾 69依0郾 81b 21郾 40依1郾 42b 0郾 83依0郾 03b
0郾 4 19郾 09依0郾 85c 9郾 12依0郾 64c 12郾 97依0郾 60c 5郾 84依0郾 43c 14郾 96依1郾 07c 0郾 64依0郾 00c
0郾 6 15郾 50依0郾 88d 7郾 14依0郾 50d 10郾 04依0郾 35d 3郾 79依0郾 24d 10郾 92依0郾 74d 0郾 53依0郾 00d
野生玫瑰 0 16郾 47依0郾 77a 10郾 87依0郾 38a 10郾 58依0郾 16a 6郾 63依0郾 20a 17郾 49依0郾 58a 0郾 61依0郾 00a
Wild rose 0郾 2 13郾 13依0郾 79b 8郾 54依0郾 16b 9郾 06依0郾 53b 5郾 00依0郾 21b 13郾 54依0郾 36b 0郾 59依0郾 01a
0郾 4 10郾 85依0郾 21c 7郾 61依0郾 15c 7郾 50依0郾 12c 4郾 00依0郾 08c 11郾 61依0郾 22c 0郾 53依0郾 00b
0郾 6 8郾 96依0郾 20d 6郾 75依0郾 07d 6郾 54依0郾 10d 3郾 50依0郾 18c 10郾 25依0郾 25d 0郾 52依0郾 02b
表 5摇 NaCl胁迫下玫瑰各项生理指标及盐浓度与生物量的相关系数
Table 5摇 Correlation coefficients between physiological parameters and NaCl content, and biomass under salt stress
品种或类型
Cultivar or type
脯氨酸
Proline
可溶性糖
Soluble sugar
根活力
Root activity
K+ Na+ 盐浓度
NaCl concentration
紫雁 Ziyan -0郾 98** -0郾 92* 0郾 95* 0郾 96** -0郾 95* -0郾 99**
紫枝 Purple Branch -0郾 94* -0郾 99** 0郾 92* 0郾 95* -0郾 95* -0郾 99**
中科二号 Zhongke 2 -0郾 98** -0郾 96** 0郾 97** 0郾 99** -0郾 89* -0郾 99**
野生玫瑰 Wild rose -0郾 93* -0郾 88* 0郾 99** 0郾 95* -0郾 98** -0郾 99**
*P<0郾 05;** P<0郾 01.
6991 应摇 用摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 22 卷
3摇 讨摇 摇 论
3郾 1摇 盐胁迫对玫瑰叶片中可溶性糖和脯氨酸含量
的影响
渗透调节是植物适应盐胁迫的基本特征之一.
盐胁迫下,细胞通过积累脯氨酸、可溶性糖、无机离
子等来调节细胞内的渗透势,维持水分平衡,保护细
胞内代谢所需的酶活性. 张丽平等[10]研究表明,
NaCl胁迫下黄瓜叶片内脯氨酸和可溶性糖含量升
高.张云起等[11]在耐盐西瓜砧木筛选中发现,盐处
理后植株体内游离脯氨酸含量增加,耐盐品种的含
量高于盐敏感品种. 脯氨酸能否作为植物抗逆性指
标,以及脯氨酸和可溶性糖谁更适合作为评价植物
耐盐性的指标,不同的植物有不同的结论. 本试验
中,脯氨酸和可溶性糖含量随盐浓度的增加而增加,
野生玫瑰高于栽培玫瑰,且脯氨酸和可溶性糖与不
同玫瑰种质的生物量之间均呈显著或极显著相关
(表 5).因此,脯氨酸和可溶性糖均可作为不同玫瑰
种质间耐盐性比较的参考指标.
3郾 2摇 盐胁迫对玫瑰叶片中 Na+、K+、K+ / Na+的影响
盐胁迫下,植物除易受到高浓度含盐基质产生
的渗透胁迫外,还易受到盐离子过多产生的毒害作
用,包括离子毒害和营养不平衡. 本试验中,随着盐
浓度的增加,Na+增加,K+ / Na+减少,正常代谢平衡
受到干扰,致使植物体内营养元素缺乏,影响植物生
长发育,从而导致生物量下降. 汪贵斌等[12]认为,
K+ / Na+可作为树木耐盐力的评价指标;吴成龙等[13]
研究发现,菊芋盐敏感品种的 K+ / Na+变化幅度较
大.本试验中,盐浓度为 0郾 6%时,栽培玫瑰的 K+ /
Na+下降幅度要大于野生玫瑰,这与前人的研究结
果相一致.
3郾 3摇 盐胁迫对玫瑰生物量的影响
根系生物量是植物适应盐胁迫的重要标志.程
钧等[14]报道,非盐生植物红桤木受到盐胁迫后最早
的反应是叶片生长变缓,对根的生长影响很小,因而
根冠比上升;也有研究指出,盐胁迫对根的抑制作用
大于茎叶,根冠比下降[15] .本试验显示,盐胁迫下玫
瑰各部分的干物质积累均受到抑制,而且根系生物
量受抑制程度要大于地上部,随着盐浓度的增加,根
冠比呈下降趋势.
3郾 4摇 盐胁迫对玫瑰叶片光合速率的影响
光合同化速率降低是盐胁迫下植物生长受到抑
制的重要原因[16] .盐胁迫下植物光合作用受抑制是
多种因素共同作用的结果,既包括渗透胁迫引起的
气孔限制因素,也包括非气孔限制因素[17] . 一般认
为,如果胁迫使气孔导度减弱而叶肉细胞仍在活跃
的进行光合作用,胞间 CO2 浓度会明显下降,这种
情况是典型的气孔限制所致;如果叶肉细胞本身光
合能力显著降低,即使在气孔导度较低的情况下,胞
间 CO2 浓度也可能升高或不变,这时非气孔限制是
光合能力降低的主要因素[18] . 本试验中,随着 NaCl
浓度增加,胞间 CO2 浓度并没有明显变化,因此玫
瑰的光合速率降低可能是非气孔限制因素造成的,
这与冯立国等[19]的研究结果一致.导致光合速率下
降的原因可能是可溶性糖含量增加对光合的反馈抑
制[20],也可能是活性氧不能被及时清除而引起
的[21] .从叶片形态上看,野生玫瑰叶片质地较厚、叶
色较深;栽培玫瑰叶片质地较薄、叶色较浅,这种差
异也会导致以叶面积为计算基数的叶片光合速率的
不同.玫瑰形态差异的形成与其生存环境密切相关.
野生玫瑰的天然分布区位于沿海地带,土壤中含有
一定的盐碱成分,因而对盐胁迫表现出良好的抗性;
而栽培玫瑰长期远离海岸地区,经过引种驯化,适应
了低盐的环境,导致其抗盐能力下降.
3郾 5摇 玫瑰耐盐指标的筛选
植物耐盐性是一个受多种因素影响、较复杂的
综合性状.目前关于植物耐盐性还没有一个统一、完
善的指标评价体系. 因此,应综合评价植物耐盐性,
避免单个指标带来的片面性[22] .本试验中选取了 4
个生理指标,分析了其与生物量之间的相关性.结果
表明, 4 个生理指标均可作为评价玫瑰耐盐性的参
考指标.利用这些指标的分析结果显示,野生玫瑰的
耐盐性最强,栽培玫瑰中,‘紫雁爷要强于‘紫枝爷和
‘中科二号爷.
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作者简介摇 杨志莹,女,1984 年,硕士研究生. 主要从事园林
植物栽培生理研究. E鄄mail: sindy511@ 163. com
责任编辑摇 李凤琴
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