全 文 :第40卷 第6期
2012年6月
西北农林科技大学学报(自然科学版)
Journal of Northwest A&F University(Nat.Sci.Ed.)
Vol.40 No.6
Jun.2012
网络出版时间:2012-05-22 16:36
网络出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/61.1390.S.20120522.1636.033.html
羊踯躅嫩叶离体培养和植株高效再生技术研究
*
顾地周,陆 爽,巴春影,李媛媛
(通化师范学院 生物系,吉林 通化134002)
[摘 要] 【目的】建立羊踯躅嫩叶离体培养及植株高效再生体系。【方法】以羊踯躅新生嫩叶为外植体,筛选
嫩叶愈伤组织诱导、再分化及生根培养基,并以再生植株茎节为试材,建立高效植株再生体系。【结果】最适合羊踯躅
嫩叶愈伤组织诱导的培养基为1/2DR+2.40mg/L 2ip+0.80mg/L NAA,诱导率为99.5%;愈伤组织再分化的最
佳培养基为1/2DR+2.90mg/L 2ip+0.01mg/L NAA+1.75mg/L KT,分化率为99.7%;适宜生根的培养基为
1/4DR+0.06mg/L ZT+0.02mg/L NAA,生根率达99.0%。利用再生植株茎节的快繁结果表明,在28d的培养
周期内,每节段平均增殖达5倍以上。【结论】成功建立了羊踯躅嫩叶愈伤组织诱导、再分化芽苗和植株高效再生体
系,可以满足羊踯躅工厂化育苗的需要。
[关键词] 羊踯躅;离体培养;愈伤组织;植株再生体系;均匀设计
[中图分类号] Q943.1 [文献标识码] A [文章编号] 1671-9387(2012)06-0189-06
Study on technology of in vitro culture and eficient regeneration of
plantlet with the new leaves of Rhododendron mole(Blume)G.Don
GU Di-zhou,LU Shuang,BA Chun-ying,LI Yuan-yuan
(Department of Biology,Tonghua Normal University,Tonghua,Jilin134002,China)
Abstract:【Objective】The study was to establish in vitro culture and efficient regeneration of plantlet
system of Rhododendron molle (Blume)G.Don.【Method】The new leaves of Rhododendron molle
(Blume)G.Don were used as explants for the experiment.Screening mediums of calus induction,calus
redifferentiation and rooting,and stems with nodes were taken as the experiment materials to establish effi-
cient regeneration system of plantlet.【Result】The results showed that 1/2DR+2.40mg/L 2ip+0.80
mg/L NAA was the best suit for calus from new leaves,the rate of calus was 99.5%;1/2DR+2.90
mg/L 2ip+0.01mg/L NAA+1.75mg/L KT for shoots redifferentiation,and the rate of differentiation
was 99.7%;1/4DR+0.06mg/L ZT+0.02mg/L NAA for rooting,the rate of rooting was more than
99.0%;Each stem with one node was cut from regenerated shoots and cultured for propagation,and a 5-
fold proliferation rate was achieved within 28days.【Conclusion】In this study,calus induction,shoots red-
ifferentiation with the new leaves of Rhododendron molle(Blume)G.Don and efficient regeneration system
of plantlet have been established,which could satisfy the need for industralized seedlings of Rhododendron
molle(Blume)G.Don.
Key words:Rhododendron molle(Blume)G.Don;in vitro culture;calus;plantlet regeneration;uniform
design
* [收稿日期] 2011-12-12
[基金项目] 吉林省科技厅资助项目“杜鹃花属植物种质资源保护研究”(200705C05)
[作者简介] 顾地周(1973-),男,吉林通化人,讲师,主要从事珍稀濒危植物和药用植物研究。E-mail:gudizhou@163.com
DOI:10.13207/j.cnki.jnwafu.2012.06.020
羊踯躅(Rhododendron molle(Blume)G.Don)
又名闹羊花、黄杜鹃、黄色映山红,隶属杜鹃花科杜
鹃花属羊踯躅亚属落叶灌木,主要分布于江苏、浙
江、江西、福建、湖南、湖北、河南、四川、贵州等地的
山坡、石缝、灌木丛中,是珍稀濒危药用植物。羊踯
躅花中含有毒性成分木毒素和石楠素,叶中含黄酮
类、杜鹃花毒素、煤地衣酸甲酯,有镇痛、驱风、除湿、
麻醉功效,可治风湿顽痹、伤折疼痛、皮肤顽癣等症,
对粮食害虫、蔬菜害虫也有一定的防治效果,可用于
开发植物源农药。羊踯躅还可被引种驯化为露地栽
培的园艺观赏植物,是杜鹃育种的重要种质资源。
利用种子、扦插、嫁接及压条等常规繁殖方法存在萌
发率、生根率和移栽成活率极低等问题,使羊踯躅的
开发及利用受到极大限制。目前,已有关于羊踯躅
及其同属植物离体培养的研究[1-6],但尚未见关于羊
踯躅高效快繁体系的报道。因此,本研究利用植物
组织培养方法,以羊踯躅新生嫩叶为材料,筛选羊踯
躅嫩叶愈伤组织诱导及分化和生根的适宜培养基,
建立羊踯躅离体培养和高效的植株再生体系,以期
为羊踯躅的工厂化育苗提供参考。
1 材料与方法
1.1 外植体材料的来源及处理
羊踯躅枝条由江苏省农业科学研究院提供,将
其枝条茎尖剪除后在实验室内水培促腋芽萌发。待
腋芽萌发出鲜嫩叶片后将嫩叶剪下,在超净工作台
上用体积分数70%酒精涮洗10s,用次氯酸钠(质
量浓度为3%)溶液浸泡6min,无菌水冲洗8次,无
菌滤纸吸干表面水分后,切割成1.00cm左右的叶
块作为外植体备用。
1.2 羊踯躅嫩叶愈伤组织诱导培养基的筛选
以1/2DR为基本培养基[7],内含蔗糖30g/L、
琼脂粉6.8g/L,再附加不同质量浓度的2ip(经预
试验确定为1.80~2.30mg/L)和 NAA(经预试验
确定为0.10~0.50mg/L),调节pH为5.5,将外植
体在(25±2)℃、光照强度1 000lx、光照周期10
h/d条件下培养。为了提高羊踯躅嫩叶愈伤组织诱
导的速度和诱导率,采用均匀设计法[8-10],每处理10
个外植体,重复3次,选用U10(102)均匀表,考察2ip
和NAA不同质量浓度交叉配比对愈伤组织诱导率
的影响。嫩叶培养45d后统计诱导率,筛选最适合
羊踯躅嫩叶愈伤组织诱导的培养基。
1.3 羊踯躅嫩叶愈伤组织再分化培养基的筛选
以1/2DR为培养基,内含蔗糖30g/L、琼脂粉
6.5g/L,并附加不同质量浓度的2ip(经预试验确定
为2.00~2.70mg/L)、NAA(经预试验确定为
0.02~0.05mg/L)和KT(经预试验确定为1.00~
1.50mg/L),调节pH 为5.6,将愈伤组织置于
(26±2)℃、光照强度1 200lx、光照周期12h/d条
件下培养。选用U12(123)均匀表,每处理接种10块
愈伤组织块,重复3次,考察2ip、NAA和 KT不同
质量浓度交叉配比对分化率的影响。愈伤组织培养
40d后统计分化率,同时筛选最适合羊踯躅愈伤组
织芽苗分化的培养基。
1.4 羊踯躅植株再生体系的建立
以1/4DR为培养基,内含蔗糖15g/L、琼脂粉
7.5g/L,并附加不同质量浓度的ZT(经预试验确定
为0.01~0.05 mg/L)、IAA(经预试验确定为
0.10~0.30 mg/L)和 NAA(经预试验确定为
0.05~0.20mg/L),调节pH为5.4,将愈伤组织再
分化的芽苗在(20±2)℃、光照强度800lx、光照周
期8h/d条件下培养。为了提高羊踯躅愈伤组织再
分化芽苗的生根速度和生根率,采用均匀设计法,选
用U10(103)均匀表,每处理接种10个芽苗,重复3
次,考察ZT、IAA和 NAA不同质量浓度交叉配比
对生根率的影响。芽苗培养35d后统计生根率,筛
选最适合羊踯躅芽苗生根的培养基。
采取节增殖方式对羊踯躅进行高效快繁[11-12],
待生根的苗伸长至3.00cm以上时,在超净工作台
上打开培养瓶,将生根的苗留1或2片叶剪下苗干,
并切割成含1或2片叶的小段转接到附加 GA3
(1.00mg/L)的生根培养基中,进行腋芽萌发伸长
和生根培养,待芽苗生根和腋芽萌发后,统计并计算
每瓶中每段茎节的增殖倍数。
1.5 数据处理与分析
数据分析处理应用均匀设计软件(Uniform De-
sign 3.0V)进行。
2 结果与分析
2.1 2ip和NAA不同质量浓度配比对羊踯躅嫩叶
愈伤组织诱导的影响
基本培养基上附加不同质量浓度2ip和 NAA
对羊踯躅嫩叶愈伤组织诱导的影响如表1所示,关
于2ip(X1)和NAA(X2)与诱导率(Y1)关系的回归
分析结果见表2。由表1和表2可知,2ip和 NAA
对羊踯躅愈伤组织的诱导率均有显著影响,二者的
最佳质量浓度分别为2.30和0.50mg/L。
091 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第40卷
表1 羊踯躅嫩叶愈伤组织诱导培养基筛选的U10(102)均匀设计试验结果
Table 1 U10(102)uniform design test result for media for calus induction by new leaves of
Rhododendron molle(Blume)G.Don
编号
No.
因素/(mg·L-1)Factor
2ip
(X1)
NAA
(X2)
诱导率/%
Rate of induction
(Y1)
编号
No.
因素/(mg·L-1)Factor
2ip
(X1)
NAA
(X2)
诱导率/%
Rate of induction
(Y1)
1 1.80 0.40 64.5 6 2.30 0.20 92.1
2 1.90 0.30 78.8 7 2.00 0.50 82.6
3 2.00 0.10 70.6 8 2.10 0.10 72.0
4 2.10 0.50 81.7 9 2.20 0.30 86.5
5 2.20 0.20 85.0 10 2.30 0.40 96.1
表2 羊踯躅嫩叶离体培养和植株再生各阶段试验因素的回归分析
Table 2 Regression analysis of in vitro culture and plantlet regeneration by the new leaf of
Rhododendron molle(Blume)G.Don at various stages
培养阶段
Culture stages
回归方程
Regression equation
样本容量(N)
Sample sizes
检验值(Ft)
Test value
临界值
Critical value
愈伤组织诱导
Calus induction
Y1=-39.0+53.9 X1+24.2 X2 10 19.90 F(0.05,2,7)=4.737
芽苗再分化
Shoots redifferentiation
Y2=36.2+18.0X1-320 X2+12.0X3 12 24.92 F(0.05,3,8)=4.066
生根培养
Rooting culture
Y3=79.6+360 X1-28.2 X3 10 85.00 F(0.05,2,7)=4.737
注:显著性水平α=0.05。
Note:Significance levelα=0.05.
经计算,2ip和NAA对诱导率的贡献率分别为
95.1%和15.4%,可见2ip对愈伤组织诱导率的影
响远大于NAA,又因2ip和 NAA均与诱导率呈正
相关,因此推测2ip质量浓度高于2.30mg/L、NAA
质量浓度高于0.50mg/L时诱导率更高。为验证
此推断,另设2ip质量浓度为2.30,2.35,2.40,
2.45,2.50mg/L,NAA为0.50,0.55,0.60,0.65,
0.70,0.75,0.80,0.85,0.90,0.95,1.00mg/L共
11个处理(根据均匀设计法试验原理,以水平数最
大的项为最低水平数选择均匀设计表,水平数小于
最大项的进行重复,下同),将1.00cm左右的叶块
接种到附加不同质量浓度2ip和NAA的1/2DR培
养基上培养,结果如图1所示。培养10d时,叶块开
始增厚(图1a);继续培养至25d时,叶块逐渐增厚变
形,在叶块表面出现绿色的愈伤组织;培养至45d,叶
块完全转变为绿色偏黄的愈伤组织(图1b)。试验结
果显示,2ip质量浓度为2.40mg/L和NAA为0.80
mg/L时愈伤组织诱导率最高,诱导率达99.5%。因
此,确定羊踯躅嫩叶愈伤组织诱导的最佳培养基为
1/2DR+2.40mg/L 2ip+0.80mg/L NAA。
图1 羊踯躅嫩叶愈伤组织诱导培养的形态观察
a.培养10d;b.培养45d
Fig.1 Morphological observation of induction of calus with the new leaf of Rhododendron molle(Blume)G.Don at various
a.Cultured 10d;b.Cultured 45d
2.2 2ip、NAA和KT不同质量浓度配比对羊踯躅
愈伤组织芽苗再分化的影响
培养基上附加不同质量浓度2ip、NAA、KT对
羊踯躅愈伤组织芽苗再分化的影响如表3所示,关
于2ip(X1)、NAA(X2)、KT(X3)与分化率(Y2)关系
的回归分析结果见表2。
191第6期 顾地周 ,等:羊踯躅嫩叶离体培养和植株高效再生技术研究
表3 羊踯躅愈伤组织再分化芽苗培养基筛选的U12(123)均匀设计试验结果
Table 3 U12(123)uniform design test result for media for shoots redifferentiation from
calus of Rhododendron molle(Blume)G.Don
编号
No.
因素/(mg·L-1)Factors
2ip
(X1)
NAA
(X2)
KT
(X3)
分化率/%
Rate of
differentiation
(Y2)
1 2.00 0.04 1.20 74.2
2 2.10 0.05 1.50 80.4
3 2.20 0.05 1.30 70.7
4 2.30 0.04 1.00 78.6
5 2.40 0.05 1.10 75.0
6 2.50 0.03 1.40 85.2
7 2.60 0.04 1.40 88.6
8 2.70 0.02 1.10 92.8
9 2.40 0.03 1.00 82.0
10 2.50 0.02 1.30 89.0
11 2.60 0.02 1.50 94.6
12 2.70 0.03 1.20 91.3
由表2和表3可知,2ip、NAA和KT对羊踯躅
嫩叶愈伤组织的芽苗再分化率均有显著影响,三者
最佳质量浓度分别为2.70,0.02和1.50mg/L。经
计算,2ip、NAA和KT对芽苗分化率的贡献率分别
为16.2%,13.3%和8.15%,可见2ip对愈伤组织
芽苗再分化率的贡献大于NAA和KT,又因2ip和
KT均与分化率呈正相关,NAA与分化率呈负相
关,推测2ip和KT质量浓度分别高于2.70和1.50
mg/L,NAA低于0.02mg/L时,芽苗分化率更高。
为验证此推断,另设2ip质量浓度为2.70,2.75,
2.80,2.85,2.90,2.95,3.00mg/L,NAA为0.00,
0.01,0.02mg/L,KT为1.50,1.55,1.60,1.65,
1.70,1.75,1.80,1.85,1.90,1.95,2.00mg/L,共
11个处理,待嫩叶块完全脱分化形成愈伤组织后,
将愈伤组织切割成小块接种到添加不同浓度2ip、
NAA和KT的1/2DR培养基上,培养10d后发
现,愈伤组织表面产生大量颗粒状小凸起;继续培养
至20d,颗粒状小凸起逐渐转变为锥状;培养至30d
时,锥状体生长并伸长为大量不定芽(图2a);培养
至40d,不定芽长度可达1.00cm以上(图2b)。研
究发现,2ip质量浓度为2.90mg/L、NAA为0.01
mg/L、KT为1.75mg/L时,愈伤组织分化率最高,
可达99.7%。可见,羊踯躅嫩叶愈伤组织芽苗再分
化的最佳培养基为1/2DR+2.90mg/L 2ip+0.01
mg/L NAA+1.75mg/L KT。
图2 羊踯躅嫩叶愈伤组织芽苗再分化培养的形态观察
a.培养30d;b.培养40d
Fig.2 Morphological observation of shoots redifferentiation from calus with the
new leaf of Rhododendron molle(Blume)G.Don at various
a.Cultured 30d;b.Cultured 40d
2.3 ZT、IAA和 NAA不同质量浓度配比对羊踯
躅再生芽苗生根的影响
培养基中附加不同质量浓度 ZT(X1)、IAA
(X2)和NAA(X3)对羊踯躅再生芽生根的影响见表
4,关于3种激素与生根率(Y3)关系的回归分析结果
见表2。
291 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第40卷
表4 羊踯躅再生芽苗生根培养基筛选的U10(103)均匀设计试验结果
Table 4 U10(103)uniform design test result for media for shoots rooting of Rhododendron molle(Blume)G.Don
编号
No.
因素/(mg·L-1)Factors
ZT
(X1)
IAA
(X2)
NAA
(X3)
生根率/%
Rate of rooting
(Y3)
1 0.01 0.30 0.10 82.0
2 0.02 0.30 0.15 82.4
3 0.03 0.25 0.20 85.5
4 0.04 0.25 0.15 88.3
5 0.05 0.20 0.10 95.9
6 0.05 0.20 0.15 94.3
7 0.04 0.15 0.20 87.6
8 0.03 0.15 0.05 87.3
9 0.02 0.10 0.05 85.4
10 0.01 0.10 0.20 77.0
由表2和表4可知,ZT和NAA对羊踯躅嫩叶
愈伤组织分化的芽苗生根率有显著影响,IAA对生
根率影响不显著。ZT和 NAA的最佳质量浓度均
为0.05mg/L。经计算,ZT和NAA对芽苗生根的
贡献率分别为94.5%和8.82%,可见ZT对再生芽
苗生根率的贡献远大于NAA,因ZT与生根率呈正
相关,NAA与生根率呈负相关,推测ZT质量浓度
高于0.05mg/L,NAA低于0.05mg/L时,芽苗生
根率更高。为验证此推断,另设 ZT 质量浓度为
0.05,0.06,0.07,0.08,0.09,0.10mg/L,NAA为
0.00,0.01,0.02,0.03,0.04,0.05mg/L共12个处
理(为了试验结果的准确性,将水平数进行1次重
复),即待愈伤组织分化的芽苗长至1.50cm左右
时,将生长健壮的芽苗从愈伤组织上切下,转接到附
加不同质量浓度ZT和NAA的1/4DR培养基中,
培养8d后,在靠近芽苗切口的茎部有微小颗粒出
现;继续培养至20d,微小颗粒逐渐变形为锥状;培
养至27d时锥状颗粒伸长为不定根;35d后可形成
3~5条不定根,并有侧根出现(图3a)。研究发现,
ZT质量浓度为0.06mg/L、NAA为0.02mg/L时
芽苗生根率最高,生根率可达99.0%。可见,羊踯
躅再生芽苗生根的最佳培养基为1/4DR+0.06
mg/L ZT+0.02mg/L NAA。
图3 羊踯躅再生芽苗生根培养的形态观察
a.出现侧根;b.附加GA3后增殖培养
Fig.3 Morphological observation of shoots rooting from regeneration shoot of
Rhododendron molle(Blume)G.Don at various
a.Lateral roots appeared;b.Multiplication culture with GA3
在改良的生根培养基(1/4DR+0.06mg/L
ZT+0.02mg/L NAA+1.00mg/L GA3)上培养
28d后发现,羊踯躅每节段平均增殖5倍以上(图
3b)。
3 结论与讨论
本研究成功建立了羊踯躅嫩叶愈伤组织诱导、
再分化芽苗的培养体系和植株高效再生体系。培养
基1/2DR+2.40mg/L 2ip+0.80mg/L NAA对
羊踯躅嫩叶愈伤组织诱导的效果最好,当2ip和
NAA质量浓度分别超过2.40和0.80mg/L时,诱
导的愈伤组织颜色变白且质地变松软而失去分化能
力;当二者质量浓度分别低于1.80和0.10mg/L
时,愈伤组织诱导率均低于48.0%。在1/2DR培
391第6期 顾地周 ,等:羊踯躅嫩叶离体培养和植株高效再生技术研究
养基中附加2.90mg/L 2ip、0.01mg/L NAA 和
1.75mg/L KT时,其对羊踯躅嫩叶愈伤组织再分
化的效果最佳,2ip质量浓度低于2.00和高于2.90
mg/L时,愈伤组织芽苗分化率均下降至50.0%以
下,说明低质量浓度的2ip满足不了羊踯躅愈伤组
织芽苗分化的需要,而过多的2ip对愈伤组织芽苗
的分化有抑制作用。在培养基中添加适量的NAA
有利于芽苗的生长。在培养基中附加1.75mg/L
的KT,分化的芽苗较未附加KT时粗壮、长势好且
分化速度快,这与姜云天等[13]对杜鹃花科植物细叶
杜香的快繁研究结果相似,说明每种植物对不同植
物生长调节物质均具有选择性[14],这是由植物自身
的基因型控制的,而基因型又决定于器官重建。添
加有0.06mg/L ZT和0.02mg/L NAA的1/4DR
培养基,适合用于羊踯躅芽苗的生根培养,当NAA
质量浓度低于0.02mg/L时,芽苗几乎不生根,高
于0.20mg/L时,芽苗基部膨胀或产生愈伤组织,
继续培养,根则从膨胀部或愈伤组织上产生,这样的
苗在移栽时根易随愈伤组织从苗基部脱落,移栽成
活率极低,这与Daniele等[15]的研究结果一致,可
能是根和苗茎部的纤维疏导组织连接错位所致;而
在生根培养基中附加1.00mg/L的GA3 有助于腋
芽快速萌发和生长[16],有利于缩短生长周期,从而
提高了增殖倍数。王雯雯等[17]在大字杜鹃的快繁
研究中也得到了相同结果。
目前,国外有许多野生杜鹃优良品种已通过人
工繁殖并驯化为园艺栽培种,我国野生杜鹃品种众
多,但人工繁殖及开发利用极少。羊踯躅是我国的
珍稀植物资源,至今尚未见推广应用,因此本研究结
果可为羊踯躅和其他野生杜鹃优良品种的开发利用
和工厂化育苗提供参考。
[参考文献]
[1] 顾宏辉,袁群英,朱春艳,等.羊踯躅的组织培养与快速繁殖
[J].植物生理学通讯,2006,42(4):683.
Gu H H,Yuan Q Y,Zhu C Y,et al.Tissue culture and rapid
propagation of Rhododendron molle G.Don[J].Plant Physiol-
ogy Communications,2006,42(4):683.(in Chinese)
[2] 汤桂钧,张建安,蒋建平,等.高山杜鹃的组织培养快速繁殖技
术研究 [J].上海农业学报,2004,20(3):15-18.
Tang G J,Zhang J A,Jiang J P,et al.Study on rapid propaga-
tion of Rhododendron lapponicum [J].Acta Agriculturae
Shanghai,2004,20(3):15-18.(in Chinese)
[3] 宫汝淳,姜云天,顾地周,等.短果杜鹃的组织培养与快速繁殖
[J].植物生理学通讯,2008,44(1):133.
Gong R C,Jiang Y T,Gu D Z,et al.Tissue culture and rapid
propagation of Rhododendron brachycarpumD.Don ex G.Don
[J].Plant Physiology Communications,2008,44(1):133.(in
Chinese)
[4] 顾地周,邓志刚,綦茂伟,等.苞叶杜鹃离体培养及种质试管保
存体系的建立 [J].南京林业大学学报:自然科学版,2009,33
(3):20-24.
Gu D Z,Deng Z G,Qi M W,et al.In vitro culture and in vitro
germplasm preservation system of Rhododendron redowskia-
num Maxim.[J].Journal of Nanjing Forestry University:Nat-
ural Sciences Edition,2009,33(3):20-24.(in Chinese)
[5] 顾地周,高捍东,郭玉昕,等.毛毡杜鹃离体培养及种质试管保
存体系的建立 [J].西北农林科技大学学报:自然科学版,
2009,37(4):151-157.
Gu D Z,Gao H D,Guo Y X,et al.In vitro culture and germ-
plasm peservation in vitro system of Rhododendron confertis-
simum Nakai.[J].Journal of Northwest A&F University:
Natural Science Edition,2009,37(4):151-157.(in Chinese)
[6] 顾地周,张 琪,朱俊义.小叶杜鹃的离体快繁体系建立及种质
试管的保存 [J].东北林业大学学报,2009,37(10):26-28.
Gu D Z,Zhang Q,Zhu J Y.Establishment of plantlet rapid
propagation system and in vitro germplasm conservation of
Rhododendron parvifolium [J].Journal of Northeast Forestry
University,2009,37(10):26-28.(in Chinese)
[7] 曹孜义,刘国民.实用植物组织培养技术教程 [M].兰州:甘肃
科学技术出版社,2002:24-33.
Cao Z Y,Liu G M.Practical course in plant tissue culture tech-
nology[M].Lanzhou:Gansu Science and Technology Press,
2002:24-33.(in Chinese)
[8] 顾地周,罗 微,曹 逊,等.松毛翠的离体快繁体系建立及种
质试管保存研究 [J].林业科学,2009,45(7):140-144.
Gu D Z,Luo W,Cao X,et al.Rapid propagation system and
germplasm preservation in vitro of Phyllodoce caerulea [J].
Scientia Silvae Sinicae,2009,45(7):140-144.(in Chinese)
[9] 智翠梅.均匀设计及优化 [J].化工中间体,2007(3):7-10.
Zhi C M.Uniform design to organic synthesis optimize[J].
Chemical Intermediates,2007(3):7-10.(in Chinese)
[10] 顾地周,朱俊义,冯 颖,等.草莓试管内诱导匍匐茎和高温处
理结合茎尖培养脱毒技术研究 [J].西北农林科技大学学报:
自然科学版,2010,38(11):89-94.
Gu D Z,Zhu J Y,Feng Y,et al.Technology for stolon seedling
in vitro of strawberry and virus eradication by combining the
high temperature treatment with shoot tip culture[J].Jour-
nal of Northwest A&F University:Natural Science Edition,
2010,38(11):89-94.(in Chinese)
[11] 顾地周,丛小力,姜云天,等.色木槭的组织培养与快速繁殖
[J].植物生理学通讯,2008,44(2):314.
Gu D Z,Cong X L,Jiang Y T,et al.Tissue culture and rapid
propagation of Acer mono Maxim[J].Plant Physiology Com-
munications,2008,44(2):314.(in Chinese)
(下转第200页)
491 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第40卷
nial Oxyria sinensis(Polygonaceae)along altitudinal gradients
[J].Journal of Systematics and Evolution,2008,46(6):830-
835.(in Chinese)
[4] Weiner J,Rosenmeier L,Massoni E S,et al.Is reproductive al-
location in Senecio vulgaris plastic[J].Botany,2009,87(5):
475-481.
[5] 陈学林,梁 艳,齐 威,等.一年生龙胆属植物的繁殖分配及
其花大小、数量的权衡关系研究 [J].草业学报,2009,18(10):
58-66.
Chen X L,Liang Y,Qi W,et al.Studies on reproductive aloca-
tion,floral size and its trade off with floral number of annual
Gentiana[J].Acta Prataculturae Sinica,2009,18(10):58-66.
(in Chinese)
[6] Kawano S,Masuda J.The productive and reproductive biology
of flowering plants:Ⅶ.Resource alocation and reproductive
capacity in wild populations of Heloniopsis orientalis [J].
Oecologia(Berl),1980,45:307-317.
[7] Fabbro T,Krner C.Altitudinal differences in flower traits and
reproductive alocation[J].Flora,2004,199(12):70-81.
[8] Bingham R A,Orthner A R.Efficient polination of alpinepla-
nts[J].Nature,1998,391:238-239.
[9] 张大勇.植物生活史进化与繁殖生态学 [M].北京:科学出版
社,2004.
Zhang D Y.Life history evolution in plants and reproductive e-
cology[M].Beijing:Science Press,2000.(in Chinese)
[10] 梁 艳,张小翠,陈学林.多年生龙胆属植物个体大小与花期
资源分配研究 [J].西北植物学报,2008,28(12):2400-2407.
Liang Y,Zhang X C,Chen X L.Individual size and resource
alocation in perennial Gentiana [J].Acta Botanica Boreali
Occidentalia Sinica,2008,28(12):2400-2407.(in Chinese)
[11] 朱世新.河南风毛菊属植物的分类研究 [D].郑州:河南农业
大学,2001.
Zhu S X.A taxonomic study on the genus Saussureain Henan
Province [D].Zhengzhou:Henan Agricultural University,
2001.(in Chinese)
[12] 王一峰,高宏岩,施海燕,等.小花风毛菊的性器官在青藏高原
的海拔变异 [J].植物生态学报,2002,32(2):379-384.
Wang Y F,Gao H Y,Shi H Y,et al.Adaptive significance of
Saussurea parviflora’s sexual organs,Qinghai-tibetan plat-
eau,China[J].Journal of Plant Ecology,2002,32(2):379-
384.(in Chinese)
[13] 樊宝丽,孟金柳,赵志刚.海拔对青藏高原东部毛茛科植物繁
殖特征和资源分配的影响 [J].西北植物学报,2008,28(4):
805-811.
Fan B L,Meng J L,Zhao Z G.Influence of altitude on repro-
ductive traits and resource alocation of species of ranuncu-
laceae at east Qinghai Tibetan Plateu[J].Acta Botanica Bore-
ali Occidentalia Sinica,2008,28(4):805-811.(in Chinese)
[14] 赵志刚,杜国祯,任青吉.5种毛茛科植物个体大小依赖的繁
殖分配和性分配 [J].植物生态学报,2004,28(1):9-16.
Zhao Z G,Du G Z,Ren Q J.Size-dependent reproduction and
sex alocation in five species of ranunculaceae[J].Acta Phy-
toecologica Sinica,2004,28(1):9-16.(in Chinese)
[15] 何亚平,费世民,刘建全,等.高山植物繁育系统研究进展初探
[J].四川林业科技,2005,26(4):43-49.
He Y P,Fei S M,Liu J Q,et al.A preliminary review of stud-
ies of alpine plant breeding system [J].Journal of Sichuan
Forestry Science and Technology,2005,26(4):43-49.(in Chi-
nese
)
(上接第194页)
[12] 顾地周,丛小力,宋利丽,等.木通马兜铃的组织培养和快速繁
殖 [J].植物生理学通讯,2008,44(1):136.
Gu D Z,Cong X L,Song L L,et al.Tissue culture and rapid
propagation of Aristolochia manshuriensis Kom [J].Plant
Physiology Communications,2008,44(1):136.(in Chinese)
[13] 姜云天,陈艳秋,朱俊义,等.细叶杜香高效快繁体系建立及种
质试管保存研究 [J].西南大学学报:自然科学版,2009,31
(2):118-123.
Jiang Y T,Chen Y Q,Zhu J Y,et al.Highly efficient micro-
propagation system and in vitro germplasm preservation for
Ledum palustre var.angustumN.Bush[J].Journal of South-
west University:Natural Science Edition,2009,31(2):118-
123.(in Chinese)
[14] 高新一,王玉英.植物无性繁殖实用技术 [M].北京:金盾出
版社,2003:380.
Gao X Y,Wang Y Y.Technology of plant asexual reproduc-
tion[M].Beijing:Shield Press,2003:380.(in Chinese)
[15] Daniele J D,Wiliam E V,Kwai Y L.The anatomy of tissue
cultured red raspberry prior to and after transfer to soil[J].
Plant Cel:Tissue and Organ Culture,1985(1):43-50.
[16] 李合生.现代植物生理学 [M].北京:高等教育出版社,2002:
256-258.
Li H S.The modern plant physiology[M].Beijing:Higher
Education Press,2002:256-258.(in Chinese)
[17] 王雯雯,马秋月,朱俊义,等.大字杜鹃离体快繁体系建立及种
质试管保存研究 [J].植物研究,2009,29(2):198-203.
Wang W W,Ma Q Y,Zhu J Y,et al.In vitro rapid propagation
system and in vitro germplasm peservation of Rhododendron
schlippenbachii Maxim.[J].Buletin of Botanical Research,
2009,29(2):198-203.(in Chinese)
002 西北农林科技大学学报(自然科学版) 第40卷