全 文 ：第４１卷　第５期
２０１３年５月
西北农林科技大学学报（自然科学版）
Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｎｏｒｔｈｗｅｓｔ　Ａ＆Ｆ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ（Ｎａｔ．Ｓｃｉ．Ｅｄ．）
Ｖｏｌ．４１ Ｎｏ．５
Ｍａｙ　２０１３
网络出版时间：２０１３－０５－０２　１０：５５
网络出版地址：ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｃｎｋｉ．ｎｅｔ／ｋｃｍｓ／ｄｅｔａｉｌ／６１．１３９０．Ｓ．２０１３０５０２．１０５５．０２１．ｈｔｍｌ
白鹃梅的离体培养及植株再生试验
　［收稿日期］　２０１２－０８－１５
　［基金项目］　武汉市农科院攻关项目（Ｙ２０１００９）
　［作者简介］　戢小梅（１９８３－），女，湖北十堰人，工程师，硕士，主要从事园林植物种质资源收集及林业生态工程研究。
Ｅ－ｍａｉｌ：ｍｅｉｈｕａ２０１０＠ｙａｈｏｏ．ｃｏｍ．ｃｎ
　［通信作者］　舒常庆（１９６６－），男，湖北武汉人，副教授，主要从事园林植物遗传育种研究。Ｅ－ｍａｉｌ：４７２９３３１０２＠ｑｑ．ｃｏｍ
戢小梅１，２，许　林１，谢焰锋１，董艳芳１，陈卫东１，舒常庆２
（１武汉市林业果树科学研究所，湖北 武汉４３００７５；２华中农业大学 园艺林学学院，湖北 武汉４３００７０）
［摘　要］　 【目的】探讨不同植物生长调节剂对白鹃梅芽苗再生和生根的影响，为白鹃梅的开发利用、工厂化育
苗及遗传育种研究奠定基础。【方法】以白鹃梅的嫩茎段为外植体，接种前用１ｇ／Ｌ的ＨｇＣｌ２ 溶液对材料进行不同时
间（６，８，１０，１２ｍｉｎ）的消毒处理，筛选适宜的消毒时间；采用均匀设计法，将无菌外植体接种在附加有不同质量浓度植
物生长调节剂（０，０．５，１．０，１．５和２．０ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ，０，０．１，０．３，０．５和０．７ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ）的 ＭＳ培养基中，筛选诱导直
接再生芽苗的适宜培养基；将直接再生芽苗接种在附加有不同种类和质量浓度植物生长调节剂（０．１，０．３，０．５和
０．７ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ，０．１，０．３，０．５和０．７ｍｇ／Ｌ　ＩＢＡ）的１／２ＭＳ培养基中，筛选诱导生根的适宜培养基。【结果】１ｇ／Ｌ
ＨｇＣｌ２ 溶液对白鹃梅嫩茎段的最适宜消毒时间为８ｍｉｎ，在该条件下外植体的成活率为９５．２％；白鹃梅直接再生芽苗
的最适宜诱导培养基为 ＭＳ＋６－ＢＡ　１．０ｍｇ／Ｌ，在该培养基上直接再生芽苗的诱导率可达８５．７％；生根培养基以
１／２ＭＳ＋０．３ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ的生根效果最好，生根率达到７０．４５％。【结论】获得了白鹃梅嫩茎段适宜的消毒时间及适
宜的再生芽苗和生根培养基配方。
［关键词］　白鹃梅；离体培养；植株再生；均匀设计法
［中图分类号］　Ｓ６８５．１２４＋．３ ［文献标志码］　Ａ ［文章编号］　１６７１－９３８７（２０１３）０５－０１６０－０５
Ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ａｎｄ　ｐｌａｎｔｌｅｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ
ｏｆ　Ｅｘｏｃｈｏｒｄａ　ｒａｃｅｍｏｓａ（Ｌｉｎｄｌ．）Ｒｅｈｄ
ＪＩ　Ｘｉａｏ－ｍｅｉ　１，２，ＸＵ　Ｌｉｎ１，ＸＩＥ　Ｙａｎ－ｆｅｎｇ１，ＤＯＮＧ　Ｙａｎ－ｆａｎｇ１，
ＣＨＥＮ　Ｗｅｉ－ｄｏｎｇ１，ＳＨＵ　Ｃｈａｎｇ－ｑｉｎｇ２
（１　Ｗｕｈａｎ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ　ｏｆ　Ｆｏｒｅｓｔｒｙ＆Ｆｒｕｉｔ－ｔｒｅｅ，Ｗｕｈａｎ，Ｈｕｂｅｉ　４３００７５，Ｃｈｉｎａ；
２　Ｃｏｌｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒｅ　ａｎｄ　Ｆｏｒｅｓｔｙ，Ｈｕａｚｈｏｎｇ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｗｕｈａｎ，Ｈｕｂｅｉ　４３００７０，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：【Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ】Ｔｈｅ　ｒｅｓｅａｒｃｈ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｋｉｎｄｓ　ｏｆ　ｐｌａｎｔ　ｇｒｏｗｔｈ　ｒｅｇｕｌａｔｏｒ　ｃｏｍｂｉｎａ－
ｔｉｏｎ　ｏｎ　ｂｕｄ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｎ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｅｆｆｅｃｔ　ｗｅｒｅ　ｓｔｕｄｉｅｄ　ｔｏ　ｓｅｔ　ｕｐ　ａ　ｓｔａｂｌｅ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ
ｓｙｓｔｅｒｍ　ａｎｄ　ｔｏ　ｌａｙ　ａ　ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｍｅｔｈｏｄ　ｆｏｒ　ｅｘｐｌｏｉｔａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ，Ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ　Ｓｅｅｄｌｉｎｇ，ａｎｄ　ｔｈｅ
ｓｔｕｄｙ　ｏｆ　ｉｎｈｅｒｉｔａｎｃｅ　ａｎｄ　ｂｒｅｅｄｉｎｇ　ｏｆ　Ｅｘｏｃｈｏｒｄａ　ｒａｃｅｍｏｓａ（Ｌｉｎｄｌ．）Ｒｅｈｄ．【Ｍｅｔｈｏｄ】Ｔｈｅ　ｔｅｎｄｅｒ　ｓｔｅｍｓ　ｏｆ
Ｅｘｏｃｈｏｒｄａ　ｒａｃｅｍｏｓａ（Ｌｉｎｄｌ．）Ｒｅｈｄ　ｗｅｒｅ　ｕｓｅｄ　ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ．Ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｗｅｒｅ　ｄｉｓｉｎｆｅｃｔｅｄ　ａｔ　ｖａｒｉ－
ｏｕｓ　ｔｉｍｅ（６，８，１０，１２ｍｉｎ）ｏｆ　ｕｓｉｎｇ　１ｇ／Ｌ　Ｈｇ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｂｅｆｏｒｅ　ｉｎｏｃｕｌａｔｅｄ，ａｎｄ　ｓｌｅｃｔｅｄ　ｔｈｅ　ｂｅｓｔ　ｔｉｍｅ　ｆｏｒ　ｄｉｓｉｎ－
ｆｅｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｅｘｐｌａｎｔｓ；Ｔｈｅ　ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｄｉｓｉｎｆｅｃｔｅｄ　ｗｅｒｅ　ｃｕｌｔｕｒｅｄ　ｉｎ　ＭＳ　ｍｅｄｉｕｍ　ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔｅｄ　ｗｉｔｈ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｃｏｎ－
ｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｈｏｒｍｏｎｅｓ（０～２．０ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ，０～０．７ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ）ｗａｓ　ｆｉｌｔｒａｔｅｄ　ａｎｄ　ｏｐｔｉｍｉｚｅｄ　ｂｙ　ｕｓｉｎｇ　ｕｎｉ－
ｆｏｒｍ　ｄｅｓｉｇｎ；Ｔｈｅ　ｓｈｏｏｔｓ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｃｕｌｔｕｒｅｄ　ｉｎ　１／２ＭＳ　ｍｅｄｉｕｍ　ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔｅｄ　ｗｉｔｈ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｈｏｒｍｏｎｅｓ
ａｎｄ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ（０．１～０．７ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ，０．１～０．７ｍｇ／Ｌ　ＩＢＡ）ｗａｓ　ｆｉｌｔｒａｔｅｄ　ａｎｄ　ｏｐｔｉｍｉｚｅｄ．【Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ】
DOI:10.13207/j.cnki.jnwafu.2013.05.030
Ｔｈｅ　ｂｅｓｔ　ｔｉｍｅ　ｏｆ　ｄｉｓｉｎｆｅｃｔｉｏｎ　ｉｎ　１ｇ／Ｌ　Ｈｇ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｗａｓ　８ｍｉｎ，ａｎｄ　ｔｈｅ　ｓｕｒｖｉｖａｌ　ｒａｔｅ　ｏｆ　ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｗａｓ　９５．２％；
ｔｈｅ　ｂｅｓｔ　ｍｅｄｉｕｍ　ｆｏｒ　ｓｈｏｏｔｓ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｗａｓ　ＭＳ＋１．０ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ，ｔｈｅ　ｒａｔｅ　ｏｆ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｗａｓ　８５．７％；ｔｈｅ
ｂｅｓｔ　ｍｅｄｉｕｍ　ｆｏｒ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｗａｓ　１／２ＭＳ＋０．３ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ，ｔｈｅ　ｒａｔｅ　ｏｆ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｗａｓ　７０．４５％．【Ｒｅｓｕｌｔ】Ｉｔ　ｗａｓ
ｏｂｔａｉｎｅｄ　ｔｈｅ　ｔｅｎｄｅｒ　ｓｔｅｍｓ　ｏｆ　Ｅｘｏｃｈｏｒｄａ　ｒａｃｅｍｏｓａ　ｎｅｅｄｅｄ　ａ　ｓｕｉｔａｂｌｅ　ｔｉｍｅ　ｆｏｒ　ｓｔｅｒｉｌｉｚａｔｉｏｎ，ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ
ｓｈｏｏｔｓ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｂｙ　ｔｈｅ　ｔｅｎｄｅｒ　ｓｔｅｍｓ　ａｎｄ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｓｈｏｏｔｓ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｎｅｅｄｅｄ　ｓｕｉｔａｂｌｅ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａ－
ｔｉｏｎ　ｏｆ　ｆｏｒｍｕｌａ　ｏｆ　ｍｅｄｉｕｍ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：Ｅｘｏｃｈｏｒｄａ　ｒａｃｅｍｏｓａ（Ｌｉｎｄｌ．）Ｒｅｈｄ；ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｃｕｌｔｕｒｅ；ｐｌａｎｔｌｅｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ；ｕｎｉｆｏｒｍ　ｄｅｓｉｇｎ
　　白鹃梅（Ｅｘｏｃｈｏｒｄａ　ｒａｃｅｍｏｓａ（Ｌｉｎｄｌ．）Ｒｅｈｄ）又
名茧子花、珍珠菜，系蔷薇科（Ｒｏｓａｃｅａｅ）白鹃梅属
（Ｅｘｏｃｈｏｒｄａ）植物，为既可观花又能赏果的有待研
究开发的优良野生园林植物，属落叶灌木，多数呈小
乔木状，其花蕾及嫩梢的营养价值较高，是一种优良
的木本蔬菜，具有较高的开发利用价值［１］。另外，白
鹃梅属于野生资源，是白鹃梅属植物育种的重要种
质资源。白鹃梅利用常规扦插繁殖很难生根［１］，多
采用播种繁殖，但种子不易采集，使其开发利用受到
极大限制。目前，关于白鹃梅的研究多集中在食
用［２－４］、繁殖［１］及应用前景分析方面［５］，而离体快繁
技术研究尚鲜见报道［６］。为此，本研究采用组织培
养法进行白鹃梅的快速繁殖，建立了从嫩茎段到丛
生芽的无性繁殖体系，所使用的消毒处理和激素组
合与已有报道不同，有利于快速提供大量种苗且不
受季节限制，旨在为白鹃梅的开发利用、工厂化育苗
及遗传育种研究奠定基础。
１　材料与方法
１．１　材　料
白鹃梅枝条采自武汉市林业果树科学研究所野
生植物资源圃，该圃位于武汉市东部近郊，海拔６７
ｍ，地理坐标为Ｎ　３０°３０′６０″，Ｅ　１１４°２７′０５″；土壤为黄
棕壤，土层深厚；年平均气温１６．２～１６．７℃，年降雨
量１　１４０～１　２６５ｍｍ，年均无霜期为２３７～２７１ｄ。
本试验以白鹃梅带腋芽的嫩茎段为外植体。
１．２　ＨｇＣｌ２ 消毒时间的确定
将带腋芽的嫩枝剪下，在自来水龙头下流水冲
洗２０ｍｉｎ。在超净工作台上用１ｇ／Ｌ的 ＨｇＣｌ２ 溶
液分别浸泡６，８，１０和１２ｍｉｎ，浸泡过程中连续振
荡，取出后分别用无菌水反复清洗６次，用无菌纸吸
干水分，切成１．５～２．０ｃｍ的茎段，接种于无菌的培
养基中，２周后统计污染率。每３０个茎段为１个处
理，每个处理３次重复。
１．３　直接再生芽苗诱导培养基的筛选
以 ＭＳ为基本培养基，将消毒好的白鹃梅嫩枝
切成一叶一段，长度约１ｃｍ，接入无菌的诱导直接
再生芽苗培养基中培养。培养基配方为：ＭＳ培养
基中附加不同质量浓度的６－ＢＡ（由预试验确定为
０，０．５，１．０，１．５和２．０ｍｇ／Ｌ）、萘乙酸（ＮＡＡ，由预
试验确定为０，０．１，０．３，０．５和０．７ｍｇ／Ｌ）、３０ｇ／Ｌ
蔗糖和５．４ｇ／Ｌ琼脂（为日本ＢＩＯＳＨＡＲＰ产品），
ｐＨ 为５．６。培养温度为（２５±１）℃，光照周期为１２
ｈ／ｄ，光照强度２　２００ｌｘ。采用均匀设计法［７］Ｕ５（５２）
均匀设计表，每个处理接种白鹃梅嫩茎段３０个培
养，重复３次，嫩茎段培养４５ｄ后，统计污染数、褐
化数和萌发茎段数，计算诱导率（诱导率＝萌发茎段
数／接种茎段数×１００％），并计算平均值，以筛选出
适宜的诱导直接再生芽苗的６－ＢＡ和ＮＡＡ质量浓
度配比。
１．４　白鹃梅生根培养基的筛选
将消毒好的白鹃梅嫩枝在芽诱导培养基中培养
２２～２４ｄ，使基部再生出丛芽，将长度超过２．５ｃｍ
的嫩枝从芽丛上分离，接入生根培养基。生根培养
基配方为：１／２ＭＳ培养基中单独添加不同质量浓度
的ＮＡＡ（０．１，０．３，０．５，０．７ｍｇ／Ｌ）或者吲哚丁酸
（Ｉｎｄｏｌｅ－３－Ｂｕｔｙｔｒｉｃ　ａｃｉｄ，ＩＢＡ，０．１，０．３，０．５，０．７
ｍｇ／Ｌ），以及３０ｇ／Ｌ蔗糖和５．４ｇ／Ｌ琼脂，ｐＨ 为
５．６。生根培养温度为（２５±１）℃，光照周期为
１２ｈ／ｄ，光照强度２　２００ｌｘ。每处理接种白鹃梅丛芽
３０个，重复３次。再生丛芽培养４０ｄ后统计生根
数、根长，计算生根率、平均生根条数和平均根长（生
根率＝生根数／接种数×１００％），结果取３次重复的
平均值，以筛选诱导生根较适宜的 ＮＡＡ、ＩＢＡ质量
浓度配比。
１．５　数据处理
白鹃梅的芽增殖诱导试验采用均匀设计法进行
设计，试验数据采用Ｅｘｃｅｌ　２００３进行处理；生根培
养的试验数据采用ＳＰＳＳ１９．０进行方差分析，采用
Ｄｕｃａｎ’ｓ检验进行多重比较。试验结果用平均值或
“平均值±标准差”表示。
１６１第５期 戢小梅，等：白鹃梅的离体培养及植株再生试验
２　结果与分析
２．１　ＨｇＣｌ２ 溶液消毒时间的确定
由表１可以看出，ＨｇＣｌ２ 溶液处理６ｍｉｎ消毒
效果不好，污染率高达８６．７％；处理８ｍｉｎ消毒效
果较好，既能保证外植体较高的成活率，又能将污染
率控制在较低的范围内；处理１０ｍｉｎ虽然污染率较
低，但成活率也降低到８２．６％，整体效果不及８ｍｉｎ
处理；处理１２ｍｉｎ污染数最低，但大多数外植体丧
失了再生能力，其成活率仅为２０．８％。因此，对白
鹃梅外植体较适宜的消毒处理方法为：在流水下冲
洗２０ｍｉｎ，放入超净工作台后，用１ｇ／Ｌ　ＨｇＣｌ２ 溶液
消毒８ｍｉｎ，取出后用无菌水反复冲洗。
表１　ＨｇＣｌ２ 对白鹃梅嫩茎段消毒不同时间污染率的比较
Ｔａｂｌｅ　１　Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｔｅｎｄｅｒ　ｓｔｅｍｓ　ｏｆ　Ｅ．ｒａｃｅｍｏｓａ′ｓ
ｃｏｎｔａｍｉｎａｔｉｏｎ　ｒａｔｅ　ｉｎ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｓｔｅｒｉｌｉｚｅ　ｔｉｍｅ　ｂｙ　Ｈｇ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ
消毒时间／ｍｉｎ
Ｄｉｓｉｎｆｅｃ－
ｔｉｏｎｔｉｍｅ
污染数
Ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ
ｐｏｌｕｔｅｄ
污染率／％
Ｃｏｎｔａｍｉｎａｔｉｏｎ
ｒａｔｅ
成活数
Ｎｕｍｂｅｒ
ｏｆ　ｓｕｒｖｉｖｅｄ
成活率／％
Ｓｕｒｖｉｖａｌ
ｒａｔｅ
６　 ２６　 ８６．７　 ４　 １００．０
８　 ９　 ３０．０　 ２０　 ９５．２
１０　 ７　 ２３．３　 １９　 ８２．６
１２　 ６　 ２０．０　 ５　 ２０．８
２．２　白鹃梅直接再生芽苗诱导培养基的筛选
由均匀设计试验结果（表２）分析可得回归方程
为Ｙ＝０．７７６＋０．５５７　Ｘ１－１．２４９　Ｘ２，其中Ｙ 代表诱
导 率，Ｘ１代表６－ＢＡ质量浓度，Ｘ２代表ＮＡＡ质量
浓度，样本容量ｎ＝５，显著性水平α＝０．０５。通过计
算，复相关系数Ｒ２＝０．９９３，检验值Ｆｔ＝６９．８７９，临
界值Ｆ（０．０５，２，２）＝１９．００，可见Ｆｔ＞Ｆ（０．０５，２，２），表明试
验结果差异显著。根据数据处理结果检验各项的显
著性，结果表明６－ＢＡ、ＮＡＡ均对诱导率影响显著，
本试验二者较佳的质量浓度分别为１．０和０ｍｇ／Ｌ，
即白鹃梅直接再生芽苗诱导培养基无需添加ＮＡＡ，
只需添加１．０ｍｇ／Ｌ　６－ＢＡ，再生芽苗诱导率即可达
８５．７％。
表２　白鹃梅直接再生芽苗诱导培养基
的Ｕ５（５２）均匀设计试验结果
Ｔａｂｌｅ　２　Ｕ５（５２）ｕｎｉｆｏｒｍ　ｄｅｓｉｇｎ　ｔｅｓｔ　ｏｆ　ｍｅｄｉａ　ｆｏｒ　ｂｕｄ
ｓｅｅｄｌｉｎｇ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｅ．ｒａｃｅｍｏｓａ
编 号
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
ｎｕｍｂｅｒ
６－ＢＡ（Ｘ１）／
（ｍｇ·Ｌ－１）
ＮＡＡ（Ｘ２）／
（ｍｇ·Ｌ－１）
诱导率（Ｙ）／％
Ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｒａｔｅ
１　 ０．０　 ０．１　 １０．０
２　 ０．５　 ０．５　 １７．７
３　 １．０　 ０．０　 ８５．７
４　 １．５　 ０．３　 ４４．３
５　 ２．０　 ０．７　 ３．３
２．３　白鹃梅再生丛芽生根培养基的筛选
对生长情况一致、健壮的白鹃梅组培苗进行生
根培养，接种３５ｄ左右可形成完整的白鹃梅小植
株。组培苗接种后１８ｄ开始生根，接种后４５ｄ对组
培苗生根外植体数、根数和根长等指标进行统计，计
算生根率、平均根数和平均根长，结果见表３。
表３　１／２ＭＳ培养基中植物生长调节剂对白鹃梅生根的影响
Ｔａｂｌｅ　３　Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｎ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｋｉｎｄｓ　ｏｆ　ｐｌａｎｔ　ｇｒｏｗｔｈ　ｒｅｇｕｌａｔｏｒ　ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ　ｉｎ　１／２ＭＳ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｍｅｄｉｕｍ
处理编号
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
ｎｕｍｂｅｒ
调节剂
Ｒｅｇｕｌａｔｏｒ
质量浓度／
（ｍｇ·Ｌ－１）
Ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ
生根率／％
Ｒｏｏｔｉｎｇ
ｒａｔｅ
平均生根数
Ａｖｅｒａｇｅ
ｒｏｏｔｅｄ　ｎｕｍｂｅｒ
根长／ｃｍ
Ｒｏｏｔ　ｌｅｎｇｔｈ
根生长状态
Ｒｏｏｔ　ｇｒｏｗｔｈ　ｓｉｔｕａｔｉｏｎ
１ ＮＡＡ　 ０．１　 ３９．１５±３．４０ｃ ０．８３±０．１５ｃ ２．７５±０．０８ｄ 根数量少，细弱 Ａｍｏｕｎｔ　ｓｍａｌ　ａｎｄ　ｇｒａｃｉｌｉｔｙ
２ ＮＡＡ　 ０．３　 ７０．４５±３．２１ｃ ３．８０±０．２１ｅ ５．５７±０．０７ｆ
根数量较多，主根明显，根粗长
Ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ｒｏｏｔ　ｗａｓ　ｍｏｒｅ，ｍａｉｎ　ｒｏｏｔｓ　ｗｅｒｅ　ｓｉｇｎｉｆｉ－
ｃａｎｔ，ｔｈｅ　ｌｅｎｇｔｈ　ａｎｄ　ｄｉａｍｅｔｅｒ　ｏｆ　ｒｏｏｔｓ　ｗａｓ　ｌｏｎｇ
３ ＮＡＡ　 ０．５　 ４９．７１±３．８６ｄ １．５０±０．２７ｄ ３．３６±０．０４ｅ
根较粗长，生长较慢，数量少
Ｔｈｅ　ｌｅｎｇｔｈ　ａｎｄ　ｄｉａｍｅｔｅｒ　ｏｆ　ｒｏｏｔｓ　ｗａｓ　ｌｏｎｇ，ａｎｄ　ｈａｄ
ｓｌｏｗ　ｇｒｏｗｔｈ，ａｍｏｕｎｔ　ｓｍａｌ
４ ＮＡＡ　 ０．７　 ３３．８１±３．８８ｂｃ　０．７０±０．１２ｂｃ　２．１６±０．０８ｃ
根粗短，数量较少，生长较慢
Ｔｈｅ　ｒｏｏｔｓ　ｗｅｒｅ　ｓｈｏｒｔ　ａｎｄ　ｔｈｉｃｋ，ａｍｏｕｎｔ　ｓｍａｌ，ａｎｄ
ｈａｄ　ｓｌｏｗ　ｇｒｏｗｔｈ
５ ＩＢＡ　 ０．１　 ０ａ ０ａ ０ａ 未见生根 Ｎｏ　ｒｏｏｔｉｎｇ
６ ＩＢＡ　 ０．３　 ６．４５±６．４５ａ ０．０７±０．０７ａ １．９４±０．５０ｃ 生根极少，根细弱 Ｒｏｏｔｉｎｇ　ｒａｒｅｌｙ，ｒｏｏｔ　ｗａｓ　ｔｈｉｎ
７ ＩＢＡ　 ０．５　 １５．００±７．８６ａｂ　０．２０±０．１２ｂ １．６５±０．０３ｂ
根数量极少，根细弱，生长缓慢
Ｒｏｏｔｉｎｇ　ｒａｒｅｌｙ，ｒｏｏｔ　ｗａｓ　ｔｈｉｎ，ｎｄ　ｈａｄ　ｓｌｏｗ　ｇｒｏｗｔｈ
８ ＩＢＡ　 ０．７　 １２．６０±６．３１ａ ０．１０±０．０５ａ ２．０８±０．０６ｃ
根数量极少，根细弱，生长缓慢
Ｒｏｏｔｉｎｇ　ｒａｒｅｌｙ，ｒｏｏｔ　ｗａｓ　ｔｈｉｎ，ｎｄ　ｈａｄ　ｓｌｏｗ　ｇｒｏｗｔｈ
９ ＣＫ － ０ａ ０ａ ０ａ 未见生根 Ｎｏ　ｒｏｏｔｉｎｇ
　　注：同列数据后标不同小写字母表示经Ｄｕｎｃａｎ’ｓ法检验差异极显著（Ｐ＜０．０１）。
Ｎｏｔｅ：Ｄａｔｅ　ｗｉｔｈ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｌｏｗｅｒｃａｓｅ　ｌｅｔｔｅｒｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｓａｍｅ　ｃｏｌｕｍｎ　ｒｅｐｒｅｓｅｎｔ　ｔｈｅ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｅ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ　ｉｎ　ｔｈｅ　Ｐ＝１％ｌｅｖｅｌ　ｂｙ　Ｄｕｎｃａｎ　ｅｘａｍ－
ｉｎｅ．
２６１ 西北农林科技大学学报（自然科学版） 第４１卷
　　由表３可知，未添加植物生长调节剂的处理９
和附加有０．１ｍｇ／Ｌ　ＩＢＡ的处理５的生根率均为０；
处理５～８均附加了不同质量浓度的ＩＢＡ，生根率均
低于１５％，可见ＩＢＡ对白鹃梅丛生芽不定根的诱导
作用很小，基本上可以忽略不计。附加了０．３ｍｇ／Ｌ
ＮＡＡ的处理２生根率最高，可达７０．４５％，附加了
不同质量浓度ＮＡＡ的处理１，３和４对白鹃梅丛生
芽不定根也有一定的诱导作用，其中处理３的生根
率达４９．７１％，处理１和４的生根率均小于４０％，可
见质量浓度０．３ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ对白鹃梅丛生芽不定
根的生长具有明显的诱导作用，并且 ＮＡＡ对白鹃
梅丛生芽不定根的诱导作用明显优于ＩＢＡ。从各处
理的生根状态来看，附加了ＮＡＡ的试管苗，先在基
部产生愈伤组织然后再生根，而附加了ＩＢＡ的试管
苗，仅有极少量植株生根，且都是直接从基部生根；
在试验过程中还发现，组培苗生根以后的生长状态
明显优于未生根植株，生根的组培苗植株叶片舒展、
叶色嫩绿、植株健壮，而未生根植株表现为叶片边缘
发黄甚至卷曲，植株低矮。
３　结论与讨论
在植物组织培养过程中，建立无菌外植体、获得
无菌培养材料是试验成功的第一步，外植体消毒时
间的把握则是组培顺利进行的关键一环［８］，消毒时
间过短达不到消毒效果，会造成试验材料大量污染，
降低试验效率；消毒时间过长又会伤害植物细胞，甚
至导致试验失败。本试验采用１ｇ／Ｌ的 ＨｇＣｌ２ 溶
液对白鹃梅嫩茎段进行不同时间消毒处理，结果表
明，白鹃梅嫩茎段在 ＨｇＣｌ２ 溶液中消毒８ｍｉｎ的灭
菌效果最佳。
　　植物组织在离体培养过程中，往往不能自行合
成生长素等内源激素，但其在组织分化与形态建成
等过程中又需要相应激素的调节作用，单纯的培养
基只能维持培养物的最低生理需求［９］。不同植物在
组织培养过程中，对生长调节剂的种类、质量浓度的
需求存在很大差别。有报道指出，植物生长调节物
质互相组合对植物组织分化和器官形成所产生的促
进作用远大于组合中任一种单一的植物生长调节
剂［１０］。对于黄连木来说，使用一定质量浓度的
ＮＡＡ和ＩＢＡ 组合，可有效促进腋芽的诱导萌发
率［９］。本试验采用不同质量浓度的６－ＢＡ和 ＮＡＡ
组合对白鹃梅的嫩茎段进行再生芽苗的诱导，发现
当６－ＢＡ的质量浓度达到１．０ｍｇ／Ｌ、ＮＡＡ质量浓
度为０时，能够更好地诱导白鹃梅外植体丛生芽的
再生；当６－ＢＡ和ＮＡＡ组合使用时，再生芽苗的生
根率均低于４５％，只有当 ＮＡＡ的质量浓度极低或
为０时才能使白鹃梅再生芽苗达到显著的生根效
果，表明 ＮＡＡ不利于白鹃梅再生芽苗的生长与分
化。这说明植物组织或器官的发生对植物生长调节
物质的种类和质量浓度具有差异性选择［１１］。这可
能与植物自身的基因型有关，即不同的基因型决定
了植物在组织分化和器官形成过程中所需要的植物
生长调节物质的种类和质量浓度［１２］。
培养基中营养成分和糖含量的适当减少可以有
效刺激丛生芽生根，这可能是由于较高质量浓度的
营养元素容易使试管苗产生依赖性而不能生根或使
生根迟缓［１３］。本研究在预试验中曾使用 ＭＳ作为
基本培养基，发现很难诱导生根，丛生芽出现玻璃化
现象；采用１／２ＭＳ作为基本培养基，生根率可达
８０％，再生芽苗长势良好。试验中选择ＩＢＡ 和
ＮＡＡ　２种生长调节物质分别进行生根试验，结果表
明，ＩＢＡ和ＮＡＡ均能在一定程度上促进组培苗的
生根，但需要适宜的质量浓度。用ＩＢＡ诱导生根，
生根率极低且根细弱；使用ＮＡＡ诱导生根，外植体
会先在基部产生愈伤组织，然后再生根；ＮＡＡ 为
０．３ｍｇ／Ｌ时生根率高达７０．４５％，根粗壮，且整个植
株生长健壮。而有关药用植物白术组织培养生根的
报道表明，ＩＢＡ和 ＮＡＡ都能诱导生根，ＩＢＡ的诱
导作用明显优于ＮＡＡ，但质量浓度不宜过高，否则
容易产生畸形根［１４］。这说明不同植物组织培养生
根对植物生长调节剂的需求也不同，这一方面可能
与植物在前期培养过程中所用的外源激素不同而导
致内源激素出现差异有关，另一方面也可能是由于
外源生长调节物质超过了培养物本身的适应极限，
进而影响到根的形成与分化［１５］。
白鹃梅的组培苗生根能力不强，在没有生长素
诱导的情况下不能生根，并且试验的重复操作性很
差。本试验中，白鹃梅组培苗移栽后成活率极低，相
关研究正在进一步深入开展。
目前，白鹃梅属植物基本上还处于野生状态，人
工繁殖并开发利用的极少。白鹃梅在食用和园林观
赏方面都具有重要的价值，是一种难得的野生植物
资源，至今未见推广应用。本研究结果为白鹃梅的
开发利用和工厂化育苗奠定了基础。
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４６１ 西北农林科技大学学报（自然科学版） 第４１卷