全 文 ：檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶檶
的峰面积，结果表明流动相提取率较高、杂质较少。
另对提取方法筛选，直接溶解或超声处理 10，20，30
min，结果表明超声处理 20 min 溶出充分。故供试
品溶液的制备采用加流动相超声处理 20 min 进行
提取。
由于样品中含量的较大差别，梓醇采用流动相
(Ⅰ)乙腈-水(2∶ 98) ，地黄苷 D 和益母草苷采用流
动相(Ⅱ)乙腈-水(4∶ 98) ，均达到良好分离效果。
对 12 批不同产地怀地黄提取物进行含量分析
发现，各指标成分含量存在较大差异，品种、等级和
环境因素均影响药材成分含量，制备鲜地黄提取物
药材的选择应当考虑品种、等级和产地。
［参考文献］
［1］ 国家药典委员会． 中华人民共和国药典． 一部［S］．
北京:中国医药科技出版社，2010:115.
［2］ 李更生，于震，王慧森． 地黄化学成分与药理研究进
展［J］．国外医学:中医中药分册，2004，26(2) :74.
［3］ 吴金环，顾红岩，喇孝瑾，等．地黄与熟地黄对糖尿病
小鼠血糖血脂的影响［J］． 中国实验方剂学杂志，
2011，17(8) :161.
［4］ 王宏洁，金亚红，李鹏跃，等．鲜、生、熟地黄中 3 种活
性成分含量的比较［J］． 中国中药杂志，2008，33
(15) :1923.
［5］ 郭东艳，王梅，唐志书，等．生地黄煎煮过程中梓醇含
量的动态变化规律及止血作用［J］．中国实验方剂学
杂志，2010，16(12) :144.
［6］ 吕杨，王慧森，李更生，等． 正交试验优选鲜地黄提取
工艺［J］．中医研究，2009，22(2) :18.
［7］ 刘倩，喇万英．基于体内代谢-药效学相关性分析的中
药复方药效物质基础研究［J］． 中国实验方剂学杂
志，2011，17(10) :272.
［8］ 陈晓萌，陈畅，李德凤，等．中药有效成分辨识的研究
进展［J］．中国实验方剂学杂志，2011，17(12) :249.
［9］ 王喜军．中药及血清药物化学的研究动态及发展趋
势［J］．中国中药杂志，2006，31(10) :789，835.
［10］ 王莉梅，金向群．中药血清化学在中药及中药复方研
究中的应用［J］． 中国实验方剂学杂志，2009，15
(1) :77.
［11］ 张雅阁，李更生，王慧森，等． 地黄化学成分血清药物
化学的初步研究［J］．中医研究，2010，23(5) :32.
［责任编辑 顾雪竹］
［收稿日期］ 20120817(018)
［基金项目］ 国家自然科学基金项目(81102760) ;内蒙古自治区高等学校科学研究项目(NJ10185)
［第一作者］ 苏琨，讲师，硕士，从事蒙药资源开发利用研究，Tel:15044937220，E-mail:nmsk528@ 126. com
［通讯作者］ * 石松利，副教授，博士，从事中蒙药成分及资源开发利用研究，Tel:0472-7167855，E-mail:shisongli122@ 126． com
HPLC测定蒙古扁桃种仁中 α-维生素 E的含量
苏琨，石松利* ，郑东华，李巨欣
( 内蒙古科技大学包头医学院 药学院，内蒙古 包头 014060)
［摘要］ 目的:利用高效液相法，测定出蒙古扁桃中维生素 E 的含量。方法:采用色谱为 Wondasil C18(4. 6 mm ×
250 mm，5 μm) ，流动相为甲醇-水(98∶ 2) ，流速 1. 0 mL·min －1，柱温 25 ℃，检测波长 300 nm，检测器温度为室温(25 ℃)。结
果:α-维生素 E在 1 ～ 100 μg呈良好的线性关系，方程为 Y = 5 176. 7X － 7 645. 8(r = 0. 999 6) ，平均回收率为 99. 4%(n = 3，
ＲSD 1. 740%) ，蒙古扁桃桃仁中维生素 E的含量在 7. 12 ～ 15. 36 μg·g －1，以雅布格戈壁最高，固阳爬榆树最低。结论:该法可
用于测定蒙古扁桃桃仁中的维生素 E的含量，结果准确可靠，快速灵敏。
［关键词］ 蒙古扁桃，α-维生素 E，高效液相
［中图分类号］ Ｒ284. 1 ［文献标识码］ A ［文章编号］ 1005-9903(2013)12-0070-03
［doi］ 10． 11653 /syfj2013120070
Determination of Alpha Tocopherol Content in Amygdalus mongolica by HPLC
SU Kun，SHI Song-li* ，ZHENG Dong-hua，LI Ju-xin
·07·
第 19 卷第 12 期
2013 年 6 月
中国实验方剂学杂志
Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae
Vol． 19，No． 12
Jun．，2013
(School of Pharmacy，Baotou Medical College，Inner Mongolia University
of Science ＆ Technology，Baotou 014060，China)
［Abstract］ Objective:To determine and compare vitamin E content in five different regions of Amygdalus
mongolica． Method:HPLC method was established for determining the content of vitamin E． Methanol-water
(98∶ 2)was used as the mobile phase at the flow rate of 1. 00 mL·min －1 ． The chromatographic column was
WondaSil-C18 (4. 6 mm ×250 mm，5 μm) ;the detection wavelength was set at 300 nm;the column temperature
was kept at 25 ℃，and the ethanol was used as solvents． Ｒesult:The calibration curves of vitamin E was in good
linearity over the range of 1-100 μg (r = 0. 999 6)． The average recovery of vitamin E was 100. 1% (n = 3，ＲSD
1. 740)． Among five samples from different areas，the highest content of vitamin E is determined in the sample of
Yabuge Gebi and the lowest is the one from Guyang Payushu． Conclusion:The method was proved to be rapid，
accurate and credible．
［Key words］ Amygdalus mongolica;α-vitamin E;HPLC
蒙古扁桃蒙古名为乌兰-衣不勒斯，又名山樱
桃、土豆子，隶属蔷薇科扁桃属旱生落叶灌木，生于
海拔 1 000 ～ 2 400 m的荒漠草原、荒漠地区，被列为
国家三级保护植物。其果仁中含有大量不饱和脂肪
酸、氨基酸、微量元素等营养物质以及相当量的维生
素，具有较高的药用、生态和经济价值［1-2］。蒙古扁
桃果为传统中药材，在内蒙古可作郁李仁使用［3］，
以种仁入药，主治止咳化痰、润肠通便、水肿、脚
气等［4］。
维生素 E中共有 4 种生育酚，其生物效应以 α-
维生素 E 较为重要［5］。目前未见有关蒙古扁桃桃
仁维生素 E 含量测定的报道。本文旨在确立可靠
的高效液相方法并测定蒙古扁桃中 α-VE 的含量，
为其药理作用和深入开发利用提供实验依据。
1 材料
DGU-20A3 型高效液相色谱仪(日本岛津公司)
包括:CTO-10AS VP 系统控制器，SPD-M20A 紫外-
可见检测器，LC-20AT 泵和 CBM-20A 色谱工作站，
JP-310S 型超声波清洗仪(功率 180 W，频率 40
kHz) ，离心机。
甲醇(色谱纯) ，无水乙醇，纯净水(娃哈哈) ;α-
VE对照品(上海源叶生物科技有限公司，YY1187-
20 mg) ;蒙古扁桃为 2012 年 3 月购(采)于不同产
地，包括雅布格戈壁(1 号) ，贺兰山沟(2 号) ，固阳
爬榆树(3 号) ，忽鸡沟(4 号) ，九峰山(5 号) ，所有
样品经内蒙古大学生命科学院王迎春教授鉴定。
2 方法
2. 1 色谱条件 WondaSil C18色谱柱(4. 6 mm ×
250 mm，5 μm) ，流动相甲醇-水(98∶ 2)［6］，流速 1. 0
mL·min －1，柱温 25 ℃，检测波长，300 nm，检测器温
度室温(25 ℃)。
2. 2 对照品溶液制备 精密称取 10 mg α-VE标准
品于 10 mL棕色量瓶中，加 50 mg VC(抗氧化剂) ，
用甲醇超声溶解并定容，得 α-VE 标准储备液 1. 0
g·L －1，置冰箱中避光保存，临用时用无水乙醇稀释
至不同的浓度作为对照品溶液。
2. 3 供试品溶液制备 取一定量干燥蒙古扁桃仁，
粉碎(由于桃仁油性太大，不易过筛) ，精确称取扁
桃粉末 5. 00 g于 50 mL具塞棕色瓶中，精确加入 10
mL无水乙醇作为提取剂，密塞，称定质量。超声提
取 30 min，冷却静置 15 min，加入无水乙醇补足减失
质量，摇匀，取上层清液经 0. 45 μm 有机滤膜过滤
后用作高效液相色谱分析。
3 结果
3. 1 对照试验 将所配置的样品溶液和对照品溶
液按照前述色谱条件平行进样，二者在 12. 8 min 左
右都出现 α-VE峰，该峰与其他峰分离度良好，其他
峰对测定并没有干扰。色谱图见图 1。
A. 对照品;B. 样品;1. α-VE
图 1 蒙古扁桃科仁的 HPLC
3. 2 线性关系考察 分别精密吸取 1，0. 75，0. 50，
·17·
苏琨，等:HPLC测定蒙古扁桃种仁中 α-维生素 E的含量
0. 25，0. 01 mL的标准溶液(1 g·L －1)置于 10 mL 棕
色量瓶中，用乙醇稀释至刻度，摇匀，配置成 100，
75，50，25，1 mg·L －1的对照品溶液。分别精密吸取
上述溶液各 20 μL 进样，以 α-VE 对照品质量浓度
为横坐标(X)、峰面积值为纵坐标(Y)绘制标准曲
线，得 回 归 方 程 Y = 5 176. 7X － 7 645. 8
(r = 0. 999 6)。
3. 3 精密度试验 在 2. 1 确定的色谱条件下，精密
吸取 5 号样品溶液 20 μL，连续进样 6 次，
ＲSD 1. 16%。
3. 4 重复性试验 取同一批 2 号样品适量，配制 6
份样品溶液，进行 6 次平行测定。结果 6 批样品平
均含量的 ＲSD 1. 93%，该方法的重复性良好。
3. 5 稳定性试验 取 5 号样品适量，依样品处理方
法制成样品溶液，放置 0，0. 5，1，1. 5，2，2. 5，3，3. 5，
4，8 h 后分别进行测定 α-VE 的峰面积，平均
ＲSD 2. 70%。
3. 6 加样回收试验 精密称取 5 号样品粉末
0. 500 0 g共 9 份，分别加入质量浓度为 25 mg·L －1
的 α-VE 对照品溶液适量，按 2. 3 方法制备成供试
液。在 2. 1 确定的色谱条件下分别进行测定含量，
计算回收率，结果如表 1。
表 1 α-VE在 5 号样品中添加的回收率测定
取样量
/ g
样品中
VE量
/μg
添加量
/μg
测得值
/μg
回收率
/%
平均
ＲSD
/%
平均
回收率
/%
0. 501 5 6. 238 7 5. 00 11. 14 98. 03
0. 502 2 6. 247 4 5. 00 11. 01 95. 25
0. 503 9 6. 268 5 5. 00 11. 28 100. 23
0. 504 9 6. 281 0 6. 25 12. 54 100. 14 1. 76 98. 84
0. 500 8 6. 230 0 6. 25 12. 39 98. 56
0. 501 2 6. 234 9 6. 25 12. 42 98. 96
0. 504 9 6. 268 5 7. 50 13. 71 99. 22
0. 501 9 6. 282 4 7. 50 13. 88 101. 30
0. 500 6 6. 227 5 7. 50 13. 57 97. 9
3. 7 蒙古扁桃桃仁中的维生素 E 的含量测定 根
据 2. 3 方法和 2. 1 确定的色谱条件下，分别测定 5
种不同产地的蒙古扁桃桃仁中的 α-VE 的含量，结
果如表 2。
4 讨论
利用高效液相法测得 α-VE 在 1 ～ 100 μg 呈良
好的线性关系，精密度良好，平均加标回收率为
99. 1%。所测得的扁桃桃仁中维生素 E 的含量在
7. 0 ～ 15. 3 μg·g －1。测定结果表明，5 种不同产地的
表 2 不同地区的蒙古扁桃维生素 E的测定
No． 产地 α-VE /μg·g － 1
1 雅布格戈壁 15. 31
2 贺兰山沟 14. 82
3 固阳爬榆树 7. 027
4 忽鸡沟 8. 396
5 九峰山 12. 44
蒙古扁桃种仁中的 α-维生素 E 含量均低于扁桃种
仁(208. 5 μg·g －1)［8］，而高于长柄扁桃种仁(2. 82
μg·g －1)［9］、核桃油(6. 6 μg·g －1)。
维生素 E的提取溶剂常用正己烷、无水甲醇［10］
或者无水乙醇［11］，近年来更多采用的提取溶剂是后
两种。本文采用无水乙醇作为溶剂，利用超声提取
法对样品进行处理，能够很好的分离 α-VE，通过高
效液相法可获得良好的峰形及合适的保留时间。此
法样品处理不需要皂化、萃取等烦琐步骤，减少了
热源和空气对 α-VE 产生的影响，提取率高，且
HLPC简单快速，适于大批样品的分析。
［参考文献］
［1］ 斯琴巴特尔． 蒙古扁桃［J］． 生物学通报，2003，38
(8) :23.
［2］ 赵一立．内蒙古珍稀濒危植物图谱［M］． 北京:中国
农业科技出版社，1992:36．
［3］ 元艺兰．郁李仁的药理作用与临床应用［J］．现代医
药卫生，2007，23(13) :1987．
［4］ 石松利，白迎春，程向晖，等． 蒙古扁桃药材中总黄
酮提取及含量测定［J］． 包头医学院学报，2012，28
(1) :12.
［5］ 李军生，邹义英． 维生素 E 作用机制研究新进展
［J］． 中国医院药学杂志，2005，25(6) :556.
［6］ 张春红，许传梅，董琦，等，HPLC 测定青稞中的维
生素 E［J］． 分析实验室，2008，27(增刊) :89.
［7］ 刘悍，汤建国，李正风，等．高效液相法测定烟草制品
中的维生素 E［J］．化学分析计量，2009，18(6) :28．
［8］ 张萍，申烨华，郭春会，等． 扁桃种仁中维生素 E的高
效液相色谱法测定［J］． 食品科学，2004，25
(1) :142.
［9］ 雷根虎，刘丽婷，韩超，等． 沙地濒危植物长柄扁桃
仁中维生素 E含量分析［J］． 西北大学学报:自然科
学版，2009，39(5) :777.
［10］ 田守生，郭尚伟，段小波，等． HPLC 法测定阿胶养颜
软胶囊中维生素 E 的含量［J］． 齐鲁药事，2011，30
(7) :397.
［11］ 王兆华，张大军，赵玉兰，等． HPLC 法测定沙棘油
软胶囊中-维生素 E的含量［J］． 中草药，2004，3(1) :
48.
［责任编辑 顾雪竹］
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第 19 卷第 12 期
2013 年 6 月
中国实验方剂学杂志
Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae
Vol． 19，No． 12
Jun．，2013