全 文 :·研究报告·
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2014年第1期
四 聚 体 技 术 是 目 前 国 内 外 研 究 的 热 点, 其
核 心 技 术 就 是 在 主 要 组 织 相 容 性 复 合 体(Major
histocompatibility complex,MHC)I 类 分 子 重 链 末
端进行生物素修饰,以结合亲和素构建四聚体检测
收稿日期 :2013-09-11
基金项目 :国家自然科学基金项目(31172304),辽宁省大学生创新项目(201311258009),大连大学本科生创新项目(2012029)
作者简介 :刘筏,女,研究方向 :动物分子免疫学 ;E-mail :729652171@qq.com
通讯作者 :高凤山,男,副教授,博士,研究方向 :基因工程和动物分子免疫学 ;E-mail :gfsh0626@126.com
烟台黑猪 SLA-I 重链基因末端生物素修饰及表达
刘筏 杨金刚 翟晓鑫 董宋鹏 高凤山
(大连大学生命科学与技术学院,大连 116622)
摘 要 : 为构建烟台黑猪 SLA-2 重链基因偶合生物素化酶 BirA 底物肽(BirA substrate peptide,BSP)并研究其在 pET-28a
(+)中的表达,设计烟台黑猪 SLA-2-BSP 复合基因引物,PCR 扩增烟台黑猪 SLA-2-YTH-BSP 复合基因,并克隆至 pMD 19-T Simple
Vectorp,经酶切鉴定后将 SLA-2-YTH-BSP 复合基因与表达系统 pET-28a(+)链接,并转化到 BL21(Rosseta)菌进行诱导表达,
SDS-PAGE 检测目的蛋白。表达蛋白经过 Ni-NTA 亲和纯化,并经 SDS-PAGE 检测蛋白纯化效果。PCR 结果显示 SLA-2-BSP 大小为
900 bp,并成功克隆到 pMD 19-T Simple Vector,酶切鉴定大小为 876 bp,该基因链接到 pET-28a(+)并转化到 BL21(Rosseta)菌,
经诱导表达和 SDS-PAGE 检测目的蛋白的大小为 32.4 kD。目的蛋白以包涵体形式存在,纯化后蛋白纯度达到 90% 以上。成功构建
烟台黑猪 SLA-I 重链偶合生物素化酶 BirA 底物肽(BSP)的 pET-28a(+)的重组表达系,为下一步的 SLA-I 类分子四聚体研究鉴
定基础。
关键词 : 烟台黑猪 SLA-2 重链基因 生物素化酶 BirA 底物肽 纯化
Biotinylated the Carboxyl Terminal of Heavy Chain of SLA-I from
Yantai Black Pig and Its Expression
Liu Fa Yang Jingang Zhai Xiaoxin Dong Songpeng Gao Fengshan
(College of Life Science and Technology,Dalian University,Dalian 116622)
Abstract: To construct the heavy chain of SLA-2 conjugated with the BirA substrate peptide(BSP)and express the recombinant
genes in pET-28a(+)for Yantai Black Pig(YTH), a pair of primers to express the recombinant SLA-2-YTH-BSP was designed and the
recombinant SLA-2-YTH-BSP was amplified by PCR followed by sub-cloning the gene into pMD19-T Simple Vector. After identification by
cleavage with Nde I and Xho I, the SLA-2-YTH-BSP was ligated to pET-28a(+)and the recombinant plasmids was transformed into BL21
(Rosseta)to be induced to express followed by analysis of the expressing products by SDS-PAGE. The expressed interest of protein was purified
by Ni-NTA column and detected by SDS-PAGE. The PCR results showed that the length of nucleotides of SLA-2-YTH-BSP was about 900 bp
which was consistent with the calculated value. Then, the SLA-2-YTH-BSP with 876 bp was successfully inserted into the pMD-19-T Simple
Vector identified by cleavage with Nde I and Xho I, and then the genes were inserted into pET-28a(+)and transformed into Escherichia coli
BL21(Rosseta). After induction, SLA-2-YTH-BSP was successfully expressed with the interest of protein about 32.4 kD. After purification,
the purity of the interest of the inclusion protein reached to 90%. It was concluded that the recombinant expressing system containing SLA-2
conjugated with BSP in pET-28a(+)was successfully constructed and the research would pave the base to construct tetramer in SLA class I.
Key words: Yantai black pig SLA-2 Heavy chain gene BirA substrate peptide Purification
病毒 CTL(cytotoxic T lymphocyte)表位,从而放大
MHC I-peptide 的检测信号,有利于精确检测病毒的
CTL 表位[1]。目前,国内外分别构建了人[2]、鼠[3]、鸡[4]
等 MHC I 类分子四聚体,并筛选或证实了多种病毒
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2014年第1期192
CTL 表位。然而,目前关于猪 MHC I 四聚体链构建
鲜有报道。猪的 MHC I 类分子也称为猪白细胞抗原
(Swine leukocyte antigen,SLA)I 类分子。课题组最
近报道了我国荷包猪 SLA-I 末端生物素化的研究,
并在 pET-21 成功进行了表达,从而开始了我国地方
品系猪 SLA-I 重链生物素修饰及表达的研究[5]。由
于我国有丰富的地方品系猪资源,有必要开展其他
地方品系猪 SLA-I 的相关研究。烟台黑猪是我国山
东省烟台地区的优质地方品系猪[6],其重链 SLA-I
基因已经克隆,并具有特征性[7]。本研究拟在前期
研究的基础上,以国内品系烟台黑猪 SLA-I 类分子
SLA-2 功能基因为研究对象,采用分子克隆和基因
工程手段在体外构建我国地方品系猪 SLA-2 偶合生
物素化酶 BirA 底物肽的重组表达系,并在原核表达
系统 pET-28a(+)进行表达和纯化,为下一步构建
SLA-I/ 肽复合物奠定基础。
1 材料与方法
1.1 材料
重 组 质 粒 SLA-2-YTH01/ pMD 18-T 为 大 连 大
学 分 子 免 疫 学 实 验 室 构 建 保 存, 克 隆 载 体 pMD
19-T Simple Vector,表达载体 pET-28a(+)及菌株
Escherichia coli. BL21(Rosseta)来自于中国科学院
微生物研究所 ;Escherichia coli Top10 菌株为大连大
学分子免疫学实验室保存。
低 分 子 量 蛋 白 Marker、DL2000 DNA Marker、
Nde I、Xho I 和 DNA 纯化试剂盒购于大连宝生物公
司 ;IPTG、胰化蛋白胨、甘氨酸酵母提取物、丙烯
酰胺氨苄青霉素、过硫酸胺、二甲基甲叉双丙烯酰胺、
TEMED、三羟甲基氨基甲烷等购自上海生工。
1.2 方法
1.2.1 引物的设计 烟台黑猪 SLA-I 重链分子 SLA-2
四聚体链表达引物设计 PS-21F :5-GGAATTCCATA
TGGGCCCGCATTCCCTGAGCTATTTC-3( 下 划 线 部
分为 Nde I 酶切位点);P21BSPR :5-AGTCTCGAGTT
AACGATGATTCCACACCATTTTCTGTGCATCCAGAATAT
GATGCAGGCTGCCGTCCCATCTCAGGGTGAGGGGC-
3(下划线部分为 Xho I 酶切位点,斜体部分为 BSP
序列)。
1.2.2 SLA-2-YTH-BSP 亚克隆 以重组质粒为模板,
以 PS-21F/P21BSPR 为引物对,扩增基因链 SLA-2-
YTH-BSP,PCR 条 件 为 94 ℃,5 min ;94 ℃,30 s ;
56℃,45 s ;72℃,90 s ;30 个循环,72℃延伸 10
min,PCR 结束后进行核酸电泳,琼脂糖凝胶浓度为
1.0 %,电泳结束后在凝胶成像仪下检查 PCR 扩增
产物,然后用 DNA 胶回收试剂盒回收目的片段。
回 收 之 后 SLA-2-YTH-BSP 产 物 连 接 pMD19-T
Simple 并转化大肠杆菌 Top10,37℃过夜培养。按
照碱裂解法提质粒,酶切筛选阳性克隆并保存菌种,
阳性克隆送到生物公司进行测序。
1.2.3 表达载体的构建 将筛选的阳性克隆提质粒,
经 Nde I、Xho I 双酶切,凝胶纯化回收 SLA-2-YTH-
BSP 基因 。将 SLA-2-BSP 与 pET-28a 连接,转化至
感受态细胞 BL21(Rosseta),涂布到含有卡那霉素
的平板中,在 37℃培养箱中过夜培养,挑选菌落接
种至 LB 培养基(含卡那),从培养的菌液中提取质
粒,经 Nde I、Xho I 双酶切筛选阳性质粒,阳性质
粒 命 名 为 pET-28a(+)/SLA-2-YTH-BSP, 见 图 1,
并送生物公司测序。
GAGCTCAAT-SLA-2-YTH-BSP-GTATACATATAGAGGAA
Xho I
Dra III5127
Terminator
T7 promoter
f1 origih
pET-28a+/SLA-2-YTH-BSP
5369 bp/876 bp3994-4807
Kan
lac I
ori 3286773-1852
4903-5358
Nde I rbs
酶切位点分别为 Nde I(CATATG),Xho I(CTCGAG)
图 1 构建 pET-28a(+)/SLA-2-YTH-BSP 重组质粒
1.2.4 SDS-PAGE 检测 SLA-2-YTH-BSP 蛋白表达
将 阳 性 重 组 菌 100 μL 接 种 5 mL LB 液 体 培 养 基,
37 ℃、170 r/min 振 荡 培 养 直 至 OD600 在 0.4-0.6 之
2014年第1期 193刘筏等 :烟台黑猪 SLA-I 重链基因末端生物素修饰及表达
间。加入 1 mol / L IPTG 5 μL,诱导 5 h 后,取菌液
1 mL,12 000 r/min,2 min,去上清,菌体经 TE 溶
解并经 5×SDS 样品 buffer 处理,SDS-PAGE 测蛋白
表达[8]。
1.2.5 SLA-2-YTH-BSP 蛋 白 纯 化 SLA-2-YTH-BSP
表达蛋白按照文献报道进行[9]。表达后的 SLA-2-
YTH-BSP 重组菌(Rosseta)按 1% 比例接种后扩大
培养,IPTG 诱导重组蛋白表达,5 000 r/min,4℃离
心收集细胞并洗涤后,冰浴超声裂解细胞,高速离
心后分别取上清和沉淀进行 SDS-PAGE,检测重组
蛋白表达形式。收集包涵体并用 1% Triton X-100 洗
涤后,用 8 mol/L 尿素溶解,离心收集上清液,透析
过夜后,进行 Ni-NTA 亲和层析,用 60 mmol/L 咪唑
充分洗去杂蛋白后,用 0.3 mol/L 咪唑洗脱目标融合
蛋白,SDS-PAGE 检测纯化蛋白。
2 结果
2.1 SLA-2-YTP-BSP链的PCR扩增
经 PCR 扩增和琼脂糖凝胶电泳检测到一条约
900 bp 的条带,与理论设计值 898 bp 大小相符,见
图 2。
2.4 序列分析pET-28(+)/SLA-2-YTH-BSP
经序列测定分析,pET-28(+)/SLA-2-YTH-BSP
与原序列 100% 同源,另外,序列末端含有 BSP 序
列部分,见图 5。
2.5 SDS-PAGE分析pET-28(+)/SLA-2-YTH-BSP
中的表达
将 经 鉴 定 阳 性 的 重 组 表 达 菌 加 入 IPTG 至 1
mmol/L,然后再诱导培养 5 h,SDS-PAGE 检测目的
基因的表达情况,结果发现重组菌诱导后,与对照
相比表达出约 30 kD 的条带,与理论值 32.4 kD 相符,
而且相对表达含量达到 40% 以上,见图 6。
2.5 SLA-2-YTH-BSP蛋白纯化
SLA-2-YTH-BSP 超 声 裂 解 后, 检 测 主 要 以 包
涵体形式存在,包涵体经过 Ni-NTA 柱纯化,SDS-
PAGE 检测,结果(图 7)显示纯化后的蛋白大小约
为 30 kD,与全菌表达蛋白大小一致。另外,蛋白
的纯度达到 90% 以上,符合进行下一步蛋白结构和
功能研究的要求。
3 讨论
本项目前期研究中,已经成功克隆了烟台黑
1 M
2000
bp
1000
750
500
250
100
898
bp
M :DNA 分子量标准 DL2000 ;1 :PCR 扩增 SLA-2-YTH-BSP
图 2 SLA-2-YTH-BSP 的 PCR 扩增结果
2.2 SLA-2-YTP-BSP链亚克隆到pMD-19-T Simple
Vector
经连接转化后,挑取单菌落培养,用 Nde I、
Xho I 双酶切,电泳显示插入片段约 900 bp,与目的
片段 876 bp 相符合,见图 3。
2.3 SLA-2-YTP-BSP链亚克隆到pET-28a(+)
将与 pMD 19-T Simple 载体链接的重组质粒经双
酶切,回收后与 pET-28a(+)连接,转化至感受态
细胞 BL21(Rosseta),经双酶切鉴定发现插入片段
大小为 870 bp 左右,与理论值 876 bp 相符,见图 4。
1 M
2000
bp
1000
750
500
250
100
876
bp
2692
M :DNA 标准 DL2000 ; 1 :重组质粒双酶切鉴定
图 3 pMD-19-T Simple Vector/SLA-2-YTP-BSP 重组质粒
双酶切鉴定
bp
1000
2000
750
500
250
100
876
bp
M 1
䖭փ
M :DNA 标准 DL2000 ;1 :双酶切鉴定 pET-28a(+)/SLA-2-YTH-BSP
图 4 重组质粒 pET-28a(+)/SLA-2-YTH-BSP 双酶切鉴定
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2014年第1期194
猪 SLA-I 类分子功能基因 SLA-2,并已经在 DDBJ/
EMBL/GenBank 注册,获得序列号 AB672508,为进
行本研究奠定了基础[6]。经分析,所克隆烟台黑猪
SLA-2 共 1 119 bp,其中 75-896 位属于胞外区,编
码 274 个氨基酸残基(本研究为了提高 SLA-2 胞外
区结合多肽的延展性,实际表达了 275 个氨基酸)。
SLA-2 抗原多肽结合区结合抗原多肽后在细胞表面
与 CD8+ T 淋巴细胞的 T 细胞受体(T cell receptor,
TCR) 结 合, 形 成 MHC I-peptide-TCR 复 合 物。 为
了增加在体外检测的信号,需要借助生物素 - 亲和
素结合原理构建 MHC I 四聚体[10]。为此,需要在
SLA-2 胞外区末端加含有 17 个氨基酸的生物素化酶
BirA 底物肽(BirA substrate peptide)[11],以结合生
物素,而一分子亲和素能结合 4 分子的生物素,从
而形成 SLA I-peptide 四聚体。四聚体主要用于检测
下划线部分分别表示 BSP 核酸序列和相应的氨基酸序列
图 5 SLA-2-YTH-BSP 序列
1 2 3 4 5 6 M
97.2
kD
66.4
44.3
14.3
ⴞⲴ㳻ⲭ
20.1
29.0
M :蛋白分子量(低);1 :pET-28/ SLA-2-YTH-BSP 在 BL21 中未诱导表达 ;
2-6 :pET-28/SLA-2-YTH-BSP 在 BL21 中诱导表达
图 6 SDS-PAGE 分析 pET-28(+)/SLA-2-YTH-BSP 中
的表达
1 M
32.4
kD
66.4
97.2
kD
44.3
29.0
20.1
M :蛋白分子量(低);1 :pET-28/ SLA-2-YTH-BSP 经 Ni-NA 纯化蛋白
图 7 SLA-2-YTH-BSP 蛋白纯化
2014年第1期 195刘筏等 :烟台黑猪 SLA-I 重链基因末端生物素修饰及表达
SLA I 限制性的抗原多肽或 TCR。需要指出的是,本
研究中 PCR 扩增 SLA-2-YTH-BSP 的序列长度为 898
bp,是包含了酶切位点和末端的保护性碱基,而酶
切后插入片段的长度为 876 bp。尽管 PCR 产物可以
直接酶切,与 pET-28a(+)连接,但连接的成功率
一般不高。为了增加连接的成功率,采用先把插入
片段克隆入克隆载体 pMD 19-T simple 的方法,经大
量扩增后,再将酶切回收后的插入片段连接入 pET-
28a(+),经酶切后,显示插入片段存在,证明连接
成功。但图中载体质粒显示有两条 DNA 带,其中下
面的条带应当为未酶切完全的重组质粒,可能是酶
量不足或质粒不纯所致,但并不影响主要结果。
本研究中采用 pET-28a(+)载体,是由于尝试
了其他表达载体后,发现 pET-28a(+)更适合 SLA-
2-YTH-BSP 的表达。前期研究中曾报道了我国另一
地方品系猪荷包猪重链基因偶合底物肽及表达研究,
其中用到了另一表达载体 pET-21a(+)[5],二者具
有相同的酶切位点 Nde I 和 Xho I,不同的是 pET-21a
表达的外源基因不携带任何非相关序列,而 pET-
28a(+)表达的外源基因会在 5 端携带 6 个 His 的
标签,从而便于亲和纯化。本研究中经过 SLA-2-
YTH-BSP 与 pET-28a(+) 重 组 后 转 化 Escherichia
coli. BL21(Rosseta),经诱导表达后表达蛋白大小为
32 kD,与之前报道的大小一致[5]。另外,重组表达
质粒不仅经过酶切鉴定,也经过了测序,序列分析
结果表明插入序列与设计的 SLA-2-YTH-BSP 完全一
致。目的蛋白的相对表达含量达到了 40% 以上,可
以用于今后四聚体构建等需要大量表达蛋白的相关
研究。另外,由于 pET-28a(+)载体多克隆位点上
游带有 His 标签,因此可以利用 Ni-NTA 进行亲和纯
化。本研究中,重组蛋白 SLA-2-YTH-BSP 主要以包
涵体形式存在,说明表达蛋白主要存在于细胞质内。
收集包涵体蛋白,经过 Ni-NTA 亲和纯化,蛋白纯
度达到了 90% 以上,可以用于今后进一步的蛋白结
构和功能的研究。
4 结论
构建了烟台黑猪 SLA-I 重链基因末端生物素修
饰的重组表达载体,并获得表达蛋白,为进一步构
建 SLA-I-肽复合物,并展开四聚体研究奠定基础。
参 考 文 献
[1] Lemke CD, Graham JB, Lubaroff DM, et al. Development of an MHC
class I L(d)-restricted PSA peptide-loaded tetramer for detection
of PSA-specific CD8+ T cells in the mouse[J]. Prostate Cancer
Prostatic Dis, 2011, 14(2):118-121.
[2] Jiang X, Lu X, Liu R, et al. HLA Tetramer based artificial antigen-
presenting cells efficiently stimulate CTLs specific for malignant
glioma[J]. Clin Cancer Res, 2007, 13(24):7329-7334.
[3] Savage P, Millrain M, Dimakou S, et al. Expansion of CD8+ cytotoxic
T cells in vitro and in vivo using MHC class I tetramers[J]. Tumour
Biol, 2007, 28(2):70-76.
[4] Liu G, Wang Q, Tong T, et al. Construction and functional test of a
chicken MHC-I(BF2*15)/peptide tetramer[J]. Vet Immunol
Immunopathol, 2008, 122(1-2):1-7.
[5] 张香春 , 冯磊 , 张鑫 , 等 . 荷包猪 SLA 重链基因偶合底物肽及
表达研究[J]. 生物技术 , 2012, 22(5):17-20.
[6] 许刚璞 , 许瑜伟 . 烟台黑猪的调查报告[J]. 中国畜禽种业
2011(6):61-62.
[7] 白婧 , 李云岗 , 张强 , 等 . 六品系猪 SLA-2 多肽结合区分子结
构差异研究[J]. 宁夏大学学报 , 2012, 33(3):274-278.
[8] 高凤山 , 夏春 , 张强 , 等 . 大肠杆菌表达的重组猪 β2 微球蛋白
二级结构的圆二色谱分析[J]. 微生物学报 , 2009, 49(12):
1596-1600.
[9] 郑秋实 , 段晨曦 , 陶凤云 . SMAP-29 抗菌肽的原核表达、纯化
及活性检测[J]. 生物技术通报 , 2013(3):144-148.
[10] Yokouchi H, Chamoto K, Wakita D, et al. Tetramer-blocking assay
for defining antigen-specific cytotoxic T lymphocytes using peptide-
MHC tetramer[J]. Cancer Sci, 2006, 97(2):148-154.
[11] Ouyang D, Wang X, He X, et al. Construction of soluble Mamu-
b*1703, a class I major histocompatibility complex of Chinese
rhesus macaques, monomer and tetramer loaded with a simian
immunodeficiency virus peptide[J]. Cell Mol Immunol, 2009, 6
(2):117-122.
(责任编辑 李楠)