全 文 :Mar.2008
· 38·
生物加工过程
ChineseJournalofBioprocessEngineering
第6卷第2期
2008年3月
宇佐美曲霉木聚糖酶基因xynⅡ在
不同毕赤酵母中的分泌表达
周晨妍1,邬敏辰2,李东峰1,王瑾1,王 武1
(1.江南大学 工业生物技术教育部重点实验室,无锡214122;
2.江南大学 医药学院,无锡214122)
摘要:将宇佐美曲霉E001的内切一l,4一木聚糖酶基因克隆到毕赤酵母表达载体pPIC9K中,得到重组质粒pPXY.
NII,将其经Sa/I线性化后分别转化2株毕赤酵母GSll5和KM71,xynⅡ基因通过同源重组被整合到毕赤酵母染色
体上,并处于酵母Ct因子的下游,经筛选获得阳性重组茵PXGL98(Mut+)和PXKL29(Mut‘)。该木聚糖酶基因在2
株毕赤酵母中均实现了分泌表达。同时对工程茵的发酵条件进行了优化,在甲醇诱导下,PXGL98与PXKL29培养
物上清液中的酶活力分另q可达1156.92U/mL和1646.03U/mL。
关键词:宇佐美曲霉,内切一l,4一木聚糖酶基因,毕赤酵母,分泌表达
中图分类号:Q786 文献标识码:A 文章编号:1672—3678(2008)02—0038—05
SecretedexpressionofAspergillususamii
Pichiapastoris
xylanasegeneindifferent
ZHOUChen.yanl,WUMin.chenl’。,LIDong—fen91,WANGJinl,WANGWul
(1.TheK yLaboratoryofIndustrialBioteehnologyoftheMinistryofEducation,JiangnanUn versity,Wuxi214122,China;
2.SchoolfMedicine,JiangnanUniversity,Wuxi214122,China)
Abstract:Theendo-1,4-xylanasegenefromAspergillususamiiE001wasclonedintothePichiapastoris
expressionvectol;,pPIC9K,therecombinantpl smidwasnamedpPXYNII.Therecombinantpl smid
pPXYNllwaslinearizedwithSalIandthentransformedintoPichiapastorisGSl15andKM71.respec.
tively.ThexynIIgenewasinframeintegratedintothePichiagenomethroughhomologousrecombination.
TherecombinantPichiapastorisGSll5(PXGL98)andKM71(PXKL29)secretedfunctionalendo一1,4一
xylanase,andthe zymaticctivitiesreached1 156.92U/mLand1 646.03U/mL,respectively.
Keywords:Aspergillususamii;endo-1,4一xylanasegene;Pichiapastoris;secrectedxpression
植物纤维是自然界中最主要的可再生有机资
源,在世界能源日益短缺的情况下,这些能源正越
来越受到重视。植物纤维的主要成分是纤维素、半
纤维素和木质素,其中半纤维素约占植物干质量的
35%,是自然界中仅次于纤维素含量的第二丰富可
再生资源。木聚糖是一种结构较复杂的不均一聚
糖,为半纤维素的重要成分。木聚糖酶(xylanases)
是一类水解木聚糖主链内部卢一1,4木糖苷键的酶,
收稿日期:200/4)7-16
基金项目:国家863资助项目(2006AAl02305)
作者简介:周晨妍(1979一)。女,河南省焦作人,博士研究生。研究方向:基因工程。
联系人:王武,女,教授,博士生导师,E—mail:wangwu@sytu.edu.ca
万方数据
2008年3月周晨妍等:宇佐美曲霉木聚糖酶基因xynlI在不同毕赤酵母中的分泌表达 ·39·
多数作用于木聚糖的无侧枝区段,产生低聚糖或带
有侧枝的寡聚糖,按氨基酸序列同源性分类,大多
数木聚糖酶属第F/10、G/1l族糖基水解酶[1-2]。
木聚糖酶在造纸、食品、饲料、纺织等工业中起着非
常重要的作用,研究他具有很好的商业价值和科学
意义。不同来源的木聚糖酶,其氨基酸序列、空间
结构、相对分子质量、等电点以及底物特异性各不
相同,因而有必要对编码各种木聚糖酶的基因进行
克隆和表达,以满足工业应用的需求"J。目前从不
同来源的微生物中分离了上百种木聚糖酶,并对其
编码基因进行了克隆和表达HJ。
宇佐美曲霉(Aspergillususamii)E001是本研究
室保藏的1株高产木聚糖酶菌株,已从其固态发酵
曲中分离纯化了2种木聚糖酶XynI和XynII【5J。
作者在克隆了木聚糖酶基因xynII(Genbank登录号
为DQl14485)的基础上‘6l,首次将该基因成功地在
2株毕赤酵母KM71和GSll5中实现了分泌表达,
并进行了表达条件的优化。
1材料与方法
1.1 酶、培养基和主要试剂
限制性内切酶、T4DNA连接酶、TaqDNA聚合
酶、4种dNTP、SDS—PAGE低相对分子质量Marker均
购自Tal(aRa公司;燕麦木聚糖购自Signm公司;G418
和YNB购自上海生工生物公司;其他试剂均为进口
或国产分析纯产品;YPD、MM、MD、BMGY、BMMY培
养基见Invitrogen公司的毕赤酵母操作手册。
1.2菌株与质粒
供试菌株和质粒见表l。
表1供试菌株和质粒
Table1 Strainsa dplasmids
1.3重组酵母表达载体的构建和鉴定
以重组质粒pEXYNlI为模板,根据木聚糖酶基
因xynlI(Genbank登录号为DQll4485)序列,设计
合成引物,进行PCR扩增反应。
JN:5’一CGGAATI℃AGTGCCG(汀ATCAACTATG-
3’(含EcoRI酶切位点)
JZ:5’.ATITGCGGCCGC7兀AAGAAGATATCGT.
GAC-3’(含NotI酶切位点)
94℃2min;94℃30s。55℃30s,72℃45s:
30个循环;72℃10rain。
凝胶电泳回收目的条带,用EcoRI和Not1分
别双酶切上述DNA和pPIC9K质粒,凝胶电泳回收
目的条带,按照分子克隆手册r刊进行表达片段的连
接、转化和阳性克隆的筛选。抽提重组质粒DNA,
进行电泳检测、酶切鉴定和测序分析。
1.4酵母的电击转化
将测序正确的重组载体,SalI线性化后,参照
Eppendoff电转化手册(www.ependoff.corn)进行电
转化(电转仪,Eppendoff公司)GSll5和KM71,
pPIC9K作为对照。电转条件:1500V, ms。取200
斗L转化液涂MD平板,30℃培养2—3d,筛选得到
His+克隆,保存转化子。
万方数据
·40· 生物加工过程 第6卷第2期
1.5转化子的鉴定与筛选
将获得的His+转化子分别在含G4180.25,
0.5,1.0,1.5,2.0,3.0,4.0mg/mL的YPD平板上,
30℃培养3—5d,以筛选多拷贝的阳性转化子。挑
取所有抗4.0mg/mLG418的菌落,用MM和MD平
板筛选His+Mut+与His+Mut。表型。
1.6工程菌株发酵条件的优化
(1)种龄对重组菌产酶的影响菌种接入摇瓶后
分别培养14,18,22,26h,转入甲醇诱导阶段,每隔
24h,补加甲醇至终体积分数为0.5%,培养72h,
测发酵液酶活力。
(2)装液量对重组菌产酶的影响将生长培养基
的菌体离心后接入250mL三角瓶中装液量分别为
15,25,35,45mL的BMMY内,每隔24h,补加甲醇
至终体积分数为0.5%,培养72h,测发酵液酶活
力,考察装液量对重组菌产酶的影响。
(3)甲醇诱导量对重组菌产酶的影响将生长培
养基的菌体离心后等量接人最佳装液量并含有甲
醇体积分数分别为0.5%,1.0%,1.5%,2.0%,
2.5%的诱导培养基中进行培养,每24h补加甲醇
至预定值,培养72h。收获发酵液检测酶活性。
(4)诱导时间对木聚糖酶表达的影响:将生长
培养基的菌体离心后接入诱导培养基,诱导192h,
每24h取样0.5mL并补加甲醇。发酵液按上述方
法进行测定。
1.7重组毕赤酵母表达产物的分析
1.7.1细胞光密度(叩鳓)
菌液稀释后于波长600nm以去离子水为对照
进行比色测定∞锄=读数×稀释倍数。
1.7.2木聚糖酶酶活力测定及酶活力单位定义
采用改进的DNS法哺],在2.4mL质量分数
0.5%的木聚糖中加入0.1mL适当稀释的酶液,
50℃下反应15min,加入2.5mLDNS终止反应,沸
水中显色7min,定容后测定∞铷。
酶活力单位(U)的定义:在该反应条件下,以每
分钟产生1lLLmol还原糖所需的酶量定义为1个
单位。
1.7.3SDS—PAGE
采用5%浓缩胶、15%分离胶。样品制备:阳
性转化株用甲醇诱导,发酵结束后取少量菌液,按
1:l体积比加入样品裂解液,沸水浴处理5min,取
20p.L,进行SDS—PAGE电泳,分析重组蛋白的表达
情况。
2结果与讨论
2.1 宇佐美曲霉木聚糖酶基因重组表达载体的构
建及鉴定
构建含有木聚糖酶xynU基因的重组表达载体
pPXYNII(图1)。重组质粒经EcoRI和NotI双酶
切鉴定和PCR检测(图2),均得到约600bp的产
物,表明pPXYNII构建成功。经上海生工生物技术
有限公司测序证明,xynII基因序列嵌入到表达载体
pPIC9K的5
7AOXl和37AOXl间,并保持了在
AOXl控制下的正确读码框。
I
oxl03")
I
图1重组质粒pPXYNII的构建图
Fig.1Physicalm pofrecombinantpl smidpPXYNII
1一PCRproduct;2一pPXYNIL/EcDRI+NotI;M—DNAMarker
图2重组表达载体pPXYNII的鉴定
Fig.2Identificationofrecombinantpl smidpPXYNII
万方数据
2008年3月周晨妍等:宇佐美曲霉木聚糖酶基因xynII在不同毕赤酵母中的分泌表达 ·41·
2.2酵母的电击转化与筛选
用10IxgSalI线性化的DNA电转化受体菌
GSll5和KM71后,在MD平板上筛选得到His+转
化子,然后分别点种于含不同质量浓度的G418的
YPD平板中。对4.0mg/mLG418平板上的转化子
进行Mut表型筛选,对得到的Mut+和Mut。菌株,进
一步经过诱导培养和酶活性测定,筛选得到两株高
产工程菌株PXGL98(Mut+)和PXKL29(Mut8)。
2.3重组表达菌株的诱导表达
2.3.1 重组酵母菌生长密度的测定
在重组酵母菌培养8h后,每4h取样测DD600,
见图3。从图3可以看出,重组酵母菌在接种后12
—26h中的生长最旺盛,为对数生长期。
700
600
C500
;400
晕300
翅
档200
loo
O
14 18
图4重组菌种龄对产酶的影响
Fig.4EffectofgrowthtimeonthexpressionofXynlI
700
600
p500
一
?400
薹300
滥200
100
O
装液量,mL
图5装液量对产酶的影响
图3重组酵母的生长曲线 Fig.5EffectofmediumvolumeonXynIIexpression
Fig.3GrowthcurvesofrecombinantPichiapastoris
2.3.2种龄对重组菌产酶的影响
在一定时间范围内,生长时间延长,菌体量增加,
表达量也相应增加但时间延长,菌体老化,又不利于
外源蛋白的表达。通常接种龄以菌丝处于生命力极
为旺盛的对数生长期,且培养液中菌体量还未达到高
峰时,较为合适。针对毕赤酵母的对数生长期,分别
将不同种龄的种子接入BMMY中进行诱导表达。结
果(图4)显示:工程菌PXGL98和PXKL29分别在生
长26,22h时诱导产酶,酶活力最高。
2.3.3装液量对重组菌表达XynII的影响
由图5可见,在250mL的三角瓶中,装液量分
别在35mL和15mL时,PXGL98和PXKL29的木聚
糖酶表达水平最高。
2.3.4甲醇诱导量对重组菌表达XynII的影响
将诱导培养基内甲醇含量分别调至不同浓度,
诱导培养72h,测定酶活力(图6)。结果表明:甲醇
体积分数为1.5%,2.0%分别最有利于PXGL98、
PXKL29表达xynlI。
,
龟
●
量
妲
箍
图6甲醇浓度对产酶的影响
Fig.6EffectofmethanolconcentrationonXynlIexpression
.3.5诱导时间对重组菌表达XynII的影响
PXGL98和PXKL29种子液接入培养基,30℃,
225r/min分别培养26h、22h。进入甲醇诱导阶段
后,于不同时间取发酵上清进行酶活力的测定,测
得PXGL98和PXKL29两类重组酵母分别在诱导96
h和144h时酶活力最高。用空载体转化的宿主菌
作对照,其发酵上清均未检测到酶活力。
万方数据
·42· 生物加工过程 第6卷第2期
1 800
l500
龟1200
已900
馨600
300
0 24 48 72 96 120144168192
t/h
图7诱导时间对产酶的影响
Fig.7EffectofinductiondurationOilxylanaseactivity
工程菌PXGL98和PXKL29在以上优选的摇瓶
发酵条件下表达的XynII,最高酶活力分别为
1 156.92U/mL和1646.03U/mL。
2.4 SDS—PAGE检测
将工程菌进行甲醇诱导表达,通过SDS-PAGE
检测,将含有空质粒的酵母转化子作为阴性对照,
从图8可见两个阳性重组菌在2.3×104处均有一
明显蛋白条带,而阴性对照相应的位置无蛋白条
带,说明重组菌在甲醇诱导下均产生了XynII。
1,2一KM『7l、GSl15;M--M¨ker;3,4--PXKL29、PXGL98
图8重组酵母上清的SDS.PAGE
Fig.8SDS·PAGEofsupematantaftermethanolinduction
3结论与展望
毕赤酵母表达系统是近年来发展很快的一个真
核表达系统,非常适合真核蛋白的表达,表现在其很
强的真核蛋白质修饰功能上,他不存在原核表达系统
中重组蛋白质正确折叠和糖基化等后处理问题。
KM71和Gsll5为甲醇酵母表达系统常用的宿主菌。
不同的宿主菌,构建的重组菌表型不一样,KMTl本身
为AOXl缺陷型,重组菌表型均为Mut。。GSIl5作为
宿主菌,在His4DNA片段的单酶切位点将表达质粒
酶切线性化,通过单交换整合进染色体,AOXI未被
破坏,转化子表型绝大多数呈Mut+。
首次在巴斯德毕赤酵母系统中表达了宇佐美
曲霉xynⅡ基因,通过对重组酵母菌进行筛选,获得
了高拷贝整合的不同表型的重组菌株,并对其表达
外源基因的摇瓶发酵条件进行了研究,增加了基因
的表达水平。PXGL98(Mut+)和PXKL29(Mut5)摇
瓶培养酶活力最高分别可达l156.92U/mL和
1646.03U/mL。与Luttig等一3报道的在酿酒酵母
中表达的来源于Aspergillusniger的木聚糖酶
(XYN4)(最高表达量为73U/m1)以及DengPing
等¨叫报道的在毕赤酵母中表达的来源于Aspergillus
nigerCGMCC1067的木聚糖酶(XYNB)(最高表达
量为62U/mL)比较,作者克隆的木聚糖酶基因在毕
赤酵母中表达量提高了20倍左右。另外,0【一因子信
号肽使表达的重组蛋白分泌到胞外,且毕赤酵母自
身分泌的蛋白种类比较少,使得纯化更为简便,为
其进一步工业应用奠定了基础。
参考文献:
[1]杨梦华,李颖.关国华,等.极端耐热木聚糖酶基因在大肠杆菌
和毕赤酵母中的高教表达[J】.微生物学报,2005,45:236-240.
[2]HenfissatB,BairoehA.Updatinghesequence—b88edelassifica-
tionofglyeosylhydrolases[J].IBioehem,1996,316:695-696.
[3]PolizeliM,RiszattiA,MonfiR.Xylanasesfromfungi:properties
andindustrial印plications[J].ApplblierobiolB technol,2005,
67:577-591.
[4]KulkamiN,ShendyeA,RaoM。Mdeeularandbiotechnologieal89-
pectsofxylanaaes[J].FEMsMicrobialltev,1999,23:411-456.
[5]邬敏辰,符丹丹,朱韵,等.字佐美曲霉木聚糖酶的纯化及其性
质[J】.食品与生物技术学报,2005,24:29-33.
[6】 周晨妍,符丹丹,邬敏辰.宇佐美曲霉木聚糖酶基因的克隆和
序列分析[J].食品与发酵工业,2005,31(10):29-32.
[7]SambrookJ,蹦协hEF,ManiatisT.Moleculare oning[M].2nd
ed.NewYork:ColdS#ngharborLaboratoryPress.1989:34-56.
[8】BaileyMJ,BielyP,PoutanenK.IlIt—日bⅢtorytestingofmethods
forassayofxylanaseacfivity[J].JBiotechnol,1992,23:257-270.
[9]LuttigM,PretoriusIS,VanZylWH.CloningoftwoIB-xylanase·
encodinggenesfromAspergillusnig口sadtheirexpressioninSac-
charornyaEs口Rdd∞[J】.BiottchnolLea,1997.19:411-415.
[10]DengPing,LiDefa。c∞Yunhe,eta1.Cloningofageneencoding
girlaeidophilieendo·B-1,4-xylanaseobt inedfromAsperg///us,妇矿
CGMCC1067andconstitutiveexpressioninPichiapastoris[J].
EnzymeMicwbTechnol,2006,39:1096-1102.
万方数据