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Application of nano-scale secondary ion mass spectrometry to microbial ecology study

纳米二次离子质谱技术(NanoSIMS)在微生物生态学研究中的应用



全 文 :
摇 摇 摇 摇 摇 生 态 学 报
摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 (SHENGTAI XUEBAO)
摇 摇 第 33 卷 第 2 期摇 摇 2013 年 1 月摇 (半月刊)
目摇 摇 次
前沿理论与学科综述
岩溶山区水分时空异质性及植物适应机理研究进展 陈洪松,聂云鹏,王克林 (317)……………………………
红树林植被对大型底栖动物群落的影响 陈光程,余摇 丹,叶摇 勇,等 (327)……………………………………
淡水湖泊生态系统中砷的赋存与转化行为研究进展 张摇 楠,韦朝阳,杨林生 (337)……………………………
纳米二次离子质谱技术(NanoSIMS)在微生物生态学研究中的应用 胡行伟,张丽梅,贺纪正 (348)…………
城市系统碳循环:特征、机理与理论框架 赵荣钦,黄贤金 (358)…………………………………………………
城市温室气体排放清单编制研究进展 李摇 晴,唐立娜,石龙宇 (367)……………………………………………
个体与基础生态
科尔沁沙地家榆林的种子散布及幼苗更新 杨允菲,白云鹏,李建东 (374)………………………………………
环境因子对木棉种子萌发的影响 郑艳玲,马焕成,Scheller Robert,等 (382)……………………………………
互花米草与短叶茳芏枯落物分解过程中碳氮磷化学计量学特征 欧阳林梅,王摇 纯,王维奇,等 (389)………
性别、季节和体型大小对吐鲁番沙虎巢域的影响 李文蓉,宋玉成,时摇 磊 (395)………………………………
遮蔽行为对海刺猬摄食、生长和性腺性状的影响 罗世滨,常亚青,赵摇 冲,等 (402)……………………………
水稻和玉米苗上饲养的稻纵卷叶螟对温度的反应 廖怀建,黄建荣,方源松,等 (409)…………………………
种群、群落和生态系统
亚热带不同林分土壤表层有机碳组成及其稳定性 商素云,姜培坤,宋照亮,等 (416)…………………………
禁牧条件下不同类型草地群落结构特征 张鹏莉摇 陈摇 俊摇 崔树娟,等 (425)…………………………………
高寒退化草地狼毒与赖草种群空间格局及竞争关系 任摇 珩,赵成章 (435)……………………………………
小兴安岭 4 种典型阔叶红松林土壤有机碳分解特性 宋摇 媛,赵溪竹,毛子军,等 (443)………………………
新疆富蕴地震断裂带植被恢复对土壤古菌群落的影响 林摇 青,曾摇 军,张摇 涛,等 (454)……………………
长期施肥对紫色土农田土壤动物群落的影响 朱新玉,董志新,况福虹,等 (464)………………………………
潮虫消耗木本植物凋落物的可选择性试验 刘摇 燕,廖允成 (475)………………………………………………
象山港网箱养殖对近海沉积物细菌群落的影响 裘琼芬,张德民,叶仙森,等 (483)……………………………
2005 年夏季东太平洋中国多金属结核区小型底栖生物研究 王小谷,周亚东,张东声,等 (492)………………
川西亚高山典型森林生态系统截留水文效应 孙向阳,王根绪,吴摇 勇,等 (501)………………………………
景观、区域和全球生态
中国水稻生产对历史气候变化的敏感性和脆弱性 熊摇 伟,杨摇 婕,吴文斌,等 (509)…………………………
1961—2005 年东北地区气温和降水变化趋势 贺摇 伟,布仁仓,熊在平,等 (519)………………………………
地表太阳辐射减弱和臭氧浓度增加对冬小麦生长和产量的影响 郑有飞,胡会芳,吴荣军,等 (532)…………
资源与产业生态
基于环境卫星数据的黄河湿地植被生物量反演研究 高明亮,赵文吉,宫兆宁,等 (542)………………………
黄土高原南麓县域耕地土壤速效养分时空变异 陈摇 涛,常庆瑞,刘摇 京,等 (554)……………………………
不同水稻栽培模式下小麦秸秆腐解特征及对土壤生物学特性和养分状况的影响
武摇 际,郭熙盛, 鲁剑巍,等 (565)
………………………………
……………………………………………………………………………
施氮时期对高产夏玉米光合特性的影响 吕摇 鹏,张吉旺,刘摇 伟,等 (576)……………………………………
城乡与社会生态
城市景观组分影响水质退化的阈值研究 刘珍环,李正国,杨摇 鹏,等 (586)……………………………………
长株潭地区生态可持续性 戴亚南,贺新光 (595)…………………………………………………………………
外源 NO对镉胁迫下水稻幼苗抗氧化系统和微量元素积累的影响 朱涵毅,陈益军,劳佳丽,等 (603)………
达里诺尔湖沉积物中无机碳的形态组成 孙园园,何摇 江,吕昌伟,等 (610)……………………………………
绿洲土 Cd、Pb、Zn、Ni复合污染下重金属的形态特征和生物有效性 武文飞,南忠仁,王胜利,等 (619)………
柠檬酸和 EDTA对铜污染土壤环境中吊兰生长的影响 汪楠楠,胡摇 珊,吴摇 丹,等 (631)……………………
研究简报
海州湾生态系统服务价值评估 张秀英,钟太洋,黄贤金,等 (640)………………………………………………
内蒙古羊草群落、功能群、物种变化及其与气候的关系 谭丽萍,周广胜 (650)…………………………………
氮磷供给比例对长白落叶松苗木磷素吸收和利用效率的影响 魏红旭,徐程扬,马履一,等 (659)……………
期刊基本参数:CN 11鄄2031 / Q*1981*m*16*352*zh*P* ¥ 90郾 00*1510*38*
室室室室室室室室室室室室室室
2013鄄01
封面图说: 科尔沁沙地榆树———榆树疏林草原属温带典型草原地带,适应半干旱半湿润气候的隐域性沙地顶级植物群落,具有
极强的适应性、稳定性,生物产量较高。 在我国仅见于科尔沁沙地和浑善达克沙地。 是防风固沙、保护沙区生态环
境和周边土地资源的一种重要的植物群落类型,是耐旱沙生植物的重要物种基因库和荒漠野生动物的重要避难所
和栖息地。 这些年来,由于人类毁林开荒、过度放牧、甚至片面地建立人工林群落等的干扰 ,不同程度地破坏了榆
树疏林的生态环境,影响了其特有的生态作用。
彩图提供: 陈建伟教授摇 北京林业大学摇 E鄄mail: cites. chenjw@ 163. com
第 33 卷第 2 期
2013 年 1 月
生 态 学 报
ACTA ECOLOGICA SINICA
Vol. 33,No. 2
Jan. ,2013
http: / / www. ecologica. cn
基金项目:国家自然科学基金资助项目(41020114001,41025004)
收稿日期:2011鄄11鄄30; 摇 摇 修订日期:2012鄄05鄄31
*通讯作者 Corresponding author. E鄄mail: jzhe@ rcees. ac. cn
DOI: 10. 5846 / stxb201111301826
胡行伟,张丽梅,贺纪正.纳米二次离子质谱技术(NanoSIMS)在微生物生态学研究中的应用.生态学报,2013,33(2):0348鄄0357.
Hu Hangwei1,2, Zhang Limei1, He J Z. Application of nano鄄scale secondary ion mass spectrometry to microbial ecology study. Acta Ecologica Sinica,2013,
33(2):0348鄄0357.
纳米二次离子质谱技术(NanoSIMS)在
微生物生态学研究中的应用
胡行伟1,2,张丽梅1,贺纪正1,*
(1. 中国科学院生态环境研究中心, 城市与区域生态国家重点实验室,北京摇 100085;
2. 中国科学院研究生院, 北京摇 100049)
摘要:超高分辨率显微镜成像技术与同位素示踪技术相结合的纳米二次离子质谱技术(NanoSIMS)具有较高的灵敏度和离子传
输效率、极高的质量分辨率和空间分辨率(< 50 nm),代表着当今离子探针成像技术的最高水平。 利用稳定性或者放射性同位
素在原位或者微宇宙条件下示踪目标微生物,然后将样品进行固定、脱水、树脂包埋或者导电镀膜处理,制备成可供二次离子质
谱分析的薄片,进一步通过 NanoSIMS成像分析,不仅能够在单细胞水平上提供微生物的生理生态特征信息,而且能够准确识别
复杂环境样品中的代谢活跃的微生物细胞及其系统分类信息,对于认识微生物介导的元素生物地球化学循环机制具有重要意
义。 介绍了纳米二次离子质谱技术的工作原理和技术路线,及其与同位素示踪技术、透射电子显微镜(TEM)、扫描电子显微镜
(SEM)、荧光原位杂交技术( FISH)、催化报告沉积荧光原位杂交技术( CARD鄄FISH)、卤素原位杂交技术(Halogen In Situ
Hybridization, HISH)等联合使用在微生物生态学研究方面的应用。
关键词:纳米二次离子质谱; 同位素分析; 图像定量分析; 微生物生态学; 荧光原位杂交
Application of nano鄄scale secondary ion mass spectrometry to microbial
ecology study
HU Hangwei1,2, ZHANG Limei1, HE Jizheng1,*
1 State Key Laboratory of Urban and Regional Ecology, Research Center for Eco鄄Environmental Sciences, Chinese Academy of Sciences, Beijing
100085, China
2 Graduate University of Chinese Academy of Sciences, Beijing 100049, China
Abstract: Generally considering the widespread distribution and functional importance of microorganisms in biogeochemical
processes, single鄄cell methods to detect their metabolic activities in naturally complex environments are essential. Recent
methodological advancements in secondary ion mass spectrometry ( SIMS)鄄based imaging techniques have revealed novel
insights into metabolically active cells and their identification. The nano鄄scale secondary ion mass spectrometry
(NanoSIMS) represents the most advanced generation of ion microprobe imaging technique, which possesses well鄄focused
primary ion beam, high levels of sensitivity, ion transmission, mass resolution and spatial resolution ( < 50 nm),
combining high鄄resolution microscopy with isotopic analysis. NanoSIMS has been widely used in material science, geology,
life science and mineralogy, and recently expanded to be a novel analytical tool in environmental microbiology.
The basic principle of NanoSIMS is that the primary ions produced by the ion source (Cs+ or O-) are accelerated under
ultra鄄high vacuum to an energy with a few kiloelectronvolts (KeV), then are focused onto the chosen working areas of the
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sample surface. The bombardment could sputter away a thin layer of secondary ions reflecting the molecular and isotopic
compositions of sample surface. These ion particles are directed into a mass analyzer, and separated based on the different
mass鄄to鄄charge ratio, then detected by the highly鄄sensitive ion detectors. By analyzing different secondary ions (7 masses in
parallel), information about the identity and activity of the targeted microorganisms can be obtained.
The major steps employed in single鄄cell analysis by NanoSIMS include environmental and cultured samples incubated
with stable or radioactive isotope (with a suitable half鄄life) labeled substrates under in situ or microcosm conditions, then
subsamples are chemically fixed, dehydrated and resin鄄embedded to form thin sections for NanoSIMS. When used in
combination with FISH approach, samples should be hybridized with specific oligonucleotide probes prior to NanoSIMS
analysis. Particularly, when an insulating sample (i. e. most of microbiological samples) is analyzed, the surface need to
be coated with a thin layer of conductive materials to prevent charging effect. By providing information on the ecophysiology
of microorganisms and identifying the metabolically active single cells in complex environments, NanoSIMS could be able to
directly link the microbial identity with the specific activity, which is of global importance to investigate the microbes鄄
mediated biogeochemical cycles.
The aim of this review was to describe the basic principle of NanoSIMS, and its powerful combinations with isotopic
tracers, transmission electron microscope (TEM), scanning electron microscope (SEM), fluorescence in situ hybridization
(FISH), catalyzed reporter deposition ( CARD)鄄FISH, Halogen In Situ Hybridization ( HISH) to analyze single鄄cell
microbial function and identity in the field of environmental microbiology. Our review focuses on the recent application of
NanoSIMS鄄based methodologies combined with isotope probing method to identify and visualize the key microbial populations
involving in nitrogen, carbon and sulfur cycling. Moreover, some practical considerations concerning the sample preparation
and phylogenetic identification when using NanoSIMS are presented. Increasing evidence strongly suggest that NanoSIMS
instruments will be powerful analytical tools for environmental microbiology, provide unprecedented possibilities and huge
advantages to image metabolically active single cells within complex environments. Finally, we point out the amazing
potential of NanoSIMS鄄based techniques to solve new problems and improve our understanding in future studies of microbial
ecology.
Key Words: NanoSIMS; isotopic analysis; quantitative image鄄analysis; microbial ecology; FISH
氮(N)、碳(C)、硫(S)等生命元素的生物地球化学循环过程主要由微生物所驱动。 耦合分析自然环境中
微生物遗传多样性与其代谢多样性是当今微生物生态学研究的难点和热点。 自然环境中的微生物多样性极
为丰富,每吨土壤中的微生物类群可高达 400 万种,海洋中的微生物类群也超过 200 万种[1]。 实验室富集分
离的传统纯培养方法对微生物生理生态功能的认识做出了巨大贡献,但截止到 2003 年 7 月,全球范围内仅分
离培养出 4800 种细菌[2],这极大地限制了人们对微生物功能多样性的认识。 过去几十年里,人们通过从环境
样品中提取微生物 DNA直接进行聚合酶链式反应(PCR),并利用 PCR 产物构建克隆文库并进行测序分析,
发现了大量的未知序列。 通过将这些未知序列与已知的分离培养微生物序列进行比对,从而推测这些未培养
微生物的可能代谢类型,成为人们认识微生物多样性和功能的重要手段。 但是,具有相似 16S rRNA基因组成
的类群不一定具有相同的代谢功能[3鄄4],丰度较高的微生物并不一定发挥更重要的生态功能[5],而且 PCR 反
应可能带来一定的偏差,这成为基于 PCR的分子生物学研究手段的主要缺陷。 考虑到微生物的广泛分布及
其在元素地球化学循环中的重要作用,需要更先进的技术对自然环境样品中的微生物群落和功能进行探测。
近年逐步兴起的纳米二次离子质谱技术(NanoSIMS)在国际上已被广泛应用于地球科学、材料科学、比较
行星学、生物医学和矿物学等领域,并在微生物生态学研究中显示出巨大的潜力,是当前最为先进的表面和界
面分析技术,具有广阔的应用前景。 通过利用稳定性或放射性同位素在原位或者微宇宙条件下标记目标微生
物,并与特异性的荧光原位杂交技术(FISH)、催化报告沉积荧光原位杂交技术(CARD鄄FISH)、卤素原位杂交
943摇 2 期 摇 摇 摇 胡行伟摇 等:纳米二次离子质谱技术(NanoSIMS)在微生物生态学研究中的应用 摇
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技术(HISH)等联合应用,NanoSIMS为从单细胞成像水平上研究复杂环境样品中微生物群落的组成和代谢特
征提供了前所未有的可能性,其极高的灵敏度和准确性比其它的单细胞研究手段更具优势。 本文将对纳米二
次离子质谱的工作原理及其在微生物生态学研究领域的相关应用、存在的问题和发展趋势等进行简要介绍。
1摇 纳米二次离子质谱技术(NanoSIMS)的原理
二次离子质谱技术(SIMS)是 20 世纪 70 年代发展起来的一种表面分析技术,它以一种离子(如 Cs+或 O-
初级离子束)轰击固体表面,再将从表面溅射出来的次级离子引入磁场质量分析器, 不同离子根据质荷比不
同在静电场区被分离开,经质谱检测器检测记录并成像,得出被分析样品表面的元素或化合物的组分。 SIMS
可以检测从氢到铀的所有元素、同位素和化合物,并以检测原离子轰击样品表面产生的特征(“指纹冶)次级离
子谱为基础的,因此既可提供样品表面元素的信息,也可提供化学组分的信息,具有较高的空间分辨率和质量
分辨率。 SIMS技术经历了几次更新,被广泛应用于材料学、生物医学、地质学和土壤学等领域。 SIMS 一般分
为静态 SIMS和动态 SIMS两种[6]。 静态 SIMS,例如飞行时间二次离子质谱(ToF鄄SIMS),根据测定激发的二
次离子飞行到接收器所用的时间来判断离子种类,一般对样品表面的一个到两个原子层(< 1 nm)进行分析,
只能提供关于样品浅层表面的信息,在应用于生态学研究时很难找到合适的条件同时满足较高质量分辨率和
空间分辨率(一般只能达到微米级)的要求[7];而动态 SIMS如 CAMECA IMS 1270鄄180 型、CAMECA IMS鄄3f鄄7f
型、及最先进的 CAMECA NanoSIMS 50L型,主要根据二次离子在磁场中的偏转半径不同来确定离子种类,可
以获得样品表面几微米内元素同位素分布和组成的信息(空间分辨率达到亚微米级或者纳米级) [8],成像水
平比静态 SIMS明显提高,在微生物生态学中的应用也日渐成熟。
摇 图 1 摇 CAMECA NanoSIMS 50L 型纳米二次离子质谱仪工作原
理示意图[11]
Fig. 1 摇 Schematic illustration of CAMECA NanoSIMS 50L ion
microprobe [11]
法国 CAMECA公司生产的 NanoSIMS 50L型是当前最为先进的动态二次离子质谱[9],相比于传统的离子
探针具有极高的灵敏度和空间分辨率,其中铯(Cs+)离子源的分辨率达到 50 nm,氧(O-)离子源的分辨率达
到 150 nm,并且具有极高的质量分辨率,如能够有效区分13C-与12C1H-、12C15N-与13C14N-之间的细微质量差
异,并且能够同时对 7 种离子进行成像分析和精确定
量[10]。 CAMECA NanoSIMS 50L 与传统的二次离子质
谱仪的工作原理非常相似,都是通过用一次离子束轰击
的方式激发样品表面产生二次离子,进而分析样品表面
元素同位素组成和丰度 [11]。 具体工作流程为:首先将
离子源(Cs+或者 O-)产生的一次离子在真空加速器中
加速形成具有几千电子伏特(KeV)的离子束,当这些高
能量的离子束聚焦并轰击固体薄片样品表面(微生物
细胞)时,溅射出样品中的二次离子,这些具有不同荷
质比的二次离子由于在磁场中偏转半径不同而到达多
接收器的不同位置,然后通过接收器上的法拉第环或者
电子倍增器测量不同离子的强度,进而成像并通过图像
定量分析软件计算出样品表面的元素同位素的丰度和
组成信息 (图 1 )。 测定的同位素比值信息 (例
如13C- / 12C-)不仅可以用于计算单细胞的元素吸收速
率,还可以表征元素的代谢途径[12]。 选择合适的离子
源对于正确分析样品信息极为关键,铯(Cs+)离子源激
发的负二次离子可以用来分析 C、CN、P、S、O、H和卤族
元素等,一般在微生物生态学研究中被广泛采用,而氧
(O-)离子源激发的正二次离子适合于进行金属的表面
分析[13]。
053 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 33 卷摇
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2摇 纳米二次离子质谱技术(NanoSIMS)应用于微生物生态学研究的技术路线
二次离子质谱技术(SIMS)在微生物生态学中的应用始于 2001 年。 Orphan 等首次利用 FISH 与 SIMS 结
合的方法证实了海洋沉积物中存在厌氧甲烷氧化古菌,能够代谢13C—CH4 [14]。 但当时对同位素组成分析和
FISH显影分析需在不同的仪器上完成,而且 SIMS 的横向分辨率较低,不能有效地对微生物的细胞进行辨
识[15鄄16],最新的 CAMECA NanoSIMS 50L 型二次离子质谱仪有效克服了这一难题。 应用 NanoSIMS 进行单细
胞成像分析的主要步骤为:在实验室微宇宙培养或原位条件下,将采集的环境样品或可培养的微生物暴露在
富含稳定性同位素( 15N或13C等)或者放射性同位素基质的环境中,经过短期的同位素标记过程之后,将样品
进行固定、脱水,形状不规则样品需要用环氧树脂包埋,绝缘的样品(绝大多数微生物生态学研究样品)需要
进行导电镀膜 (Au,Pt,Au / Pd 或者 C)处理[17],制备成表面平整、符合仪器真空条件的薄片样品进行
NanoSIMS分析。 为了鉴别环境样品中的目标微生物,NanoSIMS 需要与透射电子显微镜(TEM)、扫描电子显
微镜(SEM)、荧光原位杂交(FISH)、催化报告沉积荧光原位杂交(CARD鄄FISH)、卤素原位杂交(HISH)、X 射
线能谱仪(EDS X鄄ray)等联合使用来识别微生物的种类和功能(图 2)。
图 2摇 纳米二次离子质谱分析微生物代谢功能活性的技术路线图
Fig. 2摇 Schematic diagram of NanoSIMS to detect and image microbial metabolic activities
3摇 纳米二次离子质谱技术(NanoSIMS)的应用实例
3. 1摇 氮循环微生物
氮的生物地球化学循环主要由一系列微生物所驱动,识别并确定参与不同氮转化途径(包括固氮作用、
硝化作用、反硝化作用和氨化作用)的功能微生物是当前氮循环机制研究的核心问题之一[18鄄19]。 NanoSIMS
技术在氮循环过程方面的应用首先在固氮微生物的研究上取得进展(表 1)。 2006 年,Lechene 等首次利用
NanoSIMS从单细胞水平上研究并确定了实验室纯培养的固氮菌株 Teredinibacter turnerae 的固氮特性[20]。
2007 年,Lechene等又对与一种名为 Lyrodus pedicellatus的船蛆(Shipworm)体内共生的固氮细菌进行了定量研
究[21]。 由于船蛆本身的食物链中不包含氮元素,所以必须依靠与其共生的微生物提供氮源。 Lechene 等在实
验室培养条件下向含有船蛆 Lyrodus pedicellatus的海水中注入稳定性同位素底物15N2,然后经过 8d 的暴露培
养之后,先对样品进行透射电子显微镜(TEM)扫描确定待研究的船蛆组织中共生固氮细菌的位置,通过
NanoSIMS分析后发现固氮细菌及周围组织均被15N所标记上,这直观有力地提供了船蛆依赖固氮微生物获取
氮源的证据[21]。 这些早期利用 NanoSIMS技术研究固氮微生物细胞功能的例子显示出单细胞成像技术的巨
大应用潜力。
固氮微生物中另一类被广泛研究的是丝状蓝藻,它们能够同时固定 N2 和 CO2,其较大的细胞个体与独特
的形态特征为 NanoSIMS的应用提供了便利[22]。 丝状蓝藻包括营养细胞和异型胞,但是过去由于研究手段的
限制,对氮元素和碳元素在这些细胞内及细胞之间的转运和流动并不清楚。 Popa 等通过结合高分辨率的
NanoSIMS与稳定性同位素标记技术对丝状固氮蓝藻 A. oscillarioides 的研究发现,新固定的氮元素可以被异
153摇 2 期 摇 摇 摇 胡行伟摇 等:纳米二次离子质谱技术(NanoSIMS)在微生物生态学研究中的应用 摇
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型胞快速转运,并最终分配到营养细胞中去。 此外,NanoSIMS还可以根据细胞组织不同的元素组成从亚细胞
水平上进一步观察丝状蓝藻 A. oscillarioides体内的元素分布状况[23]。 另一个类似的通过 NanoSIMS 和 TEM
对固氮蓝藻菌株 Trichodesmium的研究发现了更为细致的13C 和15N吸收的时空分布特征,其中 CO2 的固定速
率在上午达到最高水平,而 N2 的固定速率则在下午达到最高水平,并且新固定的 C 和 N 主要贮存在藻青素
颗粒中[24]。 这些研究说明,将同位素标记技术与 NanoSIMS和 TEM成像技术联合使用,能够在探究微生物细
胞的生理组成元素及其相关代谢和转运过程方面发挥巨大作用。 在最近的研究中它们用于分析两种不同的
丝状蓝藻 Nodularia spumigena和 Aphanizomenon sp.对于波罗的海(Baltic Sea)碳氮循环的重要性,同时结合微
传感器技术测定了两种不同蓝藻类群单细胞水平的氮固定和碳固定速率,从而能够更加准确地估测不同碳氮
微生物对全球碳氮循环的贡献率[25鄄26]。
除了对实验室纯培养的固氮蓝藻进行分析之外,NanoSIMS 同样也能够用于分析环境样品中的固氮微生
物。 最近,Foster等利用15N2 同位素标记与 NanoSIMS结合的方法首次对寡营养海水中的 3 种硅藻鄄蓝藻共生
体的单细胞固氮速率进行了测定,解决了过去由于技术手段限制不能够将硅藻鄄蓝藻共生体与其它固氮菌分
离研究的难题[27]。 Halm等通过 FISH与 NanoSIMS联合使用,识别出在湖水厌氧层中发挥固氮作用的微生物
主要是数量非常少的绿硫细菌 Chlorobium sp. [28]。 在更为复杂的河流沉积物样品中,Dekas 等运用这 2 项技
术对具有甲烷厌氧氧化功能的古菌 ANME鄄2和细菌 DSS类群的聚合体进行了研究,在经过 6 个月的15N2 同位
素培养实验之后,根据15N的吸收分布情况,发现这种聚合体中的 ANME鄄 2古菌具有固定氮气的功能,并且能
够将固定的氮元素转运给 DSS细菌[29鄄30]。
近年来,随着第一株具有氨氧化功能的古菌在实验室获得纯培养,氨氧化古菌(AOA)作为除细菌以外硝
化作用的主要参与者,成为当前微生物生态学研究的热点之一[31]。 奥地利维也纳大学的 Tourna 等成功地从
土壤中富集到了氨氧化古菌 Nitrososphaera viennensis,该菌株只有在添加有低浓度丙酮酸的培养基中才能将
NH+4 转化成 NO
-
2
[32]。 为了验证该菌是否利用丙酮酸中的 C 元素来合成细胞组织,他们在含有 N. viennensis
的培养基中加入13C标记的丙酮酸,在 37 °C培养 10 d后运用 NanoSIMS对样品进行分析,发现大约有 10%的
C元素来自于13C鄄丙酮酸,其余的主要来自于对碳酸氢盐的固定,证明 N. viennensis 具有化能自养和混合营养
生长的潜能[32]。 该项研究是首次将 NanoSIMS技术用于氨氧化微生物,对于探索新发现的氨氧化古菌的生理
代谢机制提供了新的思路。
3. 2摇 碳循环微生物
近些年发展起来的卤素原位杂交(HISH)与 NanoSIMS联用的技术能够分析环境样品中的微生物组成,并
同时定量测定单细胞的代谢功能[33]。 Musat等首先将这种联用技术用于研究寡营养湖水中 3 种厌氧光合细
菌 Chromatium okenii,Lamprocystis purpurea和 Chlorobium clathratiforme对 H13CO-3 和15NH
+
4 的吸收特征[17]。 他
们通过实验室短期的微宇宙培养发现,同种光合细菌的不同细胞表现出极大的代谢速率差异,不同类群光合
细胞之间的差异更大。 其中,仅占细胞总数 0. 03%的 C. okenii贡献了光合细菌碳吸收总量的 70%和氮吸收
总量的 40% ,这表明湖水中厌氧光合细菌的碳氮吸收过程主要是由一部分数量非常稀少的类群所完成的[17]。
NanoSIMS技术在碳循环微生物方面的另一类应用主要是对于甲基营养菌(包括甲醇营养菌和甲烷营养
菌)的研究。 Li等利用碘标记的寡核苷酸探针原位杂交与 NanoSIMS结合的方法对生物反应器中甲醇营养菌
的组成和功能进行了分析[34]。 为了研究生物反应器系统中微生物吸收甲醇的机理,他们采用13C鄄甲醇培养采
自生物反应器的样品,厌氧培养 25 d后,首先用以碘标记的针对细菌和古菌的特异性探针确定样品里的微生
物类群,然后将样品固定用于 NanoSIMS分析,结果发现古菌是生物反应器中吸收甲醇的主要功能微生物[34]。
此外,Behrens等运用类似的方法发现了口腔生物膜上的 Cytophaga鄄Flavobacterium 类群吸收13C鄄氨基酸的
功能[35]。
3. 3摇 硫循环微生物
硫酸盐还原菌(SRB)是硫元素生物地球化学循环过程的关键功能类群,经典的分子生物学研究手段已经
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对 SRB的种群组成和丰度进行了深入研究,但尚不能在单细胞水平解析其生理代谢功能特征[36]。 近期,美
国研究者 Fike等利用最新的 NanoSIMS 50L型二次离子质谱仪,并结合 CARD鄄FISH 技术,成功地为解决这一
问题提供了新的视角,识别出在高盐环境下微生物垫中参与硫循环的主要微生物类群是 Desulfobacteraceae 科
的硫酸盐还原菌[37]。 他们首先用外层包裹有35SO4 的银箔与微生物垫中可溶性的硫化物反应,由于硫化物
与35SO4 的氧化还原反应使硫化物中的34S固定在银箔表面,然后通过 NanoSIMS 成像技术就能够测定样品中
啄34S同位素的组成情况,从而计算出不同微生物垫深度上硫化物的浓度。 NanoSIMS 所生成的二维图像表明,
微生物垫中硫化物的浓度随着深度的增加而减少,这种变化趋势与利用 CARD鄄FISH 所测定的
Desulfobacteraceae科的硫酸盐还原菌丰度随微生物垫深度的变化趋势相吻合,说明 Desulfobacteraceae 科对微
生物垫中硫化物的空间分布具有决定作用[37]。 以往对于硫酸盐还原菌的研究多停留在对其总的丰度和结构
组成分布上,而通过使用 NanoSIMS与 CARD鄄FISH结合的方法能够将微生物的空间分布与硫化物的空间分布
联系在一起,更容易识别硫酸盐还原过程中的关键活跃类群。
摇 图 3摇 15N标记的 P. fluorescens在树脂包被的土壤基质中分布的
NanoSIMS成像图[40]
Fig. 3摇 NanoSIMS images of the distributions of 15N鄄lableled P.
fluorescens in Araldite resin鄄embedded soil matrix [40]
(a) 28Si-; (b) 12C-; (c) 12C14N-; (d) 15N / 14N ratio
3. 4摇 其它方面的应用
NanoSIMS技术除了在氮、碳、硫等元素的生物地球
化学循环研究中得到广泛应用外,研究者们也在不断拓
展着 NanoSIMS 在微生物生态学方面的应用范围。 微
生物的空间分布及其在土壤基质中的功能活性对于元
素地球化学循环具有极为重要的影响,而且土壤的高度
异质性为微生物提供了无数性质各异的微环境[38],将
土壤理化环境的异质性与其对生物过程的影响联系起
来是当今土壤微生物生态学的研究前沿之一[39],然而
过去的技术手段对于分析微生物与土壤基质接触的生
物物理界面无能为力。 2007 年,Herrmann 等创新地将
NanoSIMS 运用于土壤微生物的活性与空间分布的研
究,并同时观察了土壤物理微环境对于微生物的影
响[40]。 他们首先将土壤中广泛分布的 Pseudomonas
fluorescens的纯培养菌株(NCTC10038)在含有15NH+4 的
培养基中进行标记 24 h 后,混入土壤样品中,然后用环
氧树脂固定并切片供 NanoSIMS 观察。 其中,28Si-离子
成像图用来表示土壤基质的组成,12C-成像图表示树脂
的组 成,12C14N- 成 像 图 表 示 含 氮 有 机 质,12C15N-
与12C14N-的比值(即15N / 14N)可以表示15N鄄P. fluorescens 的分布(图 3)。 从 NanoSIMS 成像图中,可以清晰地
看到15N标记的 P. fluorescens主要分布在土壤粒子的边缘部分[40]。 该项研究显示出 NanoSIMS在分析微生物
在土壤中的微域分布及其与土壤基质相互作用方面的巨大可能性。 类似的研究方法已经开始用于对土壤-
微生物-植物相互作用的研究。 Clode等利用 NanoSIMS在原位状态下研究了15N元素在土壤根际圈的转运情
况,并重点关注了植物细胞与根际微生物对 N元素的相互竞争[41]。 这种原位研究元素流动的高分辨率成像
方法显示了 NanoSIMS在分析复杂土壤环境中微生物过程的优越性,而以往的此类研究只能主要依靠简单的
数学模型分析。 NanoSIMS在微生物生态学方面的其它可能应用还包括:控制土壤矿物质表面磷肥固定的微
生物机理,促进有机质在土壤中稳定化过程的微生物类群,土壤基质中微生物与特定矿物质的相互作用,土壤
中目标微生物活跃类群的空间分布,影响微生物水平基因转移的微观尺度因素等[6]。
4摇 使用 NanoSIMS技术应注意的问题
4. 1摇 样品制备
样品制备是 NanoSIMS分析中极为关键的环节,因为 NanoSIMS一般在超高真空环境中进行操作,因此制
353摇 2 期 摇 摇 摇 胡行伟摇 等:纳米二次离子质谱技术(NanoSIMS)在微生物生态学研究中的应用 摇
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表 1摇 纳米二次离子质谱在微生物生态学方面的应用举例
Table 1摇 Examples of NanoSIMS applications in microbial ecology
样品种类
Sample types
联用技术
Techniques used in combination
分析的二次离子种类
Types of ion imaging
参考文献
References
纯培养的固氮细菌菌株
Teredinibacter turnerae
稳定性同位素标记、Transmission
Electron Microscope (TEM)
12C14N-,12C15N- [20]
船蛆 Lyrodus pedicellatus 肠道内的共
生固氮细菌 稳定性同位素标记、TEM
12C14N-,12C15N- [21]
纯培养的丝状固氮蓝藻
Anabaena oscillarioides 稳定性同位素标记
12C-,13C-,12C14N-,12C15N-,33P- [23]
纯培养的固氮蓝藻 Trichodesmium 稳定性同位素标记、TEM 12C-,13C-,12C14N-,12C15N-,31P- [24]
丝状固氮蓝藻 Aphanizomenon sp. 稳定性同位素标记、微传感器、质谱 12C-,13C-,12C14N-,12C15N- [25]
丝状固氮蓝藻 Nodularia spumigena 稳定性同位素标记、微传感器、质谱 12C-,13C-,12C14N-,12C15N- [26]
海水样品中的硅藻蓝藻共生体 稳定性同位素标记 12C14N-,12C15N- [27]
湖水厌氧层中的固氮微生物
稳定性同位素标记、Catalyzed
Reporter Deposition Fluorescent In Situ
Hybridization (CARD鄄FISH)
12C-,13C-,12C14N-,12C15N- [28]
河流沉积物中有固氮作用的甲烷厌
氧氧化古菌
稳定性同位素标记、 Fluorescence In
Situ Hybridization (FISH)
12C14N-,12C15N- [29鄄30]
纯培养的氨氧化古菌菌株
Nitrososphaera viennensis
稳定性同位素标记、连续流同位素
质谱
12C-,13C-,12C14N-,16O-,
19F-,31P-,32S-
[32]
寡营养湖水中的三种光合细菌
Chromatium okenii,Lamprocystis
purpurea和 Chlorobium clathratiforme
稳定性同位素标记、
CARD鄄FISH、HISH
12C-,13C-,12C14N-,12C15N-,19F- [17]
生物反应器中的甲醇营养菌 稳定性同位素标记
12C-,13C-,12C14N-,12C15N-,
13C14N-,32S-,127 I-
[34]
口腔生物膜上的
Cytophaga鄄Flavobacterium类群
稳定性同位素标记、 CARD鄄FISH、
Halogen In Situ Hybridization (HISH)
12C-,13C-,12C12C-,12C13C-,
12C14N-,12C15N-,19F-,81Br-
[35]
微生物垫(microbial mats)中的硫酸
盐还原菌(SRB) CARD
-FISH 32S-,34S- [37]
土壤基质中的 Pseudomonas fluorescens
菌株
稳定性同位素标记、Scanning Electron
Microscope (SEM)、X射线能谱仪
12C-,13C-,12C14N-,12C15N-,28Si-, [40]
根际微生物 稳定性同位素标记、TEM 12C-,13C-,12C14N-,12C15N-,28Si-, [41]
纯培养的趋磁细菌菌株
Desulfovibrio magneticus TEM
12C14N-,31P-,56Fe16O-,57Fe16O- [42]
超嗜热微生物
Methanopyrus和 Pyrococcus 稳定性同位素标记、FISH
12C-,13C- [43]
备的环境样品必须充分脱水并且能够承受真空。 样品脱水的方法一般包括化学固定液(如加入乙醇、甲醛或
戊二醛等) [44]、低温脱水[45]、环氧树脂包埋等[24]。 不同的脱水方法适用于不同样品的 NanoSIMS 分析,如果
在样品制备的过程中待分析的元素有可能发生转移和流动,最好使用低温脱水方法来固定样品的形态,例如
在研究固氮微生物的碳氮吸收途径的时候[23鄄24]。 对于形状不规则的样品最好用树脂进行包埋,然后切成薄
片状以便进行 NanoSIMS分析。 甲醛固定液对于微生物细胞的蛋白质、脂质和核酸有非常有效的固定和脱水
作用[46],但是在固定的过程中也有可能引入微生物细胞中的12C,从而使 NanoSIMS 的分析出现一定的偏差。
尤其是当 NanoSIMS与荧光杂交技术如 FISH、CARD鄄FISH 和 HISH 联用时,最好使用多聚甲醛对样品进行脱
水处理[17]。 Peteranderl和 Lechene比较了低温脱水与化学固定对样品制备的不同影响,发现化学固定导致二
次离子12C-和12C14N-的产率降低,并且化学固定液有可能洗脱低分子量的细胞组织[45]。 而 Ploug 等对这 2 种
453 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 33 卷摇
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脱水方法的研究表明,化学固定法并没有显著地影响待测样品的元素组成[25]。
4. 2摇 微生物的识别
在 NanoSIMS分析中,不同的二次离子能够表征样品的不同组成,因此如何正确地将离子成像信息与微
生物类群联系起来显得非常关键。 例如在固氮硅藻鄄蓝藻共生体的研究中就会遇到类似的难题,因为共生蓝
藻细胞经常生长在硅藻的细胞壁与细胞膜之间,为有效区分这两种不同微生物对 N 的吸收带来较大困难,因
此在 NanoSIMS分析之前必须首先破坏去除硅藻的细胞壁,然后再进行下一步分析[27]。 识别复杂环境样品中
的微生物类群也可以通过在 NanoSIMS 分析之前首先进行 FISH或者 CARD鄄FISH分析,以此确定微生物的组
成和种类,但是将荧光原位杂交的图像与 NanoSIMS分析的图像正确地联系在一起也是非常艰难的工作。 为
了有效地对微生物进行识别,在 NanoSIMS分析之前也最好辅之以 TEM 或者 SEM 等电子显微镜技术对样品
进行必要的基本特征分析,首先确定好适合 NanoSIMS 分析的感兴趣区域,这样可以节省大量的时间。 例如
在分析富含有机质的沉积物样品中的微生物群落时,有机质浓度较高的区域往往也是微生物富集的区域,因
此首先用电子显微镜确定有机质的分布区域,可以更加快速地找到目标微生物。
5摇 总结和展望
以 NanoSIMS为代表的单细胞分析技术的兴起为研究微生物生态学提供了崭新的机遇,并且已经在参与
氮、碳、硫等元素生物地球化学循环的微生物研究中显示出前所未有的优势和重要的应用前景。 NanoSIMS 不
仅能够提供微生物的生理生态特征信息,而且能够确定并识别复杂环境样品中的代谢活跃的微生物细胞,并
将其类群信息与功能联系起来,对于从微观尺度上识别不同微生物群落在元素循环中的作用和在生态系统中
的功能具有重要意义[22]。 然而,NanoSIMS技术本身依旧存在很多问题:(1)在进行 NanoSIMS分析时,如果选
择反映同位素富集的感兴趣区域不合适,可能会影响对微生物功能的正确分析;(2)在制备可供 NanoSIMS 分
析的样品时,固定和脱水等过程可能会对微生物细胞的同位素组成造成一定的影响;(3)由于 NanoSIMS 一般
与同位素标记技术联合使用,标记过程中微生物交叉取食和同位素被稀释的风险同样也会影响后续的
NanoSIMS分析结果。 (4)由于 FISH技术应用于复杂土壤样品的难题,NanoSIMS 与 FISH 联用仍然很难区分
不同类群土壤微生物的功能活性。 当前微生物生态学的研究技术多基于 PCR 扩增,对环境微生物的认识以
易于被 PCR 扩增出的优势种群为主,对环境中丰度较低的稀有微生物种群认识严重不足,未来基于
NanoSIMS的研究方法将有助于揭示自然环境丰度较低但发挥重要功能作用的微生物种群。 同时,随着原位
杂交技术的进一步发展,结合不断丰富的生物标志物,如脂类、DNA / RNA、蛋白质等,NanoSIMS 将可能为研究
微生物的类群和功能提供更为完整的信息。
References:
[ 1 ]摇 Curtis T P, Sloan W T, Scannell J W. Estimating prokaryotic diversity and its limits. Proceedings of the National Academy of Sciences of the
United States of America, 2002, 99(16): 10494鄄10499.
[ 2 ] 摇 Keller M, Zengler K. Tapping into microbial diversity. Nature Reviews Microbiology, 2004, 2(2): 141鄄150.
[ 3 ] 摇 Acinas S G, Sarma鄄Rupavtarm R, Klepac鄄Ceraj V, Polz M F. PCR鄄induced sequence artifacts and bias: Insights from comparison of two 16S
rRNA clone libraries constructed from the same sample. Applied and Environmental Microbiology, 2005, 71(12): 8966鄄8969.
[ 4 ] 摇 Jaspers E, Overmann J. Ecological significance of microdiversity: identical 16S rRNA gene sequences can be found in bacteria with highly divergent
genomes and ecophysiologies. Applied and Environmental Microbiology, 2004, 70(8): 4831鄄4839.
[ 5 ] 摇 Polz M F, Cavanaugh C M. Bias in template鄄to鄄product ratios in multitemplate PCR. Applied and Environmental Microbiology, 1998, 64(10):
3724鄄3730.
[ 6 ] 摇 Herrmann A M, Ritz K, Nunan N, Clode P L, Pett鄄Ridge J, Kilburn M R, Murphy D V, O忆Donnell A G, Stockdale E A. Nano鄄scale secondary
ion mass spectrometry鄄a new analytical tool in biogeochemistry and soil ecology: a review article. Soil Biology and Biochemistry, 2007, 39(8):
1835鄄1850.
[ 7 ] 摇 Cliff J B, Gaspar D J, Bottomley P J, Myrold D D. Exploration of inorganic C and N assimilation by soil microbes with time鄄of鄄flight secondary ion
mass spectrometry. Applied and Environmental Microbiology, 2002, 68(8): 4067鄄4073.
553摇 2 期 摇 摇 摇 胡行伟摇 等:纳米二次离子质谱技术(NanoSIMS)在微生物生态学研究中的应用 摇
http: / / www. ecologica. cn
[ 8 ]摇 Adams F, van Vaeck L, Barrett R. Advanced analytical techniques: platform for nano materials science. Spectrochimica Acta Part B: Atomic
Spectroscopy, 2005, 60(1): 13鄄26.
[ 9 ] 摇 Guerquin鄄Kern J L, Wu T D, Quintana C, Croisy A. Progress in analytical imaging of the cell by dynamic secondary ion mass spectrometry (SIMS
microscopy) . Biochimica Et Biophysica Acta鄄General Subjects, 2005, 1724(3): 228鄄238.
[10] 摇 Eybe T, Audinot J N, Bohn T, Guignard C, Migeon H N, Hoffmann L. NanoSIMS 50 elucidation of the natural element composition in structures
of cyanobacteria and their exposure to halogen compounds. Journal of Applied Microbiology, 2008, 105(5): 1502鄄1510.
[11] 摇 Kanbach G, Nittler L. Instruments for observations of radioactivities / / Diehl R, Hartmann D H, Prantzos N, eds. Astronomy with Radioactivities.
Heidelberg: Springer, 2011: 491鄄515.
[12] 摇 Kuypers M M M, J覬rgensen B B. The future of single鄄cell environmental microbiology. Environmental Microbiology, 2007, 9(1): 6鄄7.
[13] 摇 Boxer S G, Kraft M L, Weber P K. Advances in imaging secondary ion mass spectrometry for biological samples. Annual Review of Biophysics,
2009, 38: 53鄄74.
[14] 摇 Orphan V J, House C H, Hinrichs K U, McKeegan K D, DeLong E F. Methane鄄consuming archaea revealed by directly coupled isotopic and
phylogenetic analysis. Science, 2001, 293(5529): 484鄄487.
[15] 摇 Pernthaler A, Amann R. Simultaneous fluorescence in situ hybridization of mRNA and rRNA in environmental bacteria. Applied and Environmental
Microbiology, 2004, 70(9): 5426鄄5433.
[16] 摇 DeRito C M, Pumphrey G M, Madsen E L. Use of field鄄based stable isotope probing to identify adapted populations and track carbon flow through a
phenol鄄degrading soil microbial community. Applied and Environmental Microbiology, 2005, 71(12): 7858鄄7865.
[17] 摇 Musat N, Halm H, Winterholler B, Hoppe P, Peduzzi S, Hillion F, Horreard F, Amann R, J覬rgensen B B, Kuypers M M M. A single鄄cell view
on the ecophysiology of anaerobic phototrophic bacteria. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2008,
105(46): 17861鄄17866.
[18] 摇 Francis C A, Beman J M, Kuypers M M M. New processes and players in the nitrogen cycle: the microbial ecology of anaerobic and archaeal
ammonia oxidation. The ISME Journal, 2007, 1(1): 19鄄27.
[19] 摇 Gruber N, Galloway J N. An Earth鄄system perspective of the global nitrogen cycle. Nature, 2008, 451(7176): 293鄄296.
[20] 摇 Lechene C, Hillion F, McMahon G, Benson D, Kleinfeld A M, Kampf J P, Distel D, Luyten Y, Bonventre J, Hentschel D, Park K M, Ito S,
Schwartz M, Benichou G, Slodzian G. High鄄resolution quantitative imaging of mammalian and bacterial cells using stable isotope mass
spectrometry. Journal of Biology, 2006, 5(6): 20鄄20.
[21] 摇 Lechene C P, Luyten Y, McMahon G, Distel D L. Quantitative imaging of nitrogen fixation by individual bacteria within animal cells. Science,
2007, 317(5844): 1563鄄1566.
[22] 摇 Musat N, Foster R, Vagner T, Adam B, Kuypers M M M. Detecting metabolic activities in single cells, with emphasis on nanoSIMS. FEMS
Microbiology Reviews, 2011, 36(2): 486鄄511.
[23] 摇 Popa R, Weber P K, Pett鄄Ridge J, Finzi J A, Fallon S J, Hutcheon I D, Nealson K H, Capone D G. Carbon and nitrogen fixation and metabolite
exchange in and between individual cells of Anabaena oscillarioides. The ISME Journal, 2007, 1(4): 354鄄360.
[24] 摇 Finzi鄄Hart J A, Pett鄄Ridge J, Weber P K, Popa R, Fallon S J, Gunderson T, Hutcheon I D, Nealson K H, Capone D G. Fixation and fate of C
and N in the cyanobacterium Trichodesmium using nanometer鄄scale secondary ion mass spectrometry. Proceedings of the National Academy of
Sciences of the United States of America, 2009, 106(15): 6345鄄6350.
[25] 摇 Ploug H, Musat N, Adam B, Moraru C L, Lavik G, Vagner T, Bergman B, Kuypers M M M. Carbon and nitrogen fluxes associated with the
cyanobacterium Aphanizomenon sp. in the Baltic Sea. The ISME Journal, 2010, 4(9): 1215鄄1223.
[26] 摇 Ploug H, Adam B, Musat N, Kalvelage T, Lavik G, Wolf鄄Gladrow D, Kuypers M M M. Carbon, nitrogen and O2 fluxes associated with the
cyanobacterium Nodularia spumigena in the Baltic Sea. The ISME Journal, 2011, 5(9): 1549鄄1558.
[27] 摇 Foster R A, Kuypers M M M, Vagner T, Paerl R W, Musat N, Zehr J P. Nitrogen fixation and transfer in open ocean diatom鄄cyanobacterial
symbioses. The ISME Journal, 2011, 5(9): 1484鄄1493.
[28] 摇 Halm H, Musat N, Lam P, Langlois R, Musat F, Peduzzi S, Lavik G, Schubert C J, Sinha B, LaRoche J, Kuypers M M M. Co鄄occurrence of
denitrification and nitrogen fixation in a meromictic lake, Lake Cadagno (Switzerland) . Environmental Microbiology, 2009, 11(8): 1945鄄1958.
[29] 摇 Dekas A E, Poretsky R S, Orphan V J. Deep鄄sea archaea fix and share nitrogen in methane鄄consuming microbial consortia. Science, 2009, 326
(5951): 422鄄426.
[30] 摇 Dekas A E, Orphan V J. Chapter twelve 鄄 Identification of diazotrophic microorganisms in marine sediment via fluorescence in situ hybridization
coupled to nanoscale secondary ion mass spectrometry (FISH鄄NanoSIMS) / / Martin G K, ed. Methods in Enzymology. San Diego: Academic
Press, 2011: 281鄄305.
[31] 摇 K觟nneke M, Bernhard A E, de la Torre J R, Walker C B, Waterbury J B, Stahl D A. Isolation of an autotrophic ammonia鄄oxidizing marine
653 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 33 卷摇
http: / / www. ecologica. cn
archaeon. Nature, 2005, 437(7058): 543鄄546.
[32] 摇 Tourna M, Stieglmeier M, Spang A, K觟nneke M, Schintlmeister A, Urich T, Engel M, Schloter M, Wagner M, Richter A, Schleper C.
Nitrososphaera viennensis, an ammonia oxidizing archaeon from soil. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of
America, 2011, 108(20): 8420鄄8425.
[33] 摇 Amann R, Fuchs B M. Single鄄cell identification in microbial communities by improved fluorescence in situ hybridization techniques. Nature
Reviews Microbiology, 2008, 6(5): 339鄄348.
[34] 摇 Li T L, Wu T D, Maz佴as L, Toffin L, Guerquin鄄Kern J L, Leblon G, Bouchez T. Simultaneous analysis of microbial identity and function using
NanoSIMS. Environmental Microbiology, 2008, 10(3): 580鄄588.
[35] 摇 Behrens S, L觟sekann T, Pett鄄Ridge J, Weber P K, Ng W O, Stevenson B S, Hutcheon I D, Relman D A, Spormann A M. Linking microbial
phylogeny to metabolic activity at the single鄄cell level by using enhanced element labeling鄄catalyzed reporter deposition fluorescence in situ
hybridization (EL鄄FISH) and NanoSIMS. Applied and Environmental Microbiology, 2008, 74(10): 3143鄄3150.
[36] 摇 Liu X Z, Zhang L M, Prosser J I, He J Z. Abundance and community structure of sulfate reducing prokaryotes in a paddy soil of southern China
under different fertilization regimes. Soil Biology and Biochemistry, 2009, 41(4): 687鄄694.
[37] 摇 Fike D A, Gammon C L, Ziebis W, Orphan V J. Micron鄄scale mapping of sulfur cycling across the oxycline of a cyanobacterial mat: a paired
nanoSIMS and CARD鄄FISH approach. The ISME Journal, 2008, 2(7): 749鄄759.
[38] 摇 Nunan N, Ritz K, Rivers M, Feeney D S, Young I M. Investigating microbial micro鄄habitat structure using X鄄ray computed tomography.
Geoderma, 2006, 133(3 / 4): 398鄄407.
[39] 摇 O忆Donnell A G, Young I M, Rushton S P, Shirley M D, Crawford J W. Visualization, modelling and prediction in soil microbiology. Nature
Reviews Microbiology, 2007, 5(9): 689鄄699.
[40] 摇 Herrmann A M, Clode P L, Fletcher I R, Nunan N, Stockdale E A, O忆Donnel A G, Murphy D V. A novel method for the study of the biophysical
interface in soils using nano鄄scale secondary ion mass spectrometry. Rapid Communications in Mass Spectrometry, 2007, 21(1): 29鄄34.
[41] 摇 Clode P L, Kilburn M R, Jones D L, Stockdale E A, Cliff J B III, Herrmann A M, Murphy D V. In situ mapping of nutrient uptake in the
rhizosphere using nanoscale secondary ion mass spectrometry. Plant Physiology, 2009, 151(4): 1751鄄1757.
[42] 摇 Byrne M E, Ball D A, Guerquin鄄Kern J L, Rouiller I, Wu T D, Downing K H, Vali H, Komeili A. Desulfovibrio magneticus RS鄄1 contains an
iron鄄 and phosphorus鄄rich organelle distinct from its bullet鄄shaped magnetosomes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United
States of America, 2010, 107(27): 12263鄄12268.
[43] 摇 Orphan V J, House C H. Geobiological investigations using secondary ion mass spectrometry: microanalysis of extant and paleo鄄microbial
processes. Geobiology, 2009, 7(3): 360鄄372.
[44] 摇 Nunan N, Ritz K, Crabb D, Harris K, Wu K J, Crawford J W, Young I M. Quantification of the in situ distribution of soil bacteria by large鄄scale
imaging of thin sections of undisturbed soil. FEMS Microbiology Ecology, 2001, 37(1): 67鄄77.
[45] 摇 Peteranderl R, Lechene C. Measure of carbon and nitrogen stable isotope ratios in cultured cells. Journal of the American Society for Mass
Spectrometry, 2004, 15(4): 478鄄485.
[46] 摇 Berod A, Hartman B K, Pujol J F. Importance of fixation in immunohistochemistry: use of formaldehyde solutions at variable pH for the localization
of tyrosine鄄hydroxylase. Journal of Histochemistry and Cytochemistry, 1981, 29(7): 844鄄850.
753摇 2 期 摇 摇 摇 胡行伟摇 等:纳米二次离子质谱技术(NanoSIMS)在微生物生态学研究中的应用 摇
ACTA ECOLOGICA SINICA Vol. 33,No. 2 January,2013(Semimonthly)
CONTENTS
Frontiers and Comprehensive Review
Spatio鄄temporal heterogeneity of water and plant adaptation mechanisms in karst regions: a review
CHEN Hongsong, NIE Yunpeng, WANG Kelin (317)
……………………………………
………………………………………………………………………………
Impacts of mangrove vegetation on macro鄄benthic faunal communities CHEN Guangcheng, YU Dan, YE Yong, et al (327)…………
Advance in research on the occurrence and transformation of arsenic in the freshwater lake ecosystem
ZHANG Nan, WEI Chaoyang, YANG Linsheng (337)
…………………………………
……………………………………………………………………………
Application of nano鄄scale secondary ion mass spectrometry to microbial ecology study
HU Hangwei, ZHANG Limei, HE Jizheng (348)
…………………………………………………
……………………………………………………………………………………
Carbon cycle of urban system: characteristics, mechanism and theoretical framework ZHAO Rongqin, HUANG Xianjin (358)………
Research and compilation of urban greenhouse gas emission inventory LI Qing, TANG Lina, SHI Longyu (367)……………………
Autecology & Fundamentals
Seed dispersal and seedling recruitment of Ulmus pumila woodland in the Keerqin Sandy Land, China
YANG Yunfei, BAI Yunpeng, LI Jiandong (374)
………………………………
…………………………………………………………………………………
Influence of environmental factors on seed germination of Bombax malabaricum DC.
ZHENG Yanling, MA Huancheng, Scheller Robert, et al (382)
……………………………………………………
……………………………………………………………………
Carbon, nitrogen and phosphorus stoichiometric characteristics during the decomposition of Spartina alterniflora and Cyperus
malaccensis var. brevifolius litters OUYANG Linmei, WANG Chun, WANG Weiqi, et al (389)…………………………………
Home range of Teratoscincus roborowskii (Gekkonidae): influence of sex, season, and body size
LI Wenrong, SONG Yucheng, SHI Lei (395)
……………………………………
………………………………………………………………………………………
Effects of the covering behavior on food consumption, growth and gonad traits of the sea urchin Glyptocidaris crenularis
LUO Shibin, CHANG Yaqing, ZHAO Chong, et al (402)
……………
…………………………………………………………………………
Biological response of the rice leaffolder Cnaphalocrocis medinalis (G俟en佴e) reared on rice and maize seedling to temperature
LIAO Huaijian, HUANG Jianrong, FANG Yuansong, et al (409)
………
…………………………………………………………………
Population, Community and Ecosystem
Composition and stability of organic carbon in the top soil under different forest types in subtropical China
SHANG Suyun, JIANG Peikun,SONG Zhaoliang,et al (416)
……………………………
………………………………………………………………………
The community characteristics of different types of grassland under grazing prohibition condition
ZHANG Pengli, CHEN Jun, CUI Shujuan, et al (425)
………………………………………
……………………………………………………………………………
Spatial pattern and competition relationship of Stellera chamaejasme and Aneurolepidium dasystachys population in degraded alpine
grassland REN Heng, ZHAO Chengzhang (435)……………………………………………………………………………………
SOC decomposition of four typical broad鄄leaved Korean pine communities in Xiaoxing忆 an Mountain
SONG Yuan, ZHAO Xizhu, MAO Zijun, et al (443)
…………………………………
………………………………………………………………………………
The influence of vegetation restoration on soil archaeal communities in Fuyun earthquake fault zone of Xinjiang
LIN Qing, ZENG Jun,ZHANG Tao,et al (454)
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Effects of fertilization regimes on soil faunal communities in cropland of purple soil, China
ZHU Xinyu, DONG Zhixin, KUANG Fuhong, et al (464)
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Woody plant leaf litter consumption by the woodlouse Porcellio scaber with a choice test LIU Yan,LIAO Yuncheng (475)……………
The bacterial community of coastal sediments influenced by cage culture in Xiangshan Bay, Zhejiang, China
QIU Qiongfen, ZHANG Demin, YE Xiansen, et al (483)
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A study of meiofauna in the COMRA忆s contracted area during the summer of 2005
WANG Xiaogu, ZHOU Yadong, ZHANG Dongsheng, et al (492)
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Hydrologic regime of interception for typical forest ecosystem at subalpine of Western Sichuan, China
SUN Xiangyang, WANG Genxu, WU Yong, et al (501)
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Landscape, Regional and Global Ecology
Sensitivity and vulnerability of China忆s rice production to observed climate change
XIONG Wei, YANG Jie, WU Wenbin,et al (509)
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Characteristics of temperature and precipitation in Northeastern China from 1961 to 2005
HE Wei, BU Rencang, XIONG Zaiping,et al (519)
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Combined effects of elevated O3 and reduced solar irradiance on growth and yield of field鄄grown winter wheat
ZHENG Youfei, HU Huifang, WU Rongjun, et al (532)
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Resource and Industrial Ecology
The study of vegetation biomass inversion based on the HJ satellite data in Yellow River wetland
GAO Mingliang, ZHAO Wenji, GONG Zhaoning,et al (542)
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Temporal and spatial variability of soil available nutrients in arable Lands of Heyang County in South Loess Plateau
CHEN Tao, CHANG Qingrui, LIU Jing, et al (554)
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Decomposition characteristics of wheat straw and effects on soil biological properties and nutrient status under different rice culti鄄
vation WU Ji, GUO Xisheng, LU Jianwei,et al (565)……………………………………………………………………………
Effects of nitrogen application stages on photosynthetic characteristics of summer maize in high yield conditions
L譈 Peng, ZHANG Jiwang, LIU Wei, et al (576)
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Urban, Rural and Social Ecology
The degradation threshold of water quality associated with urban landscape component
LIU Zhenhuan, LI Zhengguo, YANG Peng, et al (586)
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Ecological sustainability in Chang鄄Zhu鄄Tan region:a prediction study DAI Yanan,HE Xinguang (595)………………………………
The effect of exogenous nitric oxide on activities of antioxidant enzymes and microelements accumulation of two rice genotypes
seedlings under cadmium stress ZHU Hanyi, CHEN Yijun, LAO Jiali, et al (603)………………………………………………
Forms composition of inorganic carbon in sediments from Dali Lake SUN Yuanyuan, HE Jiang, L譈 Changwei,et al (610)…………
Fractionation character and bioavailability of Cd, Pb, Zn and Ni combined pollution in oasis soil
WU Wenfei,NAN Zhongren,WANG Shengli,et al (619)
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Effects of CA and EDTA on growth of Chlorophytum comosum in copper鄄contaminated soil
WANG Nannan, HU Shan, WU Dan, et al (631)
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Research Notes
Values of marine ecosystem services in Haizhou Bay ZHANG Xiuying, ZHONG Taiyang, HUANG Xianjin,et al (640)……………
Variations of Leymus chinesis community, functional groups, plant species and their relationships with climate factors
TAN Liping, ZHOU Guangsheng (650)
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The effect of N颐P supply ratio on P uptake and utilization efficiencies in Larix olgensis Henry. seedlings
WEI Hongxu, XU Chengyang, MA L俟yi,et al (659)
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866 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 33 卷摇
《生态学报》2013 年征订启事
《生态学报》是中国生态学学会主办的生态学专业性高级学术期刊,创刊于 1981 年。 主要报道生态学研
究原始创新性科研成果,特别欢迎能反映现代生态学发展方向的优秀综述性文章;研究简报;生态学新理论、
新方法、新技术介绍;新书评介和学术、科研动态及开放实验室介绍等。
《生态学报》为半月刊,大 16 开本,300 页,国内定价 90 元 /册,全年定价 2160 元。
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标准刊号:ISSN 1000鄄0933摇 摇 CN 11鄄2031 / Q
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生摇 态摇 学摇 报
(SHENGTAI摇 XUEBAO)
(半月刊摇 1981 年 3 月创刊)
第 33 卷摇 第 2 期摇 (2013 年 1 月)
ACTA ECOLOGICA SINICA

(Semimonthly,Started in 1981)

Vol郾 33摇 No郾 2 (January, 2013)
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