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摇 摇 摇 摇 摇 生 态 学 报
摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 (SHENGTAI XUEBAO)
摇 摇 第 31 卷 第 12 期摇 摇 2011 年 6 月摇 (半月刊)
目摇 摇 次
基于植被遥感的西南喀斯特退耕还林工程效果评价———以贵州省毕节地区为例
李摇 昊,蔡运龙,陈睿山,等 (3255)
………………………………
……………………………………………………………………………
扩散对破碎化景观上宿主鄄寄生种群动态的影响 苏摇 敏 (3265)…………………………………………………
湿地功能评价的尺度效应———以盐城滨海湿地为例 欧维新,叶丽芳,孙小祥,等 (3270)……………………
模拟氮沉降对杉木幼苗养分平衡的影响 樊后保,廖迎春,刘文飞,等 (3277)……………………………………
中国东部森林样带典型森林水源涵养功能 贺淑霞,李叙勇,莫摇 菲,等 (3285)…………………………………
山西太岳山油松群落对采伐干扰的生态响应 郭东罡,上官铁梁,白中科,等 (3296)……………………………
长期施用有机无机肥对潮土微生物群落的影响 张焕军,郁红艳,丁维新 (3308)………………………………
云南元江干热河谷五种优势植物的内生真菌多样性 何彩梅,魏大巧,李海燕,等 (3315)………………………
塔里木河中游洪水漫溢区荒漠河岸林实生苗更新 赵振勇,张摇 科,卢摇 磊,等 (3322)…………………………
基于 8hm样地的天山云杉林蒸腾耗水从单株到林分的转换 张毓涛,梁凤超,常顺利,等 (3330)……………
古尔班通古特沙漠土壤酶活性和微生物量氮对模拟氮沉降的响应 周晓兵,张元明,陶摇 冶,等 (3340)………
Pb污染对马蔺生长、体内重金属元素积累以及叶绿体超微结构的影响 原海燕,郭摇 智,黄苏珍 (3350)……
春、秋季节树干温度和液流速度对东北 3 树种树干表面 CO2释放通量的影响
王秀伟,毛子军,孙摇 涛,等 (3358)
…………………………………
……………………………………………………………………………
云南南部和中部地区公路旁紫茎泽兰土壤种子库分布格局 唐樱殷,沈有信 (3368)……………………………
利用半球图像法提取植被冠层结构特征参数 彭焕华,赵传燕,冯兆东,等 (3376)………………………………
黑河上游蝗虫与植被关系的 CCA分析 赵成章,周摇 伟,王科明,等 (3384)……………………………………
额尔古纳河流域秋季浮游植物群落结构特征 庞摇 科,姚锦仙,王摇 昊,等 (3391)………………………………
九龙江河口浮游植物的时空变动及主要影响因素 王摇 雨,林摇 茂,陈兴群,等 (3399)…………………………
东苕溪中下游河岸类型对鱼类多样性的影响 黄亮亮,李建华,邹丽敏,等 (3415)………………………………
基于 RS / GIS公路路域水土流失动态变化的研究———以榆靖高速公路为例
陈爱侠,李摇 敏,苏智先,等 (3424)
……………………………………
……………………………………………………………………………
流域景观结构的城市化影响与生态风险评价 胡和兵,刘红玉,郝敬锋,等 (3432)………………………………
基于景观格局的锦州湾沿海经济开发区生态风险分析 高摇 宾,李小玉,李志刚,等 (3441)……………………
若尔盖高原土地利用变化对生态系统服务价值的影响 李晋昌,王文丽,胡光印,等 (3451)……………………
施用鸡粪对土壤与小白菜中 Cu和 Zn累积的影响 张摇 妍,罗摇 维,崔骁勇,等 (3460)………………………
基于 GIS的宁夏灌区农田污染源结构特征解析 曹艳春,冯永忠,杨引禄,等 (3468)……………………………
底墒和种植方式对夏大豆光合特性及产量的影响 刘摇 岩,周勋波,陈雨海,等 (3478)…………………………
不同施肥模式调控沿湖农田无机氮流失的原位研究———以南四湖过水区粮田为例
谭德水,江丽华,张摇 骞,等 (3488)
……………………………
……………………………………………………………………………
丛枝菌根真菌对低温下黄瓜幼苗光合生理和抗氧化酶活性的影响 刘爱荣,陈双臣,刘燕英,等 (3497)………
外源半胱氨酸对铜胁迫下小麦幼苗生长、铜积累量及抗氧化系统的影响 彭向永,宋摇 敏 (3504)……………
专论与综述
水平扫描技术及其在生态学中的应用前景 胡自民,李晶晶,李摇 伟,等 (3512)…………………………………
研究简报
昆仑山北坡 4 种优势灌木的气体交换特征 朱军涛,李向义,张希明,等 (3522)…………………………………
不同比例尺 DEM数据对森林生态类型划分精度的影响 唐立娜,黄聚聪,代力民 (3531)………………………
苏南丘陵区毛竹林冠截留降雨分布格局 贾永正,胡海波,张家洋 (3537)………………………………………
外来种湿地松凋落物对土壤微生物群落结构和功能的影响 陈法霖,郑摇 华,阳柏苏,等 (3543)………………
深圳地铁碳排放量 谢鸿宇,王习祥,杨木壮,等 (3551)……………………………………………………………
期刊基本参数:CN 11鄄2031 / Q*1981*m*16*304*zh*P* ￥ 70郾 00*1510*35*
室室室室室室室室室室室室室室
2011鄄06
封面图说: 自然奇观红海滩·辽宁省盘锦市———在辽河入海口生长着大片的潮间带植物碱蓬草,举目望去,如霞似火,蔚为壮
观,人们习惯地称之为红海滩。 粗壮的根系加快着海滩土壤的脱盐过程,掉下的茎叶腐质后肥化了土壤,它是大海
的生态屏障。
彩图提供: 段文科先生摇 中国鸟网 http: / / www. birdnet. cn摇 E鄄mail:dwk9911@ 126. com
生 态 学 报 2011,31(12):3340—3349
Acta Ecologica Sinica
http: / / www. ecologica. cn
基金项目:中国科学院知识创新工程重要方向项目(KZCX2鄄YW鄄336); 国家重点基础研究发展计划(2009CB825104);国家自然科学基金资助项
目(41001181)
收稿日期:2010鄄05鄄25; 摇 摇 修订日期:2010鄄08鄄16
*通讯作者 Corresponding author. E鄄mail: zhangym@ ms. xjb. ac. cn
古尔班通古特沙漠土壤酶活性和微生物量氮
对模拟氮沉降的响应
周晓兵1,2, 张元明1,*, 陶摇 冶1,2, 张丙昌1
(1. 中国科学院干旱区生物地理与生物资源重点实验室,中国科学院新疆生态与地理研究所,新疆乌鲁木齐摇 830011;
2. 中国科学院研究生院,北京摇 100049)
摘要:以新疆古尔班通古特沙漠为研究区,原位设定 0 (N0)、0. 5 (N0. 5)、1. 0 (N1)、3. 0 (N3)、6. 0 (N6)和 24. 0 (N24) g N
m-2 a-16 个模拟施氮浓度,研究氮沉降对土壤酶活性和微生物量 N的影响。 结果表明:不同浓度的氮增加未改变土壤酶活性和
微生物量 N原有的垂直分布格局,0—5 cm土层土壤多酚氧化酶和过氧化物酶活性分别比 5—10 cm土层低 14. 3%—27. 3%和
1. 4%—14. 2% ,而该土层的蔗糖酶、脲酶、碱性磷酸酶活性和微生物量 N则分别比 5—10 cm土层高 18. 0%—98. 1% 、45郾 3%—
119. 0% 、76. 1%—138. 1%和 77. 5%—162. 3% 。 氮增加后,0—5 cm土层的土壤酶活性和微生物量 N比 5—10 cm土层受影响
更大。 低氮和中氮(N0. 5—N3)增加对 0—5 cm土层氧化酶活性影响较小,各处理间差异不显著;高氮(N6,N24)对该层氧化酶
活性有明显抑制作用。 与对照相比,N24 处理下土壤多酚氧化物活性和过氧化物酶活性分别降低了 22. 4%和 12郾 1% ;5—10 cm
土层氧化酶活性对氮增加响应不敏感,各施氮量之间差异不显著;两层土壤的蔗糖酶和碱性磷酸酶活性随氮的增加具有先增加
再减少的趋势,而两层土壤的脲酶活性和土壤微生物量 N随着施氮量增加分别降低和增加;随着土壤酶活性变化,土壤有效氮
和微生物量 N增加,有效磷先增加后减少。 这些响应表明,氮增加可以改变该荒漠土壤系统的土壤酶活性和微生物量并影响
土壤相关营养元素循环。
关键词:氮沉降; 土壤酶; 微生物量 N;古尔班通古特沙漠
Responses of soil enzyme activities and microbial biomass N to simulated N
deposition in Gurbantunggut Desert
ZHOU Xiaobing1,2, ZHANG Yuanming1,*, TAO Ye1,2, ZHANG Bingchang1
1 Key Laboratory of Biogeography and Bioresource in Arid Land, Xinjiang Institute of Ecology and Geography, Chinese Academy of Sciences, Urumqi
830011, China
2 Graduate University of Chinese Academy of Sciences, Beijing 100049, China
Abstract: Nitrogen (N) deposition influences microbial decomposition and nutrient transformation rates by affecting the
activities of microbial properties, such as soil enzymes, microbial biomass and structure of the microbial community. In
desert ecosystems, where water and N are two major limiting factors for biological activity, minimal nutrient dynamics are
linked to comparatively large changes. In this paper, an in situ experiment was conducted in Gurbantunggut desert to
explore the effects of N deposition on soil enzyme activities and microbial biomass N. Sixty 8 m 伊 8 m plots were established
in the inter鄄dune area, with each plot having similar vegetation and a biological soil crust cover. Six N fertilizer treatments
(N0, N0. 5, N1, N3, N6 and N24 denoting 0, 0. 5, 1. 0, 3. 0, 6. 0 and 24. 0 g N m-2 a-1, respectively) were conducted,
with ten replicates for each treatment. Nitrogen was applied at the ratio of 2 颐1 for NH+4 鄄N 颐NO
-
3 鄄N ( informed in NH4NO3
and NH4Cl), consisting with ratio of the main N components in deposition in Urumqi. Soil samples were collected in May
2009 from 24 of the 60 plots with 4 replicates for each treatment (6 N treatments 伊 4 replicates) . Soil samples were taken
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from two layers (0 5 cm and 5 10 cm) and transported to laboratory quickly. The results showed that original vertical
distribution patterns of nutrient, soil enzyme and microbial biomass were not changed by N addition. Soil organic C, total
N, total P, available P and available N pools were greater in the 0 5 cm soil layer than in the 5 10 cm layer, regardless
of N addition rates. The polyphenol oxidase and peroxidase activities in 0 5 cm soil layer were 14. 3% 27. 3% and
1郾 4% 14. 2% lower than those in 5 10 cm soil layer, respectively. However, the activities of invertase, urease,
alkaline phosphatase (AlP) and microbial biomass N in the 0 5 cm soil layer were 18. 0% 98. 1% , 45. 3%
119郾 0% , 76郾 1% 138. 1% and 77. 5% 162. 4% higher compared with the 5 10 cm layer, respectively. The soil
enzyme activities and microbial biomass N were more sensitive to N addition in the 0 5 cm layer than in the 5 10 cm
layer. Although low and moderate N levels (N0. 5, N1 and N3) have marginal effects on oxidative enzyme activities in the
0 5 cm layer, high N levels (N6 and N24) reduced the activities of oxidative enzyme. With respect to control (N0), the
activities of polyphenol oxidase and peroxidase were 22. 4% and 12. 1% lower under N24. In contrast, the oxidative
enzyme activities in the 5 10 cm layer were not sensitive to N addition. With the increase in N addition, both the
invertase and AlP activities in the two layers increased at low N addition levels, then they decreased at high N levels.
Compared with control, N1 and N3 increased invertase activities in the 0 5 cm layer by 49. 6% and 72. 3% ,
respectively; and by 8. 6% and 11. 4% in the 5 10 cm layer, respectively. AlP activities in the 0 5 cm layer tended to
increase at the low N levels ( i. e. , N0. 5, N1 and N3). Highest increasing rate of 48. 6% was found in N3 treatment in
comparison to control. Nitrogen additions resulted in increased microbial biomass N, but decreased urease activities. With
the changes in soil enzyme activities, cycling of C, N and P altered accordingly. The varying soil organic C under different
N treatments may be partially due to the change of oxidative activities. The addition of N lead to the increase of microbial
biomass N and available N. Available P increased significantly at low N addition rates while it decreased at high N addition
rates in both the soil layers. Our results suggest that N addition or deposition can affect the nutrient flow by changing the
soil enzyme activities and microbial biomass in Gurbantunggut desert ecosystem.
Key Words: N deposition; soil enzyme; microbial biomass N; Gurbantunggut desert
近年来,随着活性氮排放的增加,大气氮沉降带来的生态效应已成为全球变化研究的热点。 氮沉降增加
能够影响植物生长、改变生态系统生产力、影响群落组成和多样性[1鄄4]。 土壤系统作为植物、土壤动物和微生
物等生命活动的承载者,在生态系统响应氮沉降的过程中发挥至关重要的作用。 氮沉降能够增加土壤可利用
氮素含量,并改变土壤矿化和土壤呼吸等一系列土壤生态过程[5鄄7]。
土壤酶在土壤生态过程中发挥重要作用,是土壤中最活跃的部分,并参与碳(C)、氮(N)、磷(P)等元素的
循环。 检测土壤中酶活性,能够了解复杂有机质分解强度与简单物质再合成强度,因此,土壤酶活性可以用来
评价环境变化下的营养动态。 外源氮素的变化可能影响凋落物分解酶的活性,进而影响凋落物分解[8]。 因
此,氮沉降可以改变土壤氮素含量而改变碳的储存[9]。 土壤氧化酶能够调节木质素的分解,而氮增加能够影
响土壤多酚氧化酶和过氧化物酶等氧化酶的活性。 另外,与营养元素循环密切相关的一些水解酶,如蔗糖酶、
脲酶和磷酸酶等能够响应氮沉降增加,因此,与这些酶相关的 C、N和 P 等营养元素的循环也发生改变[10鄄12]。
然而,不同生态系统的土壤氧化酶和水解酶对氮增加具有不同甚至相反的响应[9,11,13鄄14]。 土壤微生物量在营
养元素循环中也非常重要,是重要的营养库和源。 微生物量(包括微生量 C、N、P等)的改变可能影响植物所
需的 C、N和 P等营养元素的循环[12]。 与土壤酶活性一样,土壤微生量也同样受到氮增加的影响。 有研究表
明氮增加后,不同生态系统的土壤微生物量具有增加[15]、减少[16],或不变[17]3 种不同的响应。
综上所述,尽管土壤酶和土壤微生物量在营养元素循环中具有重要的作用,但是各生态系统由于立地条
件和对氮敏感性的差异,氮沉降生态效应不同。 因此,结合土壤环境条件,继续深入开展相关研究显得极为必
要。 尤其是荒漠生态系统,土壤自然含氮量低,少量的氮素增加能够带来更大的生态效应[18],然而,有关氮增
1433摇 12 期 摇 摇 摇 周晓兵摇 等:古尔班通古特沙漠土壤酶活性和微生物量氮对模拟氮沉降的响应 摇
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加对荒漠生态系统土壤酶活性和土壤微生物量影响的相关研究还较少。 本文以古尔班通古特沙漠为研究区,
研究了模拟氮增加对土壤酶和微生物量 N 的影响,旨在为深入了解该荒漠生态系统对氮增加的响应提供
参考。
1摇 研究方法
1. 1摇 研究区域自然概况
研究区域位于准噶尔盆地中的古尔班通古特沙漠,该沙漠是我国最大的固定和半固定沙漠。 年积温
3000—3500 益,年降水量 70—150 mm,年蒸发量 2000 mm 以上,冬季有约 20 cm 的积雪,为典型的内陆干旱
气候。 4 月到 7 月的降水量能占到全年降水的 47. 6% 。 春季丰富的降水和积雪融化使土壤含水量高,植物和
微生物生命活动旺盛。 小半乔木梭梭(Haloxylon ammolondren)和白梭梭(H. persicum)为沙漠建群种。 研究
区域还分布有蛇麻黄 (Ephedra distachya)、沙蒿(Artemisia arenaria)、对节刺(Horanowia ulicina)、尖喙牻牛儿
苗(Erodium oxyrrhynchum)、囊果苔草(Carex physodes)和角果黎(Ceratocarpus arenarius)等灌木和草本植物。
此外,研究区域还广泛分布着生物结皮。
1. 2摇 试验设计与取样方法
2008 年 10 月,在沙漠腹地(44. 87毅 N, 87. 82毅 E),选择植被和生物结皮发育比较一致的区域,设定 60 个
样方(8 m 伊 8 m),分成 6 个不同浓度的施氮处理:0 (N0)、0. 5 (N0. 5)、1. 0 (N1)、 3. 0 (N3)、6. 0 (N6)和
24郾 0 (N24) g N m-2 a-1,每个处理 10 个样方。 其中 0 为对照,0、0. 5 为沙漠边缘的氮沉降水平,3. 0 为美国莫
哈韦沙漠的氮沉降水平,6. 0 和 24. 0 为 2 个倍增氮浓度。 施氮之前测定样方土壤理化性质,各样方差异不显
著。 施氮每年 2 次,时间分别为每年的 3 月下旬(积雪融化)和 10 月下旬(降雪前),施氮时将 NH4NO3和
NH4Cl按 NH+4 颐NO-3 为 2 颐1 溶于水中,均匀喷洒于样地表面,对照样地喷洒同样的水分,每次由喷水带来的降水
很少,可忽略不计。
2009 年 5 月进行土壤取样,每个施氮处理随机选择 4 个样方进行。 土壤取样时将上层土壤结皮去除,分
0—5 cm和 5—10 cm两层取样。 为减少异质性,每个样方沿对角线方向取 3 个样均匀混合。 去除根系等杂
物后,将土样装入盛有冰袋的取样箱带回实验室,一部分鲜土样进行土壤微生物分析,另一部分风干进行土壤
酶活性和土壤理化性质测定。
1. 3摇 土壤理化性质测定
用风干土测定土壤 pH、电导率、有机碳、全 N、全 P、全 K、有效 N、有效 P 和速效 K。 pH 和电导率分别用
PHS鄄3C 酸度计和 DDS鄄307A电导计(Precision and Scientific Corp.上海)测定,土壤有机碳用重铬酸钾容量法鄄
外加热法;土壤全 N 用高氯酸鄄硫酸消化法;有效 N 用碱解蒸馏法;全 P 用酸溶鄄钼锑抗比色法;有效 P 用 0.
5mol / LNaHCO3浸提鄄钼锑抗比色法;全 K用酸溶鄄火焰光度法;速效 K用 NH4OAc浸提鄄火焰光度法[19]。
1. 4摇 土壤酶活性测定
土壤多酚氧化酶与过氧化物酶活性采用邻苯三酚比色法,以 30 益下培养 2 h,每克土样每小时生成的紫
色没食子素量表示酶活性。 蔗糖酶用 3,5鄄二硝基水杨酸比色法,以 37 益下培养 24 h每克土样每小时生成的
葡萄糖数表示蔗糖酶活性。 脲酶用苯酚鄄次氯酸钠比色法测定,37 益下培养 24 h,用每克土样每小时生成的
NH3 鄄N的数量表示脲酶活性[20]。 碱性磷酸酶用磷酸苯二钠比色法测定,37 益下培养 3 h,用每克土样每小时
生成的苯酚数量表示磷酸酶活性[21]。
1. 5摇 微生物量 N测定
用熏蒸鄄280 nm紫外比色法:将新鲜的土壤样品含水量调节至田间含水量的 30%—50% ,25 益下密封预
培养 7—10 d,以保持土壤均匀和所得结果的可比性。 采用氯仿熏蒸鄄K2 SO4提取法,将欲熏蒸土样置于内径
29 cm可抽气的干燥器内隔板上,干燥器底部放置装有 30 mL无乙醇氯仿的 100 mL烧杯,并另外放置 1 个装
有蒸馏水的小烧杯,使熏蒸时土壤含水量不变。 随之抽气,直到氯仿出现气泡沸腾后持续 5 min,停止抽气,紧
接着密闭干燥器,并将其置于室温(14—16益)与黑暗处 24 h 后取出土样,在通气良好的地方放置 2—3 h,使
2433 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 31 卷摇
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残留土壤中的氯仿尽可能挥发。 不熏蒸的土样置于另一干燥器中,用蒸馏水代替氯仿,与用氯仿熏蒸一样处
理,作为不熏蒸对照[21]。 取熏蒸和未熏蒸的土样,转入 100 mL三角瓶中,按土水比 1 颐4 加 0. 5 mol / L的K2SO4
溶液,振荡 30 min后过滤,立即在 280 nm紫外光下测定吸光度,熏蒸和未熏蒸作相同处理。 用单位土中的吸
光度增量表示,即:啄 / g烘干土 = (abs熏 / G熏)-(abs未 / G未),其中: abs代表 280 nm紫外光下的吸光度,G代表
与所称土重相当的烘干土重。 用 Nunan等方法计算微生物量 N[22]。
1. 6摇 数据统计
各处理间土壤理化特征、土壤酶活性和土壤微生物量 N用单因素方差分析(one way ANOVA),用最小显
著差异法(LSD)对结果进行多重比较。 上下两层土壤酶活性和微生物量 N 用 t 检验分析。 所有的统计采用
SPSS 13. 0 (SPSS Inc. , Illinois, U. S. A. )完成,利用 Origin 8. 0 (OriginLab Corp. , USA)作图。
2摇 结果与分析
2. 1摇 氮沉降增加对土壤理化特征的影响
从表 1 可以看出,0—5 cm土层土壤有机碳、全 N、全 P、有效 N和有效 P高于 5—10 cm,两层土壤全 K和
速效 K差异不大。 对于 0—5 cm土层:随着施氮量增加,土壤 pH具有波动变化,但总体降低趋势。 增 N促进
表 1摇 不同氮处理下土壤理化性质及营养特征
Table 1摇 Changes in soil physicochemical and nutrient characteristics under different N addition rates, mean依SD with ANOVA results (n=4)
土层
Soil layer
处理
Treatments pH
电导率 / (滋s / cm)
Conductance
有机碳 / (g / kg)
Organic C
全 N / (mg / kg)
Total N
全 P / (mg / kg)
Total P
0—5cm N0 7. 74依0. 24a 96. 40依1. 56b 0. 99依0. 05bc 106. 00依7. 81a 377. 00依34. 60a
N0. 5 7. 67依0. 05a 98. 93依8. 04b 1. 08依0. 01ab 106. 33依10. 97a 369. 33依17. 10a
N1 7. 52依0. 03b 99. 43依4. 32b 1. 09依0. 1ab 101. 33依1. 15a 346. 33依19. 86a
N3 7. 42依0. 11b 110. 63依0. 86b 1. 13依0. 04a 105. 67依8. 33a 357. 33依30. 24a
N6 7. 48依0. 02b 123. 43依3. 04b 0. 98依0. 00bc 111. 00依7. 55a 354. 67依5. 86a
N24 7. 45依0. 05b 197. 33依53. 59a 0. 96依0. 11c 115. 33依14. 01a 371. 67依3. 79a
5—10cm N0 7. 66依0. 14a 95. 33依1. 18b 0. 70依0. 01ab 82. 67依1. 15ab 337. 33依16. 07a
N0. 5 7. 66依0. 06a 96. 00依7. 21b 0. 64依0. 02bc 83. 33依1. 53a 334. 33依22. 03a
N1 7. 52依0. 12a 98. 33依8. 33b 0. 73依0. 05a 79. 00依9. 54ab 331. 33依9. 61a
N3 7. 56依0. 05a 103. 67依6. 11b 0. 62依0. 05c 82. 33依0. 58ab 331. 00依3. 61a
N6 7. 65依0. 04a 109. 33依3. 51b 0. 64依0. 03bc 85. 67依0. 58a 345. 33依26. 69a
N24 7. 55依0. 06a 154. 00依14. 73a 0. 61依0. 03c 72. 33依11. 02b 343. 67依1. 53a
土层
Soil layer
处理
Treatments
全 K / (mg / kg)
Total K
有效 N / (mg / kg)
Available N
有效 P / (mg / kg)
Available P
速效 K / (mg / kg)
Available K 氮磷比 N 颐P
0—5cm N0 20. 48依0. 05 b 6. 54依0. 86c 6. 31依0. 27abc 147. 33依 3. 21 e 0. 62依0. 03a
N0. 5 20. 70依0. 04 ab 5. 10依0. 51c 6. 11依0. 25bc 163. 67依 5. 51 c 0. 64依0. 03a
N1 20. 57依0. 44 ab 6. 43依0. 74c 6. 76依0. 24ab 176. 33依 5. 77 a 0. 65依0. 03a
N3 20. 59依0. 29 ab 10. 84依1. 74bc 7. 00依0. 08a 168. 00依 0. 01bc 0. 66依0. 11a
N6 21. 20依0. 57 a 18. 59依2. 61b 6. 11依0. 54bc 174. 67依0. 58 ab 0. 69依0. 04a
N24 20. 71依0. 44 ab 75. 04依10. 97a 5. 99依0. 71c 154. 67依 3. 79 d 0. 69依0. 08a
5—10cm N0 21. 44依0. 36 a 3. 81依0. 86b 3. 17依0. 10c 150. 67依 6. 66 a 0. 54依0. 02a
N0. 5 21. 43依0. 58 ab 3. 41依0. 44b 3. 14依0. 24c 144. 00依 8. 89 a 0. 55依0. 05a
N1 21. 25依0. 21 ab 4. 83依0. 83b 4. 17依0. 19a 154. 33依 9. 07 a 0. 53依0. 07a
N3 20. 79依0. 02 ab 5. 01依0. 71b 3. 84依0. 15ab 153. 67依 2. 31 a 0. 55依0. 01a
N6 20. 89依0. 64 ab 10. 02依3. 82b 3. 82依0. 23ab 145. 33依 9. 02 a 0. 55依0. 04a
N24 20. 73依0. 20 b 38. 53依4. 01a 3. 50依0. 47bc 156. 33依 4. 93 a 0. 47依0. 07a
摇 摇 不同字母表示同一土层不同处理间差异显著
了电导率和土壤有效 N的增加,尤其是 N24 处理,增加更为显著(P<0. 05)。 土壤的全 N、全 P和 N 颐P各处理
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间差异不显著,而土壤有效 P含量呈先增加后减少的趋势,土壤全 K和速效 K未有规律性变化。 对于 5—10
cm土层,其土壤 pH值无明显变化,土壤电导率和有效 N含量随施氮量增加而增加。 土壤全 N无明显变化趋
势,各处理土壤全 P含量和 N 颐P差异不显著。 土壤有效 P也呈先增加后减少的趋势。
2. 2摇 氮沉降增加对土壤酶活性的影响
增氮处理在不同土层对土壤多酚氧化酶活性影响不同。 由图 1 可知, 0—5 cm土层土壤多酚氧化酶和过
氧化物酶活性分别低于 5—10 cm土层 14. 3%—27. 3%和 1. 4%—14. 2% ,但 0—5 cm土层的土壤多酚氧化酶
活性更易受氮的影响,5—10 cm土层响应则较小。 在 0—5 cm土层,随着施氮量增加,多酚氧化酶活性降低,
高氮处理下其活性降低更显著,在 N6 和 N24 处理下,其活性分别比对照降低了 9. 7%和 22. 4% 。 多酚氧化
酶的活性与土壤的有效氮呈负相关( r= -0. 60)。 对于 5—10 cm 土层,增氮处理未显著影响土壤多酚氧化酶
活性。 过氧化物酶活性对氮增加的响应与多酚氧化酶活性相似。 对于 0—5 cm 土层,N6 和 N24 处理下土壤
过氧化物酶活性分别比对照降低了 6. 5%和 12. 1% ,而氮增加对 5—10 cm 土层过氧化物酶活性影响不显著
(图 1)。
对于蔗糖酶、脲酶和碱性磷酸酶,它们在 0—5cm 土层中的活性分别比 5—10 cm 土层高 18. 0%—
98郾 1% 、45. 3%—119. 0% 、76. 1%—138. 1% 。 增氮处理对不同酶的效应不同:(1) 蔗糖酶在 0—5 cm土层通
过 N1 和 N3 处理其酶活性分别比对照高 49. 6%和 72. 3% ,然而,随着施氮量的继续增加,N6 和 N24 处理却
降低了土壤蔗糖酶活性;在 5—10 cm土层,N1 和 N3 处理使土壤蔗糖酶活性分别比对照高 8. 6%和 11郾 4% ,
升高幅度低于 0—5cm土层, 同样,高氮处理 N6 和 N24 也降低了土壤蔗糖酶活性。 (2) 对于土壤脲酶,增氮
处理使其活性降低。 在 0—5 cm土层:增氮处理对土壤脲酶的活性影响比较显著,与对照相比,N3、N6 和 N24
处理的脲酶活性分别降低了 23. 6% , 37. 1% 和 67. 2% ;而在 5—10 cm土层,施氮对土壤脲酶活性的影响较
小,N3、N6 和 N24 处理的脲酶活性比对照分别降低了 20. 2% ,25. 0%和 42. 7% 。 (3) 碱性磷酸酶在 0—5 cm
土层的活性随着施氮量增加呈先增加后减小的趋势,N3 处理下磷酸酶活性最大,比对照高 48. 6% ;而 5—10
cm土层中土壤碱性磷酸酶活性同样有先增加后降低的趋势,N1 处理下酶的活性达到最大,比对照高 13. 8% 。
随着施氮量进一步增加,土壤酶活性降低(图 1)。
2. 3摇 氮沉降增加对土壤微生物量 N的影响
0—5 cm土层土壤微生物量 N 含量比 5—10 cm 土层高 77. 5%—162. 3% ,二者均随施氮量的增加而增
加,并在 N24 处理下土壤微生物量 N最高,0—5 cm土层为 57 滋g N / g,是对照处理的 1. 75 倍;5—10 cm土层
为 22 滋g N / g,是对照处理的 1. 72 倍(图 1)。
3摇 讨论
3. 1摇 不同土层土壤酶活性和微生物量 N的差异
0—5 cm和 5—10 cm两层土壤的理化性质不同,0—5 cm 土层土壤水解酶活性和微生物量 N 明显高于
5—10 cm,而土壤氧化酶的活性低于 5—10 cm 土层。 有研究认为,土壤酶活性的不同,可能与土壤 pH 相
关[13]。 而本研究中,0—5 cm与 5—10 cm土壤 pH差异不明显,因此,土壤酶活性的差异受土壤 pH的影响较
小。 Alon等对以色列 Negev沙漠的研究发现,由于上层土壤大量的真菌和藻类的存在,富集了大量的有机质,
因此上层土壤具有较高的微生物量[15]。 同样,本试验中不同土层土壤酶活性和微生物量 N 的差异可能是由
于两层土壤有机质的差异造成。 上层土壤取自 0—5 cm,在该土层上部广泛分布有生物结皮(土壤微生物、藻
类、地衣和苔藓复合体),生命活动非常活跃。 因此,上层土壤具有较高的有机质和其他各类营养物质[23]。 从
表中有机碳含量也可推出,上层 0—5 cm土层土壤有机质明显高于下层 5—10 cm。 但是,本实验中,0—5 cm
土层全 N、有效 N、有效 P含量也明显高于 5—10 cm土层,是否也同样影响土壤酶活性和微生物量 N 还有待
进一步研究。 随着施氮量增加,两层土壤的酶活性具有相似的变化趋势,但是 0—5 cm 土层土壤酶活性和微
生物量 N更易受到增氮的影响。 这种不同土层的响应差异同样见于对地中海气候下橡树森林凋落物层的增
氮研究[24]。 因此,本研究中,两土层响应程度的差异除了上层土壤较直接接受增氮外,上下两层土壤本身理
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a a ab b b c
a ab ab ab ab b a a a a b ca a
a a a a
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b a a b c
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c bc bc bc
b
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b ab ab ab a a
0.0
0.2
0.4
0.6
0.8
1.0 A
***
**
0.0
0.2
0.4
0.6
0.8
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1.0
1.5
2.0
2.5 C
*
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0.00
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0.8 E
**
***
*
0
15
30
45
60
0—5cm 5—10cm
F
*
*****
N0 N0.5 N1 N3 N6 N24 N0 N0.5 N1 N3 N6 N24
N0 N0.5 N1 N3 N6 N24 N0 N0.5 N1 N3 N6 N24
N0 N0.5 N1 N3 N6 N24 N0 N0.5 N1 N3 N6 N24
处理 Treatment (g N.m-2.a-1)
碱性
磷酸
酶
AlP/
(mg
phen
ol. kg
-
1 . h-1 )
蔗糖
酶
Inver
tase/
(mg
gluco
se. kg
-
1 . h-1 )
多酚
氧化
酶
PRO
/(mg
PG. k
g-1 . h
-
1 )
过氧
化物
酶
Pero
xidas
e/(m
g PG
. kg-1
. h-1 )
脲酶
Urea
se/(m
g NH
3- -N
. kg-1
. h-1 )
图 1摇 0—5 cm和 5—10 cm土层多酚氧化酶、过氧化物酶、蔗糖酶、脲酶、碱性磷酸酶活性和微生物量 N随施氮量增加的动态变化(平均值依
标准差)
Fig. 1摇 Changes in activities of polyphenol oxidase ( PPO), peroxidase, invertase, urease, alkaline phosphatase (A1P) and microbial
biomass N (MBN) for soils in the 0—5 cm and 5—10 cm layers along the gradient of N addition (mean依SD)
不同字母表示 0—5 cm或 5—10 cm土层各处间差异显著,*表示 0—5 cm和 5—10 cm相同施氮量下差异显著(n=4, P < 0. 05)
化性质差异(如土壤有机质)可能导致其响应不同。
3. 2摇 土壤酶活性、微生物量 N响应特征及相应营养元素变化
土壤氧化酶和蔗糖酶等活性的变化可以改变土壤碳循环。 增氮后氧化酶活性的降低可能降低凋落物分
解速率,从而影响碳的储存和流动[9]。 多酚氧化酶和过氧化物酶是主要的木质素分解酶,多酚氧化酶能够氧
化酚类化合物中的苯环,过氧化物酶能够氧化木质素大分子得到简单的酚类。 施氮能够降低土壤多酚氧化酶
和过氧化物酶活性,尤其是高氮处理,抑制作用更为明显。 这种增氮处理对两种氧化酶的抑制作用同样见于
其他生态系统的研究,并且可能是一个普遍现象[11,25鄄26]。 目前,大量的研究表明,多酚氧化酶和过氧化物酶是
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由白腐真菌产生,氮沉降增加能够抑制白腐真菌的活性,减少了这两种氧化酶的产量。 氧化酶活性的降低可
能抑制酚类物质的分解,使凋落物分解速率降低。 本试验结果表明,氧化酶的抑制作用在低氮处理水平时却
不明显。 与此研究相一致,在半干旱草地,长期增氮未影响氧化酶的活性[27]。 造成氧化酶活性对低氮处理不
敏感可能有两方面原因:首先,干旱地区低的有机碳浓度可能造成其对氮增加不敏感[27]。 本研究中,从表 1
的数据可以看出,该沙漠土壤有机碳含量较低,从而可能造成氧化酶对低氮和中氮增加(N0. 5—N3)的不敏
感。 其次,该沙漠土壤中细菌占优势[28],沙漠中产生氧化酶的白腐真菌数量可能较少,使得土壤氧化酶含量
少,从而受氮增加的影响较小,只有高氮才能明显降低其活性。
土壤蔗糖酶也是一种与碳循环相关的水解酶。 在天然次生杨桦林中,多酚氧化酶活性和蔗糖酶活性的变
化趋势较一致;而在天然阔叶红松林中多酚氧化酶活性降低而蔗糖酶活性升高,目前这种变化机制尚不明
确[29]。 本试验中氧化酶与蔗糖酶活性变化与前两种均不相同,氮对氧化酶主要为抑制作用,且高氮下表现更
为显著,而蔗糖酶活性随氮增加呈先增后降趋势,其机制还有待进一步研究。 蔗糖酶以蔗糖为底物,能够将其
水解为葡萄糖。 该土壤酶活性的变化可以直接影响到葡萄糖数量,从而影响以葡萄糖为底物的一系列微生物
的活动。 有研究表明,施氮增加能够改变微生物的功能多样性(即群落水平的代谢剖面,CLPP) [16],可能就是
由于以不同碳源为底物的微生物随着土壤中底物变化而变化。 本试验中,蔗糖酶活性对氮增加响应较为敏
感,因此,长期下去,这种变化可能影响土壤微生物功能多样性。
脲酶活性的降低表明氮增加可能改变植物或微生物的氮素营养。 对美国一种草原相关研究表明,增氮能
够降低土壤脲酶的活性[14],与本研究结果一致。 根据微生物代谢的经济分配理论,当简单营养物质缺乏或复
合营养物增多时,相应的酶产量增加[30]。 本研究中,加入的氮为 NH4NO3和 NH4Cl,可以直接形成两种形态的
氮(NH4 鄄N和 NO3 鄄N),这两种氮可以直接为植物和微生物所利用,施氮量增加后,无需再矿化更多的有机物
来满足其营养需求。 因此,土壤有效氮含量与土壤脲酶活性呈负相关( r= -0. 55)。 然而,也有研究表明,长期
增氮能增加土壤和凋落物层的脲酶活性[11鄄12]。 宋学贵等研究也发现,虽然不同氮处理间存在差异,但总体上
氮沉降能够增加常绿阔叶林土壤脲酶活性[31]。 造成促进和抑制两种不同的结果,可能是因为所施用氮的形
态不同,或者土壤本身的营养特性差异所致。
在磷酸酶的作用下,有机磷能矿化成无机磷,因此,磷酸酶的活性在反映磷的需求和磷的转化上起着非常
重要的作用[32]。 与前人研究相一致,在本研究中,土壤碱性磷酸酶活性与土壤有效磷含量具有很强的正相关
关系( r=0. 96)。 对多种类型生态系统研究均表明,施氮能够促进土壤磷酸酶活性增加[12,27,33鄄34],然而,本实
验中低量施氮对土壤碱性磷酸酶具促进作用,而高氮却有抑制作用,这可能是由于高氮盐的毒害作用[24]。 从
表 1 中可以看出,高氮下土壤电导率显著高于低氮水平。 这种高电导可能是由于土壤盐分的累积,从而造成
了对土壤磷酸酶的抑制作用。 从表中还可以看出,本试验地的土壤 N 颐P值为 0. 47—0. 69,远低于草地(某些
草地为 5—42)等许多其他生态系统,充分说明该区域为氮素限制而非磷限制。 如此低的比值同样说明,在本
沙漠,由氮沉降的增加而带来的系统由氮限制转为磷限制的可能性较小。
与土壤元素循环相关的另一类物质为土壤微生物量。 土壤微生物量可以作为植物营养物质的源和
库[35]。 多数研究结果表明,氮的增加能够降低土壤微生物量[16,36]。 然而,McCrackin 等发现氮沉降不会影响
荒漠土壤的微生物量[37],亦有研究表明微生物量可能增加[15]。 造成这些结果不同可能是因为微生物对氮的
需求或氮源不同,或者与研究区域土壤其他的一些理化性质有关。 微生物量 N 是土壤氮素循环的重要部分,
本研究中,土壤微生物量 N随施氮量的增加而增加,可能是由于该区域土壤本身含氮量低,可利用氮增加后,
有更多的氮固定在微生物体中,造成土壤微生物量 N增加。
3. 3摇 土壤酶活性对氮响应的剂量效应
土壤酶活性对施氮的响应呈现出较强的剂量效应,对于氧化酶,高氮处理才能显著降低其酶活性,而对于
水解酶,如蔗糖酶、脲酶、磷酸酶,其活性易受氮沉降的影响。 随着施氮量增加,蔗糖酶或碱性磷酸酶的活性在
N1 或 N3 处理下达到最大。 就这两种酶活性而言,N1 和 N3 之间水平的氮沉降可能存在生态系统的临界氮
6433 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 31 卷摇
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沉降值,超出这个范围,土壤酶效应可能由正效应转为负效应。 然而,在该荒漠中,这些结果的最终确定还有
待长期和大量的试验来验证。 临界氮沉降值在其他生态系统中也有相关报道,如在半干旱的温带草原,对土
壤微生物量和微生物功能多样性研究表明,模拟氮增加量 16—32 g N m-2a-1中存在氮增加临界值[16]。
3. 4摇 与其它生态系统的响应差异
相对荒漠生态系统,有关森林、草原等其它各生态系统土壤酶如何响应氮沉降的研究报道较多,但是很少
有在多个连续施氮浓度下土壤酶活性变化趋势的相关报道。 不同的施氮浓度能够造成不同甚至相反的结果。
一般来说,对于降水相对较多的森林和草原地区,氮增加能够极大的影响土壤微生物各指标[11,32],而在水分
含量较少的荒漠地区,土壤微生物量等各指标有可能对氮增加响应不敏感[37]。 古尔班通古特沙漠土壤氧化
酶对氮的增加不敏感,这与大部分的森林生态系统氮增加能够降低氧化酶活性有所不同[9,26],如低浓度的增
氮(0. 5 g N / m2)能够显著的降低松树林土壤氧化酶的活性[38]。 但是该荒漠生态系统土壤水解酶活性和土壤
微生物量氮对氮增加具有较敏感的响应,尤其是表层土壤,受增氮影响更大。 这些微生物活性对氮增加的响
应未受到沙漠土壤水分较少的限制,与某些冷沙漠的研究结果类似[39]。 这些结果充分说明有关土壤微生物
响应氮沉降增加具有多样化的特点,有待更加全面深入的研究。
4摇 结论
在古尔班通古特沙漠,不同施氮量的氮沉降增加未改变土壤酶活性和土壤微生物量 N 的垂直分布格局,
但上层土壤(0—5 cm)对氮沉降增加的响应更为敏感。 土壤氧化酶活性在高氮处理时才表现出较强抑制性;
随着施氮量的增加,土壤脲酶活性减少而土壤微生物量 N增加;土壤蔗糖酶和碱性磷酸酶活性则呈现先增加
后减少的趋势,并且对氮增加表现出一定剂量效应,说明该荒漠生态系统可能存在氮沉降临界值。
致谢:感谢吴楠、张静、魏美丽、程军回、王莎莎、陆海鹰和吴林在试验处理和土壤分析过程中给予的帮助。
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9433摇 12 期 摇 摇 摇 周晓兵摇 等:古尔班通古特沙漠土壤酶活性和微生物量氮对模拟氮沉降的响应 摇
ACTA ECOLOGICA SINICA Vol. 31,No. 12 June,2011(Semimonthly)
CONTENTS
Effect assessment of the project of grain for green in the karst region in Southwestern China: a case study of Bijie Prefecture
LI Hao, CAI Yunlong,CHEN Ruishan, et al (3255)
………
………………………………………………………………………………
The effect of dispersal on the population dynamics of a host鄄parasite system in fragmented landscape SU Min (3265)………………
The effect of spatial scales on wetland functions evaluation: a case study for coastal wetlands in Yancheng, Jiangshu Province
OU Weixin, YE Lifang, SUN Xiaoxiang,et al (3270)
………
………………………………………………………………………………
Effects of simulated nitrogen deposition on nutrient balance of Chinese fir (Cunninghamia lanceolata) seedlings
FAN Houbao, LIAO Yingchun, LIU Wenfei, et al (3277)
……………………
…………………………………………………………………………
The water conservation study of typical forest ecosystems in the forest transect of eastern China
HE Shuxia, LI Xuyong, MO Fei, et al (3285)
………………………………………
……………………………………………………………………………………
The ecological responses of Pinus tabulaeformis forests in Taiyue Mountains of Shanxi to artificial Harvesting
GUO Donggang,SHANGGUAN Tieliang,BAI Zhongke, et al (3296)
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The influence of the long鄄term application of organic manure and mineral fertilizer on microbial community in calcareous fluvo鄄
aquic soil ZHANG Huanjun, YU Hongyan, DING Weixin (3308)…………………………………………………………………
Endophytic fungal diversity of five dominant plant species in the dry鄄hot valley of Yuanjiang, Yunnan Province, China
HE Caimei, WEI Daqiao, LI Haiyan, et al (3315)
………………
…………………………………………………………………………………
Seedling recruitment in desert riparian forest following river flooding in the middle reaches of the Tarim River
ZHAO Zhenyong, ZHANG Ke, LU Lei, et al (3322)
………………………
………………………………………………………………………………
Scaling up for transpiration of Pinaceae schrenkiana stands based on 8hm permanent plots in Tianshan Mountains
ZHANG Yutao, LIANG Fengchao, CHANG Shunli, et al (3330)
……………………
…………………………………………………………………
Responses of soil enzyme activities and microbial biomass N to simulated N deposition in Gurbantunggut Desert
ZHOU Xiaobing, ZHANG Yuanming, TAO Ye, et al (3340)
……………………
………………………………………………………………………
Effects of Pb on growth, heavy metals accumulation and chloroplast ultrastructure of Iris lactea var. Chinensis
YUAN Haiyan, GUO Zhi, HUANG Suzhen (3350)
………………………
…………………………………………………………………………………
Effects of temperature and sap flow velocity on CO2 efflux from stems of three tree species in spring and autumn in Northeast
China WANG Xiuwei, MAO Zijun, SUN Tao, et al (3358)………………………………………………………………………
The soil seed bank of Eupatorium adenophorum along roadsides in the south and middle area of Yunnan, China
TANG Yingyin, SHEN Youxin (3368)
……………………
………………………………………………………………………………………………
Extracting the canopy structure parameters using hemispherical photography method
PENG Huanhua, ZHAO Chuanyan,FENG Zhaodong,et al (3376)
……………………………………………………
…………………………………………………………………
The CCA analysis between grasshopper and plant community in upper reaches of Heihe River
ZHAO Chengzhang, ZHOU Wei, WANG Keming, et al (3384)
…………………………………………
……………………………………………………………………
Community structure characteristics of phytoplankton in argun River Drainage Area in autumn
PANG Ke, YAO Jinxian, WANG Hao, et al (3391)
…………………………………………
………………………………………………………………………………
Spatial and temporal variation of phytoplankton and impacting factors in Jiulongjiang Estuary of Xiamen, China
WANG Yu, LIN Mao, CHEN Xingqun, et al (3399)
………………………
………………………………………………………………………………
Effect of bank type on fish biodiversity in the middle鄄lower reaches of East Tiaoxi River, China
HUANG Liangliang, LI Jianhua, ZOU Limin, et al (3415)
………………………………………
………………………………………………………………………
Study on dynamic changes of soil and water loss along highway based on RS / GIS: an example of Yujing expressway
CHEN Aixia, LI Min, SU Zhixian, et al (3424)
…………………
……………………………………………………………………………………
The urbanization effects on watershed landscape structure and their ecological risk assessment
HU Hebing,LIU Hongyu,HAO Jingfeng,et al (3432)
…………………………………………
………………………………………………………………………………
Assessment of ecological risk of coastal economic developing zone in Jinzhou Bay based on landscape pattern
GAO Bin, LI Xiaoyu, LI Zhigang, et al (3441)
………………………
……………………………………………………………………………………
Impacts ofland use and cover changes on ecosystem service value in Zoige Plateau
LI Jinchang, WANG Wenli, HU Guangyin, et al (3451)
……………………………………………………
…………………………………………………………………………
Effect of chicken manure application on Cu and Zn accumulation in soil and Brassica sinensis L.
ZHANG Yan,LUO Wei,CUI Xiaoyong, et al (3460)
………………………………………
………………………………………………………………………………
GIS analysis of structural characteristics of pollution sources in irrigable farmland in Ningxia China
CAO Yanchun,FENG Yongzhong,YANG Yinlu,et al (3468)
…………………………………
………………………………………………………………………
Effects of pre鄄sowing soil moisture and planting patterns on photosynthetic characteristics and yield of summer soybean
LIU Yan, ZHOU Xunbo, CHEN Yuhai, et al (3478)
………………
………………………………………………………………………………
In situ study on influences of different fertilization patterns on inorganic nitrogen losses through leaching and runoff: a case of
field in Nansi Lake Basin TAN Deshui, JIANG Lihua, ZHANG Qian, et al (3488)……………………………………………
Effects of AM fungi on leaf photosynthetic physiological parameters and antioxidant enzyme activities under low temperature
LIU Airong, CHEN Shuangchen, LIU Yanying, et al (3497)
…………
………………………………………………………………………
Effects of exogenous cysteine on growth, copper accumulation and antioxidative systems in wheat seedlings under Cu stress
PENG Xiangyong, SONG Min (3504)
…………
………………………………………………………………………………………………
Review and Monograph
The horizon scanning technology and its application prospect in Ecology HU Zimin, LI Jingjing, LI Wei, et al (3512)………………
Scientific Note
The gas exchange characteristics of four shrubs on the northern slope of Kunlun Mountain
ZHU Juntao, LI Xiangyi, ZHANG Ximing, et al (3522)
……………………………………………
……………………………………………………………………………
Effect of DEM data at different scales on the accuracy of forest Ecological Classification system
TANG Lina, HUANG Jucong, DAI Limin (3531)
………………………………………
…………………………………………………………………………………
Canopy interception of rainfall by Bamboo plantations growing in the Hill Areas of Southern Jiangsu Province
JIA Yongzheng, HU Haibo, ZHANG Jiayang (3537)
…………………………
………………………………………………………………………………
Effects of exotic species slash pine (Pinus elliottii) litter on the structure and function of the soil microbial community
CHEN Falin, ZHENG Hua, YANG Bosu, et al (3543)
………………
……………………………………………………………………………
The carbon emission analysis of Shenzhen Metro XIE Hongyu, WANG Xixiang, YANG Muzhuang, et al (3551)……………………
2009 年度生物学科总被引频次和影响因子前 10 名期刊绎
(源于 2010 年版 CSTPCD数据库)
排序
Order
期刊
Journal
总被引频次
Total citation
排序
Order
期刊
Journal
影响因子
Impact factor
1 生态学报 11764
2 应用生态学报 9430
3 植物生态学报 4384
4 西北植物学报 4177
5 生态学杂志 4048
6 植物生理学通讯 3362
7
JOURNAL OF INTEGRATIVE
PLANT BIOLOGY
3327
8 MOLECULAR PLANT 1788
9 水生生物学报 1773
10 遗传学报 1667
1 生态学报 1. 812
2 植物生态学报 1. 771
3 应用生态学报 1. 733
4 生物多样性 1. 553
5 生态学杂志 1. 396
6 西北植物学报 0. 986
7 兽类学报 0. 894
8 CELL RESEARCH 0. 873
9 植物学报 0. 841
10 植物研究 0. 809
摇 绎《生态学报》 2009 年在核心版的 1964 种科技期刊排序中总被引频次 11764 次,全国排名第 1; 影响因
子 1郾 812,全国排名第 14;第 1—9 届连续 9 年入围中国百种杰出学术期刊; 中国精品科技期刊
摇 摇 编辑部主任摇 孔红梅摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 执行编辑摇 刘天星摇 段摇 靖
生摇 态摇 学摇 报
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(半月刊摇 1981 年 3 月创刊)
第 31 卷摇 第 12 期摇 (2011 年 6 月)
ACTA ECOLOGICA SINICA
摇
(Semimonthly,Started in 1981)
摇
Vol郾 31摇 No郾 12摇 2011
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