免费文献传递   相关文献

植物葡萄糖磷酸变位酶的研究进展



全 文 :植物生理学报 Plant Physiology Journal 2015, 51 (5): 617~622  doi: 10.13592/j.cnki.ppj.2015.0151 617
收稿 2015-03-23  修定 2015-04-20
资助 中央高校基本科研业务费专项基金项目(DL13CA13和
2572015AA28)和国家自然科学基金(31070275)。
* 通讯作者(E-mail: lanxingguo@126.com; Tel: 0451-
82191783)。
植物葡萄糖磷酸变位酶的研究进展
李晓屿, 李玉花, 李晗, 李治龙, 蓝兴国*
东北林业大学生命科学学院发育生物学研究室, 哈尔滨150040
摘要: 葡萄糖磷酸变位酶(PGM)是生物新陈代谢的关键酶, 可催化葡萄糖-1-磷酸和葡萄糖-6-磷酸相互转化。在植物中,
PGM分为胞质型PGM和质体型PGM。胞质型PGM参与蔗糖的代谢; 质体型PGM参与淀粉的合成。近期发现, PGM在植物
生长发育中起到重要作用。本文主要对植物中葡萄糖磷酸变位酶的分类、分子性质及功能等方面进行综述。
关键词: 葡萄糖磷酸变位酶; 蔗糖代谢; 淀粉合成; 植物发育
Advances in Research on Phosphoglucomutase in Plants
LI Xiao-Yu, LI Yu-Hua, LI Han, LI Zhi-Long, LAN Xing-Guo*
Department of Developmental Biology, College of Life Sciences, Northeast Forestry University, Harbin 150040, China
Abstract: Phosphoglucomutase (PGM), which interconverts between glucose-1-phosphate and glucose-6-phos-
phate, is a key enzyme of metabolism. PGM is classed into the cPGM (cytosol-localized PGM) and pPGM
(plastid-localized PGM). cPGM participates in sucrose metabolism, and pPGM participates in starch synthetic.
PGM plays an important role in the plant growth and development. This paper reviews the classification, mo-
lecular characterization and function of phosphoglucomutase in plants.
Key words: phosphoglucomutase; sucrose metabolism; starch synthetic; plant development
葡萄糖磷酸变位酶(phosphoglucomutase,
PGM, EC 2.7.5.1)属于磷酸己糖变位酶家族, 广泛
存在于动物、植物和微生物体内(Egli等2010;
Stray-Pedersen等2014; Weyler和Heinzle 2015)。其
主要功能是催化葡萄糖-1-磷酸和葡萄糖-6-磷酸的
相互转化, 并使其处于动态平衡(Uematsu等2012a;
Chauton等2013)。PGM参与调解植物蔗糖的代
谢、淀粉的合成(Paparelli等2013; Pal等2013)。近
期研究发现, PGM在植物生长发育中起到重要作
用(Egli等2010; Paparelli等2013; Malinova等
2014)。本文主要对植物中PGM的分类、分子性
质及功能的研究进展做一介绍。
1 葡萄糖磷酸变位酶的分类及分子性质
PGM在植物中广泛存在。根据细胞内定位不
同, PGM被分为两种。一种定位于细胞质中, 称为
胞质型PGM (cPGM, EC 5.4.2.2) (Lytovchenko等
2002); 另一种定位于质体中, 称为质体型PGM
(pPGM, EC 2.1.5.1) (Herbert等1979)。目前研究发
现, 植物中cPGM存在多种亚型, 而pPGM仅有一种
(表1)。如拟南芥和玉米含有2种cPGM和1种
pPGM, 菠菜、马铃薯、豌豆等仅有1种cPGM和1
种pPGM (Manjunath等1998; Egli等2010; Malinova
等2014)。植物PGM所含氨基酸数目为600个左右,
分子量为60 kDa左右。对同一物种而言, 其cPGM
所含氨基酸数目略少于pPGM。豌豆的pPGM在其
叶绿体提取物中被发现, 通过聚丙烯酰胺凝胶电
泳确定其大小为64 kDa左右(Salvucci等1990)。菠
菜的cPGM和pPGM是通过纤维素离子交换色谱法
从叶子中提取出来的, 沉降速率分析估算出它们
的分子量为60 kDa左右(Mühlbach和Schnarrenberge
1978)。菠菜pPGM的cDNA全长2 056 bp, 其开放
阅读框编码583个氨基酸, 蛋白大小为58.6 kDa, 这
也与前人的研究结果较为一致(Penger等1994)。玉
米中两种cPGM的cDNA序列具有96.7%的相似性,
开放阅读框都为1 752 bp, 蛋白大小为67 kDa
(Manjunath等1998)。马铃薯pPGM的cDNA序列全
长2 400 bp, 其开放阅读框编码632个氨基酸。通过
聚丙烯酰胺凝胶电泳检测发现其成熟的蛋白质为
70 kDa (Tauberger等2000)。Noir等(2005)对拟南芥
植物生理学报618
成熟的花粉进行蛋白质组学分析 , 质谱鉴定该
cPGM的分子量为63.1 kDa。
2 葡萄糖磷酸变位酶的功能
2.1 cPGM的功能
在植物细胞中, cPGM参与光合作用、呼吸作
用和细胞壁合成, 并且在蔗糖的代谢过程中起到
重要作用(Egli等2010; Liu等2012; Dussert等
2013)。在蔗糖代谢过程中, cPGM的功能是催化中
间产物葡萄糖-1-磷酸和葡萄糖-6-磷酸相互转化,
使其处于动态平衡的状态, 而葡萄糖-6-磷酸则进
入戊糖磷酸途径(Keurentjes等2008; Lafta和Fugate
2011) (图1)。降低cPGM的活性对马铃薯糖代谢影
响较小, 但是会明显降低植物的光合作用能力(Ly-
tovchenko等2002)。然而也有研究表明, 在马铃薯
中反义抑制表达cPGM, 其蔗糖的含量较野生型低
许多, 认为cPGM对维持马铃薯叶片蔗糖的代谢起
到重要作用(Fernie等2002)。Egli等(2010)对拟南
芥cPGM突变体的研究较为详细, 分别测定了拟南
表1 植物PGM的类型及分子信息
Table 1 The classification and molecular information of phosphoglucomutase in plants
植物名称 类型 登录号 氨基酸数目 分子量/kDa 参考文献
菠菜(Spinacia oleracea) cPGM - - -
pPGM CAA53507 583 58.6 Penger等1994
马铃薯(Solanum tuberosum) cPGM Q9M4G4 583 63.4*
pPGM Q9M4G5 632 70.0 Tauberger等2000
拟南芥(Arabidopsis thaliana) cPGM NP_177230 585 63.4*
NP_173732 583 63.1 Noir等2005
pPGM NP_199995 623 68.0*
豌豆(Pisum sativum) cPGM Q9SM60 582 59.2 Salavati等2012
pPGM Q9SM59 626 64.0 Salvucci等1990
玉米(Zea mays) cPGM NP_001105703 583 67.0 Manjunath等1998
NP_001105405 583 67.0 Manjunath等1998
pPGM - - -
  参考NCBI数据库, “ - ”代表未查到, “ * ”代表计算值。
图1 植物中蔗糖的分解过程
Fig.1 The pathway of sucrose decomposition in plants
参考Egli等(2010)文献修改。
李晓屿等: 植物葡萄糖磷酸变位酶的研究进展 619
芥野生型(PGM2PGM2/PGM3PGM3)、pgm2单突
变体(pgm2pgm2/PGM3PGM3)、pgm3单突变体
(PGM2PGM2/pgm3pgm3)和双突变体(pgm2pgm2/
PGM3pgm3和PGM2pgm2/pgm3pgm3)中蔗糖、葡
萄糖和果糖的含量, 发现并没有显著的差异。认
为虽然突变体中cPGM的活性较野生型降低了, 但
cPGM的功能是冗余的, 其单个野生型的等位基因
已能够满足调节糖代谢的需要, 并且推断若进一
步降低cPGM活性, 其糖代谢一定会受到严重影
响。Malinova等(2014)利用amiRNA (artificial mi-
croRNA)方法使拟南芥完全丧失cPGM活性, 经过
12 h光照/12 h黑暗处理5周后, 突变体中不仅蔗糖
和葡萄糖的含量显著升高, 而且葡萄糖-6-磷酸和
果糖-6-磷酸的含量也显著高于野生型拟南芥。
植物cPGM突变体中糖代谢发生重大变化, 那
么其生长发育会是怎样的呢?许多同系交配的玉
米其胚乳通常会缺失一个cPGM, 然而其表型并没
有发生明显的变化(Pan等1990)。反义表达cPGM
的马铃薯生长受到严重抑制, 表现为植株整体矮
小 , 根系不发达 , 块茎的数量和鲜重明显降低
(Fernie等2002)。利用T-DNA插入的方法, 获得拟
南芥cpgm单突变体(pgm2pgm2/PGM3PGM3和PG-
M2PGM2/pgm3pgm3)及其双突变体(pgm2pgm2/
PGM3pgm3和PGM2pgm2/pgm3pgm3), cpgm单独突
变体其表型很难与野生型区分, 但其双突变体中
雄性和雌性配子体的发育受到严重影响, 双突变
体的花粉不能萌发, 胚珠可正常发育但授粉后约
有一半不能受精(Egli等2010)。然而, 以上研究中
均未完全消除掉cPGM活性。Malinova等(2014)研
究完全丧失cPGM活性的拟南芥, 发现其生长受到
明显抑制, 莲座叶鲜重降低、根系不发达、种子
产率降低等。
2.2 pPGM的功能
植物中淀粉的合成需要pPGM、ADP-葡萄糖
焦磷酸化酶和淀粉合酶的参与(Zeeman等2007;
Turesson等2014)。pPGM可催化葡萄糖-6-磷酸和
葡萄糖-1-磷酸相互转化, 从而保证了淀粉合成过
程中葡萄糖-1-磷酸的供应, 这在淀粉合成过程中
起到非常重要作用(Geigenberger 2011; Bahaji等
2014) (图2)。糖代谢研究发现, 百脉根如果缺失
图2 淀粉在叶绿体中的合成过程
Fig.2 The pathway of starch synthetic in chloroplast
参考Zeeman等(2007)修改。
植物生理学报620
pPGM其叶片无法积累淀粉, 不能被碘染色(Caspar
等1985; Vriet等2010)。马铃薯中反义表达pPGM,
其块茎中淀粉含量明显降低, 而蔗糖的含量明显
上升(Tauberger等2000)。对拟南芥pPGM突变体进
行研究发现, 光照下野生型拟南芥积累了大量淀
粉, 突变体仅积累了非常少的淀粉, 而可溶性糖的
含量上升到较高的水平(Solfanelli等2006; Streb和
Zeeman 2012; Paparelli等2013)。Andriotis等(2012)
研究发现, 在12个光周期后的拟南芥pPGM突变体
中淀粉的合成量与野生型相比降低了至少85%, 而
且ADP-葡萄糖的含量也较野生型低许多(Stitt和
Zeeman 2012), 这可能是淀粉合成受阻的主要原
因。如果植物过量表达pPGM是否会增加淀粉的
含量呢?Uematsu等(2012b)利用转基因技术, 使烟
草过量表达pPGM, 叶子中pPGM的活性较野生型
提高3至8倍, 淀粉的含量较野生型提高2至3倍, 可
见pPGM对淀粉的合成起到重要作用。
2.3 cPGM和pPGM共同参与调节植物的糖代谢及
生长发育
在蔗糖的分解与淀粉的合成过程中, 都伴随
着葡萄糖-1-磷酸和葡萄糖-6-磷酸的相互转化
(Fettke等2011)。在这个转化过程中, PGM执行主
要功能 , 在糖代谢过程中占有重要地位。葡萄
糖-1-磷酸和葡萄糖-6-磷酸可以在细胞质和叶绿体
之间转运, 而其本身又是蔗糖和淀粉代谢中的重
要中间产物, 使细胞质中蔗糖的代谢与叶绿体中
淀粉的代谢有着密不可分的联系(Fettke等2010)
(图3)。在以往的研究中, 较多是单独研究cPGM或
单独研究pPGM对植物糖代谢调控和生长发育的
影响, 很少有关于它们共同研究的报道。在Mali-
nova等(2014)研究中, 使拟南芥完全丧失cPGM和
pPGM活性, 即获得了完全丧失PGM活性的拟南芥
突变体, 该突变体生长矮小、过早死亡、花蕾枯
萎, 植株的生长发育受到严重影响。
图3 cPGM和pPGM共同参与糖代谢
Fig.3 cPGM and pPGM participate in the glycometabolism
参考Fettke等(2010)文献修改。
3 展望
PGM能催化葡萄糖-1-磷酸和葡萄糖-6-磷酸
的相互转化, 在植物蔗糖的分解、淀粉的合成和
维持糖代谢平衡中起到关键作用, 而且影响到植
物的生长发育。对PGM的研究不仅有助于人们进
一步认识植物中糖的代谢过程, 而且还有助于研
李晓屿等: 植物葡萄糖磷酸变位酶的研究进展 621
究植物的生长发育。缺失cPGM或pPGM的植株其
蔗糖的含量较高, 过量表达pPGM可提高植物淀粉
的含量。从实际应用来看, 如果能利用分子生物
学的技术获得转基因植物, 提高水果的甜度和农
作物淀粉的含量, 这在农业中具有潜在的应用前
景。利用PGM突变体研究植物的光合作用、呼吸
作用及生长发育已成为现阶段的研究热点。目前
对PGM的研究还主要集中在模式植物拟南芥, 对
其他植物的研究较少。其他植物PGM突变体的表
型和生长发育会是怎样的呢?PGM是否还有新的
生物学功能呢?相信随着植物生理学和分子生物
学等学科的发展, 我们将会对PGM有更全面、深
入的认识。
参考文献
Andriotis VME, Pike MJ, Schwarz SL, Rawsthorne S, Wang TL,
Smith AM (2012). Altered starch turnover in the maternal plant
has major effects on Arabidopsis fruit growth and seed composi-
tion. Plant Physiol, 160 (3): 1175~1186
Bahaji A, Baroja-Fernández E, Sánchez-López AM, Muñoz FJ, Li
J, Almagro G, Montero M, Pujol P, Galarza R, Kaneko K et al
(2014). HPLC-MS/MS analyses show that the near-staarchless
aps1 and pgm leaves accumulate wild type levels of ADPglu-
cose: further evidence for the occurrence of important ADPglu-
cose biosynthetic pathway(s) alternative to the pPGI-pPGM-
AGP pathway. PLoS ONE, 9 (8): e104997
Caspar T, Huber SC, Somerville C (1985). Alterations in growth, pho-
tosynthesis, and respiration in a starchless mutant of Arabidopsis
thaliana (L.) deficient in chloroplast phosphoglucomutase activi-
ty. Plant Physiol, 79 (1): 11~17
Chauton MS, Winge P, Brembu T, Vadstein O, Bones AM (2013).
Gene regulation of carbon fixation, storage, and utilization in
the diatom Phaeodactylum tricornutum acclimated to light/dark
cycles. Plant Physiol, 161 (2): 1034~1048
Dussert S, Guerin C, Andersson M, Joët T, Tranbarger TJ, Pizot M,
Sarah G, Omore A, Durand-Gasselin T, Morcillo F (2013). Com-
parative transcriptome analysis of three oil palm fruit and seed
tissues that differ in oil content and fatty acid composition. Plant
Physiol, 162 (3): 1337~1358
Egli B, Kölling K, Köhler C, Zeeman SC, Streb S (2010). Loss of
cytosolic phosphoglucomutase compromises gametophyte devel-
opment in Arabidopsis. Plant Physiol, 154 (4): 1659~1671
Fernie AR, Tauberger E, Lytovchenko A, Roessner U, Willmitzer L,
Trethewey RN (2002). Antisense repression of cytosolic phos-
phoglucomutase in potato (Solanum tuberosum) results in severe
growth retardation, reduction in tuber number and altered carbon
metabolism. Planta, 214 (4): 510~520
Fettke J, Albrecht T, Hejazi M, Mahlow S, Nakamura Y, Steup M
(2010). Glucose 1-phosphate is efficiently taken up by potato
(Solanum tuberosum) tuber parenchyma cells and converted to
reserve starch granules. New Phytol, 185 (3): 663~675
Fettke J, Malinova I, Albrecht T, Hejazi M, Steup M (2011). Glu-
cose-1-phosphate transport into protoplasts and chloroplasts
from leaves of Arabidopsis. Plant Physiol, 155 (4): 1723~1734
Geigenberger P (2011). Regulation of starch biosynthesis in response
to a fluctuating environment. Plant Physiol, 155 (4): 1566~1577
Herbert M, Burkhard C, Schnarrenberger C (1979). A survey for iso-
enzymes of glucosephosphate isomerase, phosphoglucomutase,
glucose-6-phosphate dehydrogenase and 6-phosphogluconate
dehydrogenase in C3-, C4- and crassulacean-acid-metabolism
plants, and green algae. Planta, 145 (1): 95~104
Keurentjes JJB, Sulpice R, Gibon Y, Steinhauser MC, Fu J, Koorn-
neef M, Stitt M, Vreugdenhil D (2008). Integrative analyses of
genetic variation in enzyme activities of primary carbohydrate
metabolism reveal distinct modes of regulation in Arabidopsis
thaliana. Genome Biol, 9 (8): R129
Lafta AM, Fugate KK (2011). Metabolic profile of wound-induced
changes in primary carbon metabolism in sugarbeet root. Phyto-
chemistry, 72 (6): 476~489
Liu W, Sun L, Zhong M, Zhou Q, Gong Z, Li P, Tai P, Li X (2012).
Cadmium-induced DNA damage and mutations in Arabidopsis
plantlet shoots identified by DNA fingerprinting. Chemosphere,
89 (9): 1048~1055
Lytovchenko A, Sweetlove L, Pauly M, Fernie AR (2002). The influ-
ence of cytosolic phosphoglucomutase carbohydrate metabolism.
Planta, 215 (6): 1013~1021
Malinova I, Kunz HH, Alseekh S, Herbst K, Fernie AR, Gierth
M, Fettke J (2014). Reduction of the cytosolic phosphoglucomu-
tase in Arabidopsis reveals impact on plant growth, seed and
root development, and carbohydrate partitioning. PLoS ONE, 9
(11): e112468
Manjunath S, Lee CHK, VanWinkle P, Bailey-Serres J (1998). Mo-
lecular and biochemical characterization of cytosolic phospho-
glucomutase in maize: expression during development and in
response to oxygen deprivation. Plant Physiol, 17 (3): 997~1006
Mühlbach H, Schnarrenberge C (1978). Properties and intracellular
distribution of two phosphoglucomutases from spinach leaves.
Planta, 141 (1): 65~70
Noir S, Bräutigam A, Colby T, Schmidt J, Panstruga R (2005). A ref-
erence map of the Arabidopsis thaliana mature pollen proteome.
Biochem Biophys Res Commun, 337 (4): 1257~1266
Pal SK, Liput M, Piques M, Ishihara H, Obata T, Martins MCM,
Sulpice R, van Dongen JT, Fernie AR, Yadav UP et al (2013).
Diurnal changes of polysome loading track sucrose content in
the rosette of wild-type Arabidopsis and the starchless pgm mu-
tant. Plant Physiol, 162 (3): 1246~1265
Pan D, Stretlow LI, Nelson OE (1990). Many maize inbreds lack an
endosperm cytosolic phosphoglucomutase. Plant Physiol, 93 (4):
1650~1653
Paparelli E, Parlanti S, Gonzali S, Novi G, Mariotti L, Ceccarelli N,
Dongen JT, Kölling K, Zeeman SC, Perata P (2013). Nighttime
sugar starvation orchestrates gibberellin biosynthesis and plant
growth in Arabidopsis. Plant Cell, 25 (10): 3760~3769
Penger A, Pelzer-Reith B, Schnarrenberger C (1994). cDNA sequence
植物生理学报622
for the plastidic phosphoglucomutase from Spinacia oleracea
(L.). Plant Physiol, 105 (4): 1439~1440
Salavati A, Bushehri AA, Taleei A, Hiraga S, Komatsu S (2012). A
comparative proteomic analysis of the early response to compat-
ible symbiotic bacteria in the roots of a supernodulating soybean
variety. J Proteomics, 75 (3): 819~832
Salvucci ME, Drake RR, Broadbent KP, Haley BE, Hanson KR,
McHale NA (1990). Identification of the 64 kilodalton chlo-
roplast stromal phosphoprotein as phosphoglucomutase. Plant
Physiol, 93 (1): 105~109
Solfanelli C, Poggi A, Loreti E, Alpi A, Perata P (2006). Sucrose-spe-
cific induction of the anthocyanin biosynthetic pathway in Ara-
bidopsis. Plant Physiol, 140 (2): 637~646
Stitt M, Zeeman SC (2012). Starch turnover: pathways, regulation and
role in growth. Curr Opin Plant Biol, 15 (3): 282~292
Stray-Pedersen A, Backe PH, Sorte HS, Mørkrid L, Chokshi NY, Er-
ichsen HC, Gambin T, Elgstøen KB, Bjørås M, Wlodarski MW
et al (2014). PGM3 mutations cause a congenital disorder of gly-
cosylation with severe immunodeficiency and skeletal dysplasia.
Am J Hum Genet, 95 (1): 96~107
Streb S, Zeeman SC (2012). Starch metabolism in Arabidopsis. The
Arabidopsis Book, 10: e0160
Tauberger E, Fernie AR, Emmermann M, Renz A, Kossmann J, Will-
mitzer L, Trethewey RN (2000). Antisense inhibition of plas-
tidial phosphoglucomutase provides compelling evidence that
potato tuber amyloplasts import carbon from the cytosol in the
form of glucose-6-phosphate. Plant J, 23 (1): 43~53
Turesson H, Andersson M, Marttila S, Thulin I, Hofvander P (2014).
Starch biosynthetic genes and enzymes are expressed and active
in the absence of starch accumulation in sugar beet tap-root.
BMC Plant Biol, 14: 104
Uematsu K, Suzuki N, Iwamae T, Inui M, Yukawa H (2012a). Alter-
ation of photosynthate partitioning by high-level expression of
phosphoglucomutasein tobacco chloroplasts. Biosci Biotechnol
Biochem, 76 (7): 1315~1321
Uematsu K, Suzuki N, Iwamae T, Inui M, Yukawa H (2012b). Expres-
sion of Arabidopsis plastidial phosphoglucomutase in tobacco
stimulates photosynthetic carbon flow into starch synthesis. J
Plant Physiol, 169 (15): 1454~1462
Vriet C, Welham T, Brachmann A, Pike M, Pike J, Perry J, Parniske M,
Sato S, Tabata S, Smith AM, WangTL (2010). A suite of Lotus
japonicus starch mutants reveals both conserved and novel fea-
tures of starch metabolism. Plant Physiol, 154 (2): 643~655
Weyler C, Heinzle E (2015). Multistep synthesis of UDP-glucose
using tailored, permeabilized cells of E. coli. Appl Biochem Bio-
technol, 175 (8): 3729~3736
Zeeman SC, Smith SM, Smith AM (2007). The diurnal metabolism of
leaf starch. Biochem J, 401: 13~28