免费文献传递   相关文献

植物中的一种内源小RNA——ta-siRNA



全 文 :植物生理学通讯 第 44卷 第 2期,2008年 4月378
植物中的一种内源小RNA——ta-siRNA
史向毅 1,2,苗琛 1,王江 2,时振英 2,*
1河南大学生命科学学院植物逆境生物学重点实验室,河南开封 475004;2中国科学院上海生命科学研究院植物生理生
态研究所植物分子遗传国家重点实验室,上海 200032
A New Endogenous Small RNA in Plants — Trans-acting siRNA
SHI Xiang-Yi1, 2, MIAO Chen1, WANG Jiang2, SHI Zhen-Ying2,*
1Key Laboratory of Plant Stress Biology, School of Life Science, Henan University, Kaifeng, Henan 475004, China; 2National Key
Laboratory of Plant Molecular Genetics, Institute of Plant Physiology and Ecology, Shanghai Institutes for Biological Sciences,
Chinese Academy of Sciences, Shanghai 200032, China
提要:随着对miRNA和 siRNA研究的逐步深入,越来越多的新型小 RNA被科学家们所认识和了解。内源 ta-siRNA是
新近在植物中发现的依赖于miRNA、长度为 21个碱基的小RNA,对植物的生长发育过程具有重要的表达调控功能。ta-
siRNA的产生需要miRNA的剪切引发,之后通过 siRNA途径形成,但产生的 ta-siRNA生物学功能上不同于其他 siRNA,
其作用机制类似于miRNA。文章通过综述 ta-siRNA的一些研究进展,对 ta-siRNA的形成机制和功能进行简单介绍。
关键词:ta-siRNA;内源小 RNA;表达调控
收稿 2008-02-18 修定 2008-03-31
资助 国家自然科学基金(073 3ZB11J 1)。
* 通讯作者(E-m a i l:zyshi @sippe.a c .cn;T e l:0 2 1 -
5 4 9 2 4 0 7 8 )。
自上世纪90年代RNA干扰(RNA interference,
RNAi)现象被发现之后,小RNA (miRNA和siRNA)
在RNA干扰过程中的重要作用日益显现出来,并
逐步成为生命科学研究的热点之一,2007年底
《Science》杂志高度评述了小 RNA研究的重要
性。随着 RNA干扰机制的阐明,siRNA逐渐被
开发应用,根据其碱基的同源配对对目的基因进
行沉默表达,进而研究下调或者缺失后基因的功
能。除了上述外源 siRNA广泛用于功能基因研究
外,生物体内还有许多内源小 RNA存在,他们
分别在生长发育的不同时期发挥重要的调控作用。
miRNA为较早发现的一类内源小RNA,随后的深
入研究发现了越来越多的内源小 RNA,如内源
siRNA等,其中 ta-siRNA (endogenous trans-act-
ing siRNA)是比较特别的一种。ta-siRNA的产生需
要miRNA的剪切引发,之后通过 siRNA途径形
成,但产生的 ta-siRNA功能不同于其他 siRNA:
ta-siRNA可作用于非同源基因的沉默,而其他内
源 siRNA一般是作用于高度同源的自身基因的沉
默,这也是 ta-siRNA被称作 trans-acting siRNA的
原因(Allen等 2005;Rajagopalan等 2006)。目前
ta-siRNA的研究主要集中在植物领域。
ta-siRNA途径将以往互不相干的miRNA和
siRNA联系在一起,这样的生物过程对植物的研
究来说是新颖的,而且它本身具有重要的生物学
功能,影响着植物的正常生长发育(Vazquez 等
2004;Allen等 2005;Fahlgren等 2006;Liu等
2007)。鉴于此,本文对目前 ta-siRNA的一些研
究进展进行了阐述。
1 miRNA和 siRNA的形成及作用
ta-siRNA是一种依赖于 miRNA而产生的
siRNA,它的形成机制与 siRNA相似而作用机制
和miRNA相似(Peragine等 2004;Vazquez等
2004)。因此在介绍 ta-siRNA之前先简略介绍
miRNA和 siRNA的形成机制及作用机理。
1.1 miRNA 在动物和植物中,miRNA都来源于
长的单链 RNA (single-stranded RNA,ssRNA)。
核中的这些长的 ssRNA自身通过内部碱基配对形
成茎环结构的miRNA初级转录本(pri-miRNA),在
动物中被Drosha酶(核糖核酸酶 III的一种)切割出
茎环结构的底部产生前体miRNA (pre-miRNA),
经转运蛋白 Exportin-5 (Exp-5)运到胞质(Bohnsack
等 2004)后,由切酶(Dicer)切割前体miRNA的环,
释放出成熟的双链miRNA (miRNA/miRNA*) ;而
植物生理学通讯 第 44卷 第 2期,2008年 4月 379
植物中不存在Drosha蛋白,由DCL1 (Dicer like
protein 1,DCL1)取代了Drosha的功能(Park等
2005)。且植物中双链miRNA的形成发生在核
中,其 3端经HEN1 (Hua enhancer 1)甲基化后再
转运到胞质。单链 m i R N A * 脱离双链后,与
Argonaute (AGO,RNA沉默途径中的重要蛋白因
子,下文 4.2小节将详述)和Dicer等组装成一个
复合体(Kurihara和Watanabe 2004),这个AGO复
合体在miRNA链的指引下作用于靶mRNA进行剪
切,最终导致靶基因的沉默。
miRNA的靶基因大部分都是转录因子,它们
参与植物生长发育、信号转导、蛋白降解等过
程,而且对外界环境胁迫和病原体入侵也产生一
系列的免疫应答反应,同时miRNA自身合成也受
到相应miRNA的调控,因此miRNA的生物学功
能非常复杂,调控网络极其重要(Zhang等 2006)。
1.2 siRNA siRNA来源于同源的双链RNA (double-
stranded RNA,dsRNA),不似miRNA来源于具
茎环结构的 ssRNA。一般来说,植物中 siRNA的
产生途径主要有两种:一种是外源 siRNA的产生
途径,在转录后水平发生,由转基因或者病毒感
染引起异常的 d s R N A 结构;另外一种是内源
siRNA产生途径,一般由基因的双向转录形成部
分互补、RNA链的自我互补或由RNA依赖的RNA
聚合酶进行的 RNA链复制等作用形成的 dsRNA。
这些异常的 d s R N A 结构经 D C L 酶切割形成
siRNA。
植物中内源 siRNA目前有两种:一种是 nat-
siRNA (natural-antisense transcript-derived siRNA)
(Borsani等 2005),由于一些非蛋白编码基因转录
出的RNA链与同区域上的功能基因的mRNA方向
相反且发生部分重叠,形成一段同源互补 dsRNA
区域,被DCL2蛋白识别并切割形成24碱基的nat-
siRNA,进而引起同源功能基因的沉默;另外一
种是 ra-siRNA (repeat-associated siRNA),它和异
染色质以及DNA重复相关。这种内源的 siRNA在
RDR2 (RNA-dependent RNA polymerase 2)和DCL3
的作用下引起 siRNA引导的染色质重组,并在某
些位点产生了DNA或染色体水平的甲基化,进而
导致了作用位点的沉默(Zilberman等 2004)。
最近,科学家们在植物中又发现了另外一种
内源 21碱基的 siRNA即 ta-siRNA。
2 ta-siRNA的发现和种类以及形成途径
2.1 ta-siRNA的发现和种类 随着对miRNA研究
的进一步深入,越来越多的研究者根据已有的
miRNA的特征去预测新的miRNA以及它们的靶位
点,了解其功能。Allen等(2005)对拟南芥的 4个
mi R 1 7 3 靶基因( A t 2 g 2 7 4 0 0、A t 1 g 5 0 0 5 5、
At2g39675和At2g39680)的序列分析发现,前 3个
靶基因编码一系列 siRNA,并且都含有 siR255及
序列相似的 siRNA,而 siR255又类似miRNA一样
反式作用于其下游靶基因—— PPR (pentatricopeptide
repeat)类家族蛋白的基因,因此这类由miRNA引
发并能产生 siRNA的基因分别被命名为 trans-act-
ing siRNA1a (TAS1a)、TAS1b和 TAS1c。同样,
miR173 的靶基因 At2g39680 可产生另外 5 个
siRNA,其中的一个是 siR1511,被命名为 TAS2。
对miR390的靶基因进行研究后得到 At3g17185,
它是一个不编码蛋白的基因,通过小RNA点杂交
分析,证实了 At3g17185也是一个 ta-siRNA产生
位点,被命名为 TAS3 (Allen等 2005)。而 TAS4
是在对基因组内的21碱基片段进行一种特殊的运
算法则聚类时发现的(Rajagopalan等 2006)。TAS4
初始转录本在被miR828识别后,引导切割产生相
应的 ta-siRNA。
目前为止,在拟南芥中共发现有 4个家族编
码 ta-siRNA的基因,分别是 TAS1、TAS2、TAS3
和 TAS4 (表 1)。拟南芥中 TAS1基因家族共有 3个
成员,编码 ta-siR255或一系列具有相近功能的 ta-
siRNA。TAS2目前只发现 1个,它的编码产物是
ta-siR1511或者相近功能的 ta-siRNA。TAS3在拟
南芥中也只存在 1个,编码相连的 2个 ta-siRNA,
即 ta-si2141和 ta-si2142。研究发现,在单子叶和
双子叶植物中,TAS3基因中miR390靶位点及两
个相连的 ta-siRNA产生位点高度保守(Allen等
2005),甚至在远古的陆生植物中也存在这样的保
守性(Axtell和Bartel 2005)。TAS4所产生的小RNA
为 ta-siR81。
2.2 ta-siRNA的形成和作用途径 ta-siRNA来自于
TAS基因的转录本,通过特异的miRNA引导的切
割产生21碱基的 ta-siRNA。miRNA引导的切割对
ta-siRNA的产生是必要的(Allen等 2005)。在 ta-
植物生理学通讯 第 44卷 第 2期,2008年 4月380
siRNA的产生过程中,就 TAS家族基因与特异的
miRNA的匹配而言,TAS1和TAS2依赖于miR173
的剪切作用,TAS3依赖于miR390的剪切作用,
TAS4依赖于miR828的剪切作用(表 1)。
ta-siRNA的产生过程大体是这样的:在RNA
聚合酶 II的作用下,MIR基因(miRNA gene)开始
转录,通过内部碱基互补配对形成具有茎环结构
的miRNA前体,然后在DCL1和HYL1 (hyponastic
leaves 1)参与下,miRNA前体被识别切割,产生
miRNA双链结构(miRNA/miRNA*) ;后经HEN1的
甲基化作用,miRNA脱离双链结构后与AGO蛋白
结合组成复合体,并作用于 TAS基因的初级转录
本,产生特异剪切,形成带有 5或 3末端的最初
转录本;最初转录本相继在 SGS3 (suppressor of
gene silencing 3)和RDR6的作用下经过自我复制过
程形成 dsRNA,之后DCL4在miRNA剪切位点处
开始以 21碱基为单位剪切dsRNA,形成一系列在
3末端具有 2 个悬挂碱基的双链 s iRNA。根据
miRNA剪切起始位点的不同,TAS基因转录本能
产生一系列不同的 siRNA。随后,双链 ta-siRNA
中的一条链与AGO蛋白形成复合物,介导靶基因
的mRNA降解(图1)。目前发现AGO7在这一降解
过程中发挥作用。
研究还发现,TAS3基因中同时存在 2个小
RNA靶位点对 ta-siRNA的正确形成是必需的。苔
藓植物中,两端都具有miR390靶位点的 TAS3基
因才能够产生 ta-siRNA;同时,对拟南芥 TAS3
基因进行分析,发现在它的 5 端和 3 端也都有
miR390的靶位点,虽然只有 3端的miR390靶位
点能够发生剪切作用,并产生随后的 21碱基的连
续剪切,但 5端的miR390靶位点对 ta-siRNA的
产生也是必需的(Axtell等 2006)。
3 ta-siRNA在植物发育中的功能和作用
ta-siRNA在植物生长发育中的功能是通过对
其靶基因的调控体现的,涉及的方面非常广泛,
目前关于其功能还在进一步的研究中,不断有新
发现。
3.1 TAS1和TAS2家族的ta-siRNA 根据预测的结
果显示 TAS1和 TAS2的靶基因编码 PPR家族蛋白
以及其他的一些未知蛋白。目前所发现TAS1来源
表 1 拟南芥中的 TAS基因家族
TAS家族 分类 靶基因 miRNA位点 产生的 ta-siRNA
TAS1 TAS 1 a、TAS 1 b、TAS 1 c PPR miR173 D2(+)、D4(+)、D6(+)、D9(- ) (TAS1a )
未知 D4(- )、D5(+)、D6(+) (TAS1b )
D3(+)、D4(+)、D6(- )、D10(- ) (TAS1c )
TAS2 TAS2 PPR miR173 D6 (- )、D9 (- )、D1 1(- )、D1 2(- )
TAS3 TAS 3 a、TAS 3 b、TAS 3 c ARF miR390 D7(+)、D8(+)
TAS4 TAS4 MYB miR828 D4(- )
  表中数据根据 http://asrp.cgrb.oregonstate.edu/db/tasRNAfamily.html编制。
图 1 ta-siRNA的产生及作用途径
根据文献(Gasciolli等 2005;Mallory和 Vaucheret 2006)
绘制。M I R 基因通过分子内碱基配对形成二级发夹结构,在
HYL1、DCL1、HEN1 等一系列蛋白的作用下形成 miRNA双
链结构,成熟的miRNA在AGO1的作用下切割 TAS RNA前体,
引发 RDR6和 SGS3对 TAS RNA的自我复制形成双链结构,之
后 RNA双链被 DCL4 剪切,形成 21 碱基 ta-siRNA双链结构,
之后 ta-siRNA在 AGO1 或 AGO7 帮助下,引起靶基因 mRNA
的降解。
植物生理学通讯 第 44卷 第 2期,2008年 4月 381
的 ta-siRNA的靶基因共有 36个(http://asrp.cgrb.
oregonstate.edu/db/tasRNAfamily.html),其中 30个
是 PPR蛋白基因或者具有类 PPR蛋白位点的基
因,1 个为组蛋白基因,5 个为未知功能表达蛋
白基因。TAS2来源的 ta-siRNA的靶基因共有 33
个,这些基因全部为 PPR蛋白家族或者类 PPR蛋
白家族基因。PPR蛋白家族是植物中发现的最大
的蛋白家族之一,虽然有研究显示 PPR蛋白参与
RNA的生成过程,但是PPR蛋白家族的具体功能
尚不是很清楚,它们可能通过与细胞器转录本的
结合,在线粒体和叶绿体中发挥着重要的作用。
3.2 TAS3家族的 ta-siRNA 目前,TAS3家族的
ta-siRNA生物学功能已经被较深入地研究,就是
通过对生长素响应因子(auxin response factor,
ARF)基因 ARF3和 ARF4进行负调控,调节植物
的生长发育(Fahlgren等 2006;Liu等 2007;
Nogueira等 2007)。
在拟南芥中miR390作用于 TAS3的转录本,
经过AGO1、RDR6和 SGS3的作用产生一系列的
21碱基 siRNA,这一系列的 siRNA中具有活性的
是 ta-si2141 [即 5 D8(+)]和 ta-si2142 [即 5 D7(+)]。
在ARF3和ARF4基因编码区有A和B两个位点是
ta-si2141或 ta-si2142的互补位点,经试验证实,
A位点是TAS3 ta-siRNA的有效沉默作用位点(Allen
等 2005)。在这个位点处,TAS3来源的 ta-siRNA
识别剪切位点,在AGO7的协助下使靶基因ARF3
和 ARF4的转录本降解。
ARF蛋白是一类转录因子,在植物生长素信
号转导过程中起重要作用(Remington等 2004)。研
究发现几乎三分之一的ARF基因被miRNA或者ta-
siRNA所调节。ARF家族蛋白的主要作用就是在
生长素存在的情况下解离生长素的抑制因子,从
而使生长素和生长素响应元件得以相互作用。生
长素对植物发育的影响是多方面的,而 TAS3 ta-
siRNA调节的是ARF3和ARF4基因,因此可以预
见,其功能涉及的方面是很广的。在拟南芥中
TAS3 ta-siRNA通过调节ARF3和ARF4的表达来影
响拟南芥生长发育的时间和模式( F a h l gr en 等
2006)。遗传学分析显示 ARF3和 ARF4在叶片和
花器官形成的过程中具有一定的功能,并且通过
调控 KANADI基因的活性来共同作用决定拟南芥
的极性建立(Pekker等 2005)。同时,在单子叶植
物玉米的研究中也发现,与叶片极性发育相关的
LBL1基因参与 ta-siRNA作用途径(Nogueira等
2007)。
TAS3 ta-siRNA的形成、稳定性及其活性都
依赖于 AGO7 (ZIPPY),而 AGO7最初被认为和生
长发育阶段的改变有关(Fagard等 2000)。ago7
中,从幼年期到成年期的转变时间提前,而且突
变体中ARF3和ARF4的表达量发生上调,说明 ta-
s i R N A 的生成或者活性受到了影响;反过来,
A R F3 和 A R F 4 突变后会延迟成年特征的到来
(Hunter等 2006)。
3.3 TAS4家族的ta-siRNA 对TAS4家族的ta-siRNA
的研究还不是特别深入,目前只发现3个TAS4 ta-
s i R N A 的靶基因,分别是 A T 1 g 5 6 6 5 0、
AT1g66370、AT1g66390,都属于MYB转录因子
基因家族成员。研究表明MYB基因在植物的生长
发育和代谢过程的各个方面都起重要作用:它们
参与植物激素的应答反应(Lea等2007),控制细胞
的形态和模式建成(Chen等 2006),也参与苯丙环
类次生物质的代谢过程的调节(Lea等 2007)。
4 ta-siRNA调控途径中的几个重要蛋白因子
ta-siRNA在植物体中的调控功能至关重要,
而其功能的正常发挥离不开一些重要的蛋白因子的
参与,这些蛋白因子突变同样会造成相应的小
RNA不能正常产生,从而对下游的靶基因功能产
生干扰。这里简单介绍几个重要蛋白因子。
4.1 DCL蛋白 拟南芥编码 4种DCL蛋白(Schauer
等 2002),它们在小RNA生成过程中起重要作用。
D C L 蛋白的体外剪切产物是有 3 突出结构的
dsRNA,不同DCL蛋白产生不同类的小RNA。ta-
siRNA的产生需要 DCL1 的参与(Kasschau等
2007),同时DCL1是许多miRNA前体生成成熟
miRNA所必需的(Park等 2002;Allen等 2005)。
DCL1包含 1个 RNA解旋酶、2个 RNase III类结
构域、1个 PAZ结构域中心以及 C末端的 dsRNA
结合结构域。DCL2参与一些由病毒介导的 22碱
基 siRNA (Xie等 2004)和盐胁迫情况下 24碱基
siRNA的产生(Borsani等 2005),DCL3介导内源
的异染色质或者转基因沉默所造成的 2 4 碱基
siRNA的产生,而DCL4在 RDR6依赖的内源 ta-
植物生理学通讯 第 44卷 第 2期,2008年 4月382
siRNA产生过程中是必需的(Gasciolli等2005;Xie
等 2005;Liu等 2007)。dcl4突变体中 ta-siRNA的
积累减少,而 ta-siRNA靶基因的mRNA显著增加
(Xie等 2005;Liu等 2007)。鉴于 ta-siRNA产生
过程的特殊性,它既需要 mi R N A 产生过程中
DCL1的参与,又需要DCL4的参与才能最终产生
ta-siRNA。
4.2 AGO家族蛋白 siRNA和miRNA都要通过形
成 RISC复合体(RNA induced silencing complex)完
成其负向调控作用。RISC复合体包含小 RNA的
单链结构和其他的一些蛋白成分,其核心区域是
一系列的AGO家族蛋白(Vaucheret等2004)。AGO
蛋白有保守性很高的 PAZ结构域和 PIWI结构域。
PAZ结构域有 ssRNA结合活性,也可以和 dsRNA
3突出结构发生较弱的结合。PIWI结构域有核酸
内切酶活性,能介导AGO蛋白与Dicer的相互作
用(Jover-Gil等 2005)。
AGO基因最初是在拟南芥中发现的(Bohmert
等 1998)。在拟南芥中AGO基因家族至少有 10个
成员,其中AGO1蛋白强烈结合miRNA,在RNA
沉默过程中起重要的作用 ( B a u m b e r g e r 和
Baulcombe 2005)。目前在对miR162的研究中显
示AGO1在核中和胞质中都有作用(Xie等 2003)。
在动物中已经发现AGO2在基因沉默过程中具有重
要作用(Bhattacharyya和 Filipowicz 2007),但在植
物中AGO2的沉默作用尚未得到进一步证实(Allen
等 2005)。AGO4主要控制位置特异性的 siRNA的
积累,以及DNA和组蛋白的甲基化(Zilberman等
2004)。AGO7主要在 ta-siRNA沉默靶基因过程中
起作用,其中参与 TAS3 ta-siRNA对靶基因 ARF3
和ARF4转录本降解的途径已经被证实(Fahlgren等
2006)。
4.3 RDR蛋白家族 RDR蛋白是一类RNA依赖的
RNA聚合酶。拟南芥中至少有 3种有活性的RDR
蛋白:RDR1、RDR2和RDR6 (Xie等2004)。RDR1
主要在病毒引起的基因沉默过程中起作用,RDR2
在内源转录本产生 siRNA的过程中起作用(Xie等
2003)。RDR2突变对ta-siRNA的产生没有影响(Xie
等 2005)。而 RDR6则除了在转基因、某些病毒
以及一些特异的内源mRNA剪切过程中起重要作
用外,在 ta-siRNA作用过程中起重要作用(如 2.2
节所述)。
4.4 SGS3 SGS3在转录后基因沉默过程中起作用
(Elmayan等 1998),是植物中特异的蛋白,SGS3
对 ta-siRNA的生成也是必需的,是产生稳定的
miRNA引导结构的前体,并促进 dsRNA在RDR6
的作用下形成催化结构,之后结合 DCL4,再以
一种末端依赖的方式产生 ta-siRNA (Peragine等
2004)。
4.5 HEN1和HYL1 HEN1是一种转甲基酶,它
主要在miRNA的生物合成和3末端残基的甲基化
过程中起重要作用(Yu等 2005)。HEN1不仅在
miRNA的甲基化过程中起作用,而且对 siRNA的
甲基化作用也是必需的(Yang等 2007)。HYL1是
d s R N A 结合蛋白,它和 D C L 1 相互作用,对
miRNA的生成是必需的(Wu等 2007)。
5 结语
目前,对于 ta-siRNA的研究进展十分迅速。
在对陆生植物中小RNA的研究中显示了在早期苔
藓植物中存在 m i R 1 2 1 9 引导切割产生的 t a -
siRNA,其靶基因也是 ARF家族基因(Axtell等
2007),它们在进化过程中经历了各种各样的变
化。而因为 ta-siRNA进化的保守性,对其功能的
研究也开始在玉米等其他植物中展开(Nogueira等
2007)。虽然这些 ta-siRNA的生物合成途径已经大
体上清楚,功能的了解也正在逐步加深,但是目
前仍然存在许多问题有待思考和解决。在miR173
或者miR390引导切割后,TAS前体RNA在RDR6
等蛋白协同作用下最终产生 ta-siRNA,那么其他
miRNA引导的对靶基因mRNA的切割能不能进一
步产生 siRNA呢?如果不能,那么这种差异存在
的机制是什么?miR173引导上游切割产生TAS1和
TAS2 ta-siRNA,而miR390引导下游切割产生
TAS3 ta-siRNA (Axtell等 2006),这样的 ta-siRNA
切割产生方式由什么机制决定?在 ta-siRNA对靶
基因mRNA切割的过程中,AGO1和AGO7的具
体作用过程正在逐步被揭示,那么会不会有其他
的AGO蛋白作用于 ta-siRNA的作用过程?TAS基
因的表达调控模式是什么?不同 ta-siRNA之间有
什么关系?相信这些令人疑惑的问题会随着研究的
植物生理学通讯 第 44卷 第 2期,2008年 4月 383
深入而逐步被阐明。
参考文献
Allen E, Xie Z, Gustafson AM, Carrington JC (2005). MicroRNA-
directed phasing during trans-acting siRNA biogenesis in
plants. Cell, 121 (2): 207~221
Axtell MJ, Bartel DP (2005). Antiquity of microRNAs and their
targets in land plants. Plant Cell, 17 (6): 1658~1673
Axtell MJ, Jan C, Rajagopalan R, Bartel DP (2006). A two-hit
trigger for siRNA biogenesis in plants. Cell, 127 (3): 565~577
Axtell MJ, Snyder JA, Bartel DP (2007). Common functions for
diverse small RNAs of land plants. Plant Cell, 19 (6):
1750~1769
B a u m b er g e r N , B a u lc o m be D C ( 2 0 0 5 ) . A r a b id o p s i s
ARGONAUTE1 is an RNA slicer that selectively recruits
microRNAs and short interfering RNAs. Proc Natl Acad Sci
USA, 102 (33): 11928~11933
Bhattacharyya SN, Fi lipowicz W (2 007). Argonau tes and
company: sailing against the wind. Cell, 128 (6): 1027~1028
Bohmert K, Camus I, Bellini C, Bouchez D, Caboche M, Benning
C (1998). AGO1 defines a novel locus of Arabidopsis control-
ling leaf development. EMBO J, 17 (1): 170~180
Bohnsack MT, Czaplinski K, Görlich D (2004). Exportin 5 is a
RanGTP-dependent dsRNA-binding protein that mediates
nuclear export of pre-miRNAs. RNA, 10 (2): 185~191
Borsani O, Zhu J, Verslues PE, Sunkar R, Zhu JK (2005). Endog-
enous siRNAs derived from a pair of natural cis-antisense
transcripts regulate salt tolerance in Arabidopsis. Cell, 123
(7): 1279~1291
Chen YH, Yang XY, He K, Liu MH, Li JG, Gao ZF, Lin ZQ, Zhang
YF, Wang XX, Qiu XM et al (2006). The MYB transcription
factor superfamily of Arabidopsis: expression analysis and
phylogenetic comparison with the rice MYB family. Plant
Mol Biol, 60 (1): 107~124
Elmayan T, Balzergue S, Béon F, Bourdon V, Daubremet J, Guénet
Y, Mourrain P, Palauqui JC, Vernhettes S, Vialle T et al
(1998). Arabidopsis mutants impaired in cosuppression.
Plant Cell, 10 (10): 1747~1758
Fagard M, Boutet S, Morel JB, Bellini C, Vaucheret H (2000).
AGO1, QDE-2, and RDE-1 are related proteins required for
post-transcriptional gene silencing in plants, quelling in fungi,
and RNA interference in animals. Proc Natl Acad Sci USA,
97 (21): 11650~11654
Fahlgren N, Montgomery TA, Howell MD, Allen E, Dvorak SK,
Alexander AL, Carrington JC (2006). Regulation of AUXIN
RESPONSE FACTOR3 by TAS3 ta-siRNA affects develop-
mental timing and patterning in Arabidopsis. Curr Biol, 16
(9): 939~944
Gasciolli V, Mallory AC, Bartel DP, Vaucheret H (2005). Par-
tially redundant functions of Arabidopsis DICER-like en-
zymes and a role for DCL4 in producing trans-acting siRNAs.
Curr Biol, 15 (16): 1494~1500
Hunter C, Willmann MR, Wu G, Yoshikawa M, de la Luz Gutiérrez-
Nava M, Poethig SR (2006). Trans-acting siRNA-mediated
repression of ETTIN and ARF4 regulates heteroblasty in
Arabidopsis. Development, 133 (15): 2973~2981
Jover-Gil S, Candela H, Ponce MR (2005). Plant microRNAs and
development. Int J Dev Biol, 49 (5~6): 733~44
Kasschau KD, Fahlgren N, Chapman EJ, Sullivan CM, Cumbie JS,
Givan SA, Carrington JC (2007). Genome-wide profiling and
analysis of Arabidopsis siRNAs. PLoS Biol, 5 (3): 0479~0493
Kurihara Y, Watanabe Y (2004). Arabidopsis micro-RNA biogen-
esis through Dicer-like 1 protein functions. Proc Natl Acad
Sci USA, 101 (34): 12753~12758
Lea US, Slimestad R, Smedvig P, Lillo C (2007). Nitrogen defi-
ciency enhances expression of specific MYB and bHLH tran-
scription factors and accumulation of end products in the
flavonoid pathway. Planta, 225 (5): 1245~1253
Liu B, Chen Z, Song X, Liu C, Cui X, Zhao X, Fang J, Xu W,
Zhang H, Wang X et al (2007). Oryza sativa Dicer-like4
reveals a key role for small interfering RNA silencing in
plant development. Plant Cell, 19 (9): 2705~2718
Mallory AC, Vaucheret H (2006). Functions of microRNAs and
related small RNAs in plants. Nat Genet, 38 (Suppl): S31~S36
Nogueira FT, Madi S, Chitwood DH, Juarez MT, Timmermans
MCP (2007). Two small regulatory RNAs establish oppos-
ing fa tes of a developmental axis. Genes Dev, 21 (7):
750~755
Park MY, Wu G, Gonzalez-Sulser A, Vaucheret H, Poethig RS
(2005). Nuclear processing and export of microRNAs in
Arabidopsis. Proc Natl Acad Sci USA, 102 (10): 3691~
3696
Park W, Li J, Song R, Messing J, Chen X (2002). CARPEL
FACTORY, a Dicer homolog, and HEN1, a novel protein,
act in microRNA metabolism in Arabidopsis thaliana. Curr
Biol, 12 (17): 1484~1495
Pekker I, Alvarez JP, Eshed Y (2005). Auxin response factors
mediate Arabidopsis organ asymmetry via modulation of
KANADI activity. Plant Cell, 17 (11): 2899~2910
Peragine A, Yoshikawa M, Wu G, Albrecht HL, Poethig RS (2004).
SGS3 and SGS2/SDE1/RDR6 are required for juvenile devel-
opment and the production of trans-acting siRNAs in
Arabidopsis. Genes Dev, 18: 2368~2379
Rajagopalan R, Vaucheret H, Trejo J, Bartel DP (2006). A diverse
and evolutionarily fluid set of microRNAs in Arabidopsis
thaliana . Genes Dev, 20: 3407~3425
Remington DL, Vision TJ, Guilfoyle TJ, Reed JW (2004). Con-
trasting modes of diversification in the Aux/IAA and ARF
gene families. Plant Physiol, 135 (3): 1738~1752
植物生理学通讯 第 44卷 第 2期,2008年 4月384
Schauer SE, Jacobsen SE, Meinke DW, Ray A (2002). DICER-
LIKE1: blind men and elephants in Arabidopsis development.
Trends Plant Sci, 7 (11): 487~491
Vaucheret H, Vazquez F, Crété P, Bartel DP (2004). The action of
ARGONAUTE1 in the miRNA pathway and its regulation by
the miRNA pathway are crucial for plant development. Genes
Dev, 18 (10): 1187~1197
Vazquez F, Vaucheret H, Rajagopalan R, Lepers C, Gasciolli V,
Mallory AC, Hilbert JL, Bartel DP, Crété P (2004). Endog-
enous trans-acting siRNAs regulate the accumulation of
Arabidopsis mRNAs. Mol Cell, 16 (1): 69~79
Wu F, Yu L, Cao W, Mao Y, Liu Z, He Y (2007). The N-terminal
double-stranded RNA binding domains of Arabidopsis
HYPONASTIC LEAVES1 are sufficient for pre-microRNA
processing. Plant Cell, 19 (3): 914~925
Xie Z, Allen E, Wilken A, Carrington JC (2005). DICER-LIKE 4
functions in trans-acting small interfering RNA biogenesis
and vegetative phase change in Arabidopsis thaliana . Proc
Natl Acad Sci USA, 102 (36): 12984~12989
Xie Z, Johansen LK, Gustafson AM, Kasschau KD, Lellis AD,
Zilberman D, Jacobsen SE, Carrington JC (2004). Genetic and
functional diversification of small RNA pathways in plants.
PLoS Biol, 2 (5): 0642~0652
Xie Z, Kasschau KD, Carrington JC (2003). Negative feedback
regulation of Dicer-Like1 in Arabidopsis by microRNA-
guided mRNA degradation. Curr Biol, 13 (9): 784~789
Yang Z, Vilkaitis G, Yu B, Klimasauskas S, Chen X (2007). Ap-
proaches for studying microRNA and small interfering RNA
methylation in vitro and in vivo . Methods Enzymol, 427:
139~154
Yu B, Yang Z, Li J, Minakhina S, Yang M, Padgett RW, Steward
R, Chen X (2005). Methylation as a crucial step in plant
microRNA biogenesis. Science, 307 (5711): 932~935
Zhang B, Pan X, Cobb GP, Anderson TA (2006). Plant microRNA:
a small regulatory molecule with big impact. Dev Biol, 289
(1): 3~16
Zilberman D, Cao X, Johansen LK, Xie Z, Carrington JC, Jacobsen
SE (2004). Role of Arabidopsis ARGONAUTE4 in RNA-
directed DNA methylation triggered by inverted repeats. Curr
Biol, 14 (13): 1214~1220