全 文 ：植物保护学报 Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ， ２０１６， ４３（２）： ３００ － ３０６ ＤＯＩ： １０􀆰 １３８０２ ／ ｊ． ｃｎｋｉ． ｚｗｂｈｘｂ． ２０１６􀆰 ０２􀆰 ０１８
基金项目：中央高校特别资助项目（２０１１ＪＳ０８０）
∗通讯作者（Ａｕｔｈｏｒ ｆｏｒ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅ）， Ｅ⁃ｍａｉｌ： ｗｘｙｒｔｌ＠ １６３． ｃｏｍ
收稿日期： ２０１４ － １１ － １１
Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ａｎｄ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ
ｏｎ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｓｔｏｒａｇｅ
Ｗａｎｇ Ｘｕｅｇｕｉ１，３ 　 Ｓｈｅｎ Ｌｉｔａｏ２ 　 Ｙａｏ Ｊｉａｎｈｏｎｇ３ 　 Ｌｉｕ Ｆａｎ３ 　 Ｗａｎｇ Ｘｉｙａｏ３∗
（１． Ｂｉｏｒａｔｉｏｎａｌ Ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ， Ｓｉｃｈｕａｎ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ， Ｃｈｅｎｇｄｕ ６１１１３０， Ｓｉｃｈｕａｎ Ｐｒｏｖｉｎｃｅ， Ｃｈｉｎａ；
２． Ｃｏｌｌｅｇｅ ｏｆ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ， Ｓｉｃｈｕａｎ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ， Ｃｈｅｎｇｄｕ ６１１１３０， Ｓｉｃｈｕａｎ Ｐｒｏｖｉｎｃｅ， Ｃｈｉｎａ；
３． Ｃｏｌｌｅｇｅ ｏｆ Ａｇｒｏｎｏｍｙ， Ｓｉｃｈｕａｎ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ， Ｃｈｅｎｇｄｕ ６１１１３０， Ｓｉｃｈｕａｎ Ｐｒｏｖｉｎｃｅ， Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ： Ｔｏ ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｅ ｔｈｅ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ａｎｄ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ （ＥＯｓ） ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｆｒｏｍ
Ｃｉｔｒｕｓ ｌｉｍｏｎｕｍ， Ｃｉｎｎａｍｏｍｕｍ ｃａｓｓｉａ， Ｃｙｍｂｏｐｏｇｏｎ ｃｉｔｒａｔｕｓ ａｎｄ Ａｌｌｉｕｍ ｓａｔｉｖｕｍ ｏｎ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｄｕｒｉｎｇ
ｓｔｏｒａｇｅ， ｔｈｅ ｓｐｒｏｕｔ ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ， ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓ， ｒｅｓｐｉｒａｔｉｏｎ， α⁃ａｍｙｌａｓｅ， ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｎｄ ｔｏｔａｌ ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒｓ
ｏｆ Ｚｈｏｎｇｓｈｕ ２ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｗｅｒｅ ａｓｓａｙｅｄ ｐｏｓｔ⁃ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ４５， ６０， ７５ ａｎｄ ９０ ｄ． Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ
ＥＯ ｏｆ Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ ｈａｄ ｔｈｅ ｓｔｒｏｎｇｅｓｔ ｅｆｆｅｃｔ ｏｎ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｒａｔｅｓ ｏｆ １􀆰 ８８％ －１０􀆰 ３３％ ，
ｒｅｓｐｉｒａｔｉｏｎ ｏｆ １􀆰 ４８ － １０􀆰 ５５ ｍｇ ＣＯ２·ｇ － １·ｈ － １， ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ３５３􀆰 ３７ － １７６􀆰 ２３ Ｕ·ｇ － １·ｍｉｎ － １
ｆｒｏｍ ４５ ｔｏ ９０ ｄ， ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓ ｏｆ ５１􀆰 ６７ － １０５􀆰 ９３ ｍｇ ／ ｄ， ａｎｄ ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ７􀆰 ０７ － １２􀆰 ８７ μｇ ／ ｇ
ｆｒｏｍ ６０ ｔｏ ９０ ｄ， ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ． Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ ｓｈｏｗｅｄ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｉｎ ｔｈｅ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ
ｒａｔｅｓ， ｒｅｓｐｉｒａｔｉｏｎｓ， ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ， ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓｅｓ ａｎｄ ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒ ｃｏｎｔｅｎｔｓ． Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ
ｔｈａｔ ｔｈｅ ＥＯ ｏｆ Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ ｃｏｕｌｄ ｂｅ ａ ｓａｆｅ ａｎｄ ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ ｗａｙ ｔｏ ｐｒｏｌｏｎｇ ｔｈｅ ｓｔｏｒａｇｅ ｐｅｒｉｏｄ ｆｏｒ ｔｈｅ ｆｕｒｔｈｅｒ
ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｓｐｒｏｕｔ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ．
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ： ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｓｐｒｏｕｔ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ； Ａｌｌｉｕｍ ｓａｔｉｖｕｍ； α⁃ａｍｙｌａｓｅ； ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ； ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒ
几种精油对马铃薯种薯储藏期的生理生化影响
王学贵１，３ 　 沈丽淘２ 　 姚建洪３ 　 刘　 帆３ 　 王西瑶３∗
（１．四川农业大学无公害农药研究室， 成都 ６１１１３０； ２．四川农业大学资源环境学院， 成都 ６１１１３０；
３．四川农业大学农学院， 成都 ６１１１３０）
摘要： 为明确柠檬、肉桂、香茅以及大蒜精油对马铃薯种薯储藏期间生理生化的影响，测定了精油
处理储藏 ４５ ～ ９０ ｄ后，对中薯 ２ 号抑芽、重量损失、呼吸速率、α⁃淀粉酶、过氧化物酶以及总糖含量
的影响。 结果表明，从马铃薯种薯储藏后 ４５ ～ ９０ ｄ 内，大蒜精油处理种薯萌发率为 １􀆰 ８８％ ～
１０􀆰 ３３％ ，呼吸速率为 １􀆰 ４８ ～ １０􀆰 ５５ ｍｇ ＣＯ２·ｇ － １·ｈ － １，过氧化物酶活为 ３５３􀆰 ３７ ～ １７６􀆰 ２３ Ｕ·ｇ － １·
ｍｉｎ － １，而在 ６０ ～ ９０ ｄ内重量损失率为 ５１􀆰 ６７ ～ １０５􀆰 ９３ ｍｇ ／ ｄ，可溶性糖含量为 ７􀆰 ０７ ～ １２􀆰 ８７ μｇ ／ ｇ，
均与对照差异显著。 研究表明，大蒜精油可作为马铃薯种薯抑芽剂延长休眠。
关键词： 马铃薯种薯抑芽剂；大蒜精油；α⁃淀粉酶；过氧化物酶；可溶性糖
　 　 Ａｔ ｐｒｅｓｅｎｔ， ｐｏｔａｔｏ ｈａｓ ｂｅｃｏｍｅ ｔｈｅ ｆｏｕｒｔｈ ｆｏｏｄ
ｃｒｏｐ ａｆｔｅｒ ｒｉｃｅ， ｍａｉｚｅ ａｎｄ ｗｈｅａｔ （ Ｚａｎｇｅｎｅｈ ｅｔ ａｌ． ，
２０１０）． Ｈｏｗｅｖｅｒ， ｔｈｅｒｅ ｉｓ ａ ｍａｊｏｒ ｏｂｓｔａｃｌｅ ｔｈａｔ ｔｈｅ
ｐｏｓｔ⁃ｈａｒｖｅｓｔ ｓｔｏｒａｇｅ ｐｅｒｉｏｄ ｏｆ ｍａｎｙ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏｅｓ ｗｅｒｅ
ｓｈｏｒｔｅｒ ｔｈａｎ ｔｈｅ ｔｉｍｅ ｆｒｏｍ ｆｉｒｓｔ ｈａｒｖｅｓｔ ｔｏ ｔｈｅ ｓｅｃｏｎｄ
ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ， ａｎｄ ｌｅａｄ ｔｏ ｔｈｅ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ
（Ｏｗｏｌａｂｉ ｅｔ ａｌ． ，２０１３）． Ｗｈｅｎ ｔｈｅ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏｅｓ ａｒｅ
ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｄ ｔｏ ｆｉｅｌｄ ｆｒｏｍ ｓｔｏｒｅｄ ｐｌａｃｅ， ｔｈｅ ｂｕｄｓ ａｒｅ
ｖｅｒｙ ｅａｓｉｌｙ ｂｒｏｋｅｎ． Ｖａｒｉｏｕｓ ｍｅｔｈｏｄｓ ｆｏｒ ｐｒｏｌｏｎｇｉｎｇ ｔｈｅ
ｐｅｒｉｏｄ ｏｆ ｔｕｂｅｒ ｄｏｒｍａｎｃｙ， ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｃｈｅｍｉｃａｌｓ， ｌｏｗ
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｃｏｌｄ ｓｔｏｒａｇｅ ａｎｄ ｓｏ ｏｎ， ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｕｓｅｄ．
Ｈｏｗｅｖｅｒ， ｔｈｅ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｃｏｌｄ ｓｔｏｒａｇｅ ｎｅｅｄｓ ｒｅ⁃
ｆｒｉｇｅｒａｔｏｒ ａｎｄ ｅｌｅｃｔｒｉｃ ｅｎｅｒｇｙ， ｗｈｉｃｈ ｉｓ ｅｘｐｅｎｓｉｖｅ ａｎｄ
ｉｎｃｏｎｖｅｎｉｅｎｔ ｉｎ ｓｏｍｅ ｍｏｕｎｔａｉｎ ｄｉｓｔｒｉｃｔｓ． Ｓｅｖｅｒａｌ ｃｏｍ⁃
ｍｅｒｃｉａｌ ｃｈｅｍｉｃａｌｓ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｕｓｅｄ， ｓｕｃｈ ａｓ ｃｈｌｏｒ⁃
ｐｒｏｐｈａｍ （ ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ Ｎ⁃（ ３⁃ｃｈｌｏｒｏｐｈｅｎｙｌ ） ｃａｒｂａｍａｔｅ，
ｗｈｉｃｈ ｉｓ ｕｓｅｄ ｔｏ ｉｎｈｉｂｉｔ ｔｈｅ ｐｏｔａｔｏ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ （Ｍａｈａｊａｎ
ｅｔ ａｌ． ，２００８）． Ｈｏｗｅｖｅｒ， ｔｈｅ ｉｒｒｅｖｅｒｓｉｂｌｅ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｏｎ
ｔｈｅ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｃｏｕｌｄ ｌｅａｄ ｔｏ ｔｈｅ ｌｏｗ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｉｎ ａｇｒｉ⁃
ｃｕｌｔｕｒａｌ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ （Ｈａｒｒｉｓ，１９７８）． Ｓｏ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ
ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｉｓ ａｎ ｕｒｇｅｎｔ ｔａｓｋ．
Ｄｕｅ ｔｏ ｔｈｅ ｓａｆｅｔｙ ａｎｄ ｃｏｎｖｅｎｉｅｎｃｅ ｏｆ ｂｏｔａｎｉｃａｌ
ｐｅｓｔｉｃｉｄｅｓ （Ｒｕｉｕ ｅｔ ａｌ． ，２００８）， ｔｈｅ ｓｅａｒｃｈ ｆｏｒ ｎａｔｕｒａｌ
ｐｌａｎｔ⁃ｄｅｒｉｖｅｄ ｐｒｏｄｕｃｔｓ ｗｉｔｈ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｈａｓ ｂｅ⁃
ｃｏｍｅ ａ ｈｏｔ ａｒｅａ ｉｎ ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ ｓｃｉｅｎｃｅ （ Ｃｈｏ ｅｔ ａｌ． ，
２００７；Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ． ，２０１０；２０１４）． Ｓｅｖｅｒａｌ ｎａｔｕｒａｌ ｐｒｏｄ⁃
ｕｃｔｓ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｆｏｕｎｄ ｔｏ ｉｎｈｉｂｉｔ ｐｏｔａｔｏ ｓｅｅｄ ｔｕｂｅｒ ｓｐｒｏｕ⁃
ｔｉｎｇ ａｎｄ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｅｌｏｎｇａｔｉｏｎ， ａｎｄ ｓｏｍｅ ｐｌａｎｔ⁃ｄｅｒｉｖｅｄ
ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ （ ＥＯｓ） ｓｕｃｈ ａｓ Ｒｏｓｍａｒｉｎｕｓ ｏｆｆｉｃｉｎａｌｉｓ，
Ｓａｔｕｒｅｊａ ｔｈｙｍｂｒａ ａｎｄ Ｃｏｒｉｄｏｔｈｙｍｕｓ ｃａｐｉｔａｔｕｓ ｃｏｕｌｄ
ｐｏｓｓｅｓｓ ｔｈｅ ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ ｏｆ ｉｎｈｉｂｉｔｉｎｇ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ （ Ｃｉｚｋｏ⁃
ｖａｅｔ ａｌ． ，２０００）． Ｇóｍｅｚ⁃Ｃａｓｔｉｌｌｏ ｅｔ ａｌ． （２０１３） ｆｏｕｎｄ
ｐｅｐｐｅｒｍｉｎｔ ａｎｄ ｃｏｒｉａｎｄｅｒ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｐｏｓｓｅｓｓｅｄ ｔｈｅ
ｓｔｒｏｎｇ ｓｐｒｏｕｔ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ ｗｉｔｈ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｒａｔｅｓ ｏｆ ｍｏｒｅ
ｆｒｏｍ ６５％ ｔｏ ９５％ ｒｅｓｐｅｃｔ ｔｏ ｔｈｅｉｒ ｃｏｎｔｒｏｌ． Ｏｗｏｌａｂｉ ｅｔ
ａｌ． （ ２０１３ ） ａｌｓｏ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｔｈｅ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎｓ ｏｆ ＥＯｓ ｏｆ
Ｍｏｎｏｄｏｒａ ｍｙｒｉｓｔｉｃａ， Ｃｙｍｂｏｐｏｇｏｎ ｃｉｔｒａｔｕｓ， Ｃｈｅｎｏｐｏｄｉ⁃
ｕｍ ａｍｂｒｏｓｉｏｉｄｅｓ， Ｌｉｐｐｉａ ｍｕｌｔｉｆｌｏｒａ ａｎｄ Ｚｉｎｇｉｂｅｒ ｏｆｆｉｃｉ⁃
ｎａｌｅ ｏｎ ｐｏｔａｔｏ ｓｐｒｏｕｔ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｆｏｕｎｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｔｕｂｅｒｓ
ｔｒｅａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｌ． ｍｕｌｔｉｆｌｏｒａ ａｎｄ Ｃ． ｃｉｔｒａｔｕｓ ｈａｄ ｓｈｏｒｔｅｒ
ｓｐｒｏｕｔ ａｔ １４ ｄ ｗｉｔｈ ｓｐｒｏｕｔ ｌｅｎｇｔｈ ｏｆ ４􀆰 ００ ｍｍ ａｎｄ ４􀆰 ５６
ｍｍ ｃｏｍｐａｒｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ６􀆰 １８ ｍｍ． Ａｔ ２８ ｄ，
Ｚ􀆰 ｏｆｆｉｃｉｎａｌｅ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈｅ ｓｔｒｏｎｇｅｓｔ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｗｉｔｈ ｔｈｅ
ｌｅｎｇｔｈ ｏｆ ５􀆰 ６５ ｍｍ ｃｏｍｐａｒｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ
８􀆰 ７５ ｍｍ．
Ｔｏ ｓｃｒｅｅｎ ｔｈｅ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｓｐｒｏｕｔ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ， ｉｎｃｌｕ⁃
ｄｉｎｇ ｔｈｅ ＥＯｓ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｆｒｏｍ Ｃ． ｌｉｍｏｎｕｍ， Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ，
Ｃ． ｃａｓｓｉａ， ａｎｄ Ｃ． ｃｉｔｒａｔｕｓ， ｏｎ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏｅｓ， ａｎｄ ｂｅｔ⁃
ｔｅｒ ｕｎｄｅｒｓｔａｎｄ ｔｈｅ ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ， ｔｈｅ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ｉｎｈｉｂｉ⁃
ｔｉｏｎ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｗｅｒｅ ａｓｓａｙｅｄ， ａｎｄ ｔｈｅ ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓ， ｉｎ⁃
ｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｒｅｓｐｉｒａｔｉｏｎ， ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ， α⁃ａｍｙｌａｓｅ
ａｃｔｉｖｉｔｙ， ａｎｄ ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒ ｃｏｎｔｅｎｔ ｗｅｒｅ ａｌｓｏ ｉｎｖｅｓｔｉｇａ⁃
ｔｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ｓｔｕｄｙ．
１ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ ａｎｄ Ｍｅｔｈｏｄｓ
１􀆰 １ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ
Ｐｏｔａｔｏ ｖａｒｉｅｔｙ： Ｚｈｏｎｇｓｈｕ ２ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏｅｓ ｗｅｒｅ ｏｂ⁃
ｔａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｆｉｅｌｄ， ｗｈｉｃｈ ｗｅｒｅ ｈａｒｖｅｓｔｅｄ
ａｂｏｕｔ ａ ｗｅｅｋ ａｎｄ ｓｔｏｒｅｄ ａｔ ｔｈｅ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ ｏｆ （７５ ±
１０）％ ｈｕｍｉｄｉｔｙ ａｎｄ １４ ± ２℃ ．
Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ： Ｂａ（ＯＨ） ２， Ｋ２Ｈ２ＰＯ４， Ｎａ２ＨＰＯ４，
ＮａＨ２ＰＯ４， ｏｘａｌｉｃ ａｃｉｄ， ｇｕａｉａｃ⁃ｂａｓｅｄ ｐｈｅｎｏｌｉｃ， ｃｉｔ⁃
ｒａｔｅ， ｐｈｅｎｏｌｐｈｔｈａｌｅｉｎ， Ｔｒｉｓ， ＥＤＴＡ， Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ⁃１００，
ａｎｄ ＤＴＴ （ ａｎａｌｙｔｉｃａｌ ｒｅａｇｅｎｔ） ｗｅｒｅ ｐｕｒｃｈａｓｅｄ ｆｒｏｍ
Ｂｅｓｔ⁃ｒｅａｇｅｎｔ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｃｏ． Ｌｔｄ， Ｃｈｅｎｇｄｕ， Ｃｈｉｎａ．
Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ： ２０００Ｕｖ⁃ｖｉｓ ｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒ， Ｕｎｉ⁃
ｃｏ （Ｓｈａｎｇｈａｉ） Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔ Ｃｏ． ， Ｌｔｄ． ； ＹＰ⁃１８６０Ａ ｒｅ⁃
ｆｒｉｇｅｒａｔｅｄ ｃａｂｉｎｅｔ， Ｈａｉｅｒ Ｇｒｏｕｐ Ｃｏ． ， Ｌｔｄ．
１􀆰 ２ Ｍｅｔｈｏｄｓ
１􀆰 ２􀆰 １ ＥＯ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ
Ｌｅａｖｅｓ ｏｆ Ｃ． ｌｉｍｏｎｕｍ， Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ， Ｃ． ｃａｓｓｉａ，
ａｎｄ Ｃ． ｃｉｔｒａｔｕｓ ｗｅｒｅ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｄｕｒｉｎｇ Ｏｃｔｏｂｅｒ， ２０１３
ｆｒｏｍ Ｌｅｓｈａｎ Ｃｉｔｙ ｉｎ Ｃｈｉｎａ． ＥＯｓ ｗｅｒｅ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｆｒｏｍ
ｌｅａｖｅｓ ｓｕｂｊｅｃｔｅｄ ｔｏ ３ － ４ ｈ ｈｙｄｒｏｄｉｓｔｉｌｌａｔｉｏｎ ｕｓｉｎｇ ａ
ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｃｌｅｖｅｎｇｅｒ ａｐｐａｒａｔｕｓ， ｄｒｉｅｄ ｂｙ ａｎｈｙｄｒｏｕｓ ｓｏ⁃
ｄｉｕｍ ｓｕｌｆａｔｅ， ａｎｄ ｓｔｏｒｅｄ ａｔ ４℃（Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ． ， ２０１４）．
１􀆰 ２􀆰 ２ ＥＯｓ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
Ｔｈｅ ＥＯｓ ｏｆ Ｃ． ｌｉｍｏｎｕｍ， Ｃ． ｃａｓｓｉａ， Ｃ． ｃｉｔｒａｔｕｓ
ａｎｄ Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ ｗｅｒｅ ａｃｃｕｒａｔｅｌｙ ｗｅｉｇｈｔｅｄ ｉｎｔｏ ａ ｍａｓｓ ｏｆ
ａｂｓｏｒｂｅｎｔ ｃｏｔｔｏｎ ａｎｄ ｐｕｔ ｉｎｔｏ ａ ｐｌａｓｔｉｃ ｃｌｏｓｕｒｅ ｐｏｃｋｅｔ
（１０ ｃｍ × １５ ｃｍ） ｔｏ ａｃｈｉｅｖｅ ａ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ０􀆰 ２
ｍｇ ／ ｍＬ， ａｎｄ ｗｉｔｈｏｕｔ ＥＯ ａｓ ａ ｃｏｎｔｒｏｌ． Ｆｏｕｒ ｒｅｐｌｉｃａ⁃
ｔｉｏｎｓ ｗｅｒｅ ｃｏｎｄｕｃｔｅｄ ｆｏｒ ｅａｃｈ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ａｎｄ １００ ｓｅｅｄ
ｐｏｔａｔｏｅｓ ｗｅｒｅ ｐｒｅｐａｒｅｄ ｆｏｒ ｅａｃｈ ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎ， ｉｎ ｗｈｉｃｈ
ｏｆ ５０ ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ ｆｏｒ ｔｈｅ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ ｉｎｄｅｘｅｓ， ｉｎｃｌｕ⁃
ｄｉｎｇ ｔｈｅ ｂｕｄ ｎｕｍｂｅｒｓ ａｎｄ ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓ ｉｎ ｏｎｅ ｃｌｏｓｕｒｅ
ｐｏｃｋｅｔ． Ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ５０ ｗｅｒｅ ｆｏｒ ｔｈｅ ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ｏｆ ｐｈｙｓｉｏ⁃
ｌｏｇｉｃａｌ ａｎｄ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ｉｎｄｅｘｅｓ， ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ α⁃ａｍｙｌａｓｅ，
ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｎｄ ｔｏｔａｌ ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒｓ ｉｎ ａｎｏｔｈｅｒ ｃｌｏｓｕｒｅ
ｐｏｃｋｅｔ． Ａｌｌ ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ ｗｅｒｅ ｋｅｐｔ ｉｎ ａ ｒｅｆｒｉｇｅｒａｔｅｄ ｃａｂｉ⁃
ｎｅｔ ａｔ ４℃ ｉｎ ｗｈｏｌｅ ｄａｒｋｎｅｓｓ． Ｗｈｅｎ ａｌｌ ｉｎｄｅｘｅｓ ｗｅｒｅ
ｔｅｓｔｅｄ， ａ ｎｅｗ ｍａｓｓ ｏｆ ａｂｓｏｒｂｅｎｔ ｃｏｔｔｏｎ ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ ０􀆰 ２
１０３２ 期 Ｗａｎｇ Ｘｕｅｇｕｉ， ｅｔ ａｌ． ： Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ａｎｄ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｏｎ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｓｔｏｒａｇｅ
ｍｇ ／ ｍＬ ＥＯｓ ｗｅｒｅ ｐｕｔ ｉｎｔｏ ｔｈｅ ｐｏｃｋｅｔｓ ｉｎｓｔｅａｄ ｏｆ ｔｈｅ
ｕｓｅｄ ａｂｓｏｒｂｅｎｔ ｃｏｔｔｏｎ ｕｎｔｉｌ ｔｈｅ ｎｅｘｔ ｓｔｏｒａｇｅ ｐｏｉｎｔ． Ｔｈｅ
ｉｎｄｅｘｅｓ ｗｅｒｅ ｍｅａｓｕｒｅｄ ａｔ ４５， ６０， ７５， ａｎｄ ９０ ｄ ａｆｔｅｒ
ｓｔｏｒａｇｅ ｔｉｍｅ， ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ． Ｔｈｅ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｒａｔｅ （％） ａｎｄ
ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓ ｏｆ ｐｅｒ ｄａｙ ｗｅｒｅ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ａｓ ｔｈｅ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ
ｆｏｒｍｕｌａｓ： ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｒａｔｅ （％） ＝ （Ａ１ － Ａ２） ／ Ａ１； ｗｅｉｇｈｔ
ｌｏｓｓ ｏｆ ｐｅｒ ｄａｙ （ｍｇ ／ ｄ） ＝ （Ｗ１ － Ｗ２） ／ Ｔ， ｗｈｅｒｅ Ａ１，
Ａ２ ａｒｅ ｔｈｅ ｎｕｍｂｅｒｓ ｏｆ ｔｏｔａｌ ｂｕｄｓ ａｎｄ ｓｐｒｏｕｔｅｄ ｂｕｄｓ，
ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ； Ｗ１， Ｗ２ ａｎｄ Ｔ ａｒｅ ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ｗｅｉｇｈｔ， ｒｅ⁃
ｓｉｄｕａｌ ｗｅｉｇｈｔ ａｎｄ ｓｔｏｒａｇｅ ｔｉｍｅ， ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．
１􀆰 ２􀆰 ３ Ｒｅｓｐｉｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ ａｓｓａｙ
Ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｒｅｓｐｉｒａｔｉｏｎ ｔｒｅａｔｅｄ ｗｉｔｈ ＥＯｓ ｗａｓ ｄｅ⁃
ｔｅｃｔｅｄ ａｓ Ｃａｌｅｇａｒｉｏ ｅｔ ａｌ． （２００３） ｍｅｔｈｏｄ ｗｉｔｈ ｓｏｍｅ
ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｔ ４５， ６０， ７５ａｎｄ ９０ ｄ ａｆｔｅｒ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ．
Ｆｉｖｅ ｐｏｔａｔｏｅｓ ｆｒｏｍ ５０ ｗｅｒｅ ｒａｎｄｏｍｌｙ ｐｉｃｋｅｄ ｏｕｔ， ａｎｄ
０􀆰 ０５ ｍｏｌ ／ Ｌ Ｂａ（ＯＨ） ２ ｓｏｌｕｔｉｏｎ ５０ ｍＬ ｗａｓ ｕｓｅｄ ｔｏ ａｂ⁃
ｓｏｒｂ ＣＯ２ ｔｒａｎｓｐｉｒｅｄ ｂｙ ｐｏｔａｔｏｅｓ ｉｎｔｏ ａ ｍｏｄｉｆｉｅｄ ｄｒｙｅｒ
ｍａｄｅ ｏｆ ｗｈｉｔｅ ｇｌａｓｓ， ｗｈｉｃｈ ｗａｓ ｓｅａｌｅｄ ｗｉｔｈ ａ ｇｌａｓｓ
ｃｏｖｅｒ ａｎｄ ｖａｓｅｌｉｎｅ ａｓ ｑｕｉｃｋｌｙ ａｓ ｐｏｓｓｉｂｌｅ． Ａ ｔｉｔｒａｔｉｏｎ
ｓｅｔｕｐ ｗａｓ ｐｒｅｐａｒｅｄ ｗｉｔｈ ａ ｂｕｒｅｔｔｅ ｆｉｌｌｅｄ ｗｉｔｈ ０􀆰 ０２２７
ｍｏｌ ／ Ｌ ｏｘａｌｉｃ ａｃｉｄ ｓｏｌｕｔｉｏｎ ｆｏｒ ｔｉｔｒａｔｉｎｇ ｔｈｅ ｅｘｃｅｓｓ
Ｂａ（ＯＨ） ２ ａｔ ｒｅｇｕｌａｒ ｉｎｔｅｒｖａｌｓ ｗｉｔｈ １ － ２ ｄｒｏｐｓ ｏｆ ｐｈｅ⁃
ｎｏｌｐｈｔｈａｌｅｉｎ ａｓ ａ ｐＨ ｉｎｄｉｃａｔｏｒ， ａｎｄ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｗａｓ
ｔｅｓｔｅｄ ｗｉｔｈ ｓａｍｅ ｍｅｔｈｏｄ． Ｆｏｕｒ ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｗｅｒｅ ｐｅｒ⁃
ｆｏｒｍｅｄ ｆｏｒ ｅａｃｈ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ． Ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｒｅｓｐｉｒａｔｉｏｎｓ
ｗｅｒｅ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ ｔｈｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｏｆ ｖｏｌｕｍｅｓ
ｏｆ ｏｘａｌｉｃ ａｃｉｄ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ａｎｄ ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ． Ｔｈｅ
ｓａｍｐｌｅｓ ｗｅｒｅ ｐｒｏｃｅｓｓｅｄ ｆｏｒ ３０ ｍｉｎ ｗｉｔｈ ａ ｖｅｒｙ ｓｌｉｇｈｔ
ｓｈａｋｉｎｇ ｍｏｔｉｏｎ ｔｏ ｋｅｅｐ ｅｘｐｏｓｉｎｇ ａ ｎｅｗ ｓｕｒｆａｃｅ ｏｆ
Ｂａ（ＯＨ） ２ ｔｏ ｔｈｅ ＣＯ２ ｆｏｒ ａ ｃｏｍｐｌｅｔｅｌｙ ｒｅａｃｔｉｏｎ．
Ｔｈｅ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｗａｓ ｍｅａｓｕｒｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ
ｇｕａｉａｃ⁃ｂａｓｅｄ ｐｈｅｎｏｌｉｃ ｍｅｔｈｏｄ （Ｘｉｏｎｇ，２００３）． Ｔｈｒｅｅ
ｐｏｔａｔｏｅｓ ｆｒｏｍ ５０ ｗｅｒｅ ｒａｎｄｏｍｌｙ ｐｉｃｋｅｄ ｏｕｔ ａｎｄ ｈｏｍｏｇ⁃
ｅｎｉｚｅｄ ｉｎ ａ ｍｏｒｔａｒ． Ｈｏｍｏｇｅｎａｔｅ ｗａｓ ａｃｃｕｒａｔｅｌｙ ｗｅｉｇｈｔ
１􀆰 ０ ｇ ａｎｄ ｔｈｅｎ ａｄｄｅｄ ２０ ｍｍｏｌ ／ Ｌ Ｋ２Ｈ２ＰＯ４ ５ ｍＬ ｆｏｌ⁃
ｌｏｗｅｄ ｂｙ ｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎ ａｔ １ ５００ ｇ ｆｏｒ １０ ｍｉｎ． Ｔｈｅ ｒｅｓ⁃
ｉｄｕｅ ｗａｓ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｗｉｔｈ ２０ ｍｍｏｌ ／ Ｌ Ｋ２Ｈ２ＰＯ４ ５ ｍＬ ａｎｄ
ｃｅｎｔｒｉｆｕｇｅｄ ａｇａｉｎ， ａｎｄ ｓｕｐｅｒｎａｔａｎｔｓ ｗｅｒｅ ｃｏｍｂｉｎｅｄ
ａｎｄ ｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄ ｉｎｔｏ ａ ２５ ｍＬ ｖｏｌｕｍｅｔｒｉｃ ｆｌａｓｋ， ｍｅｔｅｒｅｄ
ｗｉｔｈ ２０ ｍｍｏｌ ／ Ｌ Ｋ２Ｈ２ＰＯ４ ｓｏｌｕｔｉｏｎ ｔｏ ｓｃａｌｅ ｌｉｎｅａｎｄ
ｓｔｏｒｅｄ ａｔ ４℃ ａｓ ｅｎｚｙｍｅ ｌｉｑｕｉｄ． Ｔｈｅ ｌｉｑｕｉｄ ｒｅａｃｔｉｏｎ
ｍｉｘｔｕｒｅ ｗａｓ ｐｒｅｐａｒｅｄ ａｓ ｆｏｌｌｏｗｅｄ： １００ ｍＬ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ
Ｂｕｆｆｅｒ （ ｐＨ ６􀆰 ０ ） （ ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ ０􀆰 ２ ｍｏｌ ／ Ｌ Ｎａ２ＨＰＯ４
１２􀆰 ３ ｍＬ ａｎｄ ０􀆰 ２ ｍｏｌ ／ Ｌ ＮａＨ２ＰＯ４ ８７􀆰 ７ ｍＬ） ａｎｄ ２８
μＬ ｐｕｒｅ ｇｕａｉａｃ⁃ｂａｓｅｄ ｐｈｅｎｏｌｉｃ ｗｅｒｅ ａｄｄｅｄ ｔｏ ａ ５０ ｍＬ
ｂｅａｋｅｒ ａｎｄ ｈｅａｔｅｄ ｏｎ ａ ｍａｇｎｅｔｉｃ ｓｔｉｒ ｐｌａｔｅ． Ｔｈｅ ｓｏｌｕ⁃
ｔｉｏｎ ｗａｓ ｃｏｏｌｅｄ ａｎｄ １９ μＬ ３０％ Ｈ２Ｏ２ ｗａｓ ａｄｄｅｄ．
１ ｍＬ ｅｎｚｙｍｅ ｅｘｔｒａｃｔ ｗａｓ ａｄｄｅｄ ｉｎｔｏ ｔｈｅ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｍｉｘ⁃
ｔｕｒｅ ｔｏ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ ｔｈｅ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ； ２０ ｍｍｏｌ ／ Ｌ
Ｋ２Ｈ２ＰＯ４ １ ｍＬ ｗａｓ ａｄｄｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｍｉｘｔｕｒｅ ａｓ ａ
ｃｏｎｔｒｏｌ． Ａｂｓｏｒｂａｎｃｅ ｖａｌｕｅｓ ｗｅｒｅ ｒｅｃｏｒｄｅｄ ａｔ ４７０ ｎｍ ａｔ
ｏｎｅ ｍｉｎｕｔｅ ｉｎｔｅｒｖａｌｓ ｆｏｒ ３０ ｍｉｎ． Ａ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ
ｕｎｉｔ ｗａｓ ａｓ ｔｈｅ ０􀆰 ０１ ｃｈａｎｇｅ ｏｆ Ａ４７０ ｐｅｒ ｍｉｎｕｔｅ ａｎｄ ｉｔ
ｗａｓ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ａｓ ｆｏｌｌｏｗｅｄ． Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ
（Ｕ·ｇ － １·ｍｉｎ － １） ＝ （Ａ２ － Ａ１） ／ （ Ｔ２ － Ｔ１ ） × Ｄ × １００，
ｗｈｅｒｅ Ａ２ － Ａ１， Ｔ２ － Ｔ１ ａｎｄ Ｄ ａｒｅ ｔｈｅ ｃｈａｎｇｅｓ ｏｆ ａｂｓｏｒ⁃
ｂａｎｃｅ ｖａｌｕｅｓ， ｔｉｍｅｓ ａｎｄ ｄｉｌｕｔｉｏｎ ｔｉｍｅｓ， ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．
１􀆰 ２􀆰 ４ α⁃ａｍｙｌａｓｅ ａｎｄ ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒｓ ａｓｓａｙ
Ｓｏｌｕｂｌｅ α⁃ａｍｙｌａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｗａｓ ａｓｓａｙｅｄ ｂｙ ｍｅａｓｕｒ⁃
ｉｎｇ ｔｈｅ ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ ｒａｔｅ ｏｆ ｓｕｇａｒｓ ｇｅｎｅｒａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｓｏｌｕｂｌｅ
ｓｔａｒｃｈ （Ｋａｔｏ⁃Ｎａｇｕｃｈｉ ＆ Ｍａｃíａｓ，２００５）． Ｔｈｒｅｅ ｐｏｔａ⁃
ｔｏｅｓ ｆｒｏｍ ５０ ｔｒｅａｔｅｄ ｗｉｔｈ ＥＯｓ ｗｅｒｅ ｒａｎｄｏｍｌｙ ｓｅｌｅｃｔｅｄ，
ａｎｄ １􀆰 ０ ｇ ｐｅｅｌｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｗａｓ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｕｓｉｎｇ ２５ ｍＬ ｃｉｔ⁃
ｒａｔｅ Ｂｕｆｆｅｒ （０􀆰 １ ｍｏｌ ／ Ｌ， ｐＨ ５􀆰 ６） ｆｏｒ ２０ ｍｉｎ， ａｎｄ ｔｈｅ
ｈｏｍｏｇｅｎａｔｅ ｗａｓ ｔｈｅｎ ｃｅｎｔｒｉｆｕｇｅｄ ａｔ １ ５００ ｇ ｆｏｒ １０
ｍｉｎ． Ｔｈｅ ｓｕｐｅｒｎａｔａｎｔ ｗａｓ ｄｅｃａｎｔｅｄ ａｎｄ ｄｉｌｕｔｅｄ ｗｉｔｈ
ｃｉｔｒａｔｅ ｂｕｆｆｅｒ ｓｏｌｕｔｉｏｎ ｉｎｔｏ ａ １００ ｍＬ ｖｏｌｕｍｅｔｒｉｃ ｆｌａｓｋ，
ｔｈｅｎ １０ ｍＬ ｏｆ ｓｏｌｕｔｉｏｎ ｗａｓ ａｌｉｑｕｏｔｔｅｄ ｉｎｔｏ ａｎｏｔｈｅｒ ５０
ｍＬ ｖｏｌｕｍｅｔｒｉｃ ｆｌａｓｋ ａｎｄ ｄｉｌｕｔｅｄ ｗｉｔｈ ｃｉｔｒａｔｅ ｂｕｆｆｅｒ ｓｏｌｕ⁃
ｔｉｏｎ ｆｏｒ ｅｎｚｙｍａｔｉｃ ａｓｓａｙ． β⁃ａｍｙｌａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ｅｎｚｙｍｅ ｓｏ⁃
ｌｕｔｉｏｎ ｗａｓ ｉｎａｃｔｉｖａｔｅｄ ａｔ ７０℃ ｗａｔｅｒ ｂａｔｈ ｆｏｒ １５ ｍｉｎ
ａｎｄ ｔｈｅｎ ｃｏｏｌｅｄ ｔｏ ４０℃ ｕｓｉｎｇ １％ ｓｔａｒｃｈ ｓｏｌｕｔｉｏｎ ｂｅ⁃
ｆｏｒｅ ｍｅａｓｕｒｉｎｇ α⁃ａｍｙｌａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ． Ａｂｓｏｒｂａｎｃｅ ｖａｌｕｅｓ
ａｔ ５４０ ｎｍ ｗｅｒｅ ｒｅｃｏｒｄｅｄ ｗｉｔｈ ａｎ ２０００ Ｕｌｔｒａｖｉｏｌｅｔ ａｎａ⁃
ｌｙｚｅｒ． Ｔｈｅ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ ｗａｓ ｒｅｐｌｉｃａｔｅｄ ｔｈｒｅｅ ｔｉｍｅｓ．
Ａｎｔｈｒａｃｅｎｅ ｋｅｔｏｎｅ ｃｏｌｏｒｉｍｅｔｒｉｃ ｍｅｔｈｏｄ （ Ｗｅｎ，
２００３） ｗａｓ ｕｓｅｄ ｔｏ ａｓｓａｙ ｔｈｅ ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒｓ． Ｓｏｌｕｂｌｅ
ｓｕｇａｒｓ ｗｅｒｅ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｗｉｔｈ ａ Ｂｕｆｆｅｒ， ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ ０􀆰 ５
ｍｏｌ ／ Ｌ Ｔｒｉｓ， １０ ｍｍｏｌ ／ Ｌ ＥＤＴＡ， １％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ⁃１００ （ｖ ／
ｖ）， ５ ｍｍｏｌ ／ Ｌ ＤＴＴ ａｎｄ ０􀆰 ２５％ ｐｒｏｔｅａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ
ｃｏｃｋｔａｉｌ （ｍ ／ ｍ）． Ｔｈｅ ｈｏｍｏｇｅｎａｔｅｓ ｗｅｒｅ ｃｅｎｔｒｉｆｕｇｅｄ ａｔ
１２ ０００ ｇ ｆｏｒ ５ ｍｉｎ ａｔ ４℃ ．
１􀆰 ３ Ｄａｔａ Ａｎａｌｙｓｉｓ
Ａｌｌ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ ｄａｔａ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｚｅｄ ｂｙ ＳＰＳＳ
１７􀆰 ０， ａｎｄ ｔｈｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｗｅｒｅ ｔｅｓｔｅｄ ｂｙ
Ｄｕｎｃａｎ’ ｓ ｎｅｗ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｒａｎｇｅ ｔｅｓｔ （Ｐ ＜ ０􀆰 ０５）． Ｔｈｅ
ｆｉｇｕｒｅｓ ｏｆ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ Ｔ． ｍｏｌｉｔｏｒ ｗｅｒｅ
ｄｒａｗｎ ｂｙ Ｓｉｇｍａ Ｐｌｏｔ １０􀆰 ０．
２０３ 植　 物　 保　 护　 学　 报 ４３ 卷
２ Ｒｅｓｕｌｔｓ
２􀆰 １ Ｔｈｅ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ＥＯｓ ａｇａｉｎｓｔ ｔｕｂｅｒ
ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ａｎｄ ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓ
Ｔｈｅ ＥＯｓ ｏｆ Ｃ． ｌｉｍｏｎｕｍ， Ｃ． ｃａｓｓｉａ， Ｃ． ｃｉｔｒａｔｕｓ，
ａｎｄ Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ ｓｈｏｗｅｄ ｖｅｒｙ ｓｔｒｏｎｇ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｏｎ ｔｕｂｅｒ
ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ， ｗｈｉｃｈ ｏｆ ｔｈｅ Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ ｈａｄ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ
ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｒａｔｅｓ ｏｆ １􀆰 ８８％ － １０􀆰 ３３％ ｆｒｏｍ
４５ ｔｏ ９０ ｄ， ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ Ｃ． ｌｉｍｏｎｕｍ ｏｆ ２􀆰 ７８％ －
２５􀆰 ９３％ ， Ｃ． ｃａｓｓｉａ ｏｆ ４􀆰 ６８％ －４５􀆰 １１％ ， Ｃ． ｃｉｔｒａｔｕｓ
ｏｆ ５􀆰 １６％ － ４３􀆰 １９％ ， ａｎｄ ｗａｓ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ
ｆｒｏｍ ｔｈａｔ ｏｆ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ， ｗｉｔｈ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｒａｔｅｓ ｏｆ
２８􀆰 ０３％ －９５􀆰 ８３％ （Ｐ ＜ ０􀆰 ０５， Ｆｉｇ． １⁃ａ）．
Ｔｈｅ ｔｒｅｎｄｓ ｏｆ ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓ ｏｆ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏｅｓ ｔｒｅａｔｅｄ
ｗｉｔｈ ＥＯｓ ｗｅｒｅ ｓｉｍｉｌａｒ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｒａｔｅ． Ｔｈｅ
ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓ ｏｆ ｃｏｎｔｒｏｌ ｗａｓ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ａｍｏｎｇ ｔｈｅ ａｌｌ
ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ ｏｆ ５９􀆰 ３ ｍｇ ／ ｄ， ｗｈｉｃｈ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ
ｆｒｏｍ ｏｔｈｅｒ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ （Ｐ ＜ ０􀆰 ０５）． Ｔｈｅ ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓｅｓ ｏｆ
Ｃ． ｃｉｔｒａｔｕｓ， Ｃ． ｃａｓｓｉａ， Ｃ． ｌｉｍｏｎｕｍ ａｎｄ Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ
ｒｅａｃｈｅｄ ４５􀆰 ２， ３９􀆰 ０， ２８􀆰 ８ ａｎｄ ２９􀆰 ６ ｍｇ ／ ｄ ａｔ ４５ ｄ，
ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ， ａｎｄ ｈａｄ ｎｏ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｗｉｔｈ
ｅａｃｈ ｏｔｈｅｒ （Ｐ ＞ ０􀆰 ０５）． Ｍｅａｎｗｈｉｌｅ， ｔｈｅ ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓｅｓ
ｏｆ ＥＯｓ ｗｅｒｅ ｌｏｗｅｒ ｔｈａｎ ｔｈｏｓｅ ｏｆ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｆｒｏｍ
６０ ｔｏ ９０ ｄ ａｆｔｅｒ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ， ｗｈｉｃｈ ｏｆ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｗａｓ
２０２􀆰 ２２ － ４０１􀆰 ４８ ｍｇ ／ ｄ， ｃｏｍｐａｒｅｄ ｔｏ Ｃ． ｌｉｍｏｎｕｍ ｏｆ
５９􀆰 ４ －１０７􀆰 ０ ｍｇ ／ ｄ， Ｃ． ｃａｓｓｉａ ｏｆ ６１􀆰 ７ － １４６􀆰 ７ ｍｇ ／ ｄ，
Ｃ． ｃｉｔｒａｔｕｓ ｏｆ ６１􀆰 ７ － １８４􀆰 １ ｍｇ ／ ｄ ａｎｄ Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ ｏｆ
５１􀆰 ７ －１０５􀆰 ９ ｍｇ ／ ｄ （Ｆｉｇ． １⁃ｂ）．
Ｆｉｇ． １ Ｔｈｅ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ＥＯｓ ａｇａｉｎｓｔ ｐｏｔａｔｏ ｓｅｅｄ ｔｕｂｅｒ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ａｎｄ ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓ
Ｔｈｅ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｅａｃｈ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｉｓ ０􀆰 ２ ｍｇ ／ ｍＬ． Ｄａｔａ ｉｎ ｔｈｅ ｆｉｇｕｒｅ ａｒｅ ｍｅａｎ ± ＳＥ．
　
２􀆰 ２ Ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ＥＯｓ ｏｎ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏｅｓ ｒｅｓｐｉｒａｔｉｏｎ
ａｎｄ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ
Ｒｅｓｐｉｒａｔｉｏｎ ｒａｔｅｓ ｏｆ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏｅｓ ｔｒｅａｔｅｄ ｗｉｔｈ ＥＯｓ
ｏｒ ｎｏｔ ｗｅｒｅ ａｌｌ ｓｕｃｃｅｓｓｉｖｅｌｙ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｆｒｏｍ ４５ ｔｏ ９０ ｄ．
Ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｗａｓ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｗｉｔｈ ６􀆰 ２８ － １７􀆰 ３８ ｍｇ
ＣＯ２·ｇ － １·ｈ － １ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ Ｃ． ｃｉｔｒａｔｕｓ ｏｆ ４􀆰 ３１ －
１４􀆰 ０５ ｍｇ ＣＯ２·ｇ － １·ｈ － １， Ｃ． ｃａｓｓｉａ ｏｆ ３􀆰 ９４ － １４􀆰 ３２
ｍｇ ＣＯ２·ｇ － １·ｈ － １， Ｃ． ｌｉｍｏｎｕｍ ｏｆ ３􀆰 ３５ － １６􀆰 １２ ｍｇ
ＣＯ２·ｇ － １·ｈ － １ ａｎｄ Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ ｏｆ １􀆰 ４８ － １０􀆰 ５５ ｍｇ
ＣＯ２·ｇ － １·ｈ － １ （Ｆｉｇ． ２⁃ａ）． Ｔｈｅ ｒｅｓｐｉｒａｔｉｏｎ ｒａｔｅｓ ｏｆ ｓｅｅｄ
ｐｏｔａｔｏｅｓ ｔｒｅａｔｅｄ ｗｉｔｈ ＥＯｓ ｗｅｒｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｗｅａｋｅｒ
（Ｐ ＜ ０􀆰 ０５） ｔｈａｎ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｄｕｒｉｎｇ ６０ ｔｏ ９０ ｄ．
Ｃｏｍｐａｒｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ （２１７􀆰 ６９ － ５７􀆰 ７４ Ｕ·ｇ －１·
ｍｉｎ －１）， ｔｈｅ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏｅｓ ｔｒｅａ⁃
ｔｅｄ ｗｉｔｈ ＥＯｓ ｗｅｒｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｅｎｈａｎｃｅｄ． Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ
ｗａｓ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｗｉｔｈ ３５３􀆰 ３７ － １７６􀆰 ２３ Ｕ·ｇ － １·ｍｉｎ － １
ｆｒｏｍ ４５ ｔｏ ９０ ｄ ａｆｔｅｒ ｓｔｏｒａｇｅ， ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ Ｃ． ｃｉｔｒａｔｕｓ ｏｆ
２９５􀆰 ３３ － ７３􀆰 ７３ Ｕ·ｇ － １·ｍｉｎ － １， Ｃ． ｃａｓｓｉａ ｏｆ ２８６􀆰 ４７ －
８２􀆰 ３３ Ｕ·ｇ － １·ｍｉｎ － １ ａｎｄ Ｃ． ｌｉｍｏｎｕｍ ｏｆ ２６８􀆰 ９３ －
７０􀆰 ３０ Ｕ·ｇ － １·ｍｉｎ － １ ． Ａ ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ ｉｎ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉ⁃
ｔｙ ｃｏｒｒｅｌａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｒａｔｅ ｄｕｒｉｎｇ
ｔｈｅ ６０ ｔｏ ７５ ｄ ｓｔｏｒａｇｅ ｐｅｒｉｏｄ （Ｆｉｇ． ２⁃ｂ）．
２􀆰 ３ Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ＥＯｓ ｏｎ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏｅｓ α⁃ａｍｙｌａｓｅ ａｃ⁃
ｔｉｖｉｔｉｅｓ ａｎｄ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒｓ
Ｔｈｅ α⁃ａｍｙｌａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｗｅｒｅ ｌｏｗ ａｔ ｔｈｅ ｅａｒｌｙ ｄｏｒ⁃
ｍａｎｃｙ ｓｔａｇｅ （ｂｅｆｏｒｅ ４５ ｄ）， ａｎｄ ｔｈｅ ＥＯｓ ｏｆ Ａ． ｓａｔｉ⁃
ｖｕｍ， Ｃ． ｃａｓｓｉａ ａｎｄ Ｃ． ｌｉｍｏｎｕｍ （０􀆰 ０６ － ０􀆰 １６ ｍｇ·
ｇ － １·ｍｉｎ － １） ｗｅｒｅ ｌｏｗｅｒ ｔｈａｎ Ｃ． ｃｉｔｒａｔｕｓ ａｎｄ ｔｈｅ ｃｏｎ⁃
ｔｒｏｌ （０􀆰 ２５ － ０􀆰 ３４ ｍｇ·ｇ － １·ｍｉｎ － １）． Ｎｅｖｅｒｔｈｅｌｅｓｓ， ｔｈｅ
α⁃ａｍｙｌａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ａｌｌ ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ ｗｅｒｅ ｇｒｅａｔｌｙ ｐｒｏ⁃
３０３２ 期 Ｗａｎｇ Ｘｕｅｇｕｉ， ｅｔ ａｌ． ： Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ａｎｄ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｏｎ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｓｔｏｒａｇｅ
Ｆｉｇ． ２ Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ＥＯｓ ａｇａｉｎｓｔ ｐｏｔａｔｏ ｓｅｅｄ ｔｕｂｅｒ ｒｅｓｐｉｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ
Ｔｈｅ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｅａｃｈ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｉｓ ０􀆰 ２ ｍｇ ／ ｍＬ． Ｄａｔａ ｉｎ ｔｈｅ ｆｉｇｕｒｅ ａｒｅ ｍｅａｎ ± ＳＥ．
　
Ｆｉｇ． ３ Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ＥＯｓ ｏｎ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏｅｓ α⁃ａｍｙｌａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ａｎｄ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒｓ
Ｔｈｅ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｅａｃｈ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｉｓ ０􀆰 ２ ｍｇ ／ ｍＬ． Ｄａｔａ ｉｎ ｔｈｅ ｆｉｇｕｒｅ ａｒｅ ｍｅａｎ ± ＳＥ．
　
ｍｏｔｅｄ ａｔ ｔｈｅ ｂｅｇｉｎｎｉｎｇ ｏｆ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｐｅｒｉｏｄｓ， ｅｓｐｅｃｉａｌ
ｆｏｒ Ｃ． ｃｉｔｒａｔｕｓ （１􀆰 ２３ － １􀆰 ８４ ｍｇ·ｇ － １·ｍｉｎ － １） ａｎｄ ｔｈｅ
ｃｏｎｔｒｏｌ （１􀆰 ７７ － １􀆰 ７６ ｍｇ·ｇ － １·ｍｉｎ － １）． Ｈｏｗｅｖｅｒ， ｔｈｅ
α⁃ａｍｙｌａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ ｗｅｒｅ ｓｌｉｇｈｔｌｙ ｄｅ⁃
ｃｒｅａｓｅｄ， ｅｘｃｅｐｔ ｆｏｒ Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ ｐｏｓｔ⁃ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ９０ ｄ
（Ｆｉｇ． ３⁃ａ）．
Ｔｈｅ ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒ ｃｏｎｔｅｎｔｓ ｏｆ ｔｕｂｅｒｓ ｔｒｅａｔｅｄ ｗｉｔｈ
ＥＯｓ ｗｅｒｅ ｌｏｗｅｒ ｔｈａｎ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ａｔ ４５ ｄ ａｆｔｅｒ ｔｒｅａｔ⁃
ｍｅｎｔ． Ａｌｔｈｏｕｇｈ ｔｈｅ ＥＯｓ ｏｆ Ｃ． ｃｉｔｒａｔｕｓ ｏｆ １１􀆰 １１ －
１８􀆰 ４７ μｇ ／ ｇ， Ｃ． ｌｉｍｏｎｕｍ ｏｆ １６􀆰 ９８ － ２８􀆰 ６６ μｇ ／ ｇ， Ｃ．
ｃａｓｓｉａ ｏｆ １０􀆰 ３３ － ２０􀆰 ５９ μｇ ／ ｇ ａｎｄ Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ ｏｆ
７􀆰 ０７ － １０􀆰 ７８ μｇ ／ ｇ ｑｕｉｃｋｌｙ ｅｎｈａｎｃｅｄ ｐｏｓｔ⁃ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
６０ ｔｏ ７５ ｄ， ｔｈｅ ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒ ｃｏｎｔｅｎｔｓ ｏｆ ｃｏｎｔｒｏｌ ｗｅｒｅ
ｓｔｉｌｌ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｏｆ ２２􀆰 ２８ － ３０􀆰 ８８ μｇ ／ ｇ ａｎｄ ｈａｄ ｓｉｇｎｉｆ⁃
ｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｗｉｔｈ ｏｔｈｅｒ ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ （Ｐ ＜ ０􀆰 ０５） ａｔ ６０
ｔｏ ７５ ｄ． Ｔｈｅ ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒ ｃｏｎｔｅｎｔｓ ｃｏｎｔｉｎｕａｌｌｙ ｉｎ⁃
ｃｒｅａｓｅｄ ｅｘｃｅｐｔ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｃ． ｌｉｍｏｎｕｍ ａｎｄ ｃｏｎｔｒｏｌ ａｔ ７５ ｔｏ
９０ ｄ， ｗｈｉｌｅ ｔｈｅ ｉｎｃｒｅａｓｉｎｇ ｑｕａｎｔｉｔｙ ｏｆ ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒ
ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ ｗａｓ ｔｈｅ ｌｏｗｅｓｔ ｗｉｔｈ １２􀆰 ８７ μｇ ／ ｇ，
ｗｈｉｃｈ ｏｆ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｗａｓ １９􀆰 ７６ μｇ ／ ｇ （Ｆｉｇ． ３⁃ｂ）．
３ Ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ
Ｓｅｅｄ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｉｓ ａ ｈｉｇｈｌｙ ｃｏｍｐｌｅｘ ｐｒｏｃｅｓｓ ｉｎ
ｗｈｉｃｈ ｔｈｅ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ａｎｄ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ｐｒｏｃｅｓｓｅｓ ａｒｅ
ｃｏｏｒｄｉｎａｔｅｄ （Ｂｅｗｌｅｙ，１９９７）． Ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ Ａｌｅｘｏｐｏｕ⁃
ｌｏｓ ｅｔ ａｌ． （ ２００７ ）， ｔｈｅ ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓ ｏｆ ｔｕｂｅｒｓ ａｆｔｅｒ
ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｉｓ ｄｕｅ ｔｏ ｔｈｅ ｇｒｏｗｉｎｇ ｓｐｒｏｕｔｓ ｈａｖｉｎｇ ａｎ ｉｎ⁃
ｃｒｅａｓｅｄ ｄｅｍａｎｄ ｆｏｒ ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅｓ ｃｏｕｐｌｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｒｅｌ⁃
ａｔｉｖｅｌｙ ｈｉｇｈｅｒ ｒａｔｅ ｏｆ ｗａｔｅｒ ｌｏｓｓ ｆｒｏｍ ｓｐｒｏｕｔｓ． Ｔｅｐｅｒ⁃
Ｂａｍｎｏｌｋｅｒ ｅｔ ａｌ． （２０１０） ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｔｈａｔ ｍｉｎｔ ＥＯ ｃｏｕｌｄ
４０３ 植　 物　 保　 护　 学　 报 ４３ 卷
ｐｒｅｖｅｎｔ ｐｏｔａｔｏ ｆｒｏｍ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ａｎｄ ｎｏｎ⁃ｔｒｅａｔｅｄ
‘Ｄéｓｉｒéｅ’ ｐｏｔａｔｏ ｔｕｂｅｒｓ ｌｏｓｔ ７􀆰 ２％ ｏｆ ｔｈｅｉｒ ｗｅｉｇｈｔ ｃｏｍ⁃
ｐａｒｅｄ ｔｏ ｔｈｅｉｒ ｔｒｅａｔｅｄ ｃｏｕｎｔｅｒｐａｒｔｓ ｗｈｉｃｈ ｌｏｓｔ ｏｎｌｙ
２􀆰 ６８％ ａｆｔｅｒ １４０ ｄ ｏｆ ｓｔｏｒａｇｅ． Ｌｉ ＆ Ｂｉ （２０１２） ａｌｓｏ
ｆｏｕｎｄ ｔｈａｔ １０ ｍｍｏｌ ／ Ｌ ｎａｐｈｔｈａｌｅｎｅａｃｅｔｉｃ ａｃｉｄ， ５００
ｍｇ ／ ｋｇ ｃｉｎｎａｍａｌｄｅｈｙｄｅ， ２５０ ｍｇ ／ ｋｇ ａｃｅｔａｌｄｅｈｙｄｅ ａｎｄ
５０ ｍｇ ／ ｋｇ ｅｔｈｅｐｈｏｎ ｃｏｕｌｄ ｅｆｆｅｃｔｉｖｅｌｙ ｃｏｎｔｒｏｌ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ
ｗｉｔｈ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｒａｔｅｓ ｏｆ ６１％ ， ６５％ ， ７８％ ａｎｄ ７９％ ｒｅ⁃
ｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ ｃｏｍｐａｒｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ． Ｗｈａｔ’ ｓ ｍｏｒｅ， ｔｈｅ
ｓｐｒｏｕｔ ｇｒｏｗｔｈ ｏｆ ｐｏｔａｔｏ ｔｕｂｅｒ ｗａｓ ｄｅｌａｙｅｄ ｂｙ
１０ ｍｍｏｌ ／ Ｌ ｎａｐｈｔｈａｌｅｎｅａｃｅｔｉｃ ａｃｉｄ ａｎｄ ５０ ｍｇ ／ ｋｇ ｅｔｈｅ⁃
ｐｈｏｎ， ｗｈｉｌｅ ｎｏ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｏｆ ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓ ｒａ⁃
ｔｉｏ ｗｅｒｅ ｆｏｕｎｄ ｂｅｔｗｅｅｎ ｆｏｕｒ ｋｉｎｄｓ ｏｆ ｎｅｗ ｓｐｒｏｕｔ ｓｕｐ⁃
ｐｒｅｓｓａｎｔｓ ｔｒｅａｔｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｔｕｂｅｒ ａｎｄ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ． Ｔｈｅ
ｓｔｕｄｙ ｗａｓ ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｒｅｌｅｖａｎｔ ｒｅｐｏｒｔｓ， ａｎｄ ｔｈｅ
ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ａｎｄ ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓ ｏｆ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏｅｓ ｔｒｅａｔｅｄ ｗｉｔｈ
ＥＯｓ ｏｆ Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ ａｎｄ Ｃ． ｌｉｍｏｎｕｍ ｗｅｒｅ ｉｎｈｉｂｉｔｅｄ
ｃｏｍｐａｒｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ．
Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ｉｓ ｏｎｅ ｏｆ ｔｈｅ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ ｅｎ⁃
ｚｙｍｅｓ ａｓ ｓｕｐｅｒｏｘｉｄｅ ｄｉｓｍｕｔａｓｅ ａｎｄ ｃａｔａｌａｓｅ， ａｎｄ ｗｈｅｎ
ｔｈｅ ｃｒｏｐｓ ｓｕｆｆｅｒ ｓｏｍｅ ａｄｖｅｒｓｅ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ， ｓｕｃｈ ａｓ
ｄｒｙ， ｈｉｇｈ ｓｌａｔ ｐｒｅｓｓ， ａｎａｅｒｏｂｉｃ ｒｅｓｐｉｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｏｍｅ
ｃｈｅｍｉｃａｌｓ， ｔｈｅ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｅ ｃｏｕｌｄ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｔｏ ｄｅ⁃
ｆｅｎｄ ｔｈｅ ｄａｍａｇｅ （Ｂａｄａｗｉ ｅｔ ａｌ． ，２００４）． Ｋｗａｋ ｅｔ ａｌ．
（１９９６） ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ （ＰＯＤ） ｏｆ
ｐｏｔａｔｏ ｔｒｅａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｅｔｈｅｐｈｏｎ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ａｂｏｕｔ ２０％ ，
ｗｈｅｒｅａｓ ｐａｒａｑｕａｔ ｓｌｉｇｈｔｌｙ ｓｔｉｍｕｌａｔｅｄ ｉｔ ｓｏｏｎ ａｆｔｅｒ ｔｒｅａｔ⁃
ｍｅｎｔ， ｂｕｔ ｉｎｈｉｂｉｔｅｄ ｉｔ ａｆｔｅｒ １３ ｄ ａｎｄ ｗｈｉｃｈ ｏｆ ａｂｓｃｉｓｉｃ
ａｃｉｄ ｗａｓ ｐｒｏｍｏｔｅｄ １􀆰 ７８ ｆｏｌｄｓ ｃｏｍｐａｒｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ
ａｔ １８ ｄ ａｆｔｅｒ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ． Ｊｉａ ｅｔ ａｌ． （ ２００９ ） ａｌｓｏ ｒｅ⁃
ｓｅａｒｃｈｅｄ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｐｏｌｙｅｔｈｅｌｅｎｅ ｇｌｙｃｏｌ ６０００ ｏｎ ｔｈｅ
ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｅ ｏｆ ｐｏｔａｔｏｅｓ， ａｎｄ ｆｏｕｎｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ＰＯＤ
ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ａｔ ｔｈｅ ｂｅｇｉｎｎｉｎｇ， ａｎｄ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ
ｌａｔｅｒ． Ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ
ｏｆ ａｌｌ ＥＯｓ ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ ｗｅｒｅ ｓｔｒｏｎｇｅｒ ｔｈａｎ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ａｎｄ
ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｓｔｕｄｉｅｓ． Ｈｏｗｅｖｅｒ， ａ ｃｌｅａｒ
ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｆｒｏｍ ６０ ｔｏ ９０ ｄ ｗａｓ
ｆｏｕｎｄ ｉｎ ｔｈｅ ｐａｐｅｒ． Ｔｈｅ ｐｏｓｓｉｂｌｅ ｒｅａｓｏｎ ｗａｓ ｔｈｅ ｓｔｉｍｕ⁃
ｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｂｙ ｈｉｇｈ ＩＡＡ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ． Ｂｅ⁃
ｃａｕｓｅ ｔｈｅ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｌｓｏ ｐｌａｙｓ ａ ｋｅｙ ｒｏｌｅ ｉｎ ｍｏｄｕｌａ⁃
ｔｉｎｇ ｓｅｅｄ ｄｏｒｍａｎｃｙ ａｎｄ ｉｔ ｃｏｕｌｄ ｉｎｈｉｂｉｔ ｔｈｅ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ
ｉｎｄｏｌ⁃３⁃ａｃｅｔｉｃ ａｃｉｄ （ＩＡＡ）． Ｗｈｅｎ ｔｈｅ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｃｔｉｖ⁃
ｉｔｙ ｂｅｃｏｍｅｓ ｗｅａｋ， ｔｈｅ ｓｅｅｄ ｄｏｒｍａｎｃｙ ｉｓ ｂｒｏｋｅｎ ａｎｄ
ｔｈｅ ＩＡＡ ｌｅｖｅｌ ｉｓ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ａｎｄ ｌｅａｄ ｔｏ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ （Ｓｈｅｔ⁃
ｔｙ ｅｔ ａｌ． ，２００２）．
α⁃ａｍｙｌａｓｅ ｐｌａｙｓ ａ ｋｅｙ ｒｏｌｅ ｉｎ ｄｅｇｒａｄｉｎｇ ｓｔａｒｃｈ ｉｎｔｏ
ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒｓ ｆｏｒ ａｎ ｅｎｅｒｇｙ ｓｏｕｒｃｅ （Ｂａｂｕ，１９９４）． Ｗｈｅｎ
ｓｕｂｊｅｃｔｅｄ ｔｏ ａｄｖｅｒｓｉｔｙ ｏｒ ｓｔｒｅｓｓｅｄ ｗｉｔｈ ｔｏｘｉｃ ｓｕｂｓｔａｎｃｅｓ，
ｓｕｃｈ ａｓ ｖｏｌａｔｉｌｅ Ｅｏｓ， ｓｅｅｄｓ ｔｅｎｄｅｄ ｔｏ ｒｅｓｐｏｎｄ ｗｉｔｈ ｉｎｈｉｂｉ⁃
ｔｉｏｎ ｏｆ α⁃ａｍｙｌａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ． Ｍｏｓｔ ｏｆ ｓｔａｒｃｈ ｏｆ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ
ｈａｓ ｂｅｅｎ ｈｙｄｒｏｌｙｚｅｄ ｉｎｔｏ ｓｏｌｕｂｌｅ ｓｕｇａｒｓ ｂｙ α⁃ａｍｙｌａｓｅ，
ｂｕｔ ｔｈｅ α⁃ａｍｙｌａｓｅｓ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｗａｓ ｉｎｈｉｂｉｔｅｄ ａｎｄ ｔｈｅ ｍａｘｉ⁃
ｍｕｍ ｃｏｎｔｅｎｔｓ ｏｆ ｐｏｔａｔｏｅｓ ｔｒｅａｔｅｄ ｗｉｔｈ ＥＯｓ ｗｅｒｅ ｄｅｌａｙｅｄ
ｃｏｍｐａｒｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ． Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｗｅｒｅ ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔ ｗｉｔｈ
ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｒｅｐｏｒｔｓ （Ｂａｂｕ，１９９４； Ｚｈａｎｇ ｅｔ ａｌ． ，２００２）．
Ｓｏｍｅ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｓｔｕｄｉｅｓ ｈａｖｅ ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｅｄ ｔｈａｔ
ｓｏｍｅ ｎａｔｕｒａｌ ａｒｏｍａｔｉｃ ｈｙｄｒｏｃａｒｂｏｎｓ ｃｏｕｌｄ ｉｎｈｉｂｉｔ
ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｏｆ ｐｏｔａｔｏ ｔｕｂｅｒｓ， ｗｈｉｃｈ ｉｎｃｌｕｄｅ ｍｏｎｏｔｅｒｐｅ⁃
ｎｏｉｄｓ， ｓｕｃｈ ａｓ Ｄ⁃ｃａｒｖｏｎｅ ｏｒ （ ４Ｓ ）⁃（ ＋ ）⁃ｃａｒｖｏｎｅ
（Ｍｉｔｔａｌ ｅｔ ａｌ． ，２００１； Ｓｉｌｖａ ｅｔ ａｌ． ，２００７）， ｃａｒｖｏｎｅ， ｐｉ⁃
ｐｅｒｅｔｅｎｏｎｅ ｏｘｉｄｅ， α⁃ｈｕｍｕｌｅｎｅ （ Ｃｈａｕｈａｎ ｅｔ ａｌ． ，
２０１１）． Ｓｏｍｅ ｒｅｓｅａｒｃｈｅｓ ｈａｖｅ ｐｒｏｖｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｍａｉｎ ｉｎ⁃
ｇｒｅｄｉｅｎｔ ｏｆ Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ ｗａｓ ｍｏｓｔｌｙ ｄｉａｌｌｙｌ ｄｉｓｕｌｐｈｉｄｅ，
ｄｉ⁃２⁃ｐｒｏｐｅｎｙｌ ｔｒｉｓｕｌｆｉｄｅ， ａｎｄ ｄｉ⁃２⁃ｐｒｏｐｅｎｙｌ ｔｅｔｒａｓｕｌｆｉｄｅ
（Ｙａｎｇ ｅｔ ａｌ． ，２０１０； Ｍａｒｔｉｎｅｚ⁃Ｖｅｌａｚｑｕｅｚｅｔ ａｌ． ，２０１１；
Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ． ，２０１４）． Ｔｈｅ ａｃｔｉｖｅ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ｏｆ ｔｅｓｔ ＥＯｓ
ｉｎ ｔｈｉｓ ｐａｐｅｒ ｉｓ ｗｏｒｔｈ ｆｕｒｔｈｅｒ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ．
Ｕｐｏｎ ｃｏｍｐｌｅｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ９０ ｄ ｓｔｏｒａｇｅ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ，
ｗｅ ａｌｓｏ ｐｏｔｔｅｄ ｔｈｅ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｔｒｅａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ａ． ｓａｔｉｖｕｍ
ＥＯ ａｎｄ ｆｏｕｎｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ ｗａｓ ｎｏｔ ｉｍｐａｃｔｅｄ ｂｕｔ
ｔｈｅ ｓｐｒｏｕｔｓ ｓｅｅｍｅｄ ｔｏ ｂｅ ｍｕｃｈ ｓｈｏｒｔｅｒ ａｎｄ ｓｔｏｕｔｅｒ ｔｈａｎ
ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ． Ｂａｓｅｄ ｏｎ ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ， ｔｈｅ ＥＯ ｏｆ Ａ． ｓａｔｉ⁃
ｖｕｍ ｈａｓ ｉｎｈｉｂｉｔｅｄ ｔｈｅ ｗｅｉｇｈｔ ｌｏｓｓ， ｒｅｓｐｉｒａｔｉｏｎ ａｎｄ
α⁃ａｍｙｌａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ ａｎｄ ｄｅｌａｙｅｄ ｔｈｅ ｔｕｂｅ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ． Ｉｎ
ｇｅｎｅｒａｌ， ｔｈｅｙ ｃｏｕｌｄ ｂｅ ａ ｐｒｏｍｉｓｉｎｇ ｗａｙ ｆｏｒ ｅｌｏｎｇａｔｉｎｇ
ｔｈｅ ｄｏｒｍａｎｃｙ ｄｕｒｉｎｇ ｐｏｔａｔｏ ｔｕｂｅｒ ｓｔｏｒａｇｅ．
Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ
Ａｌｅｘｏｐｏｕｌｏｓ ＡＡ， Ａｋｏｕｍｉａｎａｋｉｓ ＫＡ， Ｖｅｍｍｏｓ ＳＮ， Ｐａｓｓａｍ ＨＣ．
２００７． Ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｐｏｓｔ⁃ｈａｒｖｅｓｔ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｇｉｂｂｅｒｅｌｌｉｃ ａｃｉｄ
ａｎｄ ｂｅｎｚｙｌ ａｄｅｎｉｎｅ ｏｎ ｔｈｅ ｄｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｄｏｒｍａｎｃｙ ｏｆ ｐｏｔａｔｏｅｓ ｐｒｏ⁃
ｄｕｃｅｄ ｂｙ ｐｌａｎｔｓ ｇｒｏｗｎ ｆｒｏｍ ＴＰＳ． Ｐｏｓｔｈａｒｖｅｓｔ Ｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｔｅｃｈ⁃
ｎｏｌｏｇｙ， ４６（１）： ５４ － ６２
Ｂａｂｕ Ｌ． １９９４． Ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ ｆｒａｃｔｉｏｎｓ ｏｆ ｓｗｅｅｔ ｐｏｔａｔｏ
ｔｕｂｅｒｓ ｏｎ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ． Ｔｒｏｐｉｃａｌ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ， ７１（１）： ７１ － ７３
Ｂａｄａｗｉ ＧＨ， Ｋａｗａｎｏ Ｎ， Ｙａｍａｕｃｈｉ Ｙ， Ｓｈｉｍａｄａ Ｅ， Ｓａｓａｋｉ Ｒ， Ｋｕｂｏ
Ａ， Ｔａｎａｋａ Ｋ． ２００４． Ｏｖｅｒ⁃ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ａｓｃｏｒｂａｔｅ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ｉｎ
ｔｏｂａｃｃｏ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔｓ ｅｎｈａｎｃｅｓ ｔｈｅ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｔｏ ｓａｌｔ ｓｔｒｅｓｓ ａｎｄ
ｗａｔｅｒ ｄｅｆｉｃｉｔ． Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉａ Ｐｌａｎｔａｒｕｍ， １２１（２）： ２３１ － ２３８
５０３２ 期 Ｗａｎｇ Ｘｕｅｇｕｉ， ｅｔ ａｌ． ： Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ａｎｄ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｏｎ ｓｅｅｄ ｐｏｔａｔｏ ｓｔｏｒａｇｅ
Ｂｅｗｌｅｙ ＪＤ． １９９７． Ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｏｒｍａｎｃｙ． Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ， ９
（７）： １０５５ － １０６６
Ｃａｌｅｇａｒｉｏ ＦＦ， Ｃｏｓｓｏ ＲＧ， Ｆａｇｉａｎ ＭＭ， Ａｌｍｅｉｄａ ＦＶ， Ｊａｒｄｉｍ ＷＦ，
Ｊｅžｅｋ Ｐ， Ａｒｒｕｄａ Ｐ， Ｖｅｒｃｅｓｉ ＡＥ． ２００３． Ｓｔｉｍｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｏｔａｔｏ
ｔｕｂｅｒ ｒｅｓｐｉｒａｔｉｏｎ ｂｙ ｃｏｌｄ ｓｔｒｅｓｓ ｉｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ａｎ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ
ｃａｐａｃｉｔｙ ｏｆ ｂｏｔｈ ｐｌａｎｔ ｕｎｃｏｕｐｌｉｎｇ ｍｉｔｏｃｈｏｎｄｒｉａｌ ｐｒｏｔｅｉｎ
（ＰＵＭＰ） ａｎｄ ａｌｔｅｒｎａｔｉｖｅ ｏｘｉｄａｓｅ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｅｎｅｒｇｅｔｉｃｓ ａｎｄ
Ｂｉｏｍｅｍｂｒａｎｅｓ， ３５（３）： ２１１ － ２２０
Ｃｈａｕｈａｎ ＳＳ， Ｐｒａｋａｓｈ Ｏ， Ｐａｄａｌｉａ ＲＣ， Ｖｉｖｅｋａｎａｎｄ， Ｐａｎｔ ＡＫ，
Ｍａｔｈｅｌａ ＣＳ． ２０１１． Ｃｈｅｍｉｃａｌ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ Ｍｅｎｔｈａｓｐｉｃａｔａ： ａｎ⁃
ｔｉｏｘｉｄａｎｔ ａｎｄ ｐｏｔａｔｏ ｓｐｒｏｕｔ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ ｉｔｓ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ
ｏｉｌｓ． Ｎａｔｕｒａｌ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎ， ６（９）： １３７３ － １３７８
Ｃｈｏ ＪＹ， Ｃｈｏｉ ＧＪ， Ｓｏｎ ＳＷ， Ｊａｎｇ ＫＳ， Ｌｉｍ ＨＫ， Ｌｅｅ ＳＯ， Ｓｕｎｇ ＮＤ，
Ｃｈｏ ＫＹ， Ｋｉｍ ＪＣ． ２００７． Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ａｎｄ ａｎｔｉｆｕｎｇａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ ｌｉｇ⁃
ｎａｎｓ ｆｒｏｍ Ｍｙｒｉｓｔｉｃａ ｆｒａｇｒａｎｓ ａｇａｉｎｓｔ ｖａｒｉｏｕｓ ｐｌａｎｔ ｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ
ｆｕｎｇｉ． Ｐｅｓｔ Ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ Ｓｃｉｅｎｃｅ， ６３（９）： ９３５ － ９４０
Ｃｉｚｋｏｖａ Ｈ， Ｖａｃｅｋ Ｊ， Ｖｏｌｄｒｉｃｈ Ｍ， Ｓｅｖｃｉｋ Ｒ， Ｋｒａｔｋａ Ｊ． ２０００． Ｃａｒａ⁃
ｗａｙ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌ ａｓ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ｏｆ ｐｏｔａｔｏ ｓｐｒｏｕｔｉｎｇ．
Ｒｏｓｔｌｉｎｎ􀅡 Ｖ􀆪ｒｏｂａ， ４６（１１）： ５０１ － ５０７
Ｇóｍｅｚ⁃Ｃａｓｔｉｌｌｏ Ｄ， Ｃｒｕｚ Ｅ， Ｉｇｕａｚ Ａ， Ａｒｒｏｑｕｉ Ｃ， Ｖíｒｓｅｄａ Ｐ． ２０１３．
Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｏｎ ｓｐｒｏｕｔ ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ ａｎｄ ｑｕａｌｉｔｙ ｏｆ ｐｏ⁃
ｔａｔｏ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ． Ｐｏｓｔｈａｒｖｅｓｔ Ｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ， ８２： １５ － ２１
Ｈａｒｒｉｓ ＰＭ． １９７８． Ｔｈｅ ｐｏｔａｔｏ ｃｒｏｐ： ｔｈｅ ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ ｂａｓｉｓ ｆｏｒ ｉｍｐｒｏｖｅ⁃
ｍｅｎｔ． Ｌｏｎｄｏｎ： Ｓｐｒｉｎｇｅｒ Ｐｒｅｓｓ， ｐｐ． ７３０
Ｊｉａ Ｑ， Ｚｈａｎｇ ＤＨ， Ｍｅｎｇ ＭＬ， Ｈｅ ＱＹ， Ｗａｎｇ ＨＳ． ２００９． Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ
ｏｓｍｏｔｉｃ ｓｔｒｅｓｓ ｗｉｔｈ ＰＥＧ６０００ ｏｎ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ ｏｆ
ｐｏｔａｔｏｅｓ． Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｐｏｔａｔｏ Ｊｏｕｒｎａｌ， ２３（５）： ２６３ － ２６７ （ ｉｎ Ｃｈｉ⁃
ｎｅｓｅ）
Ｋａｔｏ⁃Ｎａｇｕｃｈｉ Ｈ， Ｍａｃíａｓ ＦＡ． ２００５． Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ６⁃ｍｅｔｈｏｘｙ⁃２⁃ｂｅｎｚｏｘ⁃
ａｚｏｌｉｎｏｎｅ ｏｎ ｔｈｅ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ａｎｄ α⁃ａｍｙｌａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｉｎ ｌｅｔｔｕｃｅ
ｓｅｅｄｓ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ， １６２（１２）： １３０４ － １３０７
Ｋｗａｋ ＳＳ， Ｋｉｍ ＳＫ， Ｐａｒｋ ＩＨ， Ｌｉｕ ＪＲ． １９９６． Ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ ｏｆ ｐｅｒｏｘｉ⁃
ｄａｓｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｂｙ ｓｔｒｅｓｓ⁃ｒｅｌａｔｅｄ ｃｈｅｍｉｃａｌｓ ｉｎ ｓｗｅｅｔ ｐｏｔａｔｏ． Ｐｈｙｔｏ⁃
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Ｐｏｓｔｈａｒｖｅｓｔ Ｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ， ２４（３）： ３１７ － ３２５
（责任编辑：高　 峰）
６０３ 植　 物　 保　 护　 学　 报 ４３ 卷