免费文献传递   相关文献

Allelopathy of aqueous extracts of Kochia scoparia on flaxseed

地肤水浸提液对胡麻化感效应的研究



全 文 :书地肤水浸提液对胡麻化感效应的研究
赵利1,2,牛俊义1,李长江1,马朋丽1,党占海2
(1.甘肃农业大学生命科学技术学院,甘肃 兰州730070;2.甘肃省农业科学院作物研究所,甘肃 兰州730070)
摘要:采用生物测定法研究了地肤及其不同部位水浸提液对胡麻的化感效应。结果表明,1)不同浓度的地肤全株
及地上部茎叶水浸提液对胡麻种子萌发和幼苗生长有不同程度的抑制作用,抑制率均随浸提液浓度的升高而增
大,0.100g/mL处理对胡麻种子的发芽势、发芽率、发芽指数、活力指数及幼苗的根长、苗高、根鲜重和苗鲜重的抑
制率均达100%。2)地肤水浸提液抑制胡麻种子萌发主要是抑制了活力指数,抑制胡麻幼苗生长主要是抑制了根
的生长。3)地肤释放化感物质可能有多种途径(如地上部淋溶、根系分泌等),但从综合效应看,同一浓度处理均以
地上部化感作用最强,根系化感作用最弱。
关键词:地肤;水浸提液;胡麻;化感效应
中图分类号:S565.03;Q945.7  文献标识码:A  文章编号:10045759(2010)02019006
  化感作用(alelopathy)是存在于自然界的一种普遍现象,它是指一种植物通过向环境中释放化学物质而对
另一种植物(或微生物)产生有益或有害的作用[1]。许多植物(包括作物和杂草)均被报道有化感效应存在[210],
这是物种进化过程中竞争生存的必然。农业生产中的间作、套种、轮作、前后茬搭配,残茬的处置和利用以及作物
和杂草的关系等,都存在化感作用[11]。目前国内外关于化感作用的研究较多,涉及化感物质的种类、释放途径、
化感作用的机理及影响化感作用的因素等方面的研究[1217]。研究表明,影响化感作用的因素主要有:化感作用物
的浓度、种类及存在状态;植物种类与作用器官;环境条件,如温度、降水量、光照、土壤肥力、排水条件等。高等植
物间的化感物质(alelochemicals)通常是通过地上部淋溶和挥发、根系分泌和植物残体分解等方式释放到环境中
去,从而影响周围其他植物的生长[1820]。
胡麻(犔犻狀狌犿狌狊犻狋犪狋犻狊狊犻犿狌犿)是甘肃省重要的经济作物和油料作物之一,常年播种面积13.3万hm2(200万
亩)左右,总产15万t左右,播种面积和总产均占全国的1/3以上,居全国首位。地肤(犓狅犮犺犻犪狊犮狅狆犪狉犻犪)是藜科
的一种一年生草本植物,由于该植物在胡麻田间种群密度大,发生频率高,相对丰度大,与胡麻共生期长,从而成
为胡麻田间的一种优势伴生杂草。众所周知,杂草除了与作物竞争光照、养分、水分和空间外,还是害虫的中间寄
主,是作物减产和品质降低的主要因素之一。然而关于伴生杂草对胡麻的化感作用的研究未见报道。因此,本试
验针对影响化感作用的2种因素,研究不同浓度、不同部位地肤水浸提液对胡麻种子萌发和幼苗生长的影响,旨
在了解不同浓度的地肤对胡麻化感效应的大小和作用规律,以及不同部位化感潜势的差异性,为进一步探讨杂草
地肤对胡麻的作用机制提供参考,并为制定科学的杂草综合防治方案提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 样品的采集和处理
2009年5月23日,于地肤盛花期,在甘肃农业科学院胡麻试验田,采用倒置“W”法,选取5个样点,在每个
样点挖取健康地肤植株4~5株,所有样点植株混在一起,剔除腐叶、枯叶后用清水快速冲洗后阴干;最后从阴干
植株上收集根系、地上部茎叶、整株样品(地上部样品、整株样品均是单独收集,而非将各部分合并而成)。
1.2 水浸提液的制备
将供体植物分为地上部、根系和全株3部分,分别用剪刀剪成2mm的小段,各称取40g,装入棕色瓶中,每
瓶中加400mL蒸馏水,充分摇匀,20℃下浸泡48h,间歇震荡,最后过滤,得0.100gFW/mL浓度的水浸提液母
190-195
2010年4月
   草 业 学 报   
   ACTAPRATACULTURAESINICA   
第19卷 第2期
Vol.19,No.2
 收稿日期:20091130;改回日期:20100119
基金项目:现代农业产业技术体系建设专项资金 (nycytx22)资助。
作者简介:赵利(1973),女,陕西武功人,副研究员,在读博士。Email:zhy1972@yahoo.com.cn
通讯作者。Email:dangzhh1955@yahoo.com.cn
液,再稀释为0.050,0.025gFW/mL,于4℃冷藏备用。
1.3 试验方法
挑选大小一致、健康、无破损和霉变的胡麻种子,并用干净的滤纸擦净后备用。取直径为12cm的培养皿,垫
上2层滤纸,分别加上10mL不同浓度的稀释液,对照为蒸馏水,随机数25粒胡麻种子,均匀分布在皿内,每个
处理3次重复,在人工智能培养箱中25℃恒温保湿光照培养:光照12h(7:00-19:00),黑暗12h。种子萌发过
程中,每天加10mL蒸馏水(CK)或不同浓度的稀释液(试验组)保持滤纸湿润,第3天统计发芽势,第7天统计发
芽率,并挑选第1天萌发种子的幼苗10株,用吸水纸吸干水分,用直尺测定每株幼苗的根长和苗高,用电子天平
称量根鲜重和苗鲜重。分别计算各个对照和处理的发芽指数和活力指数、单株根鲜重和苗鲜重,其中各项指标的
计算方法[21]如下:
发芽率(犌犚%)=(7d内正常发芽的种子数/供试种子总数)×100%。
发芽势(犌犈%)=(前3d内正常发芽种子数/供试种子总数)×100%。
发芽指数犌犐=∑(犌狋/犇狋)。犌狋表示在第狋天种子的发芽数;犇狋代表相应的发芽天数。
活力指数犞犐=犌犐×犛。式中,犛为第7天测得的整株幼苗鲜重(g)。
参照 Wiliamson等[22]的方法,以化感作用抑制率(RI)作为化感作用的研究指标:犚犐=(犜犻-犜0)/犜0×
100%,式中,犜犻为处理值,犜0 为对照值。犚犐>0表示具有促进作用,犚犐<0表示具有抑制作用。犚犐绝对值越大,
其化感作用潜力(促进或抑制作用)越大。
综合效应(SE):是供体对同一受体各个测试项目的对照抑制百分率的算术平均值[23]。
1.4 试验数据的统计分析
所有试验数据均用EXCEL和DPS7.05[24]统计完成。多重分析方法为Duncan’s新复极差法。
2 结果与分析
2.1 地肤水浸提液对胡麻种子萌发的影响
2.1.1 根系水浸提液对胡麻种子萌发的影响 3种浓度的地肤根系水浸提液对胡麻种子的发芽势、发芽率、发
芽指数和活力指数有不同程度的抑制作用(表1),0.100g/mL处理的发芽势和发芽率与对照间差异显著,其余2
种浓度处理与对照间差异不显著;3种浓度处理的发芽指数与对照间差异均极显著;0.100和0.050g/mL处理
的活力指数与对照间差异均极显著,而0.025g/mL处理与对照间差异显著。
2.1.2 地上部茎叶水浸提液对胡麻种子萌发的影响 3种浓度的地上部茎叶水浸提液对胡麻种子的发芽势、发
芽率、发芽指数、活力指数均有不同程度的抑制作用,且抑制率随着浸提液浓度的升高而增大,在0.100g/mL处
理时上述4种指标的抑制率均达100%。0.050和0.025g/mL处理的发芽势、发芽率、发芽指数和活力指数与
对照间差异均极显著(表1)。
2.1.3 地肤全株水浸提液对胡麻种子萌发的影响 3种浓度的地肤全株水浸提液对胡麻种子的发芽势、发芽
率、发芽指数和活力指数有不同程度的抑制作用,且抑制率随着浸提液浓度的升高而增大,在0.100g/mL处理
时上述4种指标的抑制率均达100%。而0.050g/mL处理的发芽势和发芽率与对照间差异均极显著,0.025
g/mL处理与对照间差异不显著;0.050和0.025g/mL处理的发芽指数和活力指数与对照间差异均极显著(表
1)。
2.2 地肤水浸提液对胡麻幼苗生长的影响
2.2.1 根系水浸提液对胡麻幼苗生长的影响 3种浓度的地肤根系水浸提液对胡麻幼苗的根长和苗鲜重有不
同程度的抑制作用(表2),且0.050g/mL处理对根长和苗鲜重的抑制作用最小,分别为54.72%和15.45%,其
中3种浓度处理的根长与对照间差异均极显著,0.100g/mL处理的苗鲜重与对照间差异极显著,其余2种处理
与对照间差异不显著;0.100和0.050g/mL处理的苗高与对照间差异均达显著水平,但0.100g/mL处理对苗
高有抑制作用,而0.050和0.025g/mL处理对苗高有促进作用;0.050g/mL处理对根鲜重有微弱的促进作用,
其余2种浓度处理对根鲜重均有抑制作用,但3种浓度处理的根鲜重均与对照间差异不显著。
191第19卷第2期 草业学报2010年
表1 不同浓度地肤水浸提液对胡麻种子萌发的影响
犜犪犫犾犲1 犐狀犳犾狌犲狀犮犲狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋犮狅狀犮犲狀狋狉犪狋犻狅狀犪狇狌犲狅狌狊犲狓狋狉犪犮狋狊狅犳犓.狊犮狅狆犪狉犻犪狅狀犳犾犪狓狊犲犲犱犵犲狉犿犻狀犪狋犻狅狀
处理
Treatments
(g/mL)
发芽势
Germination
energy
(%)
发芽势抑制率(RI)
Inhibitingrateof
germination
energy(%)
发芽率
Germination
rate
(%)
发芽率抑制率(RI)
Inhibitingrateof
germinationrate
(%)
发芽指数
Germination
index
发芽指数抑制率(RI)
Inhibitingrateof
germinationindex
(%)
活力指数
Vigor
index
活力指数抑制率(RI)
Inhibitingrateof
vigorindex
(%)
根系水浸提液Rootaqueousextracts
0.100 57.33bA -33.85 64.00bA -30.43 21.10cC -57.37 0.79cC -63.81
0.050 74.67abA -13.85 89.33aA -2.90 32.18bBC -34.96 1.64bBC -24.97
0.025 81.33abA -6.15 82.67abA -10.14 33.56bB -32.19 1.42bAB -34.80
CK 86.67aA 92.00aA 49.49aA 2.18aA
地上部茎叶水浸提液Stemandleafaqueousextracts
0.100 0dD -100.00 0dD -100.00 0dD -100.00 0cC -100.00
0.050 17.33cC -80.00 24.00cC -73.91 6.13cC -87.61 0.04cC -97.98
0.025 62.67bB -27.69 66.67bB -27.54 22.88bB -53.76 0.93bB -57.57
CK 86.67aA 92.00aA 49.49aA 2.18aA
全株水浸提液 Wholeplantaqueousextracts
0.100 0cC -100.00 0cC -100.00 0dD -100.00 0cC -100.00
0.050 33.33bB -61.54 46.67bB -49.28 12.82cC -74.09 0.42cBC -80.82
0.025 74.67aA -13.85 86.67aA -5.80 28.43bB -42.54 1.04bB -52.15
CK 86.67aA 92.00aA 49.49aA 2.18aA
 注:同列中相同字母表示在犘≥0.01(大写字母)和犘≥0.05(小写字母)时差异不显著(Duncan’s法)。下同。
 Note:Thesameletterineachcolumnindicatesnosignificantdifferenceat犘≥0.01(capitalletters)and犘≥0.05(lowercases)(Duncan’s).The
samebelow.
表2 不同浓度地肤水浸提液对胡麻幼苗生长的影响
犜犪犫犾犲2 犐狀犳犾狌犲狀犮犲狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋犮狅狀犮犲狀狋狉犪狋犻狅狀犪狇狌犲狅狌狊犲狓狋狉犪犮狋狊狅犳犓.狊犮狅狆犪狉犻犪狅狀犳犾犪狓狊犲犲犱犾犻狀犵狊犵狉狅狑狋犺
处理
Treatments
(g/mL)
根长
Root
length
(cm)
根长抑制率(RI)
Inhibitingrateof
rootlength
(%)
苗高
Shoot
height
(cm)
苗高抑制率(RI)
Inhibitingrateof
shootheight
(%)
根鲜重
Rootfresh
weight
(mg)
根鲜重抑制率(RI)
Inhibitingrateof
rootfresh
weight(%)
苗鲜重
Shoot
freshweight
(mg)
苗鲜重抑制率(RI)
Inhibitingrateof
shootfreshweight
(%)
根系水浸提液Rootaqueousextracts
CK 1.69aA 3.18bBC 49.37abA 4.01aA
0.025 0.63bcB -62.80 3.87abAB 21.68 37.96bA -23.11 3.01aAB -24.92
0.050 0.77bB -54.72 4.51aA 41.68 53.30aA 7.97 3.39aAB -15.45
0.100 0.33cB -80.81 1.95cC -38.85 37.62bA -23.79 1.64bB -59.14
地上部茎叶水浸提液Stemandleafaqueousextracts
CK 1.69aA 3.18aA 49.37aA 4.01aA
0.025 0.33bB -80.78 3.05aA -4.14 40.05aA -18.88 2.53bA -36.88
0.050 0.13bB -92.13 0.52bB -83.77 8.33bB -83.12 0.47cB -88.37
0.100 0bB -100.00 0bB -100.00 0bB -100.00 0cB -100.00
全株水浸提液 Wholeplantaqueousextracts
CK 1.69aA 3.18aA 49.37aA 4.01aA
0.025 1.31abA -22.83 3.33aA 4.71 36.20abA -26.77 3.43aA -14.45
0.050 0.37bcA -78.35 1.53bAB -51.83 27.50bA -44.29 2.80aAB -30.23
0.100 0cA -100.00 0bB -100.00 0cB -100.00 0bB -100.00
291 ACTAPRATACULTURAESINICA(2010) Vol.19,No.2
2.2.2 地上部茎叶水浸提液对胡麻幼苗生长的影响 不同浓度地上部茎叶水浸提液对胡麻幼苗的根长、苗高、
根鲜重和苗鲜重均有不同程度的抑制作用,且随着浸提液浓度的升高,抑制作用越明显,0.100g/mL处理对上述
指标有100%的抑制作用。0.050和0.025g/mL处理的根长与对照间差异均极显著;0.050g/mL处理的苗高、
根鲜重和苗鲜重与对照间差异均极显著,0.025g/mL处理的苗鲜重与对照间差异显著,但0.025g/mL处理的
苗高和根鲜重与对照间差异不显著(表2)。
2.2.3 地肤全株水浸提液对胡麻幼苗生长的影响 不同浓度地肤全株水浸提液对胡麻幼苗的根长、根鲜重、苗
鲜重均有不同程度的抑制作用,同样随着处理浓度的加大,抑制作用越明显。0.100g/mL处理对上述指标有
100%的抑制作用。而0.050g/mL处理的根长、苗高和根鲜重与对照间差异均显著,0.025g/mL处理与对照间
差异均不显著;除了0.025g/mL处理对苗高有促进作用外,其余2种处理均对苗高有抑制作用;0.050和0.025
g/mL处理的苗鲜重与对照间差异均不显著(表2)。
2.3 不同浓度地肤水浸提液对胡麻影响的综合效应
地肤地上部茎叶和全株水浸提液对胡麻影响的综
合效应均随着浸提液浓度的升高而增大(表3),而根
系水浸提液对胡麻影响的综合效应由大到小为:
0.100,0.025和0.050g/mL处理。从同一浓度处理
来看,除了0.100g/mL地肤地上部茎叶和全株处理的
综合效应相等外,其余浓度处理均为:地上部茎叶综合
效应最大,其次是全株,根系综合效应最小,表明茎和
叶片是集中表现地肤化感作用的特定部位。
表3 不同浓度地肤水浸提液对胡麻影响的综合效应(犛犈)
犜犪犫犾犲3 犜犺犲犻狀犺犻犫犻狋犻狅狀狊狔狀狋犺犲狊犻狊犲犳犳犲犮狋(犛犈)狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋
犮狅狀犮犲狀狋狉犪狋犻狅狀犪狇狌犲狅狌狊犲狓狋狉犪犮狋狅犳犓.狊犮狅狆犪狉犻犪狅狀犳犾犪狓狊犲犲犱
水浸提液浓度
Concentration(g/mL)
根系
Root
地上部茎叶
Thestemandleaf
全株
Wholeplant
0.100 -388.05 -800.00 -800.00
0.050 -97.20 -686.89 -470.43
0.025 -172.43 -307.24 -173.68
3 讨论
地肤根系、地上部茎叶和全株水浸提液对胡麻种子萌发和幼苗生长有不同程度的抑制作用,说明地肤这种伴
生杂草不仅通过与胡麻竞争阳光、水分、养分和生存空间而影响胡麻生产,它还可以通过淋溶释放化感物质抑制
胡麻生长,并且其地上部茎叶和全株水浸提液对胡麻种子发芽势、发芽率、发芽指数、活力指数的抑制率随着浸提
液浓度的升高而增大,说明这2种水浸液浓度越大,化感作用越强,抑制发芽越明显。除了0.100g/mL处理对
发芽势、发芽率、发芽指数和活力指数是100%抑制外,其余2种浓度处理抑制率由大到小依次均为:活力指数、
发芽势、发芽指数和发芽率,说明地肤地上部茎叶和全株水浸提液抑制胡麻种子萌发主要是抑制了活力指数,而
根系水浸提液除了0.050g/mL处理对活力指数的抑制作用较小外,其余2种浓度处理均对活力指数的抑制作
用最大,说明根系水浸提液抑制胡麻种子萌发也主要是抑制了活力指数(表1)。另外,除了0.100g/mL地肤全
株及其地上部茎叶水浸提液对根长、苗高、根鲜重、苗鲜重是100%抑制外,其余处理均对根长的抑制作用最大,
说明地肤及其不同部位水浸提液抑制胡麻幼苗生长主要是抑制了根的生长(表2)。
同一浓度处理,除了0.100g/mL地肤地上部和全株处理为100%抑制外,其余不同浓度处理均以地上部茎
叶综合效应最大,根系综合效应最小,表明地上部茎叶化感作用最大,根系化感作用最小(表3)。另外,由于本研
究把叶和茎秆统一作为地上部处理,所以二者化感作用孰大孰小,不得而知,但全株的化感作用大于根系,与
Turk和Tawaha[25]的研究结论一致;同时,这种不同部位的化感潜势及其强度的差异性,可能是由于植物合成、
释放化感物质途径不同的缘故。
本研究表明,地肤地上部及全株水浸提液对胡麻种子萌发和幼苗生长的抑制作用随着处理浓度的增大而增
强,这种抑制作用的浓度效应与甄润德等[26]和贾春虹等[27]的研究结果一致。而根系水浸提液对胡麻的化感作用
强度较小,且也不像地上部和全株处理那样随着处理浓度的增大抑制作用增强,这可能与植物根系和土壤系统之
间的能量流和物质流有一定关系。
地肤及其不同部位水浸提液对胡麻的种子萌发和幼苗生长显示化感活性,表明地肤释放化感物质有多种途
径(根系、地上部等)。但地肤是否还以叶面挥发或枯落物分解等途径释放化感物质,还需进一步研究。
391第19卷第2期 草业学报2010年
4 结论
4.1 地肤及其地上部茎叶水浸提液对胡麻种子的发芽势、发芽率、发芽指数、活力指数及幼苗的根长、苗高、根鲜
重和苗鲜重均具有不同程度的抑制作用,抑制率随着浸提液浓度的升高而增大。
4.2 地肤及其不同部位水浸提液抑制胡麻种子萌发主要是抑制了活力指数,抑制胡麻幼苗生长主要是抑制了根
的生长。
4.3 同一浓度处理,均以地上部化感作用最为显著,其次是全株,根系化感作用最弱。
4.4 地肤释放化感物质可能有多种途径(如地上部淋溶、根系分泌等),但地上部茎和叶是释放化感物质的主要
部位。
参考文献:
[1] RiceEL.Alelopathy(2ndEdn)[M].NewYork,USA:AcademicPress,1984.
[2] 曹慕岚,李翔.入侵植物———加拿大飞蓬对作物种子萌发及幼苗生长的影响[J].成都大学学报(自然科学版),2008,27(3):
187190.
[3] 乐美旺,肖运萍,饶月亮,等.芝麻化感作用及其研究进展[J].作物杂志,2008,4:1518.
[4] 耿广东,程智慧,张素勤.不同浓度的辣椒化感物质对莴苣化感效应研究[J].华北农学报,2008,23(2):3033.
[5] 张风娟,徐兴友,陈凤敏,等.黄顶菊茎叶浸提液对白菜和水稻幼苗化感作用的初步研究[J].西北植物学报,2008,28(8):
16691674.
[6] 李逢雨,孙锡发,冯文强,等.水稻秸秆水浸提液对小麦的化感作用研究[J].西南农业学报,2008,21(4):960964.
[7] 张燕,慕小倩.外来杂草反枝苋对农作物的化感作用及其风险评价[J].西北植物学报,2008,28(4):771776.
[8] 赵红梅,杨顺义,郭鸿儒,等.黄花蒿对4种受体植物的化感作用研究[J].西北植物学报,2007,27(11):22922297.
[9] OnurKoloren.Alelopathiceffectsof犕犲犱犻犮犪犵狅狊犪狋犻狏犪L.and犞犻犮犻犪犮狉犪犮犮犪L.leafandrootextractsonweeds[J].Pakistan
JournalofBiologicalSciences,2007,10(10):16391642.
[10] 杨超,慕小倩.伴生杂草播娘蒿对小麦的化感效应[J].应用生态学报,2006,17(12):23892393.
[11] 黄高宝,柴强.植物化感作用表现形式及其开发应用研究[J].中国生态农业学报,2003,11(3):172174.
[12] 高承芳,翁伯琦,王义祥,等.铝、镁离子胁迫下决明对百喜草的化感作用[J].草业学报,2009,18(5):4045.
[13] 高兴祥,李美,高宗军,等.外来物种小飞蓬的化感作用初步研究[J].草业学报,2009,18(5):4651.
[14] 钟宇,张健,杨万勤,等.不同土壤水分条件下生长的巨桉对紫花苜蓿的化感作用[J].草业学报,2009,18(4):8186.
[15] 孔垂华,徐涛,胡飞.胜红蓟化感作用研究Ⅱ.主要化感物质的释放途径和活性[J].应用生态学报,1998,9(3):257260.
[16] 周淑清,黄祖杰,王慧,等.狼毒在土壤里腐解过程中对红豆草生化他感作用的研究[J].草业科学,2009,26(3):9194.
[17] 于福科,黄新会,马永清.不同生长时期沙打旺不同部位及其植株的化感作用研究[J].草业学报,2008,17(5):7683.
[18] WilisRJ.AustralianStudiesonAlelopathyinEacahyptus:AReview.InprinciplesandPracticesinPlantEcology,Alelo
chemicalInteractins[M].NewYork:CRCPress,1999.
[19] 李绍文.生态生物化学(二):高等植物之间的生化关系[J].生态学杂志,1989,8(1):6670.
[20] LinWX,KimKU,SminDH.Ricealelopathicpotentialanditsmodesofactiononbarnyardgrass(犈犮犺犻狀狅犮犺犾狅犪犮狉狌狊犵犪犾犾犻)[J].
AlelopathyJournal,2000,7(2):215224.
[21] 慕小倩,何红花,董志刚.2种杂草水提液对小麦种子萌发及幼苗生长的影响[J].西北植物学报,2008,28(6):11651171.
[22] WiliamsonG,RichardsonD.Bioassayforalelopathy:Measuringtreatmentresponsewithindependentcontrols[J].Journal
ofChemicalEcology,1988,14:181188.
[23] 沈慧敏,郭鸿儒,黄高宝.不同植物对小麦、黄瓜和萝卜幼苗化感作用潜力的初步评价[J].应用生态学报,2005,16(4):
740743.
[24] 唐启义,冯明光.实用统计分析及其DPS数据处理系统[M].北京:科学出版社,2007.
[25] TurkMA,TawahaAM.Alelopathiceffectsofblackmustard(犅狉犪狊狊犻犮犪狀犻犵狉犪L.)ongerminationandgrowthofwildoat
(犃狏犲狀犪犳犪狋狌犪L.)[J].CropProtection,2003,22:673677.
[26] 甄润德,张树源,白雪芳,等.细叶亚菊挥发油中抑制垂穗披碱草的化合物的分离与鉴定[J].植物生理学报,1996,22(3):
491 ACTAPRATACULTURAESINICA(2010) Vol.19,No.2
311314.
[27] 贾春虹,王璞,赵秀琴.免耕覆盖麦秸土壤中酚酸浓度的变化及酚酸对夏玉米早期生长的影响[J].华北农学报,2004,
19(4):8487.
犃犾犲犾狅狆犪狋犺狔狅犳犪狇狌犲狅狌狊犲狓狋狉犪犮狋狊狅犳犓狅犮犺犻犪狊犮狅狆犪狉犻犪狅狀犳犾犪狓狊犲犲犱
ZHAOLi1,2,NIUJunyi1,LIChangjiang1,MAPengli1,DANGZhanhai2
(1.ColegeofLifeScienceandTechnology,GansuAgriculturalUniversity,Lanzhou730070,China;
2.CropResearchInstitute,GansuAcademyofAgriculturalSciences,Lanzhou730070,China)
犃犫狊狋狉犪犮狋:Alelopathyofaqueousextractsof犓狅犮犺犻犪狊犮狅狆犪狉犻犪anditsdifferentpartsonflax(犔犻狀狌犿狌狊犻狋犪狋犻狊狊犻
犿狌犿)weretestedbythemethodsofbioassay.Theresultsshowed:1)Differentconcentrationof犓.狊犮狅狆犪狉犻犪
anditsstemandleafaqueousextractshavedifferentdegree’sinhibitiononflaxseedgerminationandseedling
growth,andtheinhibitionrateincreasedwiththeincreasingconcentrationofextract,0.100g/mLwholeplant
anditsstemandleafaqueousextractsof犓.狊犮狅狆犪狉犻犪have100%inhibitionratetothegerminationenergy,ger
minationrate,germinationindex,vigorindexandrootlength,shootheight,rootfreshweightandshootfresh
weight.2)Theaqueousextractsof犓.狊犮狅狆犪狉犻犪inhibitflaxseedgerminationwasmainlybecausetheyinhibit
vigorindex,andtheyinhibitthegrowthofflaxseedlingswasmainlybecausetheyinhibitrootgrowth.3)犓.
狊犮狅狆犪狉犻犪aqueousextractsshowedalelopathyeffecttothegerminationandseedlinggrowthofflaxseed,which
indicatedthat犓.狊犮狅狆犪狉犻犪releasealelochemicalsinvariousways(suchasrainoffeluviation,rootexcretion,
etc.).Butaccordingtotheinhibitionsynthesiseffect,atthesameconcentrationofaqueousextracts,thestem
andleafhasthestrongestalelopathyonflaxseed,andtheroothastheleastalelopathy.
犓犲狔狑狅狉犱狊:犓狅犮犺犻犪狊犮狅狆犪狉犻犪;aqueousextracts;flaxseed;alelopathy
591第19卷第2期 草业学报2010年