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Cloning and bio-infomatical analysis of the high-affinity K+ transporter gene PutHKT2;1 from the halophyte Puccinellia tenuiflora

小花碱茅HKT2;1基因全长cDNA的克隆与生物信息学分析



全 文 :书小花碱茅犎犓犜2;1基因全长犮犇犖犃的
克隆与生物信息学分析
李剑,张金林,王锁民,郭强
(兰州大学草地农业科技学院 草地农业生态系统国家重点实验室,甘肃 兰州730020)
摘要:Na+是盐渍化土壤中主要的毒害离子,对植物生长发育和农业生产构成严重威胁。高亲和性 K+转运蛋白
HKT2;1在控制高等植物Na+吸收,增强K+的选择性,进而提高耐盐性方面发挥着重要作用。本研究以拒盐型牧
草小花碱茅为材料,采用RT-PCR和RACE(rapidamplificationofcDNAends)方法克隆到 犎犓犜2;1基因,并命
名为犘狌狋犎犓犜2;1。该基因全长1919bp,包含1个长1638bp的开放阅读框(ORF),编码546个氨基酸,推测分
子量为60.5kDa,等电点PI为9.07。与其他植物 HKT2;1氨基酸序列同源性多在66%以上,核苷酸序列同源性
都在75%以上。PutHKT2;1可能跨膜11次,二级结构分析表明,PutHKT2;1蛋白含有47.99%α螺旋、5.13%
β转角、31.87%无规则卷曲和15.01%延伸链。犘狌狋犎犓犜2;1基因全长cDNA的克隆及其生物信息学分析为进一
步揭示小花碱茅拒盐的分子机制奠定了基础。
关键词:小花碱茅;犘狌狋犎犓犜2;1基因;克隆;生物信息学分析;耐盐性
中图分类号:Q943.2;S543+.903  文献标识码:A  文章编号:10045759(2013)02014010
  世界上存在大约10亿hm2 的盐碱地[1],其中我国盐碱地约占全球总面积的10%[2,3];且灌溉导致的盐碱化
还会进一步扩大;因灌溉耕地产出的粮食占粮食总产量的1/3,其土壤盐碱化对世界粮食安全构成严重威胁[46]。
Na+是盐渍化土壤中主要的毒害离子,高浓度的Na+势必对植物产生严重的渗透胁迫[68]。此外,植物体内绝大
多数的生理生化代谢过程都是在细胞质中进行的,毒性Na+一旦进入其中,将对细胞分裂、生长、光合作用和发
育等生命代谢活动构成严重威胁,从而引起植物生长受抑,甚至导致死亡[6,9]。土壤中高浓度的Na+还阻碍了植
物对K+的吸收,造成植物体内K+匮缺[6,10]。研究发现,通过高亲和性K+转运蛋白(highaffinityK+transport
ers,HKTs)限制Na+的吸收,促进Na+的回收,提高K+的选择能力,从而维持植株体内K+、Na+稳态平衡,特
别是叶片中低的Na+浓度和Na+/K+是高等植物抵御盐逆境的关键,这在拟南芥(犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊狋犺犪犾犻犪狀犪)、小麦
(犜狉犻狋犻犮狌犿犪犲狊狋犻狏狌犿)和水稻(犗狉狔狕犪狊犪狋犻狏犪)等植物上已得到证实[6,1114]。HKT类转运蛋白是存在于植物、酵母、
细菌和真菌中的一个超级蛋白家族[6,15],自小麦TaHKT2;1被克隆之后[16],相继在拟南芥、水稻和大麦(犎狅狉
犱犲狌犿狏狌犾犵犪狉犲)等植物也发现了犎犓犜基因[6,1720]。根据异源表达结果,将 HKT类蛋白分为2种类型:第一种以
拟南芥AtHKT1;1为代表,包括水稻OsHKT1;4和OsHKT1;5等,作为1种Na+选择性的转运体,主要转运
Na+ [11,21];第二种以小麦TaHKT2;1为代表,包括水稻 OsHKT2;1/2和大麦 HvHKT2;1等,它们为 K+Na+
共转运体,其mRNA表达量在水稻中往往受K+饥饿的刺激而增加,在高亲和性K+吸收和低亲和性Na+吸收
的控制方面发挥作用[6,2225]。
碱茅属(犘狌犮犮犻狀犲犾犾犻犪)植物是生长于盐渍化沼泽地上的一类耐盐牧草,是抗盐能力极强的禾本科拒盐型盐生
植物(halophyte)[1,26]。研究表明,小花碱茅(犘狌犮犮犻狀犲犾犾犻犪狋犲狀狌犻犳犾狅狉犪)的拒Na+能力极强,可以在高Na+环境下生
存,且其体内维持很低的Na+浓度[27,28],进一步证实,小花碱茅根部对K+/Na+选择性吸收能力很强,约是小麦
的2倍[29],根系控制Na+内流和强的K+/Na+选择性是小花碱茅耐盐的关键[30]。据此,推理小花碱茅 HKT2;1
140-149
2013年4月
   草 业 学 报   
   ACTAPRATACULTURAESINICA   
第22卷 第2期
Vol.22,No.2
收稿日期:20110607;改回日期:20111103
基金项目:国家自然科学基金项目(31222053,31172256),教育部“新世纪优秀人才支持计划”(NCET110217),兰州大学中央高校基本科研业
务费专项资金(lzujbky2013k08)和兰州市科技发展计划项目(2010139)资助。
作者简介:李剑(1985),男,河南济源人,在读硕士。Email:lijian2009@lzu.edu.cn
通讯作者。Email:jlzhang@lzu.edu.cn
蛋白在控制其根系Na+内流和增强K+/Na+选择性中发挥着重要作用。本研究从小花碱茅根中克隆犎犓犜2;1
基因全长cDNA,将为进一步揭示小花碱茅拒盐的分子机制奠定基础。
1 材料与方法
1.1 材料与处理
小花碱茅种子2010年采自甘肃张掖市临泽县白寨村。挑选颗粒饱满的小花碱茅种子暗培养7d,发芽后转
移至光照培养室,浇灌 Hoagland营养液,每2d更换1次,培养4周后,对幼苗进行盐处理(200mmol/LNaCl)
24h,取100mg幼根经无菌水冲洗后,置于干净滤纸上吸干水分,放入1.5mL离心管中,经液氮速冻后转移至
-70℃冰箱中保存或直接用于总RNA提取。培养室昼夜温度为28/22℃,光照周期16h/d,光照强度约为600
μmol/m
2·s,空气相对湿度为60%~80%。Hoagland营养液组分:1mmol/LKNO3,1mmol/LNH4H2PO4,
0.5mmol/LMgSO4·7H2O,0.5mmol/LCa(NO3)2·4H2O,92μmol/LH3BO3,18μmol/LMnCl2·4H2O,
1.6μmol/LZnSO4·7H2O,0.6μmol/LCuSO4·5H2O,0.7μmol/L(NH4)6Mo7O24·4H2O,59μmol/L柠檬
酸铁。
1.2 主要试剂
RACE试剂盒,总RNA提取试剂盒,cDNA第一链合成试剂盒,LATaqPCR扩增试剂盒,UNIQ10PCR
产物回收试剂盒,pMD19TSimple载体,DNAladder,大肠杆菌感受态细胞,犈狊犮犺犲狉犻犮犺犻犪犮狅犾犻.DH5a菌株由本
实验室保存,其他生化试剂均为进口或国产分析纯。
1.3 研究方法
1.3.1 总RNA提取与cDNA第一链合成 总RNA的提取依照总RNA提取试剂盒说明书进行。反转录过程
依据cDNA第一链合成试剂盒说明书进行,反应体系为:500ng总RNA;2μLReactionBufferMix;补水至10
μL。37℃温浴15min;85℃温浴5s结束反应。
1.3.2 HKT2;1核心片段扩增 通过对大麦、水稻、小麦、高粱(犛狅狉犵犺狌犿犫犻犮狅犾狅狉)和芦苇(犘犺狉犪犵犿犻狋犲狊犪狌狊狋狉犪
犾犻狊)5种植物 HKT2;1氨基酸序列进行同源比对,利用DNAMAN和PrimerPremier5.0设计一对简并引物P1
和P2,推测核心片段长度为700bp。P1:5′TGCCGACRAAYGAGAACATGG3′;P2:5′CTCGAACARCTG
TARCCAGTGG3′,其中R=A/G,Y=C/T。PCR反应体系:LATaq,0.5μL;10×LAPCRBufferII(Mg
2+
Plus),5μL;dNTPMixture,8μL;P1,1μL;P2,1μL;模板cDNA,4μL;补水至总体积50μL。PCR反应条件:
94℃2min;94℃30s、56℃45s、72℃50s,30个循环;最后72℃延伸10min。
1.3.3 HKT2;13′端RACE扩增 根据测序所得到的HKT2;1核心片段序列,设计3′端特异性引物P3和P4。
P3(外侧):5′CATCTTTGTGATAGTTGCCTGCATC3′;P4(内侧):5′ATGGCAACGCAGGGCTATCCACT
3′。RACE试剂盒自带引物:GeneRacerTM3′Primer:5′GCTGTCAACGATACGCTACGTAACG3′;GeneRac
erTM3′NestedPrimer:5′CGCTACGTAACGGCATGACAGTG3′。依据RACE试剂盒说明书得到3′cDNA,
首先扩增3′端外侧,然后以外侧PCR产物为模板,利用巢式PCR方法扩增3′端内侧。外侧PCR反应条件:94℃
2min;94℃30s、59℃35s、72℃50s,30个循环;72℃10min。巢式PCR反应条件:94℃2min;94℃30s、60℃
30s、72℃40s,30个循环;72℃10min。
1.3.4 HKT2;15′端RACE扩增 根据测序所得到的HKT2;1核心片段序列,设计5′端特异性引物P5和P6。
P5(外侧):5′ACCGAGTTGATGATCTTGGAAGC3′;P6(内侧):5′GAACAATGTGTTGCCTGCGAGAAC
CT3′。RACE试剂盒自带引物:GeneRacerTM5′Primer:5′CGACTGGAGCACGAGGACACTGA3′;GeneRac
erTM5′NestedPrimer:5′GGACACTGACATGGACTGAAGGAGTA3′。依据 RACE试剂盒说明书得到5′
cDNA,首先扩增5′端外侧,然后以外侧PCR产物为模板,利用巢式PCR方法扩增5′端内侧。外侧PCR反应条
件:94℃2min;94℃30s、60℃50s、72℃75s,30个循环;72℃10min。巢式PCR反应条件:94℃2min;94℃
30s、58℃50s、72℃60s,30个循环;72℃10min。
1.3.5 亚克隆与测序 将HKT2;1核心片段、3′端和5′端PCR回收产物连接到pMD19TSimple载体上,重组
子转化大肠杆菌感受态细胞进行亚克隆,之后将菌液均匀涂布于LB固体培养基上进行蓝白斑筛选,次日挑选白
141第22卷第2期 草业学报2013年
色单菌落,再次扩繁后经PCR检测,挑选阳性克隆送上海生工测序。
1.3.6 HKT2;1序列生物信息学分析 核苷酸序列与氨基酸序列BLAST在 NCBI(http://blast.ncbi.nlm.
nih.gov/Blast.cgi)网站上进行;序列的翻译通过PrimerPremier5.0完成;DNAMAN主要用于氨基酸多重比
对;ORF鉴定采用在线软件ORFFinder(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gorf/gorf.html);HKT2;1蛋白跨膜
区预测采用在线软件TMpredServer(http://www.ch.embnet.org/software/TMPRED_form.html);HKT2;1
蛋白等电点和分子量预测采用在线软件ComputePI/Mwtool(http://au.expasy.org/tools/pi_tool.html);
HKT2;1蛋白二级结构预测采用在线软件SOPMA(http://npsapbil.ibcp.fr/cgibin/npsa_automat.pl?page
=/NPSA/npsa_sopma.html);HKT2;1蛋白三级结构预测采用在线软件 CPHmodels3.0Server(http://
www.cbs.dtu.dk/services/CPHmodels/)和蛋白质三级结构预测软件RasMol。
2 结果与分析
2.1 总RNA的提取与检测
图1 犘狌狋犎犓犜2;1基因核心片段的克隆
犉犻犵.1 犜犺犲狆犪狉狋犳狉犪犵犿犲狀狋狅犳犘狌狋犎犓犜2;1
   M为DNAladder;1为PCR产物。下同。M:DNAladder;1:PCR
product.Thesamebelow.
图2 犘狌狋犎犓犜2;1基因3′端片段的克隆
犉犻犵.2 3′犲狀犱犳狉犪犵犿犲狀狋狅犳犘狌狋犎犓犜2;1
取5μLRNA溶液,加入1μL5×甲醛变性胶上
样缓冲液和1μLEB(溴化乙锭,800μg/mL),甲醛变
性胶电泳结果显示:5S、18S和28S三条带清晰可
见,28S条带亮度约为18S的2倍,没有弥散,所提取
的RNA完整性良好;NanoDrop1000核酸蛋白检测仪
表明所提取RNA纯度高,无DNA和蛋白质污染,可
以用于下游基因克隆实验。
2.2 犎犓犜2;1全长cDNA克隆
以cDNA为模板,用简并引物P1和P2扩增出1
条697bp的条带,与预测长度基本一致(图1)。目的
条带上方稍微有些弥散,可能引物存在错配现象,但将
目的条带回收后,非特异性条带消失,不影响后续实
验。根据RACE试剂盒说明书得到3′cDNA,先以
P3与GeneRacerTM3′Primer进行外侧PCR扩增,然
后以外侧PCR产物为模板,用P4与GeneRacerTM3′
NestedPrimer进行巢式PCR扩增,得到1段长466
bp的片段,经测序证明为犎犓犜2;1基因3′端片段(图
2)。根据 RACE试剂盒说明书得到5′cDNA,先以
P5与GeneRacerTM5′Primer进行外侧PCR扩增,然
后以外侧PCR产物为模板,用P6与GeneRacerTM5′
NestedPrimer进行巢式PCR扩增,得到1段长888
bp的片段,经测序证明为犎犓犜2;1基因5′端片段(图
3)。将克隆到的核心片段、3′端和5′端进行拼接后得
到小花碱茅犎犓犜2;1基因的全长cDNA序列。
2.3 序列生物信息学分析
2.3.1 小花碱茅犎犓犜2;1基因全长cDNA的特征 犘狌狋犎犓犜2;1全长1919bp,ORF长1641bp,编码546个
氨基酸。3′非翻译区(3′UTR)长260bp,5′非翻译区(5′UTR)长18bp(图4)。推测分子量为60.5kDa,等电点
PI为9.07。
2.3.2 小花碱茅与其他植物HKT2;1氨基酸序列的多重比对 将小花碱茅PutHKT2;1与其他植物 HKT2;1
的氨基酸序列进行多重比较发现(图5,图6):PutHKT2;1与小麦TaHKT2;1的同源性最高为85%,其次是大
麦HvHKT2;1,同源性为83%,接下来依次是芦苇PaHKT2;1e、PaHKT2;1n和PaHKT2;1u,同源性都为
241 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.2
69%,水稻OsHKT2;1同源性为66%,与高粱SbHKT
图3 犎犓犜2;1基因5′端片段的克隆
犉犻犵.3 5′犲狀犱犳狉犪犵犿犲狀狋狅犳犘狌狋犎犓犜2;1
2;1同源性最低为46%,PutHKT2;1与其他植物
HKT2;1的核苷酸同源性都在75%以上。
2.3.3 小花碱茅HKT2;1跨膜区预测 跨膜区预测
分析表明:PutHKT2;1蛋白可能含有11个跨膜螺旋
片段(图4和图7),分别位于第1~17、62~80、94~
110、120~142、205~224、239~259、274~301、333~
352、389~409、436~454、463~486氨基酸残基间,跨
膜片段长度最大为28个氨基酸残基,最小为17个氨
基酸残基。植物 HKT类蛋白含有4个 MPM(mem
braneporemembrane)基序,及8个跨膜结构域和中
图4 犘狌狋犎犓犜2;1基因核苷酸序列及其推测的氨基酸序列
犉犻犵.4 犖狌犮犾犲狅狋犻犱犲狊犲狇狌犲狀犮犲犪狀犱犱犲犱狌犮犲犱犪犿犻狀狅犪犮犻犱狊犲狇狌犲狀犮犲狅犳犘狌狋犎犓犜2;1
阴影序列代表跨膜片段;星号代表终止子。Shadowsequencesrepresenttransmembranesegments;Asteriskrepresentsthestopcodon.
341第22卷第2期 草业学报2013年
图5 犘狌狋犎犓犜2;1与其他植物犎犓犜2;1氨基酸序列的多重比较
犉犻犵.5 犃犿犻狀狅犪犮犻犱狊犲狇狌犲狀犮犲犪犾犻犵狀犿犲狀狋狅犳犘狌狋犎犓犜2;1狑犻狋犺狅狋犺犲狉狆犾犪狀狋狊犎犓犜2;1
 划线序列为4个P环;箭头所指为P环中保守的氨基酸残基;Put:小花碱茅;Hv:大麦;Ta:小麦;Pa:芦苇;Os:水稻;Sb:高粱。Thesequenceslined
representfourPloop;Thearrowspointconservedaminoacid;Put:犘.狋犲狀狌犻犳犾狅狉犪;Hv:犎.狏狌犾犵犪狉犲;Ta:犜.犪犲狊狋犻狏狌犿;Pa:犘.犪狌狊狋狉犪犾犻狊;Os:犗.狊犪
狋犻狏犪;Sb:犛.犫犻犮狅犾狅狉.
441 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.2
间4个P环(Ploop)[11,31,32]。Kato等[32]对拟南芥At
 图6 犘狌狋犎犓犜2;1与其他植物犎犓犜2;1氨基酸序列同源性分析
犉犻犵.6 犃犿犻狀狅犪犮犻犱狊犲狇狌犲狀犮犲犺狅犿狅犾狅犵狔犪狀犪犾狔狊犻狊狅犳
犘狌狋犎犓犜2;1狑犻狋犺狅狋犺犲狉狆犾犪狀狋狊犎犓犜2;1
HKT1;1研究表明,采用软件分析其跨膜11次,但实
验证明有3个片段并不跨膜,证明AtHKT1;1跨膜8
次。多重比对发现,小花碱茅PutHKT2;1与其他植
物HKT2;1一样,具有4个保守P环序列(图5):PA
YIDMLFLSTSALTVSGLS(91108);PBIVLFSM
SITVASCANAGLV (242260);PCTVNALFMV
VNARHSGEN(368384);PDTLNMIFEVISAYG
NAGLS(468485)。
2.3.4 PutHKT2;1蛋白质二级与三级结构预测 
蛋白二级结构预测表明:PutHKT2;1 蛋白含有
47.99%α螺旋、5.13%β转角、31.87%无规则卷曲
和15.01%延伸链(图8)。此多肽链在二级结构的基
础上,进一步缠绕和折叠,形成其三级结构(图9)。
图7 小花碱茅犘狌狋犎犓犜2;1跨膜区预测
犉犻犵.7 犎狔犱狉狅狆犪狋犺狔狆犾狅狋犪狀犪犾狔狊犻狊狅犳狋犺犲狆狉犲犱犻犮狋犲犱狆狅犾狔狆犲狆狋犻犱犲狅犳犘狌狋犎犓犜2;1
 横坐标数字表示氨基酸残基,纵坐标数字表示亲水和疏水位点。图中数字表示PutHKT2;1跨膜片段个数。Aminoacidresiduesarenumberedon
thehorizontalaxes.Thehydrophobicandhydrophilicpositionsareplottedaboveandbelowtheordinate,respectively.Thenumbersinthefigureindi
catethestructuresofthepredictedtransmembranesegmentsofPutHKT2;1.
3 讨论与结论
植物HKT蛋白分子量多在60kDa左右,氨基酸数目500个左右,有的是单拷贝,或是一个小的基因家族,
通常受K+饥饿或盐胁迫诱导,能在根、茎、叶和花中表达[6,33],关于 HKT亚细胞定位主要以拟南芥研究较多,
AtHKT1;1主要在木质部周围薄壁细胞中表达[34],韧皮部细胞中也有少量表达[21]。关于 HKT蛋白生理功能
报道较少,主要在异源表达系统中探索其对K+、Na+的不同转运特性,但异源表达结果与真正生理功能可能存
在巨大差异,如Haro等[35]认为大麦HvHKT2;1在异源表达系统中可以转运K+的特性在整株水平上不可能发
生。突变体对于研究HKT蛋白在整株水平上的功能有重要意义,但是目前分离到的突变体仍然很少。
第二类HKT蛋白中对小麦TaHKT2;1和水稻OsHKT2;1研究较多,通常被认为是K+-Na+共转运体。
在异源表达系统中,小麦TaHKT2;1能够使 K+吸收缺陷酵母在低 K+条件下正常生长,对 K+的选择性强于
Na+,被认为是 H+-K+同向转运体[16],之后证明TaHKT2;1的转运特性依赖外部离子环境,实际上为K+-
541第22卷第2期 草业学报2013年
图8 犘狌狋犎犓犜2;1蛋白二级结构预测
犉犻犵.8 犘狉犲犱犻犮狋犻狅狀狅犳狋犺犲狊犲犮狅狀犱犪狉狔狊狋狉狌犮狋狌狉犲狅犳犘狌狋犎犓犜2;1
 螺旋(h)、折叠(s)、转角(t)和卷曲(c)分别由蓝色、红色、绿色和粉色表示Thehelix(h),sheet(s),turn(t)andcoil(c)wereindicatedwithblue,
red,greenandpinkverticallines,respectively
图9 犘狌狋犎犓犜2;1蛋白三级结构预测
犉犻犵.9 犘狉犲犱犻犮狋犻狅狀狅犳狋犺犲狋犲狉狋犻犪狉狔狊狋狉狌犮狋狌狉犲狅犳犘狌狋犎犓犜2;1
蓝色表示C端,红色表示N端TheCterminalisblue,theNterminalisred.
641 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.2
Na+转运体[36]。Laurie等[37]将反义的犜犪犎犓犜2;1转入小麦中,!源 HKT强烈下调,转基因植株根部Na+浓
度降低,耐盐性增强,因此认为小麦TaHKT2;1在整株水平上的功能是介导Na+吸收。第二类 HKT蛋白的4
个P环中都有1个甘氨酸位点,构成GGGG类型,而OsHKT2;1第一个P环的甘氨酸被丝氨酸代替,构成S
GGG类型,与第一类HKT蛋白一致[14];在卵母细胞和酵母中,OsHKT2;1对Na+有强选择性[18,38],但也介导
K+转运[39,40],研究发现,在无K+条件下,OsHKT2;1能够介导水稻根部对有益Na+的吸收,部分代替K+行使
生理功能[23]。氨基酸多重比对发现,小花碱茅PutHKT2;1属于GGGG类型(图5),且与小麦氨基酸同源性
最高,推测其在异源表达系统中应为K+-Na+共转运体。研究表明,HKT蛋白由KcsA类K+通道亚基经复制
加倍及融合进化而来,包含8个跨膜片段和中间4个P环结构[11,31,32],在P环或离P环很近的区域存在与K+、
Na+选择性吸收相关的多个位点[32],若在第一个P环过滤器位置为甘氨酸残基的 HKT蛋白通常为K+-Na+
共转运体,而为丝氨酸残基的通常为Na+单一转运体[41]。分析表明,根据目前公认的 HKT蛋白8次跨膜结构
模型,PutHKT2;1的11个跨膜片段有3个并不跨膜,且P环保守序列与有些跨膜片段重复,第四个P环后并没
有跨膜片段,这说明软件预测的跨膜片段只能作为参考,真正结构要后续实验证明。通过对其二级结构和三级结
构做进一步分析,有助于跨膜片段的精确定位。
下一步实验将在全长cDNA基础上,探究犘狌狋犎犓犜2;1的表达模式;通过Southern印迹杂交技术确定
犘狌狋犎犓犜2;1的拷贝数;采用GUS染色技术确定犘狌狋犎犓犜2;1的亚细胞定位,对于研究其在小花碱茅中生理功
能有重要意义;构建植物表达载体,导入模式植物中,探索其在活体细胞中的生理功能,为进一步揭示小花碱茅的
耐盐机制奠定分子基础。到目前为止,单子叶植物中只在水稻里分离到了突变体犗狊犎犓犜2;1,如果能分离到小
花碱茅犘狌狋犎犓犜2;1突变体,将会成为研究其生理功能的重要工具。
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oocytesandNa+ uptakein犛犪犮犮犺犪狉狅犿狔犮犲狊犮犲狉犲狏犻狊犻犪犲[J].PlantPhysiology,2000,122(4):12491260.
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LIJian,ZHANGJinLin,WANGSuoMin,GUOQiang
(StateKeyLaboratoryofGrasslandAgroecosystems,ColegeofPastoralAgriculturalScience
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methodsandwasusedtoinvestigatethesodiumtolerancemechanism.Thegenewas1919bpintotallength
withanopenreadingframe(ORF)of1638bpencodinga60.5kDaproteinwith546aminoacidsandtheoreti
calPIof9.07.Sequenceanalysissuggestedthatthenucleotidesequenceandthetranslatedaminoacidsequence
sharedover75%and66%ofhomologytotheHKT2;1genesequencesfromotherhigherplants.ThePutH
KT2;1proteinmighthave11transmembranesegments.SecondarystructureanalysisindicatedthatthePutH
KT2;1containeda47.99%αhelix,5.13%βturns,31.87%randomcoilsand15.01%extendedstrand.Clo
ningthefullength犘狌狋犎犓犜2;1geneanditsbioinformaticalanalysiswilbehelpfultoelucidatethesalttoler
ancemechanismof犘.狋犲狀狌犻犳犾狅狉犪.
犓犲狔狑狅狉犱狊:犘狌犮犮犻狀犲犾犾犻犪狋犲狀狌犻犳犾狅狉犪;犘狌狋犎犓犜2;1;cloning;bioinformaticalanalysis;salttolerance
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