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Cloning and Recombinant Protein Expression of ACC Synthase Genes in Cut Roses(Rosa hybrida)

切花月季ACC合成酶基因的克隆和原核表达



全 文 :园 艺 学 报 2010,37(7):1132–1138
Acta Horticulturae Sinica
收稿日期:2009–06–15;修回日期:2010–06–22
基金项目:国家‘863’项目(2006AA100109);教育部博士点基金项目(21512480)
* 通信作者 Author for correspondence(E-mail:gaojp@cau.edu.cn)
切花月季 ACC合成酶基因的克隆和原核表达
谭远军 1,薛璟祺 2,仝 征 1,马 男 1,高俊平 1,*
(1中国农业大学观赏园艺与园林系,北京 100193;2中国农业科学院蔬菜花卉研究所,北京 100081)
摘 要:克隆了与伤害诱导相关的 Rh-ACS1和与花朵开放进程及乙烯诱导相关的 Rh-ACS3基因全长。
结果表明,Rh-ACS1基因全长为 2 132 bp,开放阅读框(ORF)长度为 1 476 bp,推定编码 491个氨基酸。
Rh-ACS3基因的全长 1 734 bp,ORF长度为 1 545 bp,推定编码 514个氨基酸。对这两个基因编码的蛋白
进行原核表达分析,结果显示,在 37 ℃条件下,0.6 mmol · L-1 IPTG诱导 3 h后,携带 Rh-ACS1 ORF和
Rh-ACS3 ORF的原核表达载体分别在大肠杆菌中诱导生成了大量分子量约为 70和 60 kD的蛋白质,其大
小与根据基因序列预测的理论值相一致。
关键词:月季切花;ACS;基因克隆;原核表达
中图分类号:S 685.12 文献标识码:A 文章编号:0513-353X(2010)07-1132-07

Cloning and Recombinant Protein Expression of ACC Synthase Genes in
Cut Roses(Rosa hybrida)
TAN Yuan-jun1,XUE Jing-qi2,TONG Zheng1,MA Nan1,and GAO Jun-ping1,*
(1Department of Ornamental Horticulture and Landscape Architecture,China Agricultural University,Beijing 100193,
China;2Institute of Vegetables and Flowers,Chinese Academy of Agricultural Sciences,Beijing 100081,China)
Abstract:Our previous work showed that the expression of ACC synthase genes was contributed to
the effects of ethylene on hastening flower opening. In the present work,we isolated the wound-inducible
and ethylene up-regulated ACS genes,namely Rh-ACS1 and Rh-ACS3,from cut rose petals. The full length
of Rh-ACS1 is 2 132 bp,contains a 1 476 bp ORF which encodes a putative ACS protein with 491 aa,
while the entire Rh-ACS3 is 1 734 bp in length,and contains a 1 545 bp ORF which encodes a putative
ACS protein with 514 aa. The ORFs of Rh-ACS1 and Rh-ACS3 were inserted into pGEX-4T-1 and
pET-30a to express the recombinant proteins in E.coli,respectively. The expression of predicted 70 kD and
60 kD recombinant proteins were induced by isopropyl β-D-thiogalacto-pyranoside(IPTG)at a final
concentration of 0.6 mmol · L-1 for 3 h at 37 ℃.
Key words:cut rose;ACS;gene cloning;procaryotic expression

绝大多数切花月季品种的花朵开放都对乙烯处理敏感,外源乙烯处理能够促进花朵开放和衰老
(蔡蕾 等,2002;Tan et al.,2006)。研究表明,外源乙烯能够促进花瓣内源乙烯生成,但是乙烯
作用抑制剂 1–甲基环丙烯(1-MCP)对花瓣的乙烯生成不能起到抑制效果(Ma et al.,2006),表
明花瓣乙烯的生物合成不存在正反馈调节。研究还发现,对月季花朵而言,最先感受乙烯的部位是

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雌蕊,然后依次是花瓣、花托等,并且雌蕊同样不存在乙烯生成的正反馈调节(Xue et al.,2008)。
在植物的乙烯生物合成过程中,由 S–腺苷蛋氨酸(S-adenosylmethionine)形成 ACC
(1-aminocyclopropane-1-carboxylate)和由 ACC形成乙烯是两个关键步骤,前者被证明是整个合成
途径的限速步骤,ACC合成酶(ACC synthase,ACS)是乙烯生物合成的限速酶(Adams & Yang,
1979;Abeles et al.,1992)。作者前期工作已从月季花朵中分离了 4个 ACS基因,分别命名为 Rh-ACS1、
Rh-ACS2、Rh-ACS3、Rh-ACS4。其中,Rh-ACS1在花瓣中的表达特征为受机械伤害所诱导,但对乙
烯处理不发生响应;Rh-ACS2主要在花朵开放末期,即进入衰老期时表达;Rh-ACS3在花瓣中的表
达可以迅速地被乙烯处理所诱导,表达量在盛开之前逐渐上升,盛开时达到高峰,然后减弱 (Ma et
al.,2005;Xue et al.,2008);Rh-ACS4已有的结果表明对乙烯处理不发生响应(Xue et al.,2008),
对伤害和花朵开放的响应目前正在探讨中。
在月季切花的采后流通中,各个环节的机械伤害和由环境污染或植物本身积累的乙烯气体是两
个不可避免且严重影响切花品质的因素。本研究中选择了 Rh-ACS1和 Rh-ACS3两个与此相关的 ACS
基因,在获得基因全长序列的基础上,通过原核表达获得了两个基因编码的重组蛋白,为进一步研
究月季切花花瓣内的乙烯生物合成调节提供了一定的基础。
1 材料与方法
1.1 植物材料
试验于 2004—2006年间在北京进行。切花月季(Rosa hybrida)‘Samantha’的花枝采自北京
市朝阳区十八里店月季切花生产基地。采切 2级花(Ma et al.,2005)立即插在水中, 2 h内运回
实验室。将花枝在水中剪切至 25 cm,上部保留 3片复叶,去离子水室温瓶插。瓶插条件为温度 23 ~
25 ℃,相对湿度 50% ~ 60%,光/暗周期为 12/12 h,光照强度保持在 40 µmol · m-2 · s-1。
花瓣切伤处理后放置 3 h,液氮速冻后于–80 ℃保存,用于 Rh-ACS1 的基因克隆。花朵经 10
µL · L-1 乙烯处理 24 h 后,收集花瓣,液氮速冻并于–80 ℃保存,用于 Rh-ACS3的基因克隆。
1.2 总 RNA提取和 ACS基因克隆
总 RNA提取采用 Hot borate法(Wan & Wilkins,1994)。从总 RNA反转录生成 cDNA,并以
此为模板进行基因的克隆。将已发表的不同植物中分离的 ACS基因序列进行比对后,根据其中的保
守序列设计简并引物,包括 Rh-ACS forward和 Rh-ACS reverse(表 1)进行 PCR扩增。PCR扩增条
件为:94 ℃预变性 4 min,94 ℃变性 30 s,57 ℃退火 30 s,72 ℃延伸 30 s,共 30个循环。
基于 PCR扩增得到的 cDNA片段,设计出 3′RACE引物,Rh-ACS1 GSP forward和 Rh-ACS3 GSP
forward;5′RACE引物,Rh-ACS1 GSP reverse和 Rh-ACS3 GSP reverse。再将 3′RACE和 5′RACE得
到的序列进行拼接,最终获得基因的全长序列。扩增 Rh-ACS1全长的引物是 Rh-ACS1 FL forward和
Rh-ACS1 FL reverse,扩增 Rh-ACS3全长的引物是 Rh-ACS3 FL forward和 Rh-ACS3 FL reverse,引物
序列见表 1。本试验中选用的 DNA凝胶回收试剂盒购自 Axygen,各种限制性内切酶和 DNA聚合酶
等为大连宝生物公司产品。引物合成及测序在上海生工生物工程技术服务有限公司进行。
1.3 Rh-ACS1和 Rh-ACS3的原核表达
根据已经得到的 Rh-ACS1和 Rh-ACS3的 cDNA全长序列,设计上游引物 Rh-ACS1 ORF(open
reading frame,开放阅读框)forward(5-CCGGAATTCATGGCCTCGAACTCACTCT-3)和下游引物
Rh-ACS1 ORF reverse( 5-GAGGTCGACCTTAACTTGCTCGAAG-3)、 Rh-ACS3 ORF forward
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( 5-CCGGGTACCATGAGAGTTATAGTCCCT-3)和 Rh-ACS3 ORF reverse( 5-CGGCTCGAG
TTCAACTGTGTGATTTAC-3)扩增 ORF,分别引入 EcoR + Ⅰ SalⅠ酶切位点(Rh-ACS1,下划线)
和 Kpn + Ⅰ XhoⅠ酶切位点(Rh-ACS3,下划线)。
Rh-ACS1和 Rh-ACS3对应的酶切位点及载体(表 2)。将扩增的片段插入到 pGEM-T Easy载体
(购自 Progema),进行测序。对测序正确的质粒进行 EcoR +Ⅰ SalⅠ(Rh-ACS1)或 Kpn + Ⅰ XhoⅠ
(Rh-ACS3)双酶切,之后将酶切片段连接到 pGEX-4T-1(购自 GE)和 pET-30a(+)(购自 Novagen)
载体中,分别命名为 pGEX-ACS1 和 pET-ACS3。将重组质粒分别转化到大肠杆菌 JM109
(pGEX-ACS1)和 BL21(pET-ACS3)菌株中,菌液 PCR和质粒酶切确定阳性质粒。
挑取阳性克隆接种于 LB 液体培养基,37 ℃培养过夜。次日,按 1/100 比例接种到新鲜的 LB
培养基中,培养至 OD600为 0.5时,加入 0.6 mmol · L-1 IPTG诱导 3 h。以刚加入 IPTG的时间为 0 h,
分别在 0和 3 h取样。每次取 1.5 mL菌液,离心收集菌体,加入 SDS-PAGE上样缓冲液煮沸 5 min
以裂解细胞。室温下,12 000 r · min-1离心 5 min,取上清液进行 SDS-PAGE电泳,考马斯亮蓝染色。

表 1 切花月季‘Samantha’Rh-ACS1和 Rh-ACS3基因克隆引物
Table 1 Primers used to isolate Rh-ACS1 and Rh-ACS3 in cut rose‘Samantha’
引物 Primer 引物序列 Primer sequence
Rh-ACS forward 5′-AACCC(C\G)GA(G\T)GG(G\T)GTTATTCAG-3′
Rh-ACS reverse 5′-GTTG(A\G)G(A\T)T(G\T)GGG(A\C)GGAGA-3′
Rh-ACS1 GSP forward 5′-GATCCTGATCGCGTAGTCAT-3′
Rh-ACS1 GSP reverse 5′-GGACCTCTGTAACGCAAGTG-3′
Rh-ACS3 GSP forward 5′-GCAGGATTCATGTCTAAGGC-3′
Rh-ACS3 GSP reverse 5′-GCACTCTGTTCTGGTCGAGA-3′
Rh-ACS1 FL forward 5′-CAGAGTACGCGGGAACACTC-3′
Rh-ACS1 FL reverse 5′-GAACTGCAAAGATATTCAGATCACT-3′
Rh-ACS3 FL forward 5′-GCCTTGGCTTTCCTCCCTTC-3
Rh-ACS3 FL reverse 5′-GAGTAGAATGAACGAACATTTCAACT-3

表 2 切花月季‘Samantha’Rh-ACS1和 Rh-ACS3原核表达载体和菌株
Table 2 Vectors and E. coli strains for recombinant protein expression of Rh-ACS1 and Rh-ACS3 in cut rose‘Samantha’
基因 Gene 酶切位点 Restriction site 载体 Vector 菌株 E. coli
Rh-ACS1 EcoRⅠ+ SalⅠ pGEX-4T-1 JM109
Rh-ACS3 KpnⅠ+ XhoⅠ pET-30a(+) BL21
2 结果与分析
2.1 Rh-ACS1和 Rh-ACS3基因全长的克隆和序列分析
根据 ACS基因的保守序列设计简并引物(表 1),从切花月季‘Samantha’花瓣中扩增出 Rh-ACS1
和 Rh-ACS3保守区域的 cDNA片段。在 NCBI上进行的 Blast分析表明,这两个片段与多种植物的
ACS基因有很高的同源性。以扩增得到的片段为模板,设计特异引物(表 1)进行 3′ RACE和 5′ RACE,
对得到的序列拼接后获得 Rh-ACS1和 Rh-ACS3的全长序列。
Rh-ACS1的序列全长 2 132 bp,包含一个 1 476 bp的 ORF,编码一个包含 491 aa的肽链,其理
论分子量为 54.9 kD,等电点为 4.98。Rh-ACS3的全长为 1 734 bp,ORF为 1 545 bp,编码一个包含
514 aa的肽链,其理论分子量为 58.7 kD,等电点为 4.99。对推测的 Rh-ACS1和 Rh-ACS3氨基酸序
列进行分析,发现了 ACS的 7个保守结构域(Zarembinski & Theologis,1994)(图 1)。
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图 1 由切花月季‘Samantha’中分离的 Rh-ACS1和 Rh-ACS3基因推定的氨基酸序列
ACS的 7个保守结构域用箭头表示,3个磷酸化位点用方框表示。
Fig. 1 Deduced amino acid sequence of Rh-ACS1 and Rh-ACS3 in cut rose ‘Samantha’
Seven conserved ACS domains were marked with arrows,and three phosphorylation sites were marked with frames.


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通过对 17个物种的 22个 ACS蛋白进行 Blast分析,把 ACS蛋白分成 3大类(El-Sharkawy et al.,
2008)。其中 Rh-ACS1分在第 1类,与梅花中的 Pm-ACS1(Q9MB95)同源性最高;Rh-ACS3 分
在第 3类,与水稻中的 Os-ACS(NP_001056689)同源性最高,但是 Rh-ACS1和 Rh-ACS3之间的
同源性较低(图 2)。
ACS基因是一个序列变异性很高、家族成员功能差异较大的多基因家族。在拟南芥(Liang et al.,
1996)、番茄(Oetiker et al.,1997)、水稻(Zarembinski & Theologis,1993)以及绿豆(Kim et al.,
1997)等植物中都有关于 ACS 基因家族不同成员差异表达的报道。作者在月季花瓣中克隆得到
Rh-ACS1和 Rh-ACS3的氨基酸序列同源性只有 30%,Rh-ACS1和 Rh-ACS3在基因表达上存在明显
差异(Rottmann et al.,1991;Ma et al.,2005)。
MAPKs(Mitogen-activated protein kinases)调节植物的生长发育,响应环境胁迫。在拟南芥上
的研究表明,ACS是MPK6的底物,C–末端具有磷酸化位点(Liu & Zhang,2004)。通过对 Rh-ACS1
和 Rh-ACS3的 C–末端的比较,发现月季花瓣中的 Rh-ACS1具有和拟南芥 At-ACS6相似的磷酸化
位点,而 Rh-ACS3却没有(图 1),暗示这两个蛋白在转录后的修饰方面可能存在差异。
图 2 切花月季‘Samantha’中获得的 Rh-ACS1和 Rh-ACS3与其他物种的 ACS的同源性分析
Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ分别表示不同的亚家族。
Fig. 2 Homology analysis of predicted amno acid sequences of Rh-ACS1 and Rh-ACS3 from cut
rose‘Samantha’compared with other plant species
Ⅰ,Ⅱ and represent different subfamily respectively.Ⅲ

2.2 Rh-ACS1和 Rh-ACS3基因的原核表达
为验证在切花月季中克隆得到的 Rh-ACS1和 Rh-ACS3是否能够翻译预计大小的酶蛋白,构建了
pGEX-ACS1和 pET-ACS3表达载体,酶切检测后转入到 E. coli中。以 IPTG为诱导剂,进行了诱导
表达。
根据 Rh-ACS1和 Rh-ACS3基因的 ORF和载体上标签蛋白的大小,推测在大肠杆菌中表达的重
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组蛋白分别约为 70 kD和 60 kD。在 37 ℃,0.6 mmol · L-1 IPTG诱导 3 h后,在 70 kD(图 3)和 60
kD(图 4)处都有蛋白被大量诱导,而转化空载体的菌株未见相应蛋白大量表达,这与预测的结果
相一致,同时也说明克隆的 Rh-ACS1和 Rh-ACS3基因具有完整的读码框。
目前只在拟南芥(Liang et al.,1992)、番茄(Tatsuki & Mori,2001)以及烟草(Liu & Zhang,
2004)等物种上获得了 ACS重组蛋白。本试验中克隆得到了月季中的 Rh-ACS1和 Rh-ACS3基因全
长序列,并对其进行了原核表达分析,得到了相应的重组蛋白,为进一步探讨这两个酶蛋白的生化
特性打下基础。
图 3 重组质粒 pGEX-ACS1的酶切鉴定(A)和 Rh-ACS1的原核表达(B)
Fig. 3 Digestion of pGEX-ACS1(A)and expression of recombinant Rh-ACS1 protein(B)
图 4 重组质粒 pET-ACS3的酶切鉴定(A)和 Rh-ACS3的原核表达(B)
Fig. 4 Digestion of pGEX-ACS3(A)and expression of recombinant Rh-ACS3 protein(B)

References
Abeles F B,Morgan P W,Saltveit M E. 1992. Ethylene in plant biology. 2nd ed. San Diego:Academic Press.
Adams D O,Yang S F. 1979. Ethylene biosynthesis:Identification of 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid as an intermediate in the conversion of
methionine to ethylene. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,76 (1):170–174.
Cai Lei,Zhang Xiao-hong,Shen Hong-xiang,Gao Jun-ping. 2002. Effects of ethylene and its inhibitors on flower opening and senescence of cut
roses. Acta Horticulturae Sinica,29 (5):467–472. (in Chinese)
蔡 蕾,张晓红,沈红香,高俊平. 2002. 乙烯和乙烯抑制剂对月季切花花朵开放和衰老的影响. 园艺学报,29 (5):467–472.
1138 园 艺 学 报 37卷
期刊征订
El-Sharkawy I,Kim W S,Jayasankar S,Svircev A M,Brown D C W. 2008. Differential regulation of four members of the ACC synthase gene
family in plum. Journal of Experimental Botany,59 (8):2009–2027.
Kim W T,Campbell A,Moriguchi T,Yi H C,Yang S F. 1997. Auxin induces three genes encoding 1-aminocyclopropane-1carboxylate synthase in
mung bean hypocotyls. J Plant Physiol,150:77–84.
Liang X,Abel S,Keller J A,Shen N F,Theologis A. 1992. The 1-aminocyclopropane-1-carboxylate synthase gene family of Arabidopsis thaliana.
Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,89 (22):11046–11050.
Liang X,Shen N F,Theologis A. 1996. Li+-regulated 1-aminocyclopropane -1-carboxylate synthase gene expression in Arabidopsis thaliana. Plant
Journal,10:1027–1036.
Liu Yi-dong,Zhang Shu-qun. 2004. Phosphorylation of 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid synthase by MPK6,a stress-responsive
mitogen-activated protein kinase,induces ethylene biosynthesis in Arabidopsis thaliana. The Plant Cell,16:3386–3399.
Ma N,Cai L,Lu W J,Tan H,Gao J P. 2005. Exogenous ethylene influences flower opening of cut rose(Rosa hybrida) by regulating the genes
encoding ethylene biosynthesis enzymes. Science in China:Series C,48:434–444.
Ma N,Tan H,Liu X H,Xue J Q,Li Y H,Gao J P. 2006. Transcriptional regulation of ethylene receptor and CTR genes involved in
ethylene-induced flower opening in cut rose(Rosa hybrida) cv. Samantha. Journal of Experimental Botany,57:2763–2773.
Oetiker J H,Olson D C,Shiu O Y,Yang S F. 1997. Differential induction of seven 1-aminocyclopropane-1-carboxylate synthase genes by elicitor in
suspension cultures of tomato(Lycopersicon esculentum). Plant Mol Biol,34:275–286.
Rottmann W H,Peter G F,Oeller P W,Keller J A,Shen N F,Nagy B P,Taylor L P,Campbell A D,Theologis A. 1991. 1-aminocyclopropane-
1-carboxylate synthase in tomato is encoded by a multigene family whose transcription is induced during fruit and floral senescence. J Mol
Biol,222:937–961.
Tan Hui,Liu Xiao-hui,Ma Nan,Xue Jing-qi,Lu Wangj-in,Bai Jin-he,Gao Jun-ping. 2006. Ethylene-influenced flower opening and expression
of genes encoding ETRs,CTRs,and EIN3s in two cut rose cultivars. Postharvest Biology and Technology,40:97–105.
Tatsuki M,Mori H. 2001. Phosphorylation of tomato 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid synthase,LE-ACS2,at the C-terminal region. The
Journal of Biological Chemistry,276 (30):28051–28057.
Wan C Y,Wilkins T A. 1994. A modified hot borate method significantly enhances the yield of high quality RNA from cotton (Gossypium hisrstum
L.). Annal Biochem,223:7–12.
Xue Jing-qi,Li Yun-hui,Tan Hui,Yang Feng,Ma Nan,Gao Jun-ping. 2008. Expression of ethylene biosynthetic and receptor genes in rose floral
tissues during ethylene-enhanced flower opening. Journal of Experimental Botany,59 (8):2161–2169.
Zarembinski T I,Theologis A. 1993. Anaerobiosis and plant growth hormones induce two genes encoding 1-aminocyclopropane-1-carboxylate
synthase in rice(Oryza sativa L.). Mol Biol Cell,4:363–373.
Zarembinski T I,Theologis A. 1994. Ethylene biosynthesis and action:A case of conservation. Plant Mol Biol,26:1579–1597.


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