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Responses of the Antioxidant System in Nelumbo nucifera Seedlings to Arsenic Toxicity

中国莲(Nelumbo nucifera)幼苗抗氧化系统对砷胁迫的响应



全 文 :植物科学学报  2013ꎬ 31(6): 570~ 575
Plant Science Journal
    DOI:10􀆰 3724 / SP􀆰 J􀆰 1142􀆰 2013􀆰 60570
中国莲(Nelumbo nucifera)幼苗抗氧化系统对砷胁迫的响应
樊香绒1ꎬ2ꎬ3ꎬ 尹黎燕1ꎬ2ꎬ 李 伟1ꎬ2∗ꎬ 常锋毅1ꎬ2∗
(1. 中国科学院水生植物与流域生态重点实验室ꎬ 武汉 430074ꎻ 2. 中国科学院武汉植物园
水生生物学实验室ꎬ 武汉 430074ꎻ 3. 中国科学院大学ꎬ 北京 100049)
摘  要: 为了研究中国莲(Nelumbo nucifera)抗氧化系统对砷胁迫的响应ꎬ 研究比较了两种不同价态无机砷 As
(Ⅲ)和砷 As(Ⅴ)对中国莲幼苗可溶性蛋白含量、 丙二醛(MDA)含量以及抗氧化系统的影响ꎮ 结果表明ꎬ 中国
莲幼苗中 MDA和可溶性蛋白质含量随砷浓度的增加呈现先升高后降低的趋势ꎮ 中国莲幼苗的 MDA 和蛋白质含
量受 As(Ⅴ)的影响不如 As(Ⅲ)敏感ꎮ 抗氧化系统酶中ꎬ 超氧化物歧化酶(SOD)对砷处理最敏感ꎬ 当 As(Ⅲ)
浓度在2􀆰 5 μmol / L和 As(Ⅴ)浓度在 100 μmol / L 时ꎬ SOD 酶活性显著高于对照组ꎮ 过氧化物酶(POD)在 As
(Ⅲ)处理浓度为 10 μmol / L时就出现显著上升ꎬ 相对而言ꎬ 过氧化氢酶(CAT)对 As(Ⅴ)比较敏感ꎮ 实验结果表
明ꎬ 随着浓度的增加ꎬ 砷对幼苗产生的氧化胁迫导致 SOD、 CAT 和 POD 三种酶活性有所增加ꎬ 以配合清除细
胞内的活性氧自由基(ROS)ꎬ 维持细胞代谢的稳定ꎮ 本研究为进一步研究砷胁迫下莲的生理和生长变化、 以及
莲的培育和移植提供了部分基础数据ꎮ
关键词: 中国莲ꎻ 抗氧化系统ꎻ 砷
中图分类号: Q945􀆰 78          文献标识码: A          文章编号: 2095 ̄0837(2013)06 ̄0570 ̄06
      收稿日期: 2013 ̄05 ̄24ꎬ 修回日期: 2013 ̄10 ̄07ꎮ
  基金项目: 武汉市学科带头人计划项目(长江中下游浅水湖泊稳态转换及其调控机制的实验生态学研究)ꎻ 中国科学院水生生物研究
所淡水生态与生物技术国家重点实验室开放基金(2012FB21)ꎮ
  作者简介: 樊香绒(1988-)ꎬ 女ꎬ 硕士研究生ꎬ 主要从事生态毒理学研究(E ̄mail: bestxiangrong@163􀆰 com)ꎮ
  ∗通讯作者(Author for correspondence􀆰 E ̄mail: liwei@wbgcas􀆰 cnꎻ changfy@wbgcas􀆰 cn)ꎮ
Responses of the Antioxidant System in Nelumbo nucifera
Seedlings to Arsenic Toxicity
FAN Xiang ̄Rong1ꎬ2ꎬ3ꎬ YIN Li ̄Yan1ꎬ2ꎬ LI Wei1ꎬ2∗ꎬ CHANG Feng ̄Yi1ꎬ2∗
(1. Key Laboratory of Aquatic Botany and Watershed Ecologyꎬ Chinese Academy of Sciencesꎬ Wuhan 430074ꎬ Chinaꎻ
2. Laboratory of Aquatic Plant Biologyꎬ Wuhan Botanical Gardenꎬ Chinese Academy of Sciencesꎬ Wuhan 430074ꎬ Chinaꎻ
3. University of Chinese Academy of Sciencesꎬ Beijing 100049ꎬ China)
Abstract: To study the antioxidant system of Nelumbo nucifera seedlings in response to arsenic
stressꎬ compared the influence of two valences of inorganic arsenicꎬ As (Ⅲ) and As (V)ꎬ on
soluble protein contentꎬ malondialdehyde(MDA)and the antioxidant system. Results showed that:
MDA and soluble protein content of N. nucifera seedlings increased and then decreased with
increasing concentrationꎻ MDA and protein content were more sensitive to As(Ⅲ) than to As(V)
treatment. The Superoxide Dismutase(SOD)was the most sensitive to arsenic treatmentꎻ when the
concentration of As (Ⅲ)was 2􀆰 5 μmol / L and As(V)was 100 μmol / Lꎬ the activity of SOD increased
significantly. When the concentration of As(Ⅲ) was 10 μmol / Lꎬ the activity of Peroxidase(POD)
increased significantly. The Catalase(CAT)was more sensitive to As(V). From the experimental
resultsꎬ with the increase in arsenic concentrationꎬ the enzyme activities of SODꎬ CAT and POD
increasedꎬ which can be used to eliminate reactive oxygen species (ROS) and maintain cell
metabolism stability. This study provides some basic data for further study of N. nucifera physiology
and growth changeꎬ cultivation and transplants with arsenic stress.
Key words: Nelumbo nuciferaꎻ Antioxidant systemsꎻ Arsenic
    中国莲(Nelumbo nucifera)作为我国最具特
色、 栽培面积最大、 品种资源最丰富的水生经济作
物之一ꎬ 是日常生活中重要的食用蔬菜之一ꎬ 在国
民经济中占有重要位置ꎮ 随着农村产业结构的调
整ꎬ 莲种植区域有进一步扩大的趋势ꎮ 但近年来随
着重金属污染日益严重ꎬ 大量重金属进入水体ꎬ 使
得重金属污染对莲生长生理的影响急需开展研究ꎮ
砷是环境中对人类健康毒性最大的污染物之一ꎬ 在
农业生态系统中可通过土壤和水体等多种介质对植
物生长产生直接影响ꎮ 水体中的砷主要以无机五价
砷酸盐和三价亚砷酸盐两种无机形式存在ꎬ 就其化
学性质而言ꎬ 三价砷的毒性要大于五价砷[1]ꎮ 目
前无机砷对各种经济植物生长生理影响的研究开展
的较多ꎬ 但大部分集中在小麦、 水稻等主要粮食作
物方面[2ꎬ3]ꎬ 对水生植物莲的影响鲜有报道[4ꎬ5]ꎮ
我们以莲幼苗为实验材料ꎬ 研究不同价态和浓度的
砷胁迫条件下莲幼苗中丙二醛(MDA)含量和抗氧
化系统超氧化物歧化酶 ( SOD)、 过氧化物酶
(POD)、 过氧化氢酶(CAT)活性的变化情况ꎬ 以
期阐明不同价态砷对莲特定生长期的毒害机理ꎬ 为
莲在农业种植过程中砷毒害的预防提供理论依据ꎮ
1  材料与方法
1􀆰 1  实验材料
2012年 9月购买湖北洪湖当年成熟的中国莲
(Nelumbo nucifera)莲籽ꎬ 将实验材料浸泡于去离
子水中 24 hꎬ 选取完全沉水的种子自然晾干后置
于阴凉通风处保存ꎮ 挑选大小均匀的莲籽并用砂纸
打磨ꎬ 使外壳破损ꎬ 浸入去离子水中进行萌发ꎬ 以
备随后进行毒理学实验ꎮ 亚砷酸钠(NaAsO2)和砷
酸氢二钠(Na2HAsO4􀅰7H2O)均为分析纯ꎮ
1􀆰 2  实验设计
分别将三价砷 ( NaAsO2 ) 和五价砷 (Na2 H
AsO4􀅰7H2O)用去离子水配制成不同价态的砷溶液
C0 ( 0 )、 C1 ( 2􀆰 5 )、 C2 ( 10 )、 C3 ( 50 )、 C4
(250)、 C5(500)ꎬ 单位 μmol / Lꎮ 挑选长至10 cm
左右均匀的幼苗ꎬ 置于不同浓度的三价砷和五价砷
溶液中处理 24 hꎬ 取样ꎬ 测定莲籽幼苗抗氧化系
统酶活性的变化ꎬ 每组设置 3个重复ꎮ
1􀆰 3  测定方法
蛋白质及酶提取方法: 取一定质量的中国莲幼
苗在 4℃条件下以 pH 7􀆰 8、 浓度为 50 mmol / L 的
PBS 缓冲液研磨ꎬ 10000 g 离心 10 minꎬ 取上清
液备用ꎮ 可溶性蛋白质含量用考马斯亮蓝 G ̄250
法[5]测定ꎬ 以牛血清白蛋白(BSA)为标准蛋白ꎬ
测定 595 nm下的吸光度ꎮ
MDA 测定方法: 参照李合生的方法[6]并进行
适当改进ꎬ 取 1􀆰 5 mL 酶提取液加入 2􀆰 5 mL 含有
0􀆰 6% 硫代巴比妥酸( TBA)的 20%的三氯乙酸ꎬ
90℃下反应 30 minꎬ 冰浴冷却ꎬ 4000 g 离心
10 minꎬ 测定 OD532和 OD600处的吸光值ꎮ
MDA(mmol / L)= 6􀆰 45 ×(OD532-OD600)-
0􀆰 56 ×OD450ꎮ
POD 活性测定方法: 参照李合生的方法[6]并
进行适当改进ꎮ 3 mL 反应体系中包括 1 mL pH
7􀆰 0的 PBS缓冲液、 1 mL 0􀆰 2% H2O2、 0􀆰 95 mL
愈创木酚和 0􀆰 05 mL 酶提取液ꎬ 测定 470 nm 处
吸光值的变化ꎮ 以 OD470每分钟增加 0􀆰 01 为一个
酶活性单位(U)ꎮ
CAT 活性测定采用 Cakmak 和 Marschner 的
方法[7]ꎬ 稍作改良ꎮ 3 mL 反应液包含 50 mmol / L
pH 7􀆰 0 的 PBS 1􀆰 95 mL 和 0􀆰 2% H2O2 1 mLꎬ 最
后加入 0􀆰 05 mL酶液启动反应ꎬ 测定 240 nm 处吸
光度的降低速度ꎮ 将每分钟吸光度减少 0􀆰 01 定义
为一个酶活性单位(U)ꎮ
SOD 活性测定方法: 参照李合生和 Gianno
politis等的方法[6ꎬ8]ꎮ 3 mL的反应混合液中含甲硫
氨酸 2􀆰 5 mL (13 mmol / L)、 氯化硝基四氮唑蓝
(NBT) 0􀆰 25 mL(63 mmol / L)、 核黄素 0􀆰 15 mL
(13 mmol / L)、 50 mmol / L PBS(pH7􀆰 8)0􀆰 05 mLꎬ
加入经适当稀释的酶液ꎬ 以不加酶液的试管(用缓
冲液代替)为最大光化还原管ꎬ 用缓冲液作空白对
照(用缓冲液代替 NBT)ꎬ 然后将各管放在 4000 lx
光照培养箱照光约 20 minꎬ 在 560 nm 处测定光密
度值ꎮ 以抑制 NBT光化还原 50%所需的酶量定义
为一个活性单位(U)ꎮ
1􀆰 4  数据分析
采用 Excel进行作图ꎬ 对蛋白质及抗氧化系统
175  第 6期                樊香绒等: 中国莲(Nelumbo nucifera)幼苗抗氧化系统对砷胁迫的响应
酶测定结果采用 SPSS 16 统计分析软件进行方差
分析和组间差异显著性检验 (One ̄way ANOVAꎬ
Tukey)ꎮ
2  结果与分析
2􀆰 1  砷对中国莲幼苗中可溶性蛋白质含量的影响
中国莲幼苗体内蛋白质对 As(Ⅲ)比较敏感ꎬ
当 As(Ⅲ)的处理浓度为 2􀆰 5 μmol / L 时ꎬ 可溶性
蛋白质含量就显著高于对照组(p< 0􀆰 05)ꎬ 随着
As(Ⅲ)处理浓度的增大ꎬ 可溶性蛋白质含量降低ꎬ
其他处理组与对照组差异皆显著(p< 0􀆰 05) (图
1)ꎮ As(V)处理组幼苗的可溶性蛋白质含量在 As
(V)浓度为 50 μmol / L时最低ꎬ 且与对照组差异极
显著(p<0􀆰 01)ꎬ 随着 As(V)处理浓度的增大ꎬ 可
溶性蛋白质先降低然后升高ꎮ
图中横坐标上的 C0到 C5ꎬ 分别表示各种浓度: 0、 2􀆰 5、
10、 50、 250、 500 μmol / Lꎮ 误差线代表标准误ꎬ 星号表
示同一浓度下不同处理的结果的差异显著性(p<0􀆰 05)ꎬ
不同大写小写字母表示各处理间有显著性差异 ( p <
0􀆰 05)ꎮ 下同ꎮ
The C0 to C5 of abscissa represents the different con ̄
centrations 0ꎬ 2􀆰 5ꎬ 10ꎬ 50ꎬ 250ꎬ 500 μmol / L. Error bars
indicate standard error. Asterisks indicate the treats have
significant difference in same concentration (p<0􀆰 05) .
Different capital and lowercase letters indicate that the
treats have significant difference (p<0􀆰 05) . The same
below.
图 1  不同浓度 As(Ⅲ)和 As(V)对莲幼苗中
可溶性蛋白质含量的影响
Fig􀆰 1  Effects of different concentrations of
As(Ⅲ) and As(V) on soluble protein
content in Nelumbo nucifera seedlings
2􀆰 2  砷对中国莲幼苗中 MDA含量的影响
莲籽幼苗组织膜脂过氧化产物 MDA 在 As
(Ⅲ)处理浓度为 10 μmol / L时显著高于对照组(p<
0􀆰 05)ꎬ 当 As(Ⅲ)处理浓度再增加时 MDA 含量
有减少的趋势(图 2)ꎬ 而 As (V)处理组浓度为
100 μmol / L 时 MDA 含量显著大于对照组ꎬ 在处
理浓度低于 100 μmol / L 时各处理组与对照组差异
皆不显著ꎮ
图 2  不同浓度 As(Ⅲ)和 As(V) 对莲
幼苗中 MDA含量的影响
Fig􀆰 2  Effects of different concentrations of As(Ⅲ) and
As(V) on MDA content in N. nucifera seedlings
2􀆰 3  砷对中国莲幼苗抗氧化系统的影响
As(Ⅲ)和 As(V)的处理显著影响了中国莲幼
苗组织内的 SOD、 CAT和 POD活性ꎮ 3种抗氧化
酶中 SOD 处理最敏感ꎬ 当 As (Ⅲ)处理浓度为
2􀆰 5 μmol / L时 SOD 活性显著高于对照组 ( p <
0􀆰 05)ꎬ 并且 SOD活性随着 As(Ⅲ)浓度的增加而
显著增加(图 3)ꎬ As(V)浓度达到 100 μmol / L 时
SOD活性才显著高于对照组 (p <0􀆰 05)ꎮ 当 As
(Ⅲ)处理浓度达到 10 μmol / L时 POD活性显著高
于对照组(p<0􀆰 01)ꎬ 并且 POD 活性在处理浓度
小于100 μmol / L时随着 As(Ⅲ)含量的增加而增加
(图 4)ꎬ 在最高浓度 500 μmol / L 时显著降低ꎮ As
(V)处理浓度为 10 μmol / L 时ꎬ POD 活性显著高
于对照组(p<0􀆰 05)ꎬ 并且随着 As(V)处理浓度的
增大而增大ꎮ 从图 5可看出ꎬ CAT对 As(Ⅲ)处理
不如对 As (V)处理敏感ꎬ As (V)处理浓度达到
2􀆰 5 μmol / L时 CAT 活性显著高于对照组 ( p <
0􀆰 05)ꎬ 处理浓度在 50 μmol / L 时ꎬ CAT 活性最
高ꎬ As(V)高于50 μmol / L处理浓度时会导致 CAT
活性显著降低ꎮ
275 植 物 科 学 学 报 第 31卷 
图 3  不同浓度 As(Ⅲ)和 As(V) 对莲
幼苗中 SOD活性的影响
Fig􀆰 3  Effects of different concentrations of
As(Ⅲ) and As(V) on SOD activity
in N. nucifera seedlings
图 4  不同浓度 As(Ⅲ)和 As(V)对莲
幼苗中 POD活性的影响
Fig􀆰 4  Effects of different concentrations of
As(Ⅲ) and As(V) on POD activity
in N. nucifera seedlings
3  讨论
蛋白质是生物体生命活动的基础ꎮ 重金属的胁
迫极易造成植物体内可溶性蛋白含量的变化ꎮ 以往
的研究中以水生植物为对象ꎬ 对单一价态重金属生
物学效应进行了广泛的研究ꎮ Xing 等发现当铜离
子或铁离子浓度达 10 mg / L 时能显著降低紫萍和
伊乐藻组织内可溶性蛋白质含量[9]ꎮ Cd2+处理能
够降低粗梗水蕨可溶性蛋白含量[10]ꎮ 本研究表明ꎬ
不同浓度不同价态的 As能够显著影响莲幼苗体内
图 5  不同浓度 As(Ⅲ)和 As(V)对莲
幼苗中 CAT活性的影响
Fig􀆰 5  Effects of different concentrations of
As(Ⅲ) and As(V) on CAT activity
in N. nucifera seedlings
可溶性蛋白质的含量ꎮ 实验中 As(Ⅲ)在低浓度时
就能够显著增加可溶性蛋白质的含量ꎬ 而在浓度达
到 10 μmol / L 时可溶性蛋白质的含量又有所降低ꎮ
As(V)处理幼苗 24 h 后ꎬ 幼苗体内的可溶性蛋白
质随着处理浓度的增加先降低后上升ꎮ 不同浓度两
种价态 As处理下的莲幼苗蛋白质含量的变化表现
出典型的毒物兴奋效应ꎮ
MDA 是膜脂过氧化的产物ꎬ 植物体内 MDA
含量的多少就反映了膜脂过氧化的程度[11ꎬ 12]ꎮ 本
实验中 As(Ⅲ)处理浓度达到 10 μmol / Lꎬ 幼苗组
织内的 MDA 含量显著高于对照组ꎬ 而后随着浓度
的增加 MDA含量迅速降低ꎬ As(V)处理组只有在
浓度达到 100 μmol / L时ꎬ MDA含量才显著大于对
照组ꎬ 其余处理组与对照组差异不显著ꎮ 本实验结
果表明较低浓度的 As 会使幼苗细胞调动防御机
制ꎬ 诱导 MDA 的生成ꎬ 以防止细胞膜脂过氧化ꎬ
而较高浓度的 As可能会直接影响莲幼苗的生长状
况ꎬ 导致 MDA 含量迅速降低ꎮ 两种价态 As 对
MDA 含量影响的结果表明ꎬ As (Ⅲ)毒性大于
As(V)ꎮ
活性氧自由基(ROS)在植物细胞在代谢过程
中ꎬ 由叶绿素和线粒体尤其是光合作用时的叶绿体
产生[13ꎬ 14]ꎬ 可通过抗氧化酶系统 (SOD、 POD、
CAT等)的催化降解及还原性物质(GSH、 抗坏血
酸和维生素 E 等)的还原在细胞内维持较低的浓
度ꎬ 在植物的生长发育过程中起着信号传递的
375  第 6期                樊香绒等: 中国莲(Nelumbo nucifera)幼苗抗氧化系统对砷胁迫的响应
作用[15]ꎮ
当植物受到胁迫时细胞内的 ROS 含量会发生
变化ꎬ 植物会通过增加抗氧化酶含量或活性或抗氧
化物质的浓度来抵御 ROS造成的不良影响ꎮ 因此ꎬ
可以通过测定氧化酶的活性 (如 SOD、 POD 和
CAT的活性)和抗氧化物质(如 GSH)含量来衡量
植物受氧化胁迫的大小ꎮ
超氧化物歧化酶(SOD)作为细胞受不良因素
胁迫时ꎬ 通过催化超氧阴离子(O2-)降解为双氧水
(H2O2)及氧气 O2ꎬ 来对细胞起保护作用ꎬ 是植物
抗氧化胁迫的关键酶之一[16]ꎮ 在不同重金属对不
同植物的影响实验中ꎬ SOD活性的变化差异很大ꎮ
用铁离子处理伊乐藻后ꎬ SOD 活性先随着铁离子
浓度增加而增加ꎬ 当铁离子浓度达到 100 mg / L
时ꎬ SOD 活性下降[17]ꎬ 而铁离子处理 Bacopa
monnieri 24 h 后 SOD 活性随着处理浓度的增加而
增加[18]ꎬ 但是随着 Cd2+浓度增加ꎬ 玉米幼苗叶
片[19]及水稻叶片中[20]SOD 活性下降ꎮ 本实验中ꎬ
两种价态的 As 处理 24 h 后ꎬ 莲幼苗细胞内 SOD
活性随着处理浓度的增加而增加ꎬ 在 As(Ⅲ)浓度
为 10 μmol / L时就显著高于对照组 SOD 活性ꎬ 表
明两种价态 As均造成了氧化胁迫ꎮ 而且随着处理
浓度的增加ꎬ 产生的 ROS 增多ꎬ 莲幼苗以提高
SOD 活性或含量来清除 ROSꎮ SOD 清除 ROS 所
产生的 H2O2是由过氧化氢酶(CAT)和过氧化物酶
(POD)共同来清除的ꎮ
4  结论
本实验中ꎬ 中国莲幼苗细胞内 POD 活性随着
As(Ⅲ)处理浓度的增加而增加ꎬ 但是 POD活性对
As(V)处理浓度的敏感程度要低于 SOD 活性ꎮ 这
可能是 SOD 降解 ROS产生的 H2O2并不是全部由
POD 来清除的ꎬ CAT也承担着清除 H2O2的工作ꎮ
本实验中 CAT活性随 As(V)处理浓度的增加而增
加ꎬ 2􀆰 5 μmol / L时达到显著水平ꎮ 根据实验结果
推测ꎬ 随着砷浓度的增加ꎬ 对幼苗产生了氧化胁
迫ꎬ 导致 SOD、 CAT 和 POD 三种酶活性都有所
增加ꎬ 相互配合以清除 ROSꎬ 维持细胞代谢的
稳定ꎮ
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(责任编辑: 张 平)
575  第 6期                樊香绒等: 中国莲(Nelumbo nucifera)幼苗抗氧化系统对砷胁迫的响应