免费文献传递   相关文献

Influence of Suspended Sands on Rapid Light Curves of Ceratophyllum demersum in Turbid Solution

悬浮泥沙溶液对金鱼藻快速光响应曲线的影响



全 文 :武汉植物学研究 2006,24(6):531~535
Journa/of Wuhan Botanical Research
悬浮泥沙溶液对金鱼藻快速光响应曲线的影响
马 婷,李 强,王国祥 ,王文林,徐 尧,潘国权
(南京师范大学地理科学学院,江苏省环境演变与生态建设重点实验室,南京 210046)
摘 要:用粒径小于 100 Jn的泥沙分别配置浊度为30、60、90 NTU的混浊溶液 ,将金鱼藻 (Ceratophylum demer-
2rt)1线6090NTU()()(F)30NTU(qP)(qN)()(rE1R)Q948116A1000470X(2006)06053105InfluenceofSuspendedSandsonRapidLightCurvesofCeratophyUumdemersuminTurbidSolutionMATingLIQiangWANGGuoXiangWANGWenLinXUYaoPANGuoQuan(ColegeofGeographicalScienceNormalUniversityJiangsuKeyLaboratoryofEnvironmentalChangeandEcologicalConstructionNjing210046China)AbstractMatureCeratophyUumdemersumwasplantedintheturbidsolutionwithdiferentturbiditiesof30NrIU6oNIUand90NTUTheturbiditywascausedbysuspendedsubstanceFordeterminingtheinfluencesofturbidityonthephotosyntheticfluorescentcharacteristicsrapidlightcurves(RLCs)weredeterminedTheexperimentalresultsdemonstratedthatin60and90NIUturbidsolutionsfluorescenceyield(FI)maximumlightadaptedfluorescenceyield(F)andFwerelesssignifcantlythanthoseinthecontroland30NrIUsolutionComparedwiththecontrolplantsphotochemicalquenching(qP)andnonphotochemicalquenching(qN)notablelydecreasedwithlightexposureofaleafincreasinginturbidsolutionsItindicatedthatphotosyntheticcapacityandactivityofnonphotochemicalquenchingpathwayswereremarkablyreducedInturbidsolutionstheminimumsaturatingirradiance(E)andmaximalrelafiveelectrontransportrate(rETR)werelessignifcantlythanthecontro1TheseprovedthattheirlightrespondingcapacitywerereducednotablybysuspendedsandsSoitisntgoodforCdemersumtosurviveinhightubidityofsuspendedsandssolutionKeywordsCeratophyUumdemersumSuspendedsandsPhtosynthticfluorescentcharacterics¨2]J(PAM)广J(DivingPAM)使]]¨(CeratophyUumdemer1tm)是一种多年生的沉水植
物,广泛生长于静水池塘、沟渠及河流水体l】 。本
收稿 B期:2006—04-21,修回B期:2OO6—11-23。
基金项 目:教育部科技创新工程重大项目培育基金项 目(705824-2)资助;国家863计划项目(2003AA601100-2)资助。
作者简介:马婷(1982一),女,汉族,江苏镇江人,在读硕士,研究方向为水环境修复(E-mail:jszjmt@163.eom)。
+ 通讯作者(E—mail:wangguoxiang@.jnu.edu.cn)。
维普资讯 http://www.cqvip.com
532 武 汉植 物学 研 究 第24卷
研究将金鱼藻的成株种植于不同浊度的悬浮泥沙溶
液中,使用 Diving.PAM测定植株叶片的快速光响应
曲线,研究在悬浮泥沙溶液中金鱼藻叶片光合荧光
特性的变化,为金鱼藻在悬浮泥沙溶液中的生物重
建提供实验依据。
1 材料与方法
1.1 植物材料
本实验所用的金鱼藻(Ceratophylum delt~rsum)
采自南京六合长江边的水塘中,选取发育程度较为
一 致的植株于实验前 30 d移植于实验池中;池底为
30 cm厚的泥土,放人自来水。
1.2 实验设计
实验在南京师范大学水环境生态修复中试平台
的4个露天水池中进行。水池长 9.4 m,宽 1.1 m,
水深调节为 1.5 rl。其中1个水池不含泥沙,为对
照池:池尾设置一个抽水泵,将水从池尾抽到池前
端,以使池内水流循环流动。另 3个水池为实验池,
池尾水先流人尾端的沉沙池 ,然后将水用泵抽到池
前端的混沙池中,再流人各实验池;调节各水池人水
管水流,使各池溶液悬浮泥沙浊度分别为 3O、6o、
90 NTU左右(图 1)。在实验池和对照池中分别均
匀种植 100株金鱼藻,实验前植株株高约为 70 cm。
1个月后 ,各实验池随机选择 1O株金鱼藻,分别测
定其茎端伸展、成熟叶片的快速光响应曲线,所得数
值取平均值与对照池植株作比较并采用 SPSSI 1.5
软件包进行差异显著性分析。实验从 2005年8月
20日开始,至9月23日结束。
图 1 实验水池平面示意图
Fig.1 Plan of experimental pools
1.3 泥沙制备
实验泥沙采自江苏省镇江段的长江,以孔径
100 m筛网滤掉粗颗粒,滤液静止2 h后选上层悬
浮液作为实验用的悬浮泥沙溶液。悬浮泥沙溶液中
粒径 1—1.5 的泥沙约占40%,2.5—5 、25—
5O m和5O一100 m粒径的泥沙分别 占13.4%、
12.4%和25%。因而,实验用泥沙主要由粒径较小
的颗粒组成。
1.4 泥沙浊度测定
采用美国 HACH公司2100P浊度仪测定。
1.5 光照强度的测定
实验期间采用德国(wak GmbH,Efeltrich,Ger-
many)微型 Li.Cor质子探头于晴朗无云 日的中午
12:oo左右测定不同水深处的光照强度,取平均值绘
成不同水深处光照强度的变化图。
1.6 叶片快速光响应曲线
早晨7:oo开始用水下饱和脉冲荧光仪Diving—
PAM(德国WALZ公司)和数据采集软件wincontrol
(walz GmbH,Efeltrich,Germany)进行测定。Diving—
PAM配备了一个发射峰为650 nm的红外二极管,
所发射的红外光为测量光;一个内置的卤素灯提供
光化光照明和饱和脉冲光。光强使用微型的 Li—Cor
质子探头测定(Walz GmbH,Efeltrich,Germany),该
探头已用 Li—Cor质子(Li—Cor,Lincoln,NE,USA)探
头校正。每一水池随机选择 1O株植株,清除水下
30 crfl处伸展、成熟叶片上的附着物,测定其快速光
响应曲线,取平均值作比较。
连体叶片经暗适应 10 s后,迅速打开叶夹,开
启检测光(0.15 Ixmol photon·m~·s )得到 ,再
由饱和脉冲光(4000 ixmol photon·nl~·s~,0.8 s)
测得 F ;随后,逐渐开启光强度分别为41、84、147、
214、289、422、569、848 t~mol photon·m~·s 的光化
光,每个强度的光化光照射 10 s后 ,经检测光和饱
和脉冲光测得 F 、F ,分别计算得到 8个 △ /F
rETR、qP和qN值,绘出它们各自平均值的快速光
响应曲线 ¨。计算公式如下:
有效荧光产量 Yield(AF/ )=(F 一 )/F ;
光化学淬灭系数qP=(F 一F。)/(F 一 );
非光化学淬灭系数 qN=(F 一F )/(F 一 );
相对光合电子传递速率 rETR=Yield×PAR×
0.84×0.5 C

2 实验结果
2.1 各池不同水深处的光强变化
实验期间,在晴朗无云 日的正午,在悬浮泥沙的
溶液中,悬浮泥沙颗粒阻碍了光在水中的垂直分布,
溶液透明度低,水下光照弱;30、60、90 NTU溶液的
透明度分别为 35、20、15 cm。在 60、90 N,I’U溶液
中,光照强度在水下衰减较快,植株叶片接收的光较
少。具体见图2。
维普资讯 http://www.cqvip.com
第 6期 马 婷等:悬浮泥沙溶液对金鱼藻快速光响应曲线的影响 533



Waterdepth(cTn)
图 2 正午各池水下光照强度的变化
Fig.2 Irradianee changes under water in 4 pools at noon
2.2 不同浊度的悬浮泥沙溶液对金鱼藻叶片快速
光响应曲线的影响
2.2.1 不同浊度的悬浮泥沙溶液对金鱼藻荧光产
量曲线的影响 荧光产量(F )的升高,推测与 PSII
反应中心的关闭有关 。如果 PSI反应中心被关
闭,将不能够传递能量。在对照和 3O、6O、9O NTu
溶液中,植株的荧光产量(F )在最初的2个光化光
阶段迅速上升,分别上升了 1.54、1.63、1.79、2.06
倍(图3:A),意味着随着溶液浊度的增加,叶片 PSI
反应中心失去活性的比例增大,这与跨类囊体膜质
子梯度(ApH)的累积有关 ¨ 。在 60、90 NTU溶液
中金鱼藻叶片的F 显著高于对照,表明在光强升高
的过程中溶液浊度越高叶片的电子库也越小(卡尔
文循环),固定的 CO:量也逐渐减少。
2.2.2 不同浊度的悬浮泥沙溶液对金鱼藻最大荧
光产量曲线的影响 随着光照强度的增加,金鱼藻
植株的最大荧光产量(F )迅速下降(图3:B),与
非光化学淬灭的快速升高相一致(图4:B)。在对照
和3O、6O、90 NTU溶液中 F 分别下降了50.5%、
42.3%、44.7%和 43.3%,表明在悬浮泥沙溶液中
金鱼藻非光化学荧光淬灭耗散能量 的能力有所
下降,在持续的高光条件下,比对照植株更易发生光
抑制。
2.2.3 不同浊度的悬浮泥沙溶液对金鱼藻 qP曲
线的影响 光化学淬灭系数(qP)和非光化学淬灭
系数(qN)描绘了能量耗散途径的相对影响。qP是
PSI天线色素吸收的光能用于光化学电子传递的份
额,较低的 qP反映 PSII中开放的反应中心比例和
参与 CO:固定的电子减少 。在对照和 3O、6O、
9O NTu中,qP的平均 降低 幅度分别 为 67.2%、
78.9%、81.4%和86.4%(图4:A)。表明随着溶液
浊度的增加金鱼藻植株 qP值受到悬浮泥沙影响的
程度增加,叶片反应中心开放比例的降低,降低了参
与 CO:固定的电子数。
800
700
600
500
400
3oo
图 3 荧光产量( )和最大光适应荧光产量(F .)
随光强的变化
Fig.3 Fluorescence yield( )and maximum light-
adapted fluorescence yield(F m)as a function of PAR
2.2.4 不同浊度的悬浮泥沙溶液对金鱼藻 qN曲
线的影响 非光化学淬灭系数(qN)反映的是天线
色素吸收的光能不能用于电子传递而以热的形式耗
散掉的光能部分,而热耗散是植物保护 PSII的重要
机制 引。植株的qN随光照强度的增加呈迅速的增
加趋势,热耗散能量增加(图 4:B)。与对照相较,
3O、60、9O NITU植株的qN在光强 >147 pjnol photon·
rl~·s 时均显著低于对照;溶液浊度越高,与对照
的差异也越大,特别是 9O NTU植株与对照的差异
达极显著水平(P<0.O1)。结合 qP的变化可知,在
同一光照强度下,随着溶液浊度的升高金鱼藻植株
1
O 8
0.6
0.4
0.2
0
0 l 5O 300 450 600 750 900
PAR(.mol photon·m ·s
0 l 50 300 450 600 750 900
PAR(tJmol photon·m ·s )
图 4 光化学淬灭(qP)和非光化学淬灭(qN)
随光强的变化
Fig.4 Photochemical quenching(qP)and non-photoche-
mieal quenching fqN)as a function of PAR
维普资讯 http://www.cqvip.com
武 汉 植 物 学 研 究 第 24卷
热耗散的能量和光化学反应传递的能量都减少,植
株受到的光抑制程度增大。
2.2.5 不同浊度的悬浮泥沙溶液对金鱼藻 F/
F.曲线的影响 PSI的光化学效率是表明光化学
反应状况 的一个重要参数。有效荧光产量 (AF /
F )表示在照光下 PSI的实际光化学效率,反映吸
收的光子供给 PSI反应中心的效率 ¨。随着光强
的增加,F 和F 变得更近,导致更小的AF信号
(图3:A,B)。由于非光化学荧光淬灭(F 下降)
增加了能量的损失以及 PSII反应中心关闭导致了
光化学能量的使用受到限制(F升高),金鱼藻叶片
的△ /F 迅速下降(图 5:A)。金鱼藻△ / 值
的降低 随溶液浊度 的增 加呈增 加趋势。对照和
3O Nr]【’U植株的变化趋势相似,降低较为缓慢;60、
9O Nr][’U植株的降低趋势较对照和30 NTU迅速。在
对照和3O、6o、9O Nr]【’U溶液中植株 △ /F 的平均
降低幅度分别为 82.5%、86.8%、92.3%和 96.1%,
植株的实际光化学效率受悬浮泥沙的影响显著。
图 5 AF,/F=和相对电子传递
速率随光强的变化
Fig.5 △ /F.and relative electron transport
rate as afunction ofPAR
2.2.6 不同浊度的悬浮泥沙溶液对金鱼藻 rETR
曲线 的影响 PSI-[的相对光合 电子传 递速 率
(rETR)是 反映实际光强下 的表观 电子传递效
率 引¨。rETR用于度量光化学反应导致碳固定的电
子传递情况 J。光强一rETR图显示 了典型的 P—E
曲线,线型的升高被稳定阶段所限制,光合途径受
限。在对照和 3O、6o、9O Nr]【’U的溶液中,金鱼藻饱
和光强都为569 p,mol photon·m~·s (图5:B)。它
们的rETR值随光照强度的增加呈逐渐增加趋势;
溶液浊度越高,增加趋势越缓慢,热耗散能力越低
(图4:B)。表明随着悬浮泥沙溶液浊度的升高,金
鱼藻植株耐光抑制能力显著降低。
同时,各池植株的 rETR一 出现显著差异。在
3O、6o、9o Nr]【’U溶液中,叶片 rETR一分别为 34.3、
23.4、20.1 p,mol electron·m~·s~,显著低于对照的
42.8 p,mol electron·m~·s~,差异达极显著水平
(P<0.01)。表明随溶液悬浮泥沙浊度的增大植株
光响应能力呈下降趋势。
3 讨论
光合曲线(P—E,P—I)‘加 不仅能够评估植物当前
的光合能力,而且也能评估其在一个广泛光强范围
内的潜在活动;通常用于测量、描绘在一定光强范围
内光合器官积累的O:和 CO:。P—E曲线已经测量
了多年,大量的数学模型和曲线特征参数被用于描
述光合速率 ¨ 。快速光响应曲线(RLCs)通常采用
8个光化光,每个光化光照射时间为 10 s;测得的
△ /F 和rETR意味着光合作用实际的光化学状
态,而不是 P—E曲线所显示的最佳状态(不依赖于
光照条件)。RLCs曾被称为快速 P—I曲线 ]、光响
应曲线和瞬时光响应曲线 J,已广泛的应用于海草
生态生理学调查研究 ¨。
仔细解释RLC数据能够对适应于不同光条件
下的叶片光动力学提供详细的认识。光合器官电子
库和电子源的容量能够从与 RLC相连的 F 和 F
数据推导出来。F 和 F 曲线图形提供 了跨类囊
体膜质子梯度和热能耗散的证据¨¨ 。30 NTU植株
叶片的光合作用能力和非光化学淬灭途径的活性与
对照相比略有降低;而在 6O、90 NTU溶液中植株叶
片的光合作用与对照相比显著降低,非光化学淬灭
耗散热能的能力也显著降低。
伴随着光强的继续升高 ,RLCs的rETR曲线通
常会下降。对于传统的 P—E曲线,这种下降与光抑
制有关 ,但对于 RLCs曲线来说,这种下降与 PSII
的动力学下调有关 J,而与光抑制无关,因为这时
没有 足够导 致光破 坏产 生 的时 间。在光 强 >
569 p,mol photon·m~·s 后,金鱼藻叶片电子传递
链的能力限制了光合作用,曲线达稳定状态,此时光
响应能力最大。研究表明,随着溶液浊度的增加金
鱼藻植株叶片的最大光响应能力呈显著下降趋势。
综上所述,在悬浮泥沙溶液中金鱼藻叶片的光
响应能力随溶液浊度的升高显著下降;特别是当溶
液浊度I>60 NTU时,叶片光响应能力下降达极显著
维普资讯 http://www.cqvip.com
第 6期 马 婷等:悬浮泥沙溶液对金鱼藻快速光响应曲线的影响 535
水平;而且在实验过程中发现植株茎易发生断裂,因
而在高浊度的悬浮泥沙溶液中不宜引种金鱼藻。
[13]
参考文献:
[1] Bach S S,Borum J,Fortes M D,Duarte C M.Species composition
and plant performance of mixed 8eagra8s beds along a siltation
gradient at Cape Bolinao,the Philippines[J].Marine Ecology
Progress Ser/es,1998,174:247—256.
[2] Vervuren P J A,Blom C W P M,de Kroon H.Extreme flooding
events on the Rhine and the survival and distribution of riparian
plant species[J].JEco,2003,91:135—146.
[3] 由文辉,宋永昌.淀山湖3种沉水植物的种子萌发生态[J],
应用生态学报,1995,6(2):196—200.
[4] Ij w.A conceptual model for predicting and n瑚aging vegetative
type8 in shalow lakes[J].Ecol Eng,1998,10:165—178.
[5] Meijer M L.Biomanipulation in the Netherlands:15 years ofe
rience[D].The Netherlands Wageningen Universiteit,2000.
[6] BlindowI,A Hargeby,Andersson G.Seasonal changes ofm~ha-
nisms maintaining clear water in a shalow lake witlI abundant
Chant vegetation[J].Aquat Bot,2002,72:315—334.
[7] Orth R J.Habitat requirements ofSAV in Chesapeake Bay based
onwater quality[A].In:Morris L J,Tonmsko DAeds.Proceed-
ings and Conclusions of Workshops on Submerged Aqu atic Vege-
tation Initative and Photosynthetically Active Radiation[C].
Florida:St.John s River Water Man agement District,1993.67—
76.
[8] Wedala B,Deak Z,Vass I,Erdei L,Horv6th F.Nitric de modi.
ties photosynthetic electrontransportinpealeaves[J].Acta BIO.-
losica Szegedlensis,2005,49:7—8.
[9] WenX,GongH,Lu C.Heat stresinducesan inhibitonofexcita.
tion energy transferfrom phycobilisomes to photosystem II but not
to photosystem I in a cyanobacterium Spirulina platen.sis[J].
PlantPhysiolBiochem,2005,43:389—395.
[10] Takabeyashi A,Kishine M,Asada K,Endo T,Sato F.Diferential
use oftwo cyclic electron flows around photosystem I for driving
C02一concentration mechanism in C4 photosynthesis[J].Proc
Nutl Acad sa(USA),2005,102:16898—16903.
[11] Ralph P J,Gademann R.Rapid light curves:A powerful tool to
∞8es8 photosynthetic activity[J].Aquat/c Botany,2005,82:
222—237.
[12] Dumko M J,Kunzelman J I.Photosynthetic characteristics of
Tha/as/a testud/num measured/n s/tu by pulse-amplitude modu·
[14]
[15]
[16]
[17]
[18]
[19]
[20]
[21]
[22]
[23]
[24]
lated (PAM)fluorometry:methodological and scale based con-
siderations[J].Aquat Bot,2002,1562:1—13.
Mereurio P,Ne A,Burns K A,Heyward A.Th e ecotoxicology of
vegetable vel~u8 mineral based lubricating oils:3.Coral fertiliza—
tion and adult corals[J].Environmental Polution,2004,129:
183—194.
卢德敏.淡水生物学[M].苏州:苏州大学出版社 ,2002.46.
Schreiber U,Gademann R,Padph P J,Larkum AWD.Assessment
of photosynthetic performance ofProchloron in/~ssoc//num pate//a
in hospite by chlorophyl fluorescence measurements[J].Pl Cel
Phy~iol(Tokyo),1997,38:945—951.
white A J.Critchley C.Rapid light tules:a new fluorescence
method to asses8 the state of the photosynthetic apparatus[J].
Photosynth Res,1999,59:63-72.
Cent,/B,Briantais J M,Bak er N R.Th e relationship between the
qu antum yield of photosyn thetic electron transport and qu enching
ofchlorophylfluorescence[J].Biochimaiophr,Acm,1989,990:
87—92.
6gren E.PIEdic~on of photoinhibition of photosynthesis from
measurements of fluorescence quenching components[J].Planta,
1991,184,538—544.
Bilger W,Bj~rkman O.Role of the xanthophyl cycle in photopro-
tection elucidated by measurements of light—induced absorbance
changes ,fluorescence and photosyn thesis in leaves of Hedera
canar/ensis[J].Photosyr~ Res,1990,25:173—185.
Falkowski P G,Raven J A.Aquatic Photosynthesis[M].Oxford:
Blackwel,1997.375.
Harrison W G.Platt T.Photosynthesis—irradiance relationships in
polar and temperate phytoplankton populations[J].Polar Biol,
1986,5:153—164.
Beer S B,Vilenkin A,Weil M,Veste L,Eshel S.Measuring pho-
tosynthetic rates in seagrasses by pulse am plitude modulated
(PAM)fluorometry[J].Mar Ecol Prog Set,1998,174:293—
3oo.
R且8cher U,Liebig M,LOUge U.Evaluation of instant light-
response tulles of chlorophyll fluorescence parameters obtained
with a portable chloreph【yu fluorometer on site in the field[J].
Plant Cel Environ,2000,23:1397—1405.
Henley W J.Measurement and interpretation of photosynthesis
light·response curvesinalgaeinthe contextofphotoinhibitionand
did changes[J].JPhycol,1993,29:729—739.
维普资讯 http://www.cqvip.com

  鄂ICP备06018747号 Copyright @ 2017
  植物通 All Rights Reserved
  Email:23198511@qq.com
回顶部
51La