全 文 ：几种因素对悬浮培养人参细胞生长和
皂苷积累的影响
李铁军，廉美兰，于丹，邵春绘，朴炫春
（延边大学 长白山生物资源与功能分子教育部重点实验室，吉林 延吉１３３００２）
［摘要］ 为了完善人参细胞悬浮培养体系，论文研究了人参细胞悬浮培养的动态，探明了培养瓶瓶盖透气滤膜的有无，
摇床转速和接种量对人参细胞生长和皂苷积累的影响。结果表明人参细胞悬浮培养过程中，细胞生物量和皂苷产量在培养
２０ｄ时达到最大值，因此，可将培养期定为２０ｄ。培养瓶盖上有透气滤膜时有利于人参细胞生长和皂苷合成；悬浮培养时摇床
转速影响细胞生长但对皂苷合成无影响，转数为１２０ｒ·ｍｉｎ－１时，皂苷生产量最高。每个培养瓶接种６ｇ鲜重的细胞时，细胞
生长和皂苷积累明显好于其他接种量，总皂苷质量分数达１２８ｍｇ·ｇ－１ＤＷ，生产量达１４６６ｍｇ·Ｌ－１。
［关键词］ 人参细胞；透气膜；摇床转数；接种量
［收稿日期］ ２０１３０６１８
［基金项目］ 国家自然科学基金项目 （８１１６０４９７）
［通信作者］ 朴炫春，Ｔｅｌ：１５５６７６６２９９８，Ｅｍａｉｌ：ｌｉａｎｍｅｉｌａｎ２００１＠
ｙａｈｏｏｃｏｍｃｎ
人参ＰａｎａｘｇｉｎｓｅｎｇＣＡＭｅｙｅｒ是五加科人参
属的多年生药用植物，主要活性成分人参是皂苷，具
有抗炎、抗氧化、抗肿瘤、提高人体免疫力及延缓衰
老等功效［１］。目前，人参栽培以播种作为主要繁殖
方式，从播种到收获需要４～６年的时间，管理成本
较高，病害严重，且因为防治这些病虫害频繁使用的
农药带来的残留问题降低了人参产品质量［２］，同时
阻碍其向国外市场出口。因此，利用植物细胞培养
工程手段，通过细胞、组织或器官培养获得人参皂苷
便成了解决这些问题的有效方法。
人参细胞和组织培养兴起于２０世纪６０年代，
其工厂化生产始于２０世纪８０年代［３］。在进行人参
细胞培养过程中，利用液态培养基进行的悬浮培养
被认为是一种取代传统固态培养基进行培养的方
式，其优势在于细胞增殖速度快，可提供大量均匀一
致的培养物［４］。因此，悬浮培养成为植物组织培养
走向工业化的必经步骤［５］。由于人参市场的需求
量逐年增加，工厂化生产过程中提高人参有效物质
的积累越来越受到人们的关注［６］。本试验调查了人
参细胞悬浮培养过程中细胞生长和底物消耗的动态，
研究了培养瓶的换气条件、摇床转数及接种量对细胞
生长和皂苷积累的影响，旨在完善人参细胞悬浮培养
技术，为人参皂苷的工厂化生产提供理论依据。
１ 材料与方法
１１ 材料培养 将在长白山区采集的５年生新鲜
人参根部洗净，用洗衣粉稀释液中清洗５ｍｉｎ，然后
在流水下冲洗５ｈ。将洗净的人参根在无菌状态下
用７０％乙醇浸泡１ｍｉｎ，再用２％的次氯酸钠溶液消
毒２０ｍｉｎ，最后用无菌水冲洗３～４次。将已消毒的
人参根切成１ｃｍ×１ｃｍ的小块接种在 ＭＳ＋２，４Ｄ
１０ｍｇ·Ｌ－１＋蔗糖３０ｇ·Ｌ－１＋琼脂６５ｇ·Ｌ－１的
培养基中诱导愈伤组织。将诱导出的愈伤组织转接
到含３０ｍＬ培养基（ＭＳ＋２，４Ｄ１０ｍｇ·Ｌ－１＋激动
素（ＫＴ）０３ｍｇ·Ｌ－１＋蔗糖 ３０ｇ·Ｌ－１＋琼脂６５
ｇ·Ｌ－１）的培养皿（９ｃｍ×１５ｃｍ）中进行继代培
养。继代培养３次后，将愈伤组织用刀打碎后接种至
含５０ｍＬ液态培养基（ＭＳ＋２，４Ｄ１０ｍｇ·Ｌ－１＋
ＫＴ０３ｍｇ·Ｌ－１＋蔗糖 ３０ｇ·Ｌ－１）的２５０ｍＬ的三
角瓶中，在转数为１００ｒ·ｍｉｎ－１的摇床上培养。培
养温度为（２５±２）℃，相对湿度７０％，暗培养。培
养２０ｄ后将细胞和培养基的混合液用滤纸过滤后，
收集细胞用于实验材料。
１２ 人参细胞生长和皂苷积累及物质消耗动态研
究 将悬浮培养的细胞称取４ｇ鲜重（ＦＷ），接种到
含５０ｍＬ培养基 （ＭＳ＋２，４Ｄ１０ｍｇ·Ｌ－１＋ＫＴ
０３ｍｇ·Ｌ－１＋蔗糖 ３０ｇ·Ｌ－１）的２５０ｍＬ的三角
瓶中，在转速为１００ｒ·ｍｉｎ－１的摇床上培养。培养
温度为（２５±２）℃，相对湿度７０％，暗培养。培养
过程中，每隔５ｄ停止培养其中一个培养瓶，用滤纸
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过滤混合物，收集滤纸上的细胞称鲜重，收集培养基
测糖及无机盐浓度。将测完鲜重的细胞放入５０℃
烘干箱中，待完全干燥后（２ｄ）记录干重，并测定皂
苷含量。
１３ 培养瓶换气膜的有无对悬浮培养细胞生长和
皂苷积累的影响 将４ｇ人参细胞接种到２５０ｍＬ
的三角瓶中，培养基量为５０ｍＬ。培养瓶盖分别用
有透气过滤膜（φ＝１ｃｍ）和无透气过滤膜的铝箔纸
封盖，每组接种３瓶，２０ｄ后调查细胞鲜重和干重，
测定皂苷含量。培养条件与１２相同。
１４ 摇床转速对细胞生长和皂苷积累的影响 根
据１３的结果，培养瓶用有滤膜的铝箔纸封盖后进
行培养，每个培养瓶中细胞的初始接种量为４ｇ。为
了探明摇床转数的影响，将接种的培养瓶分别置于
转数为８０，１００，１２０ｒ·ｍｉｎ－１的摇床上，２０ｄ后对细
胞生物量和皂苷含量进行测定。培养基和培养条件
与１２相同。
１５ 接种量对人参细胞生物量及皂苷积累的影响
为探明接种量对人参细胞生长和皂苷积累的影
响，在每个培养瓶中分别接种２，４，６，８ｇ人参细胞，
用有滤膜的瓶盖封盖后，将摇床转数调节为１２０ｒ·
ｍｉｎ－１后培养。其他条件同１３。
１６ 皂苷及糖和阴阳离子浓度测定 不定根中人
参皂苷测定：按《中国药典》方法［７］，取人参细胞干
燥粉末（过１００钼筛）１ｇ，精密称定，置索氏提取器
中，加三氯甲烷约１００ｍＬ，加热回流３ｈ，弃去三氯
甲烷液，药渣挥干溶剂，连同滤纸筒移人具塞锥形瓶
中，精密加入水饱和正丁醇５０ｍＬ，密塞，放置过夜，
超声（２５０Ｗ，４０ｋＨｚ）处理３０ｍｉｎ，滤过，弃去初滤
液，精密量取续滤液２５ｍＬ，置蒸发皿中蒸干，残渣
加甲醇溶解并转移至５ｍＬ量瓶中，加甲醇稀释至刻
度，摇匀，滤过，取续滤液，即得待测样品。待测样品
利用配有 Ｃ１８色谱柱（４６ｍｍ ×２５０ｍｍ，５μｍ，
Ｔｈｅｒｏｍｏｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，美国）的高效液相色谱（ＬＣ１５Ｃ，
岛津公司，日本），在紫外可见检测器（ＳＰＤ１５Ｃ，岛
津公司，日本）２０３ｎｍ波长处进行检测；进样量为１０
μＬ，流动相为乙腈与水，流速为１０ｍＬ·ｍｉｎ－１，柱
温为３０℃。人参皂苷对照品 Ｒｂ１，Ｒｂ２，Ｒｃ，Ｒｄ，Ｒｅ，
Ｒｆ，Ｒｇ１由成都曼斯特生物科技有限公司提供。总皂
苷含量为单体皂苷之和，皂苷生产量 ＝细胞干重 ×
２０×皂苷含量。测定人参皂苷含量的流动相洗脱
条件参照Ｗｕ等［８］方法，流动相水乙腈，梯度洗脱
程序为 ０～１０ｍｉｎ，７５％水；１０～１５ｍｉｎ，６８％水；
１５～２０ｍｉｎ，４５％水；２０～２５ｍｉｎ，４０％水 ２５～４０
ｍｉｎ，０水；４０～５０ｍｉｎ，７５％水。
培养基中糖及离子浓度的测定：将收集的培养
液，用过滤器（滤膜孔径０２μｍ）过滤，稀释１０倍后
利用Ｌｉａｎ［９］等的方法分别利用配有 Ｃ１８色谱柱（７８
ｍｍ×３００ｍｍ，５μｍ，ＷａｔｅｒｓＣｏ，Ｍｉｌｆｏｒｄ，美国），
ＩＣＰａｒＡｎｉｏｎＨＲ色谱柱（４６ｍｍ×７５ｍｍ，５μｍ，
ＷａｔｅｒｓＣｏ，Ｍｉｌｆｏｒｄ，美国）和 ＩＣＰａｒＣＭ／Ｄ色谱柱
（３９ｍｍ×５０ｍｍ，５μｍ，ＷａｔｅｒｓＣｏ，Ｍｉｌｆｏｒｄ，美
国）的高效液相色谱仪（ＬＣ１５Ｃ，岛津公司，日本）测
定培养基中残留的糖浓度和无机盐的阴阳离子浓
度。糖浓度测定流动相为乙腈水 ８０∶２０，阳离子浓
度测定流动相为０５ｍｍｏｌ·Ｌ－１ＥＤＴＡ与２ｍｍｏｌ·
Ｌ－１ＨＮＯ３的混合液，阴离子浓度测定流动相为１６
ｍｍｏｌ·Ｌ－１ＮａＨＣＯ３与 １４ｍｍｏｌ·Ｌ
－１Ｎａ２ＣＯ３混合
液，流速均为１０ｍＬ·ｍｉｎ－１。
１７ 数据分析 数据为３次重复的平均值，利用
ＳＡＳ（ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌａｎａｌｙｓｉｓｓｙｓｔｅｍ，Ｃａｒｙ，ＮＣ，ＵＳＡ）程序
中方差分析对试验数据进行分析，采用邓肯氏新复
极差法进行比较，显著水平为００５。
２ 结果与分析
２１ 人参细胞生长、皂苷积累以及培养基消耗动态
变化 人参细胞的鲜重与干重的变化趋势类似，随
着培养时期呈增加的趋势，从培养开始到第１０天，
细胞的鲜重与干重增加缓慢，第１０～２５天时，鲜重
与干重迅速增加，鲜重（１１１ｇ·Ｌ－１）和干重（４９６０
ｍｇ·Ｌ－１）在第２５天时达到最大，２５ｄ后鲜重和干
重不再继续增加（图１）。
图１ 悬浮培养过程中人参细胞鲜重和干重的变化
Ｆｉｇ１ Ｃｈａｎｇｅｓｏｆｆｒｅｓｈｗｅｉｇｈｔａｎｄｄｒｙｗｅｉｇｈｔｄｕｒｉｎｇｃｅｌｓｕｓ
ｐｅｎｓｉｏｎｃｕｌｔｕｒｅｏｆＰａｎａｘｇｉｎｓｅｎｇ
人参细胞中的皂苷含量在培养０～１０ｄ变化不
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大，而在１０～２０ｄ增加迅速，２０ｄ时达到６６ｍｇ·
ｇ－１ＤＷ；皂苷生产量变化趋势与总皂苷质量分数变
化趋势相同，同样在第２０天达到高峰，为５３２ｍｇ
·Ｌ－１。２０～２５ｄ皂苷含量和生产量下降，２５ｄ后
保持稳定（图２）。因此，为了得到最大量的皂苷，人
参细胞培养以２０ｄ为宜。
图２ 悬浮培养过程中人参细胞中皂苷含量和皂苷生产量
的变化
Ｆｉｇ２ Ｃｈａｎｇｅｓｏｆｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅｃｏｎｔｅｎｔａｎｄｐｒｏｄｕｃｔｉｖｉｔｙｄｕｒｉｎｇ
ｃｅｌｓｕｓｐｅｎｓｉｏｎｃｕｌｔｕｒｅｏｆＰａｎａｘｇｉｎｓｅｎｇ
在人参细胞培养过程中，对培养基中糖浓度进
行测定的结果（图３），０ｄ时蔗糖浓度为２６８ｇ·
Ｌ－１，同时葡萄糖和果糖的质量浓度分别为１４，２５
ｇ·Ｌ－１，这是因为在培养基经过高压灭菌后，培养基
配制时加入的３００ｇ·Ｌ－１的蔗糖部分分解为葡萄
糖和果糖。在培养的前５ｄ，蔗糖质量浓度急速下降
为０４０ｇ·Ｌ－１，而从 １０ｄ之后，培养基中无蔗糖。
果糖浓度在培养过程中呈现不断的波动变化，最大为
５８ｇ·Ｌ－１，最小为２３ｇ·Ｌ－１；葡萄糖浓度则在０～５
ｄ有所上升到３７ｇ·Ｌ－１，而在５ｄ后则一直呈缓慢下
降趋势，到培养第３０天时降到００５ｇ·Ｌ－１。
图３ 人参细胞培养过程中培养基中糖浓度的变化
Ｆｉｇ３ Ｃｈａｎｇｅｓｏｆｓｕｇａｒｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｄｕｒｉｎｇｃｅｌｓｕｓｐｅｎｓｉｏｎ
ｃｕｌｔｕｒｅｏｆＰａｎａｘｇｉｎｓｅｎｇ
对培养基中残留的 ＮＨ４
＋，Ｋ＋，Ｍｇ２＋，Ｃａ２＋等阳
离子和 ＮＯ３
－，Ｃｌ－，ＳＯ４
２，Ｈ２ＰＯ４
－等阴离子进行了
测定，所有离子浓度在培养的０～５ｄ出现急速下降的
趋势，但在５～３０ｄ，各离子浓度变化不大，趋势相似
（图４）。人参细胞对ＳＯ４
２－和Ｈ２ＰＯ４
－的吸收最为迅
速，其中ＳＯ４
２－由培养０ｄ的８５ｍｍｏｌ·Ｌ－１下降到第５
天的０８ｍｍｏｌ·Ｌ－１，从１０ｄ后为０；而Ｈ２ＰＯ４
－则从０
ｄ的５８ｍｍｏｌ·Ｌ－１下降到５ｄ的０５ｍｍｏｌ·Ｌ－１，之后
浓度缓慢下降，第３０天时全部被吸收。
图４ 人参细胞培养过程中培养基中离子浓度的变化
Ｆｉｇ４ Ｃｈａｎｇｅｓｏｆｉｏｎｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｄｕｒｉｎｇｃｅｌｓｕｓｐｅｎｓｉｏｎｃｕｌ
ｔｕｒｅｏｆＰａｎａｘｇｉｎｓｅｎｇ
阳离子中Ｍｇ２＋与 ＮＨ４
＋浓度变化趋势相同，在
培养的５～１５ｄ时几乎不变，１５ｄ后浓度逐渐减小，
到第３０天时降到最低；Ｋ＋在培养的５～１５ｄ有所
减少，而在 １５～２５ｄ则有所上升之后逐渐减少；
Ｃａ２＋则在培养的５～３５ｄ的浓度变化都不明显，在
２５～３０ｄ时降低到最小浓度。
２２ 培养瓶盖换气膜的有无对振荡培养人参细胞
生长和皂苷积累的影响 通过上述动态学研究，人
参细胞进行悬浮培养２０ｄ后，调查了培养瓶盖换气
膜的有无对细胞生物量及皂苷积累的影响，结果发
现培养瓶盖换气膜的有无对细胞生物量和皂苷积累
有影响。有换气膜时，人参细胞的鲜重（９５ｇ／瓶）
和干重（４０８７ｍｇ／瓶）明显高于无换气膜处理。皂
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苷含量在换气膜处理也显著高于无换气膜处理，细
胞中皂苷总量达到８３ｍｇ·ｇ－１ＤＷ，生产量达到６７８
ｍｇ·Ｌ－１（表１）。说明在人参细胞振荡培养时，使用有
滤膜的瓶盖有利于细胞生长和皂苷的合成。
表１ 培养瓶盖有无透气过滤膜对不定根生长和皂苷含量
及生产量的影响
Ｔａｂｌｅ１ Ｅｆｅｃｔｓｏｆｖｅｎｔｉｌａｔｅｄｆｉｌｔｅｒｏｎｃｅｌｇｒｏｗｔｈ，ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ
ｃｏｎｔｅｎｔ，ａｎｄｐｒｏｄｕｃｔｉｖｉｔｙｏｆＰａｎａｘｇｉｎｓｅｎｇ
处理
鲜重
／ｇ／瓶
干重
／ｍｇ／瓶
总皂苷
／ｍｇ·ｇ－１ＤＷ
皂苷生产量
／ｍｇ·Ｌ－１
有滤膜 ９５ａ ４０８７ａ ８３ａ ６７８ａ
无滤膜 ７９ｂ ３７６９ｂ ７０ｂ ５２８ｂ
注：不同字母表示在００５水平上差异显著（表２，３同）。
２３ 摇床转速对振荡培养的人参细胞生长和皂苷
积累的影响 将振荡培养的摇床转数分别设置为
８０，１００，１２０ｒ·ｍｉｎ－１后培养２０ｄ，发现转数为１２０ｒ·
ｍｉｎ－１时细胞鲜重和干重明显高于８０，１００ｒ·ｍｉｎ－１
处理，而８０，１００ｒ·ｍｉｎ－１间无明显差异。皂苷含量
不受摇床转数的影响，在３种转数处理间皂苷含量
无明显差异，但在１２０ｒ·ｍｉｎ－１处理中由于细胞干
重值高，导致皂苷生产量出现最高值（７１６ｍｇ·
Ｌ－１）（表２）。因此，进行人参细胞培养时将摇床的
转数调节为１２０ｒ·ｍｉｎ－１较适宜。
表２ 摇床转速对细胞生长和皂苷含量及生产量的影响
Ｔａｂｌｅ２ Ｅｆｅｃｔｓｏｆｒｅｖｏｌｕｔｉｏｎｓｐｅｅｄｓｏｎｃｅｌｇｒｏｗｔｈａｎｄｇｉｎｓｅｎ
ｏｓｉｄｅｃｏｎｔｅｎｔａｎｄｐｒｏｄｕｃｔｉｖｉｔｙｏｆＰａｎａｘｇｉｎｓｅｎｇ
转数
／ｒ·ｍｉｎ－１
鲜重
／ｇ／瓶
干重
／ｍｇ／瓶
总皂苷
／ｍｇ·ｇ－１ＤＷ
皂苷生产量
／ｍｇ·Ｌ－１
８０ ９１ｂ ４００３ｂ ７６ａ ６０８ｂ
１００ ９０ｂ ４０６５ｂ ７７ａ ６２６ｂ
１２０ １０４ａ ４７７４ａ ７５ａ ７１６ａ
２４ 接种量对人参细胞生长和皂苷积累的影响
为了调查细胞初始接种量对其生长和皂苷合成
的影响，在每个培养瓶中接入２，４，６，８ｇ细胞进行
培养，发现随着接种量的增加细胞鲜重和干重逐渐
增加，但接种量在多于６ｇ时干重不再增加（表３）。
从表４还可知，人参皂苷在接种量为６ｇ时皂苷含
量最高（１２８ｍｇ·ｇ－１ＤＷ），接种量高于或低于６ｇ
时不利于总皂苷含量的提高；皂苷生产量也在６ｇ
接种量处理出现最大值（１４６６ｍｇ·Ｌ－１）。
表３ 接种量对人参细胞生长和皂苷含量及生产量的影响
Ｔａｂｌｅ３ Ｅｆｅｃｔｓｏｆｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎｄｅｎｓｉｔｙｏｎｃｅｌｇｒｏｗｔｈ，ｇｉｎｓｅｎ
ｏｓｉｄｅｃｏｎｔｅｎｔａｎｄｐｒｏｄｕｃｔｉｖｉｔｙｏｆＰａｎａｘｇｉｎｓｅｎｇ
接种量
／ｇ／瓶
鲜重
／ｇ／瓶
干重
／ｍｇ／瓶
总皂苷
／ｍｇ·ｇ－１ＤＷ
皂苷生产量
／ｍｇ·Ｌ－１
２ ３３ｄ １８６５ｄ ７５ｄ ２８０ｄ
４ ９１ｃ ３９６５ｃ １１４ｂ ９０４ｃ
６ １２４ｂ ５７２６ａ １２８ａ １４６６ａ
８ １５７ａ ５８９１ａ １０１ｃ １１９０ｂ
３ 讨论
人参细胞的生长是一个动态变化的过程，细胞
生物量的增加需要经历生长的缓冲阶段、生长快速
阶段及生长的平稳阶段３个阶段，这与李慧娟等［１０］
研究的反应器培养人参不定根的生长趋势相一致。
无机盐是植物生长发育不可缺少的营养成分，人参
细胞培养过程中，细胞不断吸收培养液中的无机盐，
总体上都是在前５ｄ利用最多，之后便达到相对平
衡，这其中以阴离子中的ＳＯ４
２－和Ｈ２ＰＯ４
－的吸收最
为迅速，且对 ＳＯ４
２－的利用率最高，这与吕连媛
等［１１］的研究结果不同，说明不同的植物对于营养液
中无机盐的需求量不同。
利用瓶盖具有透气滤膜的培养瓶对人参细胞悬
浮培养的效果优于无透气滤膜的情况，说明人参细
胞的生长发育也是需要进行气体交换的有氧新陈代
谢过程。培养基中溶氧量不足时，细胞的新陈代谢
受到抑制，细胞的生长和皂苷的合成速率也会相应
下降。氧气作为氧化磷酸化代谢的最终电子受体，
在能量代谢中起重要作用同时参与许多次生代谢产
物的合成反应。因此，系统中的溶氧浓度对培养效
果的影响很大［１２］。悬浮培养过程中，摇床的转数影
响培养基的溶氧，长春花细胞过低转数下生长不良，
较高转数促进细胞生长［１３］；此外转速还影响着细胞
与培养液的接触与吸收利用情况，摇床转速过低，细
胞在培养基中不能形成均匀的离散系，导致营养吸
收不完全，使得细胞生长缓慢，影响次生代谢产物的
积累；摇床转速过高，则存在着细胞与培养液之间剪
切力过大，导致细胞产生破碎现象使培养液变浑
浊［１４］，本试验中低转数条件下细胞生长不良，这可
能是因为培养基中溶氧量多低而至。这与周煜
等［１２］的研究结果相似，因此人参细胞悬浮培养的摇
床转速可调节至１２０ｒ·ｍｉｎ－１。
已有研究表明，植物组织培养过程中，外植体接
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入量与培养基量、空气量等比值直接影响其生长发
育［１５］。接种量过少，不仅浪费空间资源，也达不到
大规模生产的目的［１６］，接种量过多则导致培养初期
外植体间竞争养分激烈，致使一部分外植体褐变死
亡，不利于后期的继代培养与皂苷生产。王娟等［１７］通
过研究发现接种量的多少对西洋参悬浮细胞生长以及
人参皂苷Ｒｅ和Ｒｂ１的合成有显著影响，而本试验中确
定的悬浮培养人参细胞的最佳接种量为鲜重６ｇ。
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量和活性成分的影响［Ｊ］中国中药杂志，２００９，３４（４）：
３７５
Ｅｆｅｃｔｓｏｆｓｅｖｅｒａｌｆａｃｔｏｒｓｏｎｃｅｌｇｒｏｗｔｈａｎｄｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎｏｆ
Ｐａｎａｘｇｉｎｓｅｎｇｓｕｓｐｅｎｓｉｏｎｃｕｌｔｕｒｅ
ＬＩＴｉｅｊｕｎ，ＬＩＡＮＭｅｉｌａｎ，ＹＵＤａｎ，ＳＨＡＯＣｈｕｎｈｕｉ，ＰＩＡＯＸｕａｎｃｈｕｎ
（ＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＮａｔｕｒｅＲｅｓｏｕｒｃｅｏｆＣｈａｎｇｂａｉＭｏｕｎｔａｉｎ＆ＦｕｎｃｔｉｏｎａｌＭｏｌｅｃｕｌａｒ，Ｙａｎｂｉａｎ
Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，ＭｉｎｉｓｔｒｙｏｆＥｄｕｃａｔｉｏｎ，Ｙａｎｊｉ１３３００２，Ｃｈｉｎａ）
［Ａｂｓｔｒａｃｔ］ ＴｏｉｍｐｒｏｖｅｃｅｌｓｕｓｐｅｎｓｉｏｎｃｕｌｔｕｒｅｓｙｓｔｅｍｏｆＰａｎａｘｇｉｎｓｅｎｇ，ｔｈｅｄｙｎａｍｉｃｏｆｃｅｌｇｒｏｗｔｈａｎｄｍｅｄｉｕｍｃｏｎｓｕｍｐｔｉｏｎ
ｗｅｒｅｓｔｕｄｉｅｄ，ａｎｄｔｈｅｅｆｅｃｔｓｏｆｆｉｌｔｅｒｏｎｔｈｅｃｕｌｔｕｒｅｖｅｓｓｅｌ，ｒｅｖｏｌｕｔｉｏｎｎｕｍｂｅｒ，ａｎｄｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎｄｅｎｓｉｔｙｏｎｃｅｌｇｒｏｗｔｈａｎｄｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ
ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎｗｅｒｅａｌｓｏｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ．Ｔｈｅｍａｘｉｍｕｍｃｅｌｇｒｏｗｔｈａｎｄｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎｗａｓｆｏｕｎｄｏｎｔｈｅ２０ｔｈｄａｙｓｏｆｓｕｓｐｅｎｓｉｏｎ
ｃｕｌｔｕｒｅ，ｔｈｅｒｅｆｏｒｅ，２０ｄａｙｓｗｅｒｅｃｏｎｆｉｒｍｅｄａｓａｓｕｉｔａｂｌｅｃｕｌｔｕｒｅｐｅｒｉｏｄｆｏｒｍａｓｓｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎｏｆｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ．Ｃｅｌｇｒｏｗｔｈａｎｄｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ
ｃｏｎｔｅｎｔｗｅｒｅｐｒｏｍｏｔｅｄｗｈｅｎｔｈｅｃｕｌｔｕｒｅｖｅｓｓｅｌｈａｄａｖｅｎｔｉｌａｔｅｄｆｉｌｔｅｒ．Ｒｅｖｏｌｕｔｉｏｎｓｐｅｅｄｄｕｒｉｎｇｓｕｓｐｅｎｓｉｏｎｃｕｌｔｕｒｅａｆｅｃｔｅｄｃｅｌｇｒｏｗｔｈ，
ｂｕｔｎｏｔｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅｃｏｎｔｅｎｔ，ａｐｅａｋｏｆｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅｐｒｏｄｕｃｔｉｖｉｔｙｗａｓｆｏｕｎｄｉｎｔｈｅｔｒｅａｔｍｅｎｔｏｆ１２０ｒ·ｍｉｎ－１．Ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎｄｅｎｓｉｔｙａｌｓｏｉｎ
ｆｌｕｅｎｃｅｄｃｅｌｇｒｏｗｔｈａｎｄｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ，ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎｄｅｎｓｉｔｙｏｆ６ｇｗａｓｂｅｔｅｒｔｈａｎｏｔｈｅｒｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎｄｅｎｓｉｔｉｅｓ，ｔｈｅｇｉｎｓｅｎ
ｏｓｉｄｅｃｏｎｔｅｎｔａｎｄｐｒｏｄｕｃｔｉｖｉｔｙｗｅｒｅｕｐｔｏ１２．８ｍｇ·ｇ－１ＤＷａｎｄ１４６．６ｍｇ·Ｌ－１，ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．
［Ｋｅｙｗｏｒｄｓ］ ｇｉｎｓｅｎｇｃｅｌ；ｖｅｎｔｉｌａｔｅｄｆｉｌｔｅｒ；ｒｅｖｏｌｕｔｉｏｎｓｐｅｅｄ；ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎｄｅｎｓｉｔｙ
ｄｏｉ：１０．４２６８／ｃｊｃｍｍ２０１３２３１１
［责任编辑 吕冬梅］
·１５０４·
第３８卷第２３期
２０１３年１２月
Ｖｏｌ３８，Ｉｓｓｕｅ ２３
Ｄｅｃｅｍｂｅｒ，２０１３