全 文 ：养阴益气活血方药对干燥综合征 ＮＯＤ小鼠颌下腺
Ｆａｓ／ＦａｓＬ及其 ｍＲＮＡ表达的影响
吴国琳１，李天一２，卢雯雯１，余国友１，范永升２
（１浙江大学 医学院 附属第一医院，浙江 杭州 ３１０００３；
２浙江中医药大学，浙江 杭州 ３１００５３）
［摘要］ 目的：观察养阴益气活血方药对干燥综合征ＮＯＤ小鼠颌下腺组织 Ｆａｓ／ＦａｓＬ及其 ｍＲＮＡ表达的影响。方法：３２
只ＮＯＤ小鼠随机分为模型组、中药组（每天按１００ｇ·ｋｇ－１灌胃养阴益气活血煎剂０４ｍＬ）、羟氯喹组（每天按６０ｍｇ·ｋｇ－１灌
胃羟氯喹０４ｍＬ）、中西药组（每天灌胃养阴益气活血煎剂５０ｇ·ｋｇ－１＋羟氯喹６０ｍｇ·ｋｇ－１，０４ｍＬ），每组８只，选８只
Ｂａｌｂ／Ｃ小鼠做为正常对照组。实验进行８周后处死小鼠，解剖摘取颌下腺，免疫组织化学法检测颌下腺组织Ｆａｓ，ＦａｓＬ蛋白的
表达；ＲＴＰＣＲ法检测颌下腺组织Ｆａｓ，ＦａｓＬｍＲＮＡ的表达。结果：模型组小鼠颌下腺组织Ｆａｓ，ＦａｓＬ表达均高于其他各组（Ｐ＜
００５）。对照组ＦａｓＬ表达明显低于羟氯喹组（Ｐ＜００５）。模型组小鼠颌下腺 ＦａｓｍＲＮＡ相对表达量均高于其他组，对照组明
显低于其他各组（Ｐ＜００５）。模型组小鼠颌下腺ＦａｓＬｍＲＮＡ表达高于中药组、中西药组（Ｐ＜００５）；中西药组表达明显低于
羟氯喹组（Ｐ＜００５）。结论：养阴益气活血煎剂能下调干燥综合征ＮＯＤ小鼠颌下腺Ｆａｓ，ＦａｓＬ及其ｍＲＮＡ的表达，且与羟氯喹
合用效果较好。养阴益气活血煎剂可能通过减少Ｆａｓ／ＦａｓＬ调控的细胞凋亡达到治疗ＳＳ的作用。
［关键词］ 干燥综合征；ＮＯＤ小鼠；养阴益气活血中药；Ｆａｓ／ＦａｓＬ
［收稿日期］ ２０１３０８２２
［基金项目］ 浙江省教育厅课题（Ｙ２０１２２３９４０）
［通信作者］ 李天一，副教授，Ｔｅｌ：（０５７１）８７２３６３４１，Ｅｍａｉｌ：ｗｕ
ｇｕｏｌｉｎ２８＠ａｌｉｙｕｎｃｏｍ
干燥综合征（Ｓｊｏｇｒｅｎ′ｓｓｙｎｄｒｏｍｅ，ＳＳ）是一种侵
犯唾液腺、泪腺等外分泌腺的慢性系统性自身免疫
性疾病。多见于４０～５０岁的女性，女性与男性比例
为９∶１［１］。临床主要表现为口干、眼干、关节酸痛、
便秘、皮肤干燥、鼻腔干燥等症状，严重者影响患者
生活质量。目前干燥综合征的病因和发病机制尚不
清楚。有研究［２］发现Ｆａｓ／ＦａｓＬ在ＳＳ患者唇腺组织
细胞和导管上皮内大量表达，浸润的淋巴细胞内很
少表达ＦａｓＬ。提示Ｆａｓ／ＦａｓＬ在ＳＳ唇腺腺胞及导管
上皮细胞内的异常表达可能是 ＳＳ患者唾液腺破坏
的一个重要机制。通过前期临床研究观察，运用中
药养阴益气活血中药配合西药治疗 ＳＳ疗效确
切［３４］。动物实验研究表明，其具有改善 ＮＯＤ小鼠
唾液分泌量、减少饮水量以及改善小鼠颌下腺淋巴
病理浸润的作用［５］，同时能调节小鼠血清和颌下腺
Ｔｈ１型细胞因子ＴＮＦα和 Ｔｈ２型细胞因子 ＩＬ１β水
平［６］。为此，通过研究中药养阴益气活血煎剂对干
燥综合征ＮＯＤ小鼠颌下腺组织 Ｆａｓ，ＦａｓＬ蛋白及其
ｍＲＮＡ表达的影响，以进一步明确其治疗干燥综合
征的可能机制。
１ 材料
１１ 动物 选择 ＮＯＤ小鼠３２只及 Ｂａｌｂ／Ｃ小鼠８
只，８周龄，雌性，均为ＳＰＦ级，于无特殊病菌的恒温
恒湿度条件下喂养。实验动物均由上海斯莱克动物
实验中心提供，动物合格证号２００７０００５１２５２６。
１２ 药品 中药养阴益气活血煎剂（由太子参２４
ｇ、白芍１５ｇ、玉竹１２ｇ、五味子１０ｇ、黄精１５ｇ、乌梅
１０ｇ、红景天１５ｇ、肿节风１２ｇ、青蒿１５ｇ、桑椹１２ｇ
等中药组成），所有中药饮片均购于浙江大学医学
院附属第一医院中药房，由浙江中医药大学中药实
验室煎制浓缩而成。制备方法：将药物按组方比例
混合，装入三角烧瓶中，加１０倍量水浸泡１ｈ，电磁
炉加热煮沸后，改用文火煎煮２ｈ，过滤药液；药渣再
加８倍量水煮沸１ｈ，药渣共煎煮２次，合并３次滤
液，浓缩成质量浓度为６ｇ·ｍＬ－１的药液，４℃冰箱
保存备用。硫酸羟氯喹片（上海中西制药有限公
司，批号０９１００８），用蒸馏水稀释成含生药量３ｇ·
Ｌ－１。
１３ 试剂 兔抗鼠 Ｆａｓ，ＦａｓＬ多克隆抗体（一抗）
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第３８卷第２３期
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（美国ＳａｎｔａＣｒｕｚ公司）；Ｓｐ９００１（北京中杉金桥分
装Ｚｙｍｅｄ，１８ｍＬ，批号８６１２０８）；Ｐｖ９００３（北京中杉
金桥分装 Ｚｙｍｅｄ，３ｍＬ，批号８６１１２９）；Ｆａｓ，ＦａｓＬ原
位杂交检测试剂盒（武汉博士德公司）；原位杂交检
测试剂盒（武汉博士德公司）；原位杂交专用 ＰＢＳ
（武汉博士德公司）；反转录试剂盒（ＴＡＫＡＲＡ公
司）。
２ 方法
２１ 动物分组 将３２只ＮＯＤ小鼠随机分为４组，
即模型组、中药组、羟氯喹组、中西药组，每组８只。
Ｂａｌｂ／Ｃ小鼠８只做为正常对照组。实验动物均喂
养于无特殊病菌的恒温恒湿度条件下，饮水瓶给水。
２２ 给药方法 对照组和模型组每天正常饲养。
各给药组在正常饲养基础上，于实验开始后每天定
时给药１次，给药量按动物与人等效剂量换算表计
算（相当于临床人用药剂量９倍）。中药组每天按
照１００ｇ·ｋｇ－１剂量分别灌胃养阴益气活血煎剂０４
ｍＬ。羟氯喹组每天按照６０ｍｇ·ｋｇ－１剂量灌胃羟氯
喹片稀释液０４ｍＬ；中西药组每天分别灌胃中药＋
羟氯喹（养阴益气活血煎剂５０ｇ·ｋｇ－１＋羟氯喹６０
ｍｇ·ｋｇ－１）０４ｍＬ。实验进行８周后处死小鼠，解
剖摘取双侧颌下腺进行指标检测。实验至第２周，
中药组有１只小鼠死亡，经解剖后发现是因灌胃不
当引起食管损伤而死。
２３ 免疫组化法检测小鼠颌下腺组织 Ｆａｓ，ＦａｓＬ含
量 动物给药喂养８周后，处死后摘取双侧颌下腺
组织，采用免疫组化 ＳＰ法检测小鼠颌下腺组织
Ｆａｓ，ＦａｓＬ含量，具体步骤严格按照说明书操作。采
用多功能真彩色细胞图象分析管理系统进行图像分
析，选取４００倍图像，细胞质或胞膜着棕黄色为阳性
表达细胞。选择有意义的组织相，经登录、编号、采
集、分析、读取数据。随机选取５个视野进行平均吸
光度测定，取其平均值作为该切片的代表值进行统
计分析。
２４ ＲｅａｌｔｉｍｅＰＣＲ法检测小鼠颌下腺组织 Ｆａｓ，
ＦａｓＬｍＲＮＡ的表达 以 ＧＡＰＤＨ为内参，实验过程
按试剂盒说明书进行，具体步骤如下：用 Ｔｒｉｓｏｌ试剂
盒提取颌下腺总 ＲＮＡ，取１μＬ进行 ＲＴＰＣＲ分析。
Ｆａｓ引物序列为上游 ５′ＡＧＧＣＣＧＣＣＣＧＣＴＧＴＴＴＴＣ
３′，下游５′ＡＣＧＡＡＣＣＣＧＣＣＴＣＣＴＣＡＧＣ３′，产物长度
１４５ｂｐ，Ｔｍ值６０；ＦａｓＬ引物序列为上游５′ＧＣＣＧＣ
ＣＡＣＴＧＡＣＣＣＣＴＣＴＡＡ３′，下游 ５′ＣＣＡＣＡＣＴＣＣＴＣＧ
ＧＣＴＣＴＴＴＴ３′，产物长度２４２ｂｐ，Ｔｍ值６０；ＧＡＰＤＨ
引物序列为上游 ５′ＡＡＡＴＧＧＴＧＡＡＧＧＴＣＧＧＴＧＴＧ
３′，下游 ５′ＴＧＡＡＧＧＧＧＴＣＧＴＴＧＡＴＧＧ３′，产物长度
１０８ｂｐ，Ｔｍ值６０。ＰＣＲ反应参数为９４℃ ５ｍｉｎ，再
将反应条件变为９４℃１５ｓ，６０℃４５ｓ，循环扩增４０
次。６０℃检测荧光值。
Ｆａｓ，ＦａｓＬ及内参 ＧＡＰＤＨ分别在２个管中同时
进行反应，除探针和引物外，２管中加入的 ＲＮＡ模
板和其他反应试剂均一致。通过 ＡＢＩ７５００定量
ＰＣＲ仪器取其循环阈值均值（Ｃｔ值），描述各组基因
的扩增曲线和溶解曲线。结果采用相对定量分析
法［７］：２ΔΔＣｔ法进行计算 ｍＲＮＡ相对表达量，以各组
ΔＣｔ值进行统计学分析，同时本实验以模型组做为
未处理组，与其他各组进行对照比较。
ΔＣｔ＝实验组目的基因 Ｃｔ值该组内参基因 Ｃｔ
值，ΔΔＣｔ＝实验组（目的基因 Ｃｔ内参基因 Ｃｔ）模型
组（目的基因 Ｃｔ内参基因 Ｃｔ），ΔＣｔ值越小表示
Ｆａｓ，ＦａｓＬｍＲＮＡ在颌下腺组织中的表达越高，而
２－ΔΔＣｔ值越高，表明样本中 Ｆａｓ，ＦａｓＬｍＲＮＡ相对于
模型组表达量越大。
本实验结果显示，所有样本中 Ｆａｓ，ＦａｓＬｍＲＮＡ
显示呈指数增长，并达到平台期，扩增效率较高。荧
光定量 Ｆａｓ及 ＦａｓＬｍＲＮＡＰＣＲ产物的熔解曲线表
现为单一的峰值，表明扩增产物单一，避免了检测过
程中假阳性结果。
２５ 统计学分析 实验数据用 ＳＰＳＳ１５０软件进
行统计分析。计量资料采用 珋ｘ±ｓ表达，组间比较采
用ＯｎｅＷａｙＡＮＯＶＡ检验方法，结果以 Ｐ＜００５为
差异有统计学意义。
３ 结果
３１ 各组小鼠颌下腺组织 Ｆａｓ，ＦａｓＬ蛋白表达比较
免疫组织化学阳性染色显示 Ｆａｓ，ＦａｓＬ表达呈棕
黄色颗粒。对照组小鼠颌下腺组织偶见 Ｆａｓ，ＦａｓＬ
表达，模型组小鼠颌下腺细胞质和细胞膜，及导管上
皮可见较多的 Ｆａｓ和 ＦａｓＬ蛋白表达。各给药组小
鼠颌下腺组织细胞质、细胞膜、导管上皮等可见部分
散在Ｆａｓ和ＦａｓＬ蛋白表达，明显少于模型组。各组
小鼠颌下腺组织 Ｆａｓ，ＦａｓＬ平均吸光度比较见表１。
模型组小鼠颌下腺组织 Ｆａｓ以及 ＦａｓＬ蛋白表达均
高于其他各组（Ｐ＜００５）。对照组 ＦａｓＬ表达与羟
氯喹组相比，统计有显著性差异（Ｐ＜００５）；而与中
药组、中西药组相比无显著性差异。
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表１ 各组小鼠颌下腺组织Ｆａｓ，ＦａｓＬ平均吸光度比较（珋ｘ±ｓ）
Ｔａｂｌｅ１ ＣｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｍｅａｎｏｐｔｉｃａｌｄｅｎｓｉｔｉｅｓｏｆＦａｓａｎｄＦａｓＬ
ｉｎｓｕｂｍａｎｄｉｂｕｌａｒｇｌａｎｄｓｏｆｅａｃｈｇｒｏｕｐｍｉｃｅ（珋ｘ±ｓ）
组别 ｎ Ｆａｓ ＦａｓＬ
对照 ８ ０１１０±００６２２） ０１００±００４１２）
模型 ８ ０４５０±０１５１１） ０５６３±０１９２１）
中药 ７ ０１５０±００６５２） ０１５４±００８１２）
羟氯喹 ８ ０２００±００７６２） ０２８８±０１３６１，２）
中西药 ８ ０１３１±００５９２） ０１６９±００８０２）
注：与对照组比较１）Ｐ＜００５；与模型组相比２）Ｐ＜００５（表２同）。
３２ 养阴益气活血方药对 ＮＯＤ小鼠颌下腺组织
Ｆａｓ，ＦａｓＬｍＲＮＡ表达的影响 模型组小鼠颌下腺组
织 ＦａｓｍＲＮＡ相对表达量均高于其他各组（Ｐ＜
００５）；对照组明显低于其他各组，具有显著性差异
（Ｐ＜００５），见表２。模型组小鼠颌下腺组织 ＦａｓＬ
ｍＲＮＡ表达均高于其他组，与中药组、中西药相比具
有显著性差异（Ｐ＜００５）；对照组明显低于其他各
组，相比统计具有显著性差异（Ｐ＜００５）；中西药组
表达明显低于羟氯喹组（Ｐ＜００５），见表３。
表２ 各组小鼠颌下腺组织ＦａｓｍＲＮＡ相对表达量比较（珋ｘ±ｓ）
Ｔａｂｌｅ２ ＣｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｒｅｌａｔｉｖｅＦａｓｍＲＮＡｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｉｎｓｕｂ
ｍａｎｄｉｂｕｌａｒｇｌａｎｄｓｏｆｅａｃｈｇｒｏｕｐｍｉｃｅ（珋ｘ±ｓ）
组别 ｎ ΔＣｔ ΔΔＣｔ ２－ΔΔＣｔ
对照 ８ １５７６±１２６２） ９７６±１７７ ０００１
模型 ８ ６９５±１２５１） ０００±１６８ １００
中药 ７ １２７０±２２２１，２） ５５７±２５５ ００２１
羟氯喹 ８ １１５４±１２８１，２） ４５９±１７９ ００４２
中西药 ８ １３６１±１９９１，２） ６６６±２３５ ００１０
表３ 各组小鼠颌下腺组织 ＦａｓＬｍＲＮＡ相对表达量比较
（珋ｘ±ｓ）
Ｔａｂｌｅ３ＣｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｒｅｌａｔｉｖｅＦａｓＬｍＲＮＡｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｉｎｓｕｂ
ｍａｎｄｉｂｕｌａｒｇｌａｎｄｓｏｆｅａｃｈｇｒｏｕｐｍｉｃｅ（珋ｘ±ｓ）
组别 ｎ ΔＣｔ ΔΔＣｔ ２－ΔΔＣｔ
对照 ８ １９７２±１６７２） ９４６±１９８ ０００１
模型 ８ １０２６±１０７１） ０００±１５１ １０００
中药 ７ １４５８±２５８１，２） ４３２±２７９ ００５０
羟氯喹 ８ １１８３±２１３１） １５７±２３８ ０３３７
中西药 ８ １６５５±３３６１，２，３） ６２９±３５３ ００１３
注：与对照组比较１）Ｐ＜００５；与模型组相比２）Ｐ＜００５；与羟氯
喹组相比３）Ｐ＜００５。
４ 讨论
Ｆａｓ系统是目前研究较为深入的一类与细胞凋
亡（ａｐｏｐｔｏｓｉｓ，ＡＰＯ）有关的基因。Ｆａｓ／ＦａｓＬ作为介
导细胞凋亡的一对蛋白质，是调控细胞凋亡的重要
因子，在人体细胞凋亡、免疫赦免、维护机体稳态平
衡有重要的生理功能［８］。研究显示［９］ｐＳＳ患者唇腺
腺泡上皮细胞（ＡＥＣ）和导管上皮细胞（ＤＥＣ）细胞
凋亡率及Ｆａｓ／ＦａｓＬ蛋白表达较正常人显著升高，且
二者呈正相关，提示唇腺组织细胞凋亡可能是 Ｆａｓ／
ＦａｓＬ途径介导的。Ｓａｅｇｕｓａ［１０］发现在原发性干燥综
合征动物模型中，唾液腺组织ＣＤ４（＋）Ｔ细胞浸润，
出现很大比率 Ｆａｓ配体，唾液腺导管上皮细胞不断
的产生Ｆａｓ。均提示Ｆａｓ／ＦａｓＬ途径介导的细胞凋亡
可能是ｐＳＳ唇腺组织功能失调的原因之一。
目前ＳＳ治疗方法主要是采取措施改善症状，控
制和延缓病情进展，根据病情进行局部治疗或系统
治疗，而中医药配合西药在治疗ＳＳ方面有一定的优
势，取得了较好临床疗效。在长期的临床观察中发
现，ＳＳ患者辩证以气阴两虚兼有血瘀为多见，故运
用养阴、益气、活血的方法治疗 ＳＳ与之相应。中药
养阴益气活血方具有滋肾养阴、益气生津、活血化瘀
之功，有效针对阴虚气虚兼血瘀病机，达到治疗 ＳＳ
之目的。临床运用中西医结合治疗后，患者临床症
状明显缓解，同时改善 ＳＳ患者机体的细胞免疫、体
液免疫以及炎症过程，减轻自身免疫性炎症，有效缓
解ＳＳ的病情［３］。通过临床研究发现，本方药还能
改善ＳＳ患者生活质量和整体状况［４］。故有必要更
深入研究其具体作用机制。
本研究结果显示，模型组小鼠颌下腺组织 Ｆａｓ
以及ＦａｓＬ蛋白表达均高于其他各组，提示 ＳＳ颌下
腺组织存在 Ｆａｓ及 ＦａｓＬ的高表达，促进细胞凋亡，
导致淋巴细胞浸润而使颌下腺受损而发病，说明细
胞凋亡在ＳＳ发病中有一定的作用。正常组ＦａｓＬ表
达明显低于羟氯喹组；而与中药组、中西药组相比无
显著性差异。表明中药养阴益气活血方药能降低干
燥综合征 ＮＯＤ小鼠颌下腺组织 Ｆａｓ，ＦａｓＬ蛋白表
达。模型组小鼠颌下腺组织 ＦａｓＬｍＲＮＡ表达均高
于对照组、中药组、中西药组；中西药组表达明显低
于羟氯喹组。提示中药养阴益气活血煎剂和羟氯喹
均能够降低ＮＯＤ小鼠颌下腺组织 Ｆａｓ，ＦａｓＬｍＲＮＡ
的表达，中药与羟氯喹合用效果更好。说明中药养
阴益气活血煎剂可能通过下调干燥综合征 ＮＯＤ小
鼠颌下腺组织 Ｆａｓ，ＦａｓＬ及其 ｍＲＮＡ表达来调节细
胞凋亡，从而改善颌下腺组织的损害，达到有效
治疗。
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第３８卷第２３期
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Ｄｅｃｅｍｂｅｒ，２０１３
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Ｆａｓ／ＦａｓＬｉｎｓａｌｉｖａｒｙｇｌａｎｄｓｏｆＮＯＤｍｉｃｅｗｉｔｈｓｊｏｇｒｅｎ′ｓｓｙｎｄｒｏｍｅ
ａｎｄｔｈｅｉｒｍＲＮＡｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ
ＷＵＧｕｏｌｉｎ１，ＬＩＴｉａｎｙｉ２，ＬＵＷｅｎｗｅｎ１，ＹＵＧｕｏｙｏｕ１，ＦＡＮＹｏｎｇｓｈｅｎｇ２
（１ＦｉｒｓｔＡｆｉｌｉａｔｅｄＨｏｓｐｉｔａｌ，ＭｅｄｉｃａｌＣｏｌｅｇｅ，ＺｈｅｊｉａｎｇＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｈａｎｇｚｈｏｕ３１０００３，Ｃｈｉｎａ；
２ＺｈｅｊｉａｎｇＣｈｉｎｅｓｅＭｅｄｉｃｉｎｅＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｈａｎｇｚｈｏｕ３１００５３，Ｃｈｉｎａ）
［Ａｂｓｔｒａｃｔ］ Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ：ＴｏｏｂｓｅｒｖｅｔｈｅｅｆｅｃｔｏｆｎｏｕｒｉｓｈｉｎｇＹｉｎ，ｓｔｒｅｎｇｔｈｅｎｉｎｇＱｉａｎｄａｃｔｉｖａｔｉｎｇｂｌｏｏｄｄｅｃｏｃｔｉｏｎｏｎＦａｓ／ＦａｓＬｉｎ
ｓａｌｉｖａｒｙｇｌａｎｄｓｏｆＮＯＤｍｉｃｅｗｉｔｈＳｊｏｇｒｅｎ′ｓｓｙｎｄｒｏｍｅａｎｄｔｈｅｉｒｍＲＮＡｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎＭｅｔｈｏｄ：ＴｈｉｒｔｙｔｗｏＮＯＤｍｉｃｅｗｅｒｅｒａｎｄｏｍｌｙｄｉ
ｖｉｄｅｄｉｎｔｏｔｈｅｍｏｄｅｌｇｒｏｕｐ，ｔｈｅｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌＣｈｉｎｅｓｅｍｅｄｉｃｉｎｅｇｒｏｕｐ（ＴＣＭｇｒｏｕｐ，ｏｒａｌｙｇｉｖｅｎ０４ｍＬｎｏｕｒｉｓｈｉｎｇＹｉｎ，ｓｔｒｅｎｇｔｈｅｎｉｎｇＱｉ
ａｎｄａｃｔｉｖａｔｉｎｇｂｌｏｏｄｄｅｃｏｃｔｉｏｎａｓｐｅｒ１００ｇ·ｋｇ－１ｅｖｅｒｙｄａｙ），ｔｈｅｈｙｄｒｏｘｙｃｈｌｏｒｏｑｕｉｎｅｇｒｏｕｐ（ｇｉｖｅｎ０４ｍＬｈｙｄｒｏｘｙｃｈｌｏｒｏｑｕｉｎｅａｓｐｅｒ
６０ｍｇ·ｋｇ－１ｅｖｅｒｙｄａｙ），ｔｈｅｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌＣｈｉｎｅｓｅｍｅｄｉｃｉｎｅａｎｄｗｅｓｔｅｒｎｍｅｄｉｃｉｎｅｇｒｏｕｐ（ＴＣＭＷＭｇｒｏｕｐ，ｇｉｖｅｎｎｏｕｒｉｓｈｉｎｇＹｉｎ，
ＳｔｒｅｎｇｔｈｅｎｉｎｇＱｉａｎｄａｃｔｉｖａｔｉｎｇｂｌｏｏｄｄｅｃｏｃｔｉｏｎ５０ｇ·ｋｇ－１ａｎｄｈｙｄｒｏｘｙｃｈｌｏｒｏｑｕｉｎｅ６０ｍｇ·ｋｇ－１，０４ｍＬｅｖｅｒｙｄａｙ），ｗｉｔｈｅｉｇｈｔｍｉｃｅ
ｉｎｅａｃｈｇｒｏｕｐＥｉｇｈｔＢａｌｂ／Ｃｍｉｃｅｗｅｒｅｓｅｌｅｃｔｅｄａｓｔｈｅｎｏｒｍａｌｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ（ｎｏｒｍａｌｇｒｏｕｐ）Ａｌｏｆｍｉｃｅｗｅｒｅｋｉｌｅｄａｆｔｅｒｅｉｇｈｔｗｅｅｋｓ，
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［Ｋｅｙｗｏｒｄｓ］ ｓｊｏｇｒｅｎ′ｓｓｙｎｄｒｏｍｅ；ｎｏｎｏｂｅｓｅｄｉａｂｅｔｉｃｍｏｕｓｅ；ｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌＣｈｉｎｅｓｅｍｅｄｉｃｉｎｅｆｏｒｎｏｕｒｉｓｈｉｎｇＹｉｎ，ｓｔｒｅｎｇｔｈｅｎｉｎｇＱｉ
ａｎｄａｃｔｉｖａｔｉｎｇｂｌｏｏｄ；Ｆａｓ／ＦａｓＬ
ｄｏｉ：１０．４２６８／ｃｊｃｍｍ２０１３２３３２ ［责任编辑 张宁宁］
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第３８卷第２３期
２０１３年１２月
Ｖｏｌ３８，Ｉｓｓｕｅ ２３
Ｄｅｃｅｍｂｅｒ，２０１３